王帥飛,王 軍,郎希龍,張 浩
·綜 述·
誘導(dǎo)多能性干細(xì)胞在心臟疾病領(lǐng)域的研究和應(yīng)用
王帥飛,王 軍,郎希龍,張 浩
誘導(dǎo)多能性干細(xì)胞;細(xì)胞分化;細(xì)胞移植;疾病模型;藥物篩選;生物起搏器
誘導(dǎo)多能性干細(xì)胞(induced pluripotent stem cells,iPSCs)是一種類似于胚胎干細(xì)胞(embryonic stem cells,ESCs)的、具有自主增殖和分化能力的多能性干細(xì)胞。iPSCs可以由各種不同動(dòng)物的不同體細(xì)胞重編程轉(zhuǎn)化而來,能增殖并分化成各種體細(xì)胞,其中包括具有收縮和興奮功能的心肌細(xì)胞。截止目前,iPSCs分化的心肌細(xì)胞主要用于以下幾個(gè)方面:通過細(xì)胞移植治療缺血性心肌病及心肌梗死;在體外建立遺傳性心臟病模型,研究其發(fā)病機(jī)制;檢測藥物心臟毒性,篩選患者特異性個(gè)體化藥物;構(gòu)建心臟生物起搏器。
iPSCs具有類似于ESCs的全能性,并能自主增殖和分化,可以由患者的體細(xì)胞重編程轉(zhuǎn)化獲取,避免了ESCs應(yīng)用的社會(huì)倫理問題和移植后免疫排斥反應(yīng)的發(fā)生,因而為干細(xì)胞生物學(xué)和臨床再生/修復(fù)醫(yī)學(xué)提供了新的方向[1]。本文主要論述iPSCs分化為心肌細(xì)胞的相關(guān)研究及其在心臟疾病領(lǐng)域的研究和應(yīng)用。
1.1 iPSCs的概念 2006年日本科學(xué)家Yamana?ka[2]等通過逆轉(zhuǎn)錄病毒載體將多能性相關(guān)因子Oct4、Sox2、Klf4和c-Myc轉(zhuǎn)入小鼠成纖維細(xì)胞,產(chǎn)生了形態(tài)、生長特性與ESCs相似的細(xì)胞,并能自主增殖、分化為擬胚體(EB),證明其具有多向分化的潛能。這種將體細(xì)胞重編程產(chǎn)生的具有多向分化潛能的細(xì)胞被稱為iPSCs,這項(xiàng)技術(shù)被稱作iPSC技術(shù)。不久,Yu等[3]將Oct4、Sox2、Nanog和Lin28轉(zhuǎn)入人的體細(xì)胞,產(chǎn)生了類似人的ESCs的人hiPSCs。
1.2 iPSCs技術(shù)的發(fā)展 利用逆轉(zhuǎn)錄病毒能夠?qū)⒍嗄苄韵嚓P(guān)因子導(dǎo)入體細(xì)胞使其重編程為iPSCs,但是轉(zhuǎn)化效率極低。近期研究發(fā)現(xiàn),維生素C[4]、組蛋白去乙酰酶抑制物(如丙戊酸)、TGFβ受體阻滯劑等可以提高iPSCs生成的效率[5-6]。此外,逆轉(zhuǎn)錄病毒基因可以整合到宿主基因組,重編程因子c-Myc為原癌基因,使得腫瘤形成風(fēng)險(xiǎn)增大[7]。為了減少腫瘤形成風(fēng)險(xiǎn),目前多采用無c-Myc重編程技術(shù)[8],應(yīng)用非整合性的腺病毒載體或者直接向靶細(xì)胞導(dǎo)入重編程蛋白[9-10]。
iPSCs可自動(dòng)分化為EB,出現(xiàn)收縮性心肌細(xì)胞[11]。研究證實(shí),分化的心肌細(xì)胞(iPSCs-CMs)的分子結(jié)構(gòu)、功能特性與早期心肌細(xì)胞類似,且具有分裂增殖能力[12]。電生理研究證實(shí),iPSCs-CMs表現(xiàn)出心室樣、心房樣、竇房結(jié)樣動(dòng)作電位[13],且表達(dá)典型的心肌細(xì)胞離子通道。iPSCs-CMs對(duì)神經(jīng)激素類刺激物極為敏感[14],加入異丙腎上腺素可以見到動(dòng)作電位頻率明顯增加,而加入鈉通道阻滯劑利多卡因、L-型鈣通道阻滯劑硝苯地平、鉀通道阻滯劑E4031后動(dòng)作電位頻率則明顯減低。針對(duì)iPSCs分化效率低,科研人員嘗試加入內(nèi)胚層分泌的促心肌生成因子和TGF-β來提高心肌分化效率。研究發(fā)現(xiàn),活化素A、骨形態(tài)發(fā)生蛋白4/2、堿性成纖維細(xì)胞生長因子、Wnt抑制劑等加入培養(yǎng)基能有效提高分化效率[15]。
以上研究使得iPSCs為心臟再生/修復(fù)醫(yī)學(xué)和心臟疾病的研究提供了新的方向,這些應(yīng)用研究包括:通過細(xì)胞移植治療缺血性心肌病及心肌梗死;在體外建立遺傳性心臟病模型,研究發(fā)病機(jī)制;檢測藥物心臟毒性,篩選患者特異性個(gè)體化藥物以及心臟生物起搏器的構(gòu)建等(圖1)。
圖1 iPSC細(xì)胞在心臟病領(lǐng)域的應(yīng)用
3.1 缺血性心肌病的治療 2009年,Nelson[16]等將鼠源未分化的iPSCs和成纖維細(xì)胞分別移植入急性心肌梗死的小鼠心肌內(nèi),術(shù)后行心臟彩超檢查顯示,iPSCs組在第一周后心臟射血分?jǐn)?shù)明顯較對(duì)照組好,這種趨勢(shì)一直維持到第4周;iPSCs組室壁基本正常,而對(duì)照組在第4周左室前壁變薄、心尖部有室壁瘤形成;iPSCs組左室舒張末內(nèi)徑(LVDd)和QT離散度明顯較對(duì)照組減??;組織活檢也顯示iPSCs組心臟體積總體較對(duì)照組小。另外,研究中雖然發(fā)現(xiàn)將未分化的iPSCs注入免疫缺陷心肌梗死鼠后,可以在梗死心肌和周圍逐漸形成腫瘤,但是在免疫功能正常的鼠中觀察8周未見腫瘤形成,這提示免疫功能正常情況下可以提供一個(gè)iPSCs定向向心肌分化的微環(huán)境。2011年,Mauritz[17]等報(bào)道,iPSCs來源的Flk-1+細(xì)胞無論在體內(nèi)還是在體外,均可以分化為心肌細(xì)胞,將iPSCs-Flk1+細(xì)胞移植入急性心肌梗死的小鼠體內(nèi),可以明顯改善心臟功能和心臟重構(gòu)。
2013年,Zhang[18]等報(bào)道,將豬未分化iPSCs移植到豬心梗區(qū)域,與對(duì)照組相比,血管再生明顯增多,血管內(nèi)皮生長因子及CX43增多,而神經(jīng)生長因子減少,交感神經(jīng)重塑減少,氧化應(yīng)激明顯改善,炎癥反應(yīng)明顯減輕,通過電刺激誘導(dǎo)室性心律失常也明顯減少,從而證實(shí)了iPSCs細(xì)胞移植能預(yù)防心梗后室性心律失常發(fā)生。2013年,Yan[19]等將iPSCs和iPSCs-CMs共同植入糖尿病鼠心肌,發(fā)現(xiàn)可減輕氧化應(yīng)激損傷(促氧化表達(dá)減少,抗氧化劑如過氧化氫酶和MnSOD表達(dá)上升)及相關(guān)的細(xì)胞凋亡和纖維化(Akt上調(diào),ERK1/2下調(diào)),減緩不良心肌重塑,超聲心動(dòng)圖提示心臟功能提升。2013年,Yama?da[20]報(bào)道,將iPSCs植入鼠心梗區(qū)域,可以提高左室傳導(dǎo)性及收縮性能,減少瘢痕形成,逆轉(zhuǎn)結(jié)構(gòu)重塑,減緩心肌失代償,有望使缺血心肌異常室壁運(yùn)動(dòng)重新同步化。但是iPSCs能否用于臨床治療心肌梗死的患者,還需要更多的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)尤其大動(dòng)物實(shí)驗(yàn)來進(jìn)行證實(shí),以進(jìn)一步證明iPSCs用于細(xì)胞移植的有效性和安全性。
3.2 遺傳性心臟病模型的建立及發(fā)病機(jī)制研究iPSCs技術(shù)可以取遺傳性心臟病患者自身的體細(xì)胞重編程為iPSCs,誘導(dǎo)定向分化為iPSCs-CMs,在體外建立遺傳性心臟病患者的疾病細(xì)胞模型,從細(xì)胞水平研究其發(fā)病機(jī)制,篩選特異性藥物,嘗試通過基因修飾探索基因治療方案。Moretti[21]等取1型長QT綜合征(LQTS)患者皮膚成纖維細(xì)胞重編程并誘導(dǎo)分化為iPSCs-CMs,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞仍然保留有1型LQTS的基因型(常染色體錯(cuò)義突變R19OQ),與正常對(duì)照組相比,細(xì)胞動(dòng)作電位時(shí)程明顯延長,對(duì)兒茶酚胺導(dǎo)致的心動(dòng)過速易感性增加,而用β腎上腺素受體阻滯劑則可以減輕這種變化。2011年,Itzha?ki[22]等取2型LQTS(KCNH2基因上A614V點(diǎn)突變導(dǎo)致)患者的體細(xì)胞轉(zhuǎn)化為iPSCs-CMs,發(fā)現(xiàn)其動(dòng)作電位時(shí)程明顯延長,而這種延長主要是由于心臟快速延遲整流鉀電流(Ikr)顯著減少導(dǎo)致,而且這種細(xì)胞顯示出明顯的致心律失常性,主要表現(xiàn)為早期后除極和誘發(fā)性的心律失常,這與患者的臨床特征相吻合。2013年,Belin[23]等獲取2型LQTS患者的體細(xì)胞轉(zhuǎn)化為iPSCs-CMs,通過對(duì)突變位點(diǎn)準(zhǔn)確的基因糾正,使 Ikr電流和動(dòng)作電位時(shí)程恢復(fù)正常。2013年,Ma[24]等取3型LQTS(SCN5A突變)患者的體細(xì)胞轉(zhuǎn)化為iPSCs-CMs建立疾病模型,與正常組對(duì)照發(fā)現(xiàn),其動(dòng)作電位明顯延長,TTX敏感鈉通道增加,動(dòng)作電位平臺(tái)期鈉通道難失活且易復(fù)活,利用鈉通道阻滯劑美西律可逆轉(zhuǎn)此病理過程。
2013年,Caspi[25]等獲取致心律失常右室心肌?。ˋRVC)患者的體細(xì)胞轉(zhuǎn)化為iPSCs-CMs,建立疾病模型研究ARVC發(fā)病機(jī)制(PKP2突變),實(shí)時(shí)(聚合酶鏈反應(yīng),PCR)發(fā)現(xiàn)PKP2表達(dá)顯著下降,免疫染色發(fā)現(xiàn)橋粒蛋白及CX43表達(dá)下降,電生理發(fā)現(xiàn)場電位上升時(shí)間延長,電子顯微鏡觀察到增寬和扭曲的橋粒及胞內(nèi)脂滴聚集,這與促脂生成轉(zhuǎn)錄因子PPAR-γ上調(diào)有關(guān),發(fā)現(xiàn)了應(yīng)用糖原合成激酶GSK-3β阻滯劑可以抑制此病理過程。2013年,Zhang[26]等取兒茶酚胺依賴多形性室速(CPVT,蘭尼堿受體RyR2點(diǎn)突變導(dǎo)致)患者的體細(xì)胞轉(zhuǎn)化為iPSCs-CMs建立疾病模型,與正常組對(duì)照發(fā)現(xiàn)其發(fā)病與鈣信號(hào)通路改變有關(guān):鈣信號(hào)通路單一,胞內(nèi)鈣儲(chǔ)備較低,(鈣誘導(dǎo)鈣釋放,CICR)獲得較高,對(duì)腎上腺素能調(diào)節(jié)敏感。iPSCs技術(shù)在體外建立遺傳性心臟病患者的疾病細(xì)胞模型,為疾病發(fā)病機(jī)制研究、藥物測試及篩選、新的治療方法的探索提供了一個(gè)更為方便、有效的平臺(tái)。
3.3 藥物心臟毒性檢測及藥物篩選 心血管疾病藥物往往具有副作用,主要表現(xiàn)為心臟毒性和致心律失常作用,而且心臟病患者對(duì)藥物的副作用更為敏感,因而可以用iPSCs-CMs在體外建立藥物檢測模型,較當(dāng)前應(yīng)用永生細(xì)胞系和動(dòng)物模型測試藥物的敏感性和特異性更高。Ma[27]等利用3型LQTS患者的iPSCs-CMs在體外構(gòu)建了三維絲狀心肌組織用來研究其收縮異常機(jī)制,并檢測一系列藥物的心臟毒性。Navarrete[28]等利用hiPSCs-CMs和低阻抗微電極陣列檢測了hERG鉀通道阻滯劑(如索他洛爾、奎尼丁)的致心率失常作用(后除極化提前和異位搏動(dòng)),較當(dāng)前的永生細(xì)胞系/動(dòng)物模型更敏感有效,能準(zhǔn)確鑒別假陽性和假陰性hERG阻滯劑。Guo[29]等利用88種藥物和30種內(nèi)源性分子對(duì)hiP?SCs-CMs節(jié)律性和搏動(dòng)頻率的影響,建立了人心肌細(xì)胞失節(jié)律風(fēng)險(xiǎn)(hCAR)模型,更有效地評(píng)價(jià)藥物的致心律失常作用以及尖端扭轉(zhuǎn)型心律失常、LQTS的發(fā)生風(fēng)險(xiǎn)。此外,心血管疾病藥物尤其是抗心律失常藥物往往存在異質(zhì)性,個(gè)體差異較大,對(duì)于心律失?;颊叨?,同一種藥物,并不能取得相同療效,而源自患者的iPSCs-CMs具有其特異性,可以針對(duì)個(gè)體進(jìn)行藥物篩選。但是目前尚不能肯定人的iP?SCs-CMs與患者體內(nèi)心肌細(xì)胞對(duì)藥物的反應(yīng)是否一致。
3.4 生物心臟起搏器的構(gòu)建 電生理檢測發(fā)現(xiàn)iP?SCs-CMs表現(xiàn)室性、房性、結(jié)性動(dòng)作電位,說明其中含有竇房結(jié)樣起搏細(xì)胞,具有構(gòu)建生物起搏器的潛能。2012年,Mandel[30]等對(duì)人毛囊細(xì)胞源iPSCs-CMs連續(xù)15天行細(xì)胞外電描記,進(jìn)行非線性動(dòng)態(tài)分析發(fā)現(xiàn),iPSCs-CMs的搏動(dòng)與竇房結(jié)細(xì)胞相似,具有搏動(dòng)頻率變異性(BRV),搏動(dòng)頻率-時(shí)間關(guān)系呈冪次分布(Power-Law Behavior),對(duì)腎上腺素能/膽堿能刺激物反應(yīng)敏感,證實(shí)了hiPSCs-CMs具有生物起搏潛能,但是搏動(dòng)平均頻率過慢(39~70 bpm)。Kuzmenkin[31]等發(fā)現(xiàn),盡管iPSCs向心血管系統(tǒng)定向分化時(shí)可以分化為心房肌、心室肌、血管以及傳導(dǎo)系統(tǒng)的細(xì)胞,但是大部分分化而來的細(xì)胞(80%~90%)還是表現(xiàn)為心室肌細(xì)胞樣的動(dòng)作電位。因此,誘導(dǎo)iPSCs盡可能向結(jié)樣細(xì)胞分化以獲得較高純度的起搏細(xì)胞成為生物起搏亟需解決的問題。Jiang[32]等發(fā)現(xiàn)iPSCs中鈣激活鉀通道(SKCa)表達(dá)較低,Kleger[33]等發(fā)現(xiàn)應(yīng)用SKCa激活劑可以促進(jìn)此通道活化,激活Ras-Mek-Erk信號(hào)通路,有助于iPSCs向起搏細(xì)胞分化。Zhu[34]等發(fā)現(xiàn)神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白1β/表皮生長因子受體(NRG-1β/ErbB)信號(hào)通路調(diào)節(jié)hESCs-CMs中結(jié)樣心肌細(xì)胞與工作樣心肌細(xì)胞的比例,通過抑制該信號(hào)通路有利于hESCs向起搏細(xì)胞分化。當(dāng)然,利用起搏細(xì)胞特異性表面標(biāo)記從分化心肌細(xì)胞中進(jìn)一步篩選起搏細(xì)胞也是一種方法。然而iPSCs來源的起搏細(xì)胞其起搏頻率尚無法達(dá)到臨床應(yīng)用的水平,通過對(duì)其進(jìn)行進(jìn)一步的基因修飾(如導(dǎo)入起搏基因或者縫隙連接蛋白Cx45)有望提高其起搏效率。
短短幾年,iPSCs技術(shù)取得了巨大發(fā)展,其在心臟疾病研究、治療方面也取得了明顯進(jìn)步。目前存在的主要問題是iPSCs的重編程機(jī)制尚未完全闡明、重編程及誘導(dǎo)分化技術(shù)尚缺少統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn)及其遠(yuǎn)期的安全性問題[35]。盡管如此,iPSCs技術(shù)為再生/修復(fù)醫(yī)學(xué)提供了一條有效可行的道路,必將促進(jìn)再生/修復(fù)醫(yī)學(xué)的快速發(fā)展。在心臟疾病領(lǐng)域,盡管iPSCs-CMs的應(yīng)用研究尚處在起步階段,但現(xiàn)有研究已經(jīng)表明這一技術(shù)在心臟疾病的治療中具有非常光明的應(yīng)用前景,為未來心臟疾病的治療開啟了全新的研究方向。
[1] Vogel G.Breakthrough of the year.Reprogramming Cells[J].Sci?ence,2008,322(5909):1766-1767.
[2] TakahashiK,YamanakaS.Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors[J].Cell,2006,126(4):663-676.
[3] Yu J,VodyanikMA,Smuga-Otto K,et al.Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells[J].Science,2007,318(5858):1917-1920.
[4] Esteban MA,WangT,Qin B,et al.Vitamin C enhances the gen?eration of mouse and human induced pluripotent stem cells[J].Cell Stem Cell,2010,6(1):71-79.
[5] Huangfu D,Maehr R,Guo W,et al.Induction of pluripotent stem cells by defined factors is greatly improved by small-mole?cule compounds[J].Nat Biotechnol,2008,26(7):795-797.
[6] IchidaJ K,Blanchard J,Lam K,et al.A small-molecule inhibi?tor of tgf-Beta signaling replaces sox2 in reprogramming byinducingnanog[J].Cell Stem Cell,2009,5(5):491-503.
[7] Okita K,Ichisaka T,Yamanaka S.Generation of germline-com?petent induced pluripotent stem cells[J].Nature,2007,448(7151):313-317.
[8] Martinez-Fernandez A,Nelson TJ,Yamada S,et al.iPS pro?grammed without c-MYC yield proficient cardiogenesis for functional heart chimerism[J].Circ Res,2009,105(7):648-656.
[9] Robinton DA,Daley GQ.The promise of induced pluripotent stem cells in research and therapy[J].Nature,2012,481(7381):295-305.
[10] Kim D,Kim CH,Moon JI,et al.Generation of human induced pluripotent stem cells by direct delivery of reprogramming proteins[J].Cell Stem Cell,2009,4(6):472-476.
[11] Narazaki G,Uosaki H,Teranishi M,et al.Directed and system?atic differentiation of cardiovascular cells from mouse induced plu?ripotent stem cells[J].Circulation,2008,118(5):498-506.
[12] Zwi L,Caspi O,Arbel G,et al.Cardiomyocyte differentiation of human induced pluripotent stem cells[J].Circulation,2009,120(15):1513-1523.
[13] Zhang J,Wilson GF,Soerens AG,et al.Functionalcardiomyo?cytes derived from human induced pluripotent stem cells[J].Circ Res,2009,104(4):e30-41.
[14] Ma J,Guo L,F(xiàn)iene SJ,et al.High purity human-induced pluri? potent stem cell-derived cardiomyocytes:electrophysiological properties of action potentials and ionic currents[J].Heart Circ Physiol,2011,301(5):H2006-2017.
[15] Yang L,Soonpaa MH,Adler ED,et al.Human cardiovascular progenitor cells develop from a KDR+embryonic-stem-cell-de?rived population[J].Nature,2008,453(7194):524-528.
[16] Nelson TJ,MartinezFernandez A,Yamada S,et al.Repair of a?cute myocardia1 infarction by human stenmess factors induced pluripotent stem cells[J].Circulation,2009,120(5):408-416.
[17] Mauritz C,Martens A,Rojas SV,et al.Induced pluripotent stem cell(iPSC)derived Flk 1 progenitor cells engraft,differentiateand improve heart function in a mouse model of acute myocardial in?farction[J].Eur Heart J,2011,32(21):2634-2641.
[18] Zhang F,Song G,Li X,et al.Transplantation of induced pluri?potent stem cells ameliorates neural remodeling and reduces ven?tricular arrhythmias in a post-infarcted swine model[J].J Cell Biochem,2014,115(3):531-539.
[19] Yan B,Singla DK.Transplanted Induced Pluripotent Stem Cells Mitigate Oxidative Stress and Improve Cardiac Function through the Akt Cell Survival Pathway in Diabetic Cardiomyopathy[J].Mol Pharm,2013,10(9):3425-3432.
[20] Yamada S,Nelson T,KaneG,et al.iPS Cell Intervention Rescues Wall Motion Disparity Achieving Biological Cardiac Resynchroniza?tion Post-Infarction[J].J Physiol,2013,591(Pt 17):4335-4349.
[21] Moretti A,Bellin M,Welling A,et al.Patient-specific induced pluripotent stem cell models for long-QT syndrome[J].N Engl J Med,2010,363(15):1397-1409.
[22] Itzhaki I,Maizels L,Huber I,et al.Modelling the long QT syn?drome with induced pluripotent stem cells[J].Nature,2011,471(7337):225-229.
[23] Bellin M,Casini S,Davis RP,et al.Isogenic human pluripotent stem cell pairs reveal the role of a KCNH2 mutation in long-QT syndrome[J].EMBO J,2013,32(24):3161-3175.
[24] Ma D,Wei H,Zhao Y,et al.Modeling type 3 long QT syndrome with cardiomyocytes derived from patient-specific induced pluri?potent stem cells[J].Int J Cardiol,2013,168(6):5277-5286.
[25] CaspiO,Huber I,GepsteinA,etal.Modeling of Arrhythmogenic Right Ventricular Cardiomyopathy with Human Induced Pluripo?tent Stem Cells[J].CircCardiovasc Genet.2013 Nov 7.[Epub a?head of print].
[26] Zhang XH,Haviland S,Wei H,et al.Ca2+signaling in human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes(iPS-CM)from normal and catecholaminergic polymorphic ventricular tachy?cardia(CPVT)-afflicted subjects[J].Cell Calcium,2013,54(2):57-70.
[27] Ma Z,Koo S,F(xiàn)innegan MA,et al.Three-dimensional filamen?tous human diseased cardiac tissue model[J].Biomaterials,2014,35(5):1367-1377.
[28] Navarrete EG,Liang P,Lan F,et al.Screening drug-induced arrhythmia events using human induced pluripotent stem cell-de?rived cardiomyocytes and low-impedance microelectrode arrays[J].Circulation,2013,128(11 Suppl 1):S3-13.
[29] Guo L,Coyle L,Abrams RM,et al.Refining the human iPSC-cardiomyocyte arrhythmic risk assessment model[J].Toxicol Sci,2013,136(2):581-594.
[30] Mandel Y,Weissman A,Schick R,et al.Human embryonic and induced pluripotent stem cell–derived cardiomyo-cytes exhibit beat rate variability and power-law behavior[J].Circulation,2012,125(7):883-893.
[31] Kuzmenkin A,Liang H,Xu G,et al.Functional characterization of cardiomyocytes derived from murine induced pluripotent stem cells in vitro[J].FASEB J,2009,23(12):4168-4180.
[32] Jiang P,Rushing SN,Kong CW,et al.Electrophysiological properties of human induced pluripotent stem cells[J].Am J PhysiolCell Physiol,2010,298(3):C486-495.
[33] Kleger A,Seufferlein T,Malan D,et al.Modulation of calciumactivated potassium channels induces cardiogenesis of pluripotent stem cells and enrichment of pacemaker-like cells[J].Circula?tion,2010,122(18):1823-1836.
[34] Zhu WZ,Xie Y,Moyes KW,et al.Neuregulin/ErbB Signaling regulates cardiac subtype specification in differentiating human embryonic stem cells[J].Circ Res,2010,107(6):776-786.
[35] Ben-David U,Benvenisty N.The tumorigenicity of human embry?onic and induced pluripotent stem cells[J].Nat Rev Cancer,2011,11(4):268-277.
2014?06?28)
2014?06?30)
10.13498/j.cnki.chin.j.ecc.2014.03.19
國家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(81271707,81371692)
200433上海,第二軍醫(yī)大學(xué)長海醫(yī)院胸心外科
張 浩,E-mail:dr.zhghao@gmail.com