江 湖, 田 健, 應(yīng) 碧, 伍寧豐?, 徐 波?
1.江西農(nóng)業(yè)大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,南昌330045;
2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究所,北京100081
細(xì)菌代謝的有效性和適應(yīng)性是眾所周知的。它們進(jìn)化出復(fù)雜且連鎖的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)以應(yīng)對幾乎任何環(huán)境條件。為了能快速恰當(dāng)?shù)刈鞒鲰憫?yīng),細(xì)菌必須緊密監(jiān)測必要營養(yǎng)的可利用性,如碳源、氮源、磷、硫、微量元素、陽離子和陰離子。細(xì)菌通過監(jiān)測這些營養(yǎng)物質(zhì)的胞外濃度、胞內(nèi)累積,以及胞內(nèi)的流動,把這些信號傳遞到調(diào)控蛋白從而作出響應(yīng)[1]。
在很多革蘭氏陽性細(xì)菌的基因組中,都存在glnR基因,其編碼的蛋白GlnR是一種轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子。GlnR最初是在天藍(lán)鏈霉菌中被鑒定,它能使谷氨酰胺營養(yǎng)缺陷型回復(fù)成野生型[2]。研究證實(shí),GlnR不僅在氮代謝的調(diào)控中扮演重要角色,也與磷酸代謝、抗生素合成等次級代謝途徑以及細(xì)菌毒性存在交叉調(diào)控[3~6]。 目前,已有大量針對GlnR轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子的研究。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),在很多菌屬中(如枯草芽胞桿菌、擬無枝酸桿菌、谷氨酸棒狀桿菌、天藍(lán)色鏈霉菌和恥垢分枝桿菌等),GlnR是氮代謝調(diào)控的一個(gè)全局性轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子,它對很多參與氮代謝的基因都有調(diào)控作用。氮代謝途徑的相關(guān)基因中,glnA、gdhA、glnPQ、amtB、nirBD、ureA、glnK 和 glnD 等均受GlnR 的調(diào)控[7~9]。
氮源是細(xì)菌生存最重要的元素之一,其中對氮源的有效吸收和同化是所有細(xì)菌生存最重要的能力。細(xì)菌進(jìn)化出許多機(jī)制吸收各種各樣的氮源[9]。氮源的同化與吸收和無機(jī)氮源摻入細(xì)胞代謝物,是幾乎所有細(xì)菌的重要生理過程。不同氮源經(jīng)過同化,形成了細(xì)胞內(nèi)重要氮素來源的兩種氨基酸,即谷氨酰胺和谷氨酸。銨幾乎總是首選氮源,因?yàn)樗苤苯颖煌缮锖铣煞磻?yīng)的關(guān)鍵氮素,即谷氨酰胺和谷氨酸。細(xì)菌存在兩條銨同化途徑:谷氨酸脫氫酶(GDH)途徑和谷氨酰胺合成酶/谷氨酸合成酶(GS/GOGAT)途徑[10,11]。 谷氨酰胺合成酶(GS)是氮代謝調(diào)控中的關(guān)鍵酶,其活力受到嚴(yán)格的調(diào)控,以保證谷氨酰胺的供應(yīng)不會受到細(xì)胞可利用氮源的影響。
有關(guān)細(xì)菌氮代謝調(diào)控研究最初是在腸桿菌(Enterobacteriaceae)中進(jìn)行的,并以此作為原核生物氮源調(diào)控的模式菌株,目前對枯草芽胞桿菌和鏈霉菌屬的氮代謝調(diào)控研究也較為清晰。大部分微生物的氮代謝具有一個(gè)共同之處,即都是由一個(gè)全局性轉(zhuǎn)錄調(diào)控蛋白介導(dǎo),GlnR就是這樣一個(gè)全局轉(zhuǎn)錄調(diào)控蛋白。GlnR屬于螺旋-轉(zhuǎn)角-螺旋OmpR家族蛋白。但在革蘭氏陰性腸桿菌中并不存在GlnR同源物,它們可以通過雙元件系統(tǒng)調(diào)控谷氨酰胺合成酶的翻譯,并通過可逆共價(jià)修飾調(diào)節(jié)谷氨酰胺合成酶的酶活[12]。同樣在革蘭氏陽性梭菌屬中也未發(fā)現(xiàn)GlnR,它們通過反義RNA調(diào)節(jié)谷氨酰胺合成酶的水平[12,13]。因此也顯示出微生物的氮代謝調(diào)節(jié)機(jī)制存在很大差異。
枯草芽胞桿菌B.subtilis是低G+C含量革蘭氏陽性菌最突出的模式菌株,其中至少存在3個(gè)調(diào)控蛋白CodY、GlnR和TnrA調(diào)控氮代謝相關(guān)基因的表達(dá)[15]。GlnR和TnrA是MerR家族轉(zhuǎn)錄因子的主要成員,能識別相同的操作子序列5′?TGT?NAN7TNACA?3′[16~19]。
枯草芽胞桿菌沒有谷氨酸脫氫酶活性,只能通過谷氨酰胺合成酶/谷氨酸合成酶途徑吸收銨??莶菅堪麠U菌的谷氨酰胺合成酶活力受反饋調(diào)節(jié)(feed back inhibited GS, FBI?GS),glnR 直接位于glnA上游,是雙順反子glnRA操縱子的一部分,GlnR具有一個(gè)α-螺旋-轉(zhuǎn)角-螺旋結(jié)構(gòu)域,形成二聚體并結(jié)合到glnRA操縱子的操作子glnRA01和glnRA02上,在氮源豐富時(shí)抑制 glnRA的轉(zhuǎn)錄[18,19]。 氮源貧乏時(shí)(如谷氨酸作為唯一氮源),glnRA操縱子的表達(dá)被TnrA抑制。氮源豐富時(shí),GlnR也能抑制脲酶操縱子ureABC、tnrA基因以及幾個(gè)受TnrA調(diào)控的基因的表達(dá)。TnrA和GlnR不僅調(diào)控了自身的表達(dá),還彼此相互調(diào)節(jié)[20]。GlnR通過與谷氨酰胺合成酶相互作用,間接感應(yīng)谷氨酰胺濃度,調(diào)節(jié)自身活性。盡管 GlnR和TnrA識別相同的序列,但GlnR不能調(diào)控某些TnrA的靶基因,這可能是由于GlnR對包含兩個(gè)GlnR/TnrA識別位點(diǎn)的 DNA有較高的親和性[11,19]。
放線菌能產(chǎn)生大量具有重要生物活性的次級代謝產(chǎn)物,是商業(yè)酶和藥物的生產(chǎn)菌。GlnR在放線菌氮代謝相關(guān)基因的表達(dá)調(diào)控中起著重要作用,包括天藍(lán)鏈霉菌(Streptomyces coelicolor)[21]、委內(nèi)瑞拉鏈霉菌(S.venezuelae)[22]、地中海擬無枝酸桿菌(Amycolatopsis mediterranei)[23]、恥垢分枝桿菌( Mycobacterium smegmatis)[7,24]、 戈 登 氏 菌(Gordonia)[25]和人源肺結(jié)核桿菌(Mycobacterium tuberculosis)[26]。
天藍(lán)鏈霉菌是產(chǎn)抗生素鏈霉菌屬的模式菌,與枯草芽胞桿菌不同的是,它的 GlnR是屬于OmpR家族的轉(zhuǎn)錄因子,是細(xì)菌雙組分系統(tǒng)典型的應(yīng)答調(diào)控蛋白,不能調(diào)控自身的表達(dá),據(jù)推測GlnR活性受一個(gè)未知的組氨酸激酶的磷酸化作用調(diào)節(jié)。氮源受限時(shí),GlnR能激活天藍(lán)鏈霉菌銨同化相關(guān)基因的表達(dá),包括分別編碼谷氨酰胺合成酶同工酶 GSⅠ?β和 GSⅡ的 glnA和 glnⅡ基因,以及編碼氨轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的amtB基因。天藍(lán)鏈霉菌還存在一個(gè)與GlnR很相似的OmpR家族調(diào)控蛋白GlnRⅡ,與glnⅡ相鄰,GlnRⅡ能與glnⅡ上游序列相互作用。GlnRⅡ能識別大部分GlnR的靶標(biāo)基因,glnR的缺失導(dǎo)致天藍(lán)鏈霉菌的谷氨酰胺營養(yǎng)缺陷型,而glnRⅡ缺失突變株仍能在不含谷氨酰胺的最低限度培養(yǎng)基生長,GlnRⅡ在氮代謝中的作用目前還不清楚[27,28]。 Tiffer等[29]通過生物信息學(xué)手段搜尋包含相同GlnR結(jié)合序列的啟動子,結(jié)合體外實(shí)驗(yàn),在天藍(lán)鏈霉菌中發(fā)現(xiàn)10個(gè)新的GlnR靶標(biāo),包括硝酸、尿素等多種氮源同化的基因和一些功能未知的基因。有趣的是,GlnR對其中一些靶標(biāo)基因也有負(fù)調(diào)控作用,包括gdhA、ureA和其他一些功能未知的基因。最近,研究發(fā)現(xiàn)天藍(lán)鏈霉菌中的硝酸鹽還原酶編碼基因nasA及硝酸鹽同化相關(guān)基因nnar也受到GlnR的調(diào)控,但 GlnR識別序列與之前發(fā)現(xiàn)的稍有不同[27,30~32]。
分枝桿菌中,GlnR類似蛋白可以激活amt1基因、amtB?glnK?glnD 操縱子和 glnA 基因的表達(dá),氮源受限時(shí)抑制亞硝酸鹽還原酶基因nirB的表達(dá)。
乳酸乳球菌(Lactococcus lactis)是低G+C含量革蘭氏陽性菌的模式菌株之一,由于具有多種氨基酸營養(yǎng)缺陷型[33],關(guān)于其谷氨酰胺和谷氨酸代謝調(diào)控研究相對較少,因此對其氮代謝了解并不多。
Larsen等[34]通過構(gòu)建乳酸乳球菌glnR缺失突變株結(jié)合DNA微陣列的方法,在乳酸乳球菌中發(fā)現(xiàn)了10個(gè)GlnR靶標(biāo),其中包括3個(gè)直接靶標(biāo)glnRA操縱子、推定的銨轉(zhuǎn)運(yùn)及感應(yīng)操縱子amtB?glnK和谷氨酰胺/谷氨酸ABC轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白編碼基因glnPQ。乳酸乳球菌 glnR缺失突變株中 glnA、amtB?glnK操縱子的表達(dá)被高度抑制,amtB?glnK啟動子-35區(qū)上游的GlnR盒對GlnR介導(dǎo)的抑制作用極為重要。
在乳酸乳球菌中,GlnR和另外一個(gè)全局調(diào)控蛋白CodY在氮代謝調(diào)控中均起重要作用,在氮源豐富時(shí)CodY可能接管GlnR對amtB?glnK的調(diào)控。乳酸乳球菌的GlnR識別與枯草芽胞桿菌的GlnR/TnrA相同的轉(zhuǎn)錄操縱子序列,但二者只有一個(gè)共同的GlnR靶標(biāo),即glnRA操縱子,而乳酸乳球菌中受GlnR調(diào)控的glnPQ基因在枯草芽胞桿菌中受 TnrA 調(diào)控[7,18,19]。 因此,盡管乳酸乳球菌和枯草芽胞桿菌中的GlnR功能相似,但乳酸乳球菌的GlnR具有不同于枯草芽胞桿菌的氮代謝調(diào)控方式。
低G+C含量革蘭氏陽性致病菌肺炎鏈球菌(Streptococcus pneumoniae)中,GlnR 識別并結(jié)合與枯草芽胞桿菌相同的保守的操縱子序列,調(diào)控glnRA和glnPQ?zwf操縱子及谷氨酸合成酶編碼基因gdhA的表達(dá),GlnR的調(diào)控依賴于谷氨酰合成酶[33~36]。 Schreier等[5]通過回補(bǔ)金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的glnR到枯草芽胞桿菌glnR缺失突變株,發(fā)現(xiàn)金黃色葡萄球菌的GlnR與枯草芽胞桿菌GlnR有相似的功能,推測金黃色葡萄球菌中氮代謝基因同樣受到類似的GlnR介導(dǎo)的調(diào)控作用。
GlnR不僅參與細(xì)菌的氮代謝調(diào)控,同時(shí)也與細(xì)菌的多種代謝途徑存在交叉調(diào)控。
天藍(lán)鏈霉菌的雙組份系統(tǒng)AfsQ1/Q2是抗生素合成和形態(tài)分化的一個(gè)多效性調(diào)節(jié)子[4]。AfsQ1/Q2通過直接激活途徑特異性基因actⅡ?ORF4、redZ和 cdaR的表達(dá),刺激放線菌紫素(actinorhodin,ACT)、十一烷基靈菌紅素(undecyl?prodigiosin,RED)和鈣依賴抗生素(calcium?de?pendent antibiotic,CDA)的合成。 AfsQ1/Q2 同時(shí)也是氮源同化的阻遏物,抑制GlnR靶標(biāo)glnA、amtB和ureA的表達(dá),并且可以與GlnR競爭結(jié)合glnA和nirB的啟動子,而GlnR也可以與actⅡ?ORF4、redZ和cdaR基因各自的啟動子結(jié)合,說明AfsQ1/Q2和 GlnR在氮代謝中存在交互調(diào)控作用。
Yu 等[23,37]發(fā)現(xiàn)地中海擬無枝酸桿菌在沒有硝酸鹽存在時(shí),GlnR抑制利福霉素(rifamycin)的合成。將地中海擬無枝酸桿菌的glnR轉(zhuǎn)入親緣關(guān)系較近的天藍(lán)鏈霉菌,研究表明GlnR廣泛參與到宿主菌的次級代謝調(diào)控。因此,地中海擬無枝酸桿菌中,GlnR是氮代謝和相關(guān)抗生素合成的雙功能調(diào)控蛋白。
PhoR/P是磷酸代謝的全局轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子,磷酸受限時(shí),PhoP可以直接抑制glnR及GlnR靶標(biāo)基因 glnA、glnⅡ和 amtB的轉(zhuǎn)錄。PhoR/P介導(dǎo)的磷酸代謝調(diào)控和GlnR介導(dǎo)的氮代謝調(diào)控也存在交叉調(diào)控[3,38~40],GlnR 的調(diào)控作用已經(jīng)超出初級氮代謝。
2.3.1 嘌呤降解途徑 氮源受限時(shí),枯草芽胞桿菌可以啟動嘌呤降解途徑以獲得充足氮源,脲酶操縱子ureABC的激活保證嘌呤被徹底降解成銨[41]。 Jaclyn 等[42]首次發(fā)現(xiàn)在枯草芽胞桿菌中,脲酶操縱子的表達(dá)同時(shí)受到GlnR介導(dǎo)的調(diào)控和嘌呤轉(zhuǎn)運(yùn)降解途徑酶的調(diào)控。在枯草芽胞桿菌中,GlnR的抑制作用還依賴于谷氨酰胺合成酶的反饋抑制作用,F(xiàn)BI?GS可以激活GlnR與DNA的結(jié)合并穩(wěn)定 GlnR?DNA 復(fù)合物[43]。
2.3.2 戊糖磷酸途徑 Kloosterman 等[35]發(fā)現(xiàn)革蘭氏陽性致病菌肺炎鏈球菌中,GlnR抑制戊糖磷酸途徑代謝酶Zwf編碼基因的表達(dá)。GlnR的調(diào)控作用依賴于GlnA,并且glnA和glnP缺失突變株對Detroit 562人類咽喉上皮細(xì)胞粘著性顯著降低,表明這些基因影響了肺炎鏈球菌在宿主中的定殖。這也間接證明GlnR在肺炎鏈球菌毒性發(fā)揮中扮演著重要角色。
2.3.3 耐酸性應(yīng)激效應(yīng) 鏈球菌突變株的一個(gè)主要毒性特征就是其具有耐酸性應(yīng)激效應(yīng)(acid tolerance response,ATR)。citB基因編碼的蛋白酶參與檸檬酸代謝途徑中催化丙酮酸轉(zhuǎn)化成α?酮戊二酸的反應(yīng),α?酮戊二酸為谷氨酸和谷氨酰胺提供碳骨架。Chen等[44]發(fā)現(xiàn)中性pH條件下,citB的表達(dá)被GlnR抑制,酸性處理30min后,這種抑制作用更為明顯。酸性處理45min后,GlnR缺失突變株的存活率比野生型低10倍以上,回補(bǔ)后突變株的存活率恢復(fù)到和野生型一樣,表明鏈球菌突變株的最佳耐酸性應(yīng)激效應(yīng)需要GlnR。
革蘭氏陰性腸桿菌中不存在GlnR,由雙組分系統(tǒng)調(diào)控谷氨胺合成酶的轉(zhuǎn)錄,并通過可逆共價(jià)修飾調(diào)節(jié)谷氨酰胺合成酶的活性。腸桿菌中氮代謝調(diào)控研究,為革蘭氏陽性細(xì)菌中GlnR介導(dǎo)的氮代謝調(diào)控研究作出重要的貢獻(xiàn)。高通量技術(shù)的應(yīng)用,如蛋白質(zhì)組技術(shù)、DNA芯片技術(shù)等,為理清全局調(diào)控網(wǎng)絡(luò)之間的復(fù)雜關(guān)系提供了有效手段。隨著更多細(xì)菌基因組測序的完成,結(jié)合強(qiáng)有力的生物信息學(xué)預(yù)測手段,越來越多的GlnR靶標(biāo)被發(fā)現(xiàn),其中不乏間接靶標(biāo),但是GlnR對這些靶標(biāo)基因的間接調(diào)控作用有待于進(jìn)一步的研究。天藍(lán)鏈霉菌中,新GlnR結(jié)合順式作用元件的發(fā)現(xiàn)[29],也為搜尋GlnR靶標(biāo)基因提供了新的思路。深入研究GlnR在其他代謝途徑中的作用,對進(jìn)一步闡述GlnR參與次級代謝活性產(chǎn)物、細(xì)菌形態(tài)分化和細(xì)菌毒性等的調(diào)控具有重要的意義。此外,過去幾年,雖然幾個(gè)菌屬中GlnR的調(diào)控模式已經(jīng)研究得更加詳細(xì),但調(diào)控GlnR活性的信號和機(jī)制目前還不是很清楚,亟須更深入的研究。
[1]Fisher S H, Sonenshein A L.Control of carbon and nitrogen metabolism in Bacillus subtilis[ J].Ann.Rev.Microbiol.,1991, 45:107-135.
[2]Wray L J, Atkinson M, Fisher S.Identification and cloning of the glnR locus,which is required for transcription of the glnA gene in Streptomyces coelicolor A3(2) [ J].J.Bacteriol.,1991, 173(22):7351-7360.
[3]Wang Y, Cen X F, Zhao G P, et al.Characterization of a new GlnR binding box in the promoter of amtB in Streptomyces coelicolor inferred a PhoP/GlnR competitive binding mechanism for transcriptional regulation of amtB[J].J.Bacteriol., 2012,194(19):5237-5244.
[4]Wang R, Mast Y, Wang J, et al.Identification of two?component system AfsQ1/Q2 regulon and its cross?regulation with GlnR in Streptomyces coelicolor[ J].Mol.Microbiol.,2013, 87(1):30-48.
[5]Schreier H J, Caruso S M, Maier K C.Control of Bacillus subtilis glutamine synthetase expression by glnR from Staphylococcus aureus[J].Curr.Microbiol., 2000, 41(6):425-429.
[6]Sola?Landa A, Rodríguez?García A, Amin R, et al..Competition between the GlnR and PhoP regulators for the glnA and amtB promoters in Streptomyces coelicolor[J].Nucleic acids res., 2013, 41(3):1767-1782.
[7]Amon J, Br?u T, Grimrath A. Nitrogen control in Mycobacterium smegmatisnitrogen?dependentexpression of ammonium transport and assimilation proteins depends on the OmpR type regulator GlnR[J].J.Bacteriol., 2008, 190(21):7108-7116.
[8]Arcondéguy T, Jack R, Merrick M.PⅡsignal transduction proteins, pivotal players in microbial nitrogen control[J].Microbiol.Mol.Biol.Rev., 2001, 65(1):80-105.
[9]Merrick M J, Edwards R A.Nitrogen control in bacteria[J].Microbiol.Rev., 1995, 59: 604-622.
[10]Reitzer L, Schneider B L.Metabolic context and possible physiological themes of sigma(54)?dependent genes in Escherichia coli [ J].Microbiol.Mol.Biol.Rev., 2001, 65(3): 422-444.
[11]Magasanik B.Genetic controlofnitrogen assimilation in bacteria[J].Ann.Rev.Genet., 1982, 16: 135-168.
[12]Reitzer L J.Ammonia assimilation and the biosynthesis of glutamine, glutamate, aspartate, asparagine, L?alanine and D?alanine[A].In: Neidhart F C, Curtiss R Ⅲ, Ingraham J L,et al..(Eds.) Escherichia coli and Salmonella: Cellular and Molecular Biology[M].Washington DC: ASM Press, 1996,391-407.
[13]Fierro?Monti I P, Reid S J, Woods D R.Differential expression of a Clostridium acetobutylicum antisense RNA:implications for regulation of glutamine synthetase[J].J.Bacteriol., 1992,174(23):7642-7647.
[14]Woods D R, Reid S J.Regulation of nitrogen metabolism,starch utilization and the beta?hbd?adh1 gene clusterin Clostridium acetobutylicum [J].FEMS Microbiol.Rev., 1995,17(3):299-306.
[15]Fisher S H.Regulation of nitrogen metabolism in Bacillus subtilis: vive la difference[ J]! Mol.Microbiol., 1999, 32(2):223-232.
[16]Wray L J, Ferson A E, Rohrer K, et al..TnrA, a transcription factor acquired for global nitrogen regulation in Bacillus subtilis[J].Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 1996, 93(17): 8841-8845.
[17]Wray L J, Zalieckas J M, Ferson A E, et al..Mutational analysis of the TnrA?binding sites in the Bacillus subtilis nrgAB and gabP promoter regions[J].J.Bacteriol., 1998, 180(11):2943-2949.
[18]Gutowski J C, Schreier H J.Interaction of the Bacillus subtilis glnRA repressor with operator and promoter sequences in vivo[J].J.Bacteriol., 1992, 174(3): 671-681.
[19]Brown S W, Sonenshein A L.Autogenous regulation of the Bacillus subtilis glnRA operon [J].J Bacteriol., 1996, 178(8):2450-2454.
[20]Wray LJ, Ferson AE, Fisher SH.Expression of the Bacillus subtilis ureABC operon is controlled by multiple regulatory factors including CodY, GlnR, TnrA, and Spo0H[J].J.Bacteriol., 1997, 179(17):5494-5501.
[21]Wray L J, Fisher S H.The Streptomyces coelicolor glnR gene encodes a protein similar to other bacterial response regulators[J].Gene, 1993, 130(1):145-150.
[22]Pullan S T, Chandra G, Merrick M, et al..Genome?wide analysis of the role of GlnR in Streptomyces venezuelae provides new insights into global nitrogen regulation in actinomycetes[J].BMC Genomics., 2011, 12,175.
[23]Yu H, Peng W T, Liu Y, et al.Identification and characterization ofglnA promoterand its corresponding transregulatory protein GlnR in the rifamycin SV producing actinomycete, AmycolatopsismediterraneiU32 [J].Acta Biochim.Biophys.Sin., 2006, 38(12):831-843.
[24]Jenkins V A,Barton G R,Robertson B D, et al..Genome wide analysis of the complete GlnR nitrogen?response regulon in Mycobacterium smegmatis[J].BMC genomics.,2013,14:301.
[25]Indest K J,Hancock D E,Mohn W W, et al..Role of nitrogen limitation in transformation of RDX(hexahydro?1,3,5?trinitro?1,3, 5?triazine) by Gordonia sp.strain KTR9 [J].Appl.Environ.Microb.,2013,79(5):1746-1750.
[26]Malm S, Tiffert Y, Micklinghoff J, et al..The roles of the nitrate reductase NarGHJI,the nitrite reductase NirBD and the response regulator GlnR in nitrate assimilation of Mycobacterium tuberculosis[J].Microbiology, 2009, 155(Pt4):1332-1339.
[27]Fink D, Weissschuh N, Reuther J, et al.Two transcriptional regulators GlnR and GlnRⅡare involved in regulation of nitrogen metabolism in Streptomyces coelicolor A3(2) [J].Mol.Microbiol., 2002, 46(2):331-347.
[28]Wang Y,Cen X F,Zhao G P, et al..Characterization of a new GlnR binding box in the promoter of amtB in Streptomyces coelicolor inferred a PhoP/GlnR competitive binding mechanism for transcriptional regulation of amtB[J].J Bacteriol., 2012,194(19):5237-5244.
[29]Tiffer Y,Supra P,Wurm R, et al.The Streptomyces coelicolor GlnR regulon:identification of new GlnR targets and evidence for a centralrole ofGlnR in nitrogen metabolism in actinomycetes[J].Mol.Microbiol.,2008, 67(4):861-880.
[30]Wang J, Zhao G P.GlnR positively regulates nasA transcription in Streptomycescoelicolor [ J].Biochem.Biophys.Res.Commun., 2009, 386(1):77-81.
[31]Wang Y,Wang J Z,Shao Z H, et al..Three of four GlnR binding sites are essential for GlnR?mediated activation of transcription of the Amycolatopsis mediterranei nas operon[J].J Bacteriol.,2013,195(11):2595-2602.
[32]Amin R,Reuther J, Bera A, et al.A novel GlnR target gene,nnaR,is involved in nitrate/nitrite assimilation in Streptomyces coelicolor[J].Microbiology,2012,158(Pt5):1172-1182.
[33]Deguchi Y, Morishita T.Nutritional requirements in multiple auxotrophic lactic acid bacteria:genetic lesions affecting amino acid biosynthesis pathways in Lactococcus lactis,Enterococcus faecium and Pediococcus acidilactici[ J].Biosci.Biotechnol.Biochem., 1992, 56:913-918.
[34]Larsen R, Kloosterman T G, Kok J, et al..GlnR?mediated regulation of nitrogen metabolism in Lactococcus lactis[ J].J.Bacteriol., 2006, 188(13):4978-4982.
[35]Kloosterman T G, Hendriksen W T, Bijlsma J J.Regulation of glutamine and glutamate metabolism by GlnR and GlnA in Streptococcus pneumonia[J].J.Biol.Chem., 2006, 281(35):25091-25109.
[36]Hendriksen W T, Kloosterman T G, Bootsma H J, et al..Site?specific contributions of glutamine?dependent regulator GlnR and GlnR?regulated genes to virulence ofStreptococcus pneumonia[J].Infect.Immun., 2008, 76(3):1230-1238.
[37]Yu H, Yao Y, Liu Y, et al.A complex role of Amycolatopsis mediterraneiGlnR in nitrogen metabolism and related antibiotics production[J].Arch Microbiol., 2007, 188(1):89-96.
[38]Santos?Beneit F,Rodríguez?García A, Martín JF.Overlapping binding of PhoP and AfsR to the promoter region of glnR in Streptomyces coelicolor [J].Microbiol Res.,2012,167(9):532-535.
[39]Martín J F,Liras P.Cascades and networks of regulatory genes that control antibiotic biosynthesis [A].In:Harris J R(Ed.)Subcell Biochem.[M].New York: Springer?Verlag New York Inc,2012,64:115-138.
[40]Rodríguez?García A, Sola?Landa A, Apel K, et al..Phosphate control over nitrogen metabolism in Streptomyces coelicolor:direct and indirect negative control of glnR, glnA, glnⅡand amtB expression by the response regulator PhoP[J].Nucleic Acids Res., 2009, 37(10): 3230-3242.
[41]Beier L, Nygaard P, Jarmer H, et al..Transcriptional analysis of the Bacillus subtilis PucR regulon and identification of a cis?acting sequence required for PucR?regulated expression of genes involved in purine catabolism[J].J.Bacteriol., 2002,184(12):3232-3241.
[42]Brandenburg J L, Wray LV, Beier L, et al..Roles of PucR,GlnR,and TnrA in regulating expression of the Bacillus subtilis ure P3 Promoter[J].J.Bacteriol., 2002, 184(21):6060-6064.
[43]Fisher S H, Wray L J.Bacillus subtilis glutamine synthetase regulates its own synthesis by acting as a chaperone to stabilize GlnR?DNA complexes[J].Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 2007,105(3):1014-1019.
[44]Chen P M, Chen Y Y, Chia J S, et al..Role of GlnR in acid?mediated repression of genes encoding proteins involved in glutamine and glutamate metabolism in Streptococcus mutans[J].Appl.Environ.Microbiol., 2010, 76(8):2478-2486.