熊 毅 郭彥萃 張 志
(齊齊哈爾大學(xué),齊齊哈爾,161006)
隨著生活水平的提高,人們對城市園林景觀綠化的品質(zhì)要求也不斷提升。但是,由于城市具有生態(tài)環(huán)境復(fù)雜、干旱缺水頻發(fā)、夏季空氣溫度高等不良因子,導(dǎo)致了園林綠化材料的極度匱乏。地被菊作為菊花的一個品種群不但具有觀賞性高、覆蓋性強、植株低矮、花朵繁多、管理粗放等優(yōu)點,并且在耐高溫、耐鹽漬、抗干旱等方面有著極強的耐逆性,能夠適應(yīng)城市中的不良環(huán)境,可以用于地表植被綠化[1-2]。目前,關(guān)于地被菊的研究主要集中在PEG脅迫、干旱脅迫、鹽脅迫、耐寒性等方面,卻忽略了在土壤干旱發(fā)生的同時往往也伴隨著空氣干旱的出現(xiàn),致使在高溫條件下有關(guān)地被菊形態(tài)及生理特征的研究還比較少,因而,探索高溫對地被菊的影響有著緊迫的現(xiàn)實意義[2-4]。DREB 基因是乙烯響應(yīng)因子(ERF)家族中的重要成員,作用于不依賴脫落酸信號的傳導(dǎo)途徑,在調(diào)節(jié)植物對低溫、干旱、高溫等逆境的抵抗性中扮演著重要的角色,并且在現(xiàn)有的研究中已經(jīng)證實了其在提高農(nóng)作物、擬南芥等植物材料的抗逆性上產(chǎn)生了一定的作用[5]。近年來,對轉(zhuǎn)基因地被菊的抗逆性進行研究后發(fā)現(xiàn),DREB 轉(zhuǎn)錄因子的高量表達,可以提高植株抗逆境能力[6-8]。本研究以探索高溫脅迫對轉(zhuǎn)抗旱基因地被菊形態(tài)及生理指標(biāo)的影響為目標(biāo),意在為耐旱節(jié)水型地被材料的篩選提供基礎(chǔ)理論。
選擇已轉(zhuǎn)DREB1A 基因地被菊‘秋艷’的4 個株系(QY1、QY2、QY3、QY4)為試驗材料,以野生型為對照。采用組織培養(yǎng)的方法于100 mL 三角瓶中分別使用MS 培養(yǎng)基、1/2MS 培養(yǎng)基中進行擴繁和生根,待根系茁壯、葉片茂密時出瓶,煉苗后栽入到含蛭石的營養(yǎng)缽中,最后將長勢基本一致的各株系幼苗栽植于基質(zhì)為V(蛭石)∶ V(營養(yǎng)土)=1∶ 1,規(guī)格8 cm×12 cm 的花盆中緩苗20 d 備用。
高溫脅迫處理:將各轉(zhuǎn)基因株系與野生型植株置于人工氣候箱內(nèi),在溫度45 ℃、空氣濕度80%以上的條件下持續(xù)處理48 h。同時在氣候箱內(nèi)放置盛有自來水的小盆,每隔6 h 量取50 mL 盆內(nèi)自來水分別對各株系進行補水,以避免土壤干旱造成的影響。在0、6、12、24、48 h 取樣進行生理及形態(tài)指標(biāo)的測定,每個株系重復(fù)3 次。
葉片相對含水量(RW,C)測定:在各脅迫時間點內(nèi)剪取各株系葉片稱取鮮質(zhì)量,再于蒸餾水中浸泡吸水24 h 后稱取飽和鮮質(zhì)量,最后于烘箱80 ℃烘干48 h,稱取干質(zhì)量,按公式進行計算:RW,C=(鮮質(zhì)量-干質(zhì)量)/(飽和鮮質(zhì)量-干質(zhì)量)×100%。
質(zhì)膜傷害透性測定采用相對電導(dǎo)率法;MDA(丙二醛)質(zhì)量摩爾濃度測定采用硫代巴比妥酸法;SOD(超氧化物歧化酶)活性測定采用NBT 光化還原法;POD(過氧化物酶)活性測定采用愈創(chuàng)木酚法[9]。
株高冠幅脅迫指數(shù):先測出未受高溫脅迫前各株系的株高冠幅大小,再分別于各脅迫時間點下測定脅迫后各株系株高冠幅大小,按公式進行計算:
株高(冠幅)脅迫指數(shù)={各脅迫時間點內(nèi)不同株系的株高(冠幅)/未受脅迫下的株高(冠幅)}×100%。
數(shù)據(jù)分析:用Excel 2003 對原始數(shù)據(jù)進行處理,用SPSS 17.0 軟件進行差異顯著性及方差分析。
隨著高溫脅迫時間的延長,各株系葉片相對含水量呈下降的趨勢(表1)。高溫脅迫6h 時轉(zhuǎn)基因各株系的葉片相對含水量顯著高于野生型;脅迫12 h 時QY2 和QY4 顯著高于野生型;當(dāng)脅迫時間達到24、48 h 時,除QY3 株系與野生型無明顯差異外其他株系均顯著高于野生型。
表1 高溫脅迫下各株系葉片相對含水量
由圖1可以看出,野生型植株的質(zhì)膜傷害率在高溫脅迫條件下的各時間點內(nèi)均最高,在高溫脅迫時間為6、12、24 h 時,QY1 株系的質(zhì)膜傷害率均最低,而在脅迫時間達到48 h 時,QY2 株系的質(zhì)膜傷害率最低,僅為40%左右。由此可知,高溫對轉(zhuǎn)基因株系葉片的傷害與野生型相比較小,具有一定的耐高溫能力。
由圖2可知,高溫脅迫條件下各株系的MDA 質(zhì)量摩爾濃度均隨著脅迫時間的延長表現(xiàn)出連續(xù)上升的趨勢。高溫脅迫6 h 時野生型與QY2 的MDA 質(zhì)量摩爾濃度相對較高;在12、24 h 時僅有QY1 株系的MDA 質(zhì)量摩爾濃度高于野生型,其他株系均低于野生型;當(dāng)脅迫時間達到48 h 時野生型的MDA質(zhì)量摩爾濃度最高;QY4 在各時間點內(nèi)MDA 質(zhì)量摩爾濃度均最低,受到高溫的脅迫較小。
圖1 高溫脅迫下各株系質(zhì)膜傷害率比較
圖2 高溫脅迫對各株系MDA 質(zhì)量摩爾濃度的影響
從圖3可以看出,隨著高溫脅迫時間的延長,各株系SOD 活性均表現(xiàn)出先升高再降低的趨勢。脅迫6 h 時,各株系SOD 活性無明顯差異;12 h 時QY4株系SOD 活性最高,QY2 最低;24、48 h 時轉(zhuǎn)基因各株系SOD 活性均高于野生型。
圖3 高溫脅迫對各株系SOD 活性的影響
從圖4可以看出,QY4 與野生型植株的POD 活性隨著脅迫時間的增加表現(xiàn)出先升高再降低再升高趨勢,其余3 個株系則表現(xiàn)為先升高再降低的趨勢;野生型植株的POD 活性在各脅迫時間內(nèi)均低于轉(zhuǎn)基因各株系;當(dāng)高溫脅迫時間達到12 h 時的POD 活性以QY1 株系最高,24 h 時以QY2 株系最高,48 h時以QY4 最高。
圖4 高溫脅迫對各株系POD 活性的影響
株高與冠幅脅迫指數(shù)反應(yīng)了高溫對各株系形態(tài)的影響,該指數(shù)越大說明其受到的脅迫越強,反之則弱。由表2可知,高溫脅迫對各株系株高的脅迫指數(shù)要大于對冠幅的脅迫指數(shù)。在高溫脅迫6 h 時各株系株高與冠幅脅迫指數(shù)無顯著差異;脅迫12、24、48 h 時,QY2、QY3 株系的株高和冠幅脅迫指數(shù)顯著高于野生型,而QY1 與QY4 與野生型相比雖然脅迫指數(shù)較高但差異不顯著。
表2 株高及冠幅脅迫指數(shù)
高溫是限制園林植物應(yīng)用的重要環(huán)境因子,能夠?qū)χ参锏厣喜糠值纳L發(fā)育產(chǎn)生不良影響,已成為當(dāng)今研究的熱門話題[10-12]。本研究發(fā)現(xiàn),各轉(zhuǎn)基因株系在高溫脅迫條件下葉片相對含水量較高,水分保持能力較強,其株高冠幅脅迫指數(shù)也較高,說明高溫對轉(zhuǎn)DREB1A 基因地被菊形態(tài)的影響與野生型植株相比較小,在高溫環(huán)境的園林綠化中具有更高的觀賞性。質(zhì)膜傷害率及植物體內(nèi)各種酶活性能夠反應(yīng)出高溫對植株的傷害程度,抗高溫能力強的株系其質(zhì)膜傷害率相對較低,而體內(nèi)保護酶活性則相對較高[13-15]。從研究結(jié)果來看,已轉(zhuǎn)DREB1A 基因的各株系的質(zhì)膜傷害率均低于野生型,可能與其體內(nèi)分泌和制造保護酶的能力較強有關(guān),符合試驗中關(guān)于酶活性的分析結(jié)果[16-17]。綜上可知,外源DREB1A 基因在地被菊體內(nèi)的表達能夠提高植株的抗高溫能力。因此,轉(zhuǎn)抗旱基因地被菊在未來的城市園林美化、綠化中具有重要的實踐價值[18]。然而,關(guān)于植物抗逆性的探討還不能僅僅局限于生理及形態(tài)指標(biāo)的測定上,還需從分子的角度揭示其抗逆性產(chǎn)生的機制,才能為抗旱、抗高溫等地被植物材料的篩選奠定理論基礎(chǔ)。
[1] 何淼,李文鶴,卓麗環(huán).野菊幼苗對自然干旱脅迫的生理響應(yīng)[J].草業(yè)科學(xué),2011,28(8):1456-1460.
[2] Pavet V,Olmos E,Kiddle G,et al.Ascorbic acid deficiency activates cell death and disease resistance re-sponses in Arabidopsis[J].Plant Physiology,2005,139(12):1291-1303.
[3] 時麗冉,陳紅艷,崔興國.干旱脅迫對地被菊膜脂過氧化和抗氧化酶活性的影響[J].北方園藝,2010(9):96-98.
[4] 于洋,吳萍,李春水,等.轉(zhuǎn)DREB1A 基因地被菊耐旱節(jié)水性[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報,2011,39(8),33-39.
[5] Kasuga M,Miura S,Shinozaki K,et al.A combination of the Arabidopsis DREB1A gene and stress-inducible rd29A promoter improved drought and low-temperature stress tolerance in tobacco by gene transfer[J].Plant and Cell Physiology,2004,45(3):346-350.
[6] 姜慧芳,任小平.干旱脅迫對花生葉片SOD 活性和蛋白質(zhì)的影響[J].作物學(xué)報,2004,30(2):169-174.
[7] 楊英杰,李春水,張曉嬌,等.轉(zhuǎn)AtDREB1A 基因菊花雜交后代優(yōu)株水分脅迫耐性分析[J].農(nóng)學(xué)生物技術(shù)學(xué)報,2013,21(2):148-157.
[8] 王亞,孔志新,孫明,等.濕熱脅迫對地被菊及野生菊生理生化特性的影響[J].西北農(nóng)業(yè)學(xué)報,2012,21(9):133-138.
[9] 李合生.植物生理生化實驗原理和技術(shù)[M].北京:高等教育出版社,2000.
[10] 孫靜,曾俊,王銀杰,等.20 個切花菊品種抗旱性評價與篩選[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2013,36(1):24-28.
[11] 李晶,劉煜,蒿連梅,等.轉(zhuǎn)DREB1A 基因提高煙草抗逆性的研究[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2011,42(1):124-128.
[12] 陳金煥,夏新莉,尹偉倫.植物DREB 轉(zhuǎn)錄因子及其轉(zhuǎn)基因研究進展[J].分子植物育種,2007,5(6):29-35.
[13] Hong Bo,Ma Chao,Yang Yingjie,et al.Over-expression of At-DREB1A in chrysanthemum enhances tolerance to heat stress[J].Plant Molecular Biology,2009,70(3):231-240.
[14] Liu Qiang,Kasuga Mie,Sakura Yoh,et al.Two transcription factors,DREB1 and DREB2,with an EREBP/AP2 DNA-binding domain separate two cellular signal transduction pathways in drought-and low-temperature-responsive gene expression respectively in Arabidopsis[J].The Plant Cell,1998,10(2):1391-1406.
[15] 王軍衛(wèi),楊鳳萍,陳緒清,等.外源脫水應(yīng)答轉(zhuǎn)錄因子DREB基因在轉(zhuǎn)基因小麥中的誘導(dǎo)型表達與抗干旱生理效果研究[J].遺傳學(xué)報,2006,33(5):468-476.
[16] 呂晉慧,孫明,孫磊,等.菊花基因工程研究進展[J].北方園藝,2007(1):41-43.
[17] 韋朝領(lǐng),袁家明.植物抗逆境的分子生物學(xué)研究進展[J].安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2000,27(2):204-208.
[18] 夏天翔,劉兆普,王景艷.鹽分和水分脅迫對菊芋幼苗離子吸收及葉片酶活性的影響[J].西北植物學(xué)報,2004,24(7):1241-1244.