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豬細(xì)小病毒高效納米PCR檢測方法的建立

2014-05-21 09:42崔宇超彭永剛馬興杰崔尚金
關(guān)鍵詞:特異性引物模板

崔宇超,彭永剛,馬興杰,崔尚金*

(1.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)動物科技學(xué)院,黑龍江 大慶 163319;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所獸醫(yī)生物技術(shù)國家重點實驗室,黑龍江 哈爾濱 150001)

豬細(xì)小病毒(Porcine parvovirus,PPV)是引起母豬繁殖障礙的主要病原之一,臨床癥狀以死胎和母豬流產(chǎn)為主要特征[1]。目前,PCR是檢測PPV的一種主要技術(shù)。此外還有環(huán)介導(dǎo)等溫擴增法(LAMP)[2]和熒光定量PCR方法[3-4]。這些方法均是為了提高現(xiàn)有PCR的敏感性,但熒光定量PCR需要昂貴的定量PCR儀,LAMP容易形成氣溶膠污染,這些缺點限制了其在臨床中的簡便應(yīng)用。因此,本研究針對PPV VP2基因,建立一種快速、敏感、特異的納米PCR檢測技術(shù)。

1 材料和方法

1.1 病毒核酸和病料樣品 豬的主要病毒核酸包括PPV BQ-C株DNA,豬圓環(huán)病毒Ⅱ型(PCV2)SH株DNA,豬捷申病毒(PTV-8)cDNA,豬偽狂犬病毒(PRV)JL株DNA,豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)HB株cDNA,豬瘟病毒(CSFV)cDNA均由本實驗室保存;病料樣品為黑龍江、河北和河南3個省份的43份臨床疑似PPV感染組織樣品,主要包括發(fā)病豬的心、肝、脾、肺、腎等組織。

1.2 主要試劑 PrimeSTARRHS DNA高保真酶、DL2000 Marker、DNA A-Tailing Kit、pMD18-T 載體、E.coliDH5α感受態(tài)細(xì)胞、2×GC bufferⅡ購自TaKaRa公司;質(zhì)粒抽提試劑盒購自O(shè)MEGA公司;DNA提取試劑盒購自TIANGEN公司;膠回收試劑盒購自AXYGEN公司;納米PCR試劑盒購自山東大正醫(yī)療器械股份有限公司。

1.3 引物設(shè)計 參照GeneBank中登錄的PPV BQ株序列的VP2基因,應(yīng)用Oligo6.0軟件設(shè)計擴增PPV VP2基因全長序列的引物,通過與已公布的VP2基因全長序列進行比對后篩選保守區(qū)域設(shè)計擴增472 bp片段的引物。引物由哈爾濱博士生物公司合成(表 1)。

表1 引物序列Table 1 Primer sequences

1.4 VP 2重組質(zhì)粒模板的制備 以PPV BQ-C株細(xì)胞培養(yǎng)物提取的DNA為模板,以P1/P2為引物,利用PrimerSTAR高保真酶擴增VP2基因全長序列,并將其克隆至pMD18-T載體中構(gòu)建重組質(zhì)粒pMD-VP2,測序正確后作為PCR的陽性模板。

1.5 納米PCR的建立以及條件優(yōu)化 根據(jù)文獻(xiàn)[5]的方法,將納米PCR反應(yīng)體系預(yù)設(shè)定為:2×nano buffer 6 μL,P3/P4(10 μmol/L)0.6 μL,pMD-VP2(100 ng/μL)0.8 μL,Taq 酶(5 U/μL)0.2 μL,ddH2O補至12 μL;反應(yīng)條件預(yù)設(shè)定為:94℃5 min;94℃30 s、50℃30 s、72℃40 s,30個循環(huán);72℃7 min。普通PCR反應(yīng)體系中,緩沖液為不含有納米顆粒的2×GC bufferⅡ,同時添加dNTP,其他的反應(yīng)試劑和反應(yīng)條件與優(yōu)化的納米PCR相同。

利用溫度梯度PCR儀設(shè)置溫度為46℃~55℃,間隔1℃,進行退火溫度優(yōu)化,反應(yīng)體系和其他反應(yīng)條件均相同。引物(初始濃度為10 μmol/L)的使用體積從 0.2 μL 到 1.2 μL 進行優(yōu)化,間隔 0.2 μL,優(yōu)化的各組引物的終濃度為1/6 μmol/L~6/6 μmol/L,反應(yīng)條件以優(yōu)化后的退火溫度為準(zhǔn)。

1.6 敏感性試驗 陽性模板測定濃度后根據(jù)濃度計算拷貝數(shù),10倍倍比稀釋后得到濃度梯度標(biāo)準(zhǔn)品。分別利用納米PCR和普通PCR對倍比稀釋的陽性模板進行擴增,以比較二者的敏感性。重復(fù)4次。

1.7 特異性試驗 應(yīng)用納米PCR分別對PPV、PCV2和PRV的DNA以及PTV-8、PRRSV和CFSV的cDNA進行檢測,以此驗證納米PCR方法的特異性。試驗重復(fù)進行4次。

1.8 納米PCR與普通PCR對臨床樣品的檢測比較將43份臨床組織樣品分別剪碎、研磨,參照基因組DNA提取試劑盒說明書提取DNA,分別應(yīng)用納米PCR和普通PCR對提取的DNA進行檢測。

2 結(jié) 果

2.1 陽性模板的制備 以PPV細(xì)胞培養(yǎng)物提取的DNA作為模板,擴增VP2基因全長序列,獲得產(chǎn)物為1758 bp。將其經(jīng)過膠回收純化后連接到pMD18-T載體中構(gòu)建重組質(zhì)粒,并且測序正確,將其命名為pMD-VP2,作為PCR的陽性模板。

2.2 納米PCR的建立以及條件優(yōu)化經(jīng)過 經(jīng)各種條件的優(yōu)化,最終確定納米PCR體系:2×nano buffer 6 μL,P3/P4(10 μmol/L)0.6 μL(引物終濃度為 1/2 μmol/L),模板(100 ng/μL)0.8 μL,Taq 酶(5 U/μL)0.2 μL,ddH2O 補至 12 μL;反應(yīng)條件:94 ℃5 min;94℃ 30 s、48℃ 30 s、72℃ 40 s,30個循環(huán);72℃7 min。普通PCR反應(yīng)體系中添加4.5 μL 2×GC bufferⅡ和 1.5 μL dNTP,其他試劑和反應(yīng)條件同納米PCR。

2.3 敏感性試驗 構(gòu)建的重組質(zhì)粒測定其濃度為100 ng/μL,換算成拷貝數(shù)濃度為 4×1010拷貝 /μL。將重組質(zhì)粒進行10倍倍比稀釋,得到濃度梯度標(biāo)準(zhǔn)品(4 拷貝 /μL~4×1010拷貝 /μL)。納米 PCR 的最低檢出量為4拷貝/μL(圖1A),而普通PCR的最低檢出量為4×103拷貝/μL(圖1B),表明納米PCR比普通PCR敏感1000倍。

圖1 納米PCR(A)和普通PCR(B)的敏感性試驗Fig.1 Sensitivity tests of the nano PCR(A)and conventional PCR(B)

2.4 特異性試驗 應(yīng)用納米PCR對豬的6種主要病毒DNA或者cDNA進行檢測,只有以PPV DNA為模板時擴增出472 bp特異性條帶,而其他5種病毒核酸檢測結(jié)果均呈陰性(圖2),表明該納米PCR具有良好的特異性。

圖2 納米PCR的特異性試驗Fig.2 Specificity test of the nano PCR

2.5 納米PCR與普通PCR對臨床樣品的檢測比較分別應(yīng)用納米PCR和普通PCR對3個省份送檢的43份臨床樣品進行檢測。結(jié)果顯示,納米PCR和普通PCR檢測PPV陽性率分別為95%(41/43)和72%(31/43),表明該納米PCR比普通PCR更加敏感,適用于低含量PPV臨床樣品的檢測。

3 討 論

目前,檢測PPV的PCR主要包括普通PCR和熒光定量PCR。在臨床應(yīng)用中,普通PCR較為常用,但其敏感性不顯著,熒光定量PCR較為精準(zhǔn),但需要精密的儀器并且操作程序復(fù)雜。納米PCR是一種新型的PCR技術(shù),它比普通PCR更加敏感,比熒光定量PCR更加方便快捷。納米PCR緩沖液中含有粒徑為1 nm~100 nm的納米金屬顆粒,當(dāng)反應(yīng)時納米金屬顆粒懸浮在液體里形成納米流體,這種納米流體相對于普通流體具有更強的導(dǎo)熱性,高導(dǎo)熱性能夠加快溫度升高和下降的速度,使反應(yīng)體系快速達(dá)到目標(biāo)溫度,減少在非目標(biāo)溫度的停留時間,增加特異性反應(yīng)時間,因而最終達(dá)到消除非特異性擴增,提高擴增效率和敏感性的目的[6-7]。本研究首次應(yīng)用納米PCR技術(shù)針對PPV VP2基因進行檢測,建立一種快速、敏感、特異的PPV檢測方法。本研究建立的納米PCR比普通PCR敏感1000倍。并且具有良好的特異性。

臨床中,在PPV感染初期或者后期病毒載量較低時,應(yīng)用納米PCR檢測PPV更加高效,適合于基層實驗室的使用。本研究中分別應(yīng)用納米PCR和普通PCR檢測臨床樣品,結(jié)果表明納米PCR比普通PCR更加敏感。該PPV納米PCR具有較高的敏感性和特異性,是一種高效的檢測手段,可以應(yīng)用于流行病學(xué)調(diào)查,同時也為PPV的及時檢測、預(yù)防和治療奠定基礎(chǔ)。

[1]Martínez C,Dalsgaard K,López de Turiso J A,et al.Production of porcine parvovirus empty capsid with high immunogenic activity[J].Vaccine,1992,10(10):684-690.

[2]Chen Hao-tai,Zhang Jie.Rapid detection of porcine parvovirus DNA by sensitive loop-mediated isothermal amplification[J].J Virol Methods,2009,158(1-2):100-103.

[3]Chen Hong-ying,Li Xiao-kang,Cui Bao-an,et al.ATaqManbased real-time polymerase chain reaction for the detection of porcine parvovirus[J].J Virol Methods,2009,156(1-2):84-88.

[4]Zheng Lan-lan,Wang Ya-bin,Li Ming-feng,et al.Simultaneous detection of porcine parvovirus and porcine circovirus type 2 by duplex real-time PCR and amplicon melting curve analysis using SYBR Green[J].J Virol Methods,2013,187(1):15-19.

[5]Ma Xing-jie,Cui Yu-chao.A nanoparticle-assisted PCR assay to improve the sensitivity for rapid detection and differentiation of wild-type pseudorabies virus and gene-deleted vaccine strains[J].J Virol Methods,2013,193(2):374-378.

[6]Li Hai-kuo.Colorimetric detection of DNA sequences based on electrostatic interactions with unmodified gold nanoparticles[J].Proc Natl Acad Sci,2004,101(39):14036-14039.

[7]Keblinski P,Phillpot S R,Choi S U S,et al.Mechanism of heat flow in suspension of nano-sized particles(nanofluids)[J].Int J Heat Mass Transf,2002,45(4):855-863.

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