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單核細(xì)胞增生性李斯特氏菌熒光定量PCR快速檢測方法的建立及初步應(yīng)用

2014-03-03 08:27關(guān)棣鍇胡文忠樸永哲姜愛麗王運照
食品工業(yè)科技 2014年20期
關(guān)鍵詞:李斯特甜瓜定量

關(guān)棣鍇,胡文忠,樸永哲,陳 晨,姜愛麗,王運照

(1.大連工業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,遼寧大連 116034;2.大連民族學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,遼寧大連 116600)

單核細(xì)胞增生性李斯特氏菌熒光定量PCR快速檢測方法的建立及初步應(yīng)用

關(guān)棣鍇1,2,胡文忠2,*,樸永哲2,陳 晨2,姜愛麗2,王運照2

(1.大連工業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,遼寧大連 116034;2.大連民族學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,遼寧大連 116600)

以單核細(xì)胞增生性李斯特氏菌的hly基因為靶基因,用Primer 5.0設(shè)計了特異性兼并引物,建立熒光定量PCR檢測方法。并用陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品、不同菌株對該方法的特異性、靈敏度進(jìn)行了驗證,且在人工污染鮮切甜瓜上對該方法進(jìn)行了初步應(yīng)用。結(jié)果表明,建立的檢測方法特異性強(qiáng)、靈敏度高,對陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的靈敏度為7.69×10copies/μL,對人工污染的鮮切甜瓜中單核細(xì)胞增生性李斯特氏菌的最低檢出限為3.11×10cfu/mL。

單核細(xì)胞增生性李斯特氏菌,熒光定量PCR,hly,鮮切甜瓜

單 核 細(xì) 胞 增 生 性 李 斯 特 氏 菌( Listeria monocytogenes,L.monocytogenes)是 李 斯 特 氏 菌 屬 中唯一一種能引起人畜共患的食源性致病菌,由該菌誘發(fā)李斯特菌病可引起人類腦膜炎、敗血癥等病癥,致死率高達(dá)30%。L.monocytogenes廣泛存在于自然界中,該菌在4℃的環(huán)境中仍可生長繁殖,是威脅人類健康的主要病原菌之一,因此研制出更快、更有效的檢測方法對于預(yù)防由L.monocytogenes引發(fā)的食物中毒和食源性疾病具有重要指導(dǎo)意義。目前熒光定量PCR快速檢測食品中L.monocytogenes的方法主要有兩種,SYBR GreenⅠ法和TaqMan法,本研究采用前者,該法簡便快捷、靈敏度高于后者、價格便宜,具有較好的大批量檢測食源性致病菌的應(yīng)用前景。同時本研究以L.monocytogenes的hly基因為靶基因,設(shè)計的特異性兼并引物可對不同來源的L.monocytogenes進(jìn)行檢測,擴(kuò)大了檢測范圍。用陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品、不同菌株、人工污染的鮮切甜瓜對建立的方法的特異性、靈敏度進(jìn)行驗證后表明,該法特異性較好,靈敏度高,可為鮮切果蔬的食品安全與控制奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

實驗菌株 見表1;鮮切伊麗莎白瓜 已切分好,購于附近超市;MightyAmp?for Real Time(SYBR? Plus)、核酸純化試劑盒、pMD18-T Vector、DH5α感受態(tài)細(xì)胞、小量質(zhì)粒提取試劑 寶生物工程(大連)有限公司;磁珠法細(xì)菌DNA提取試劑盒 北京普華仕科技發(fā)展有限公司。

Thermo Scientific PikoReal實 時 PCR 儀 、Thermo Scientific Arktik熱循環(huán)儀 Thermo公司。

表1 菌株及來源Table 1 Strains and source

1.2 引物的設(shè)計與合成

從GenBank數(shù) 據(jù)庫中 獲 得 所 有L.monocytogenes的hly基因序列,用DNAMAN軟件進(jìn)行比對,找出序列中相似和差異的片段,根據(jù)相似的基因片段采用Primer 5.0軟件進(jìn)行引物設(shè)計,并找出兼并堿基,預(yù)計擴(kuò)增產(chǎn)物長度為188bp,引物由寶生物工程(大連)有限 公 司 合 成 。 兼 并 引 物 的 序 列 如 下 :Forward 5’-GYGGRAAATCTGTCTCAGGTGAT-3 ’;Reverse 5’-RGCAATGGGAACTCC TGGTG-3’。合成好的兼并引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增、瓊脂糖凝膠電泳檢測,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物送往寶生物工程(大連)有限公司進(jìn)行測序,將測序結(jié)果于NCBI網(wǎng)站上進(jìn)行在線BLAST比對分析,結(jié)果表明與L.monocytogenes同源性良好。

1.3 細(xì)菌DNA基因組的提取

L.monocytogenes經(jīng)過TSBYE增菌液37℃過夜培養(yǎng)后取純培養(yǎng)菌液1mL于Tube管中,12000r/min離心2min,菌沉淀用磁珠法細(xì)菌DNA提取試劑盒提取基因組,并按其操作說明進(jìn)行操作。然后通過紫外分光光度計測定OD260、OD280值以確定提取的DNA的濃度及純度,其中DNA濃度根據(jù)OD260換算得出,DNA純度根據(jù)OD260/OD280確定。

1.4 陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的構(gòu)建

以L.monocytogenes的基因組DNA為模板,用兼并引物對其進(jìn)行PCR擴(kuò)增,切膠回收并純化擴(kuò)增產(chǎn)物,擴(kuò)增產(chǎn)物與載體pMD18-T連接后轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞中,涂平板篩選出疑似陽性的菌落,提取其質(zhì)粒,PCR擴(kuò)增鑒定為陽性的于寶生物工程(大連)有限公司測序。用紫外分光光度計對陽性重組質(zhì)粒進(jìn)行純度和濃度的分析,然后進(jìn)行梯度稀釋作為陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品。

1.5 建立的熒光定量PCR反應(yīng)體系與反應(yīng)條件

本實驗所采用的反應(yīng)體系為20μL:MightyAmp for Real Time(SYBR ? Plus)10μL ,上 下 游 引 物(10μmol/L)各0.4μL,模板2.0μL,無菌水7.2μL。反應(yīng) 條 件 為 :98℃ ,2min 預(yù) 變 性 ;98℃ ,30s;58℃ ,30s;72℃,30s;擴(kuò)增40個循環(huán);58℃結(jié)束后開始收集熒光信號。

1.6 熒光定量PCR特異性檢測

以按照1.3提取的5株L.monocytogenes和15株其他非L.monocytogenes菌株的基因組為模板,根據(jù)方法1.5進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,驗證建立的檢測方法的特異性。

1.7 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立及靈敏度的確定

以方法1.4制備的陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品作為模板(濃度為7.69×108~7.69×10copies/μL),按照方法1.5進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,以模板的拷貝數(shù)為橫坐標(biāo),其對應(yīng)的Cq值為縱坐標(biāo),建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,確定建立的檢測方法的靈敏度。

1.8 人工污染鮮切甜瓜最低檢出限的確定

取1mL 37℃過夜培養(yǎng)的L.monocytogenes菌液噴于10g鮮切甜瓜上,加入90mL TSBYE,37℃增菌過夜。然后用均質(zhì)器拍打,均質(zhì)液用1%的蛋白胨水進(jìn)行10倍倍比稀釋成8個稀釋度,即10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7、10-8。取上述各稀釋度的菌液1mL,每個稀釋度接種1個平板,37℃培養(yǎng)24h后進(jìn)行菌落計數(shù)。同時再取上述各稀釋度的菌液1mL,12000r/min離心2min后按照方法1.3提取DNA,然后按照方法1.5進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增。

2 結(jié)果與分析

2.1 單核細(xì)胞增生性李斯特氏菌hly基因的PCR擴(kuò)增與測序

提取L.monocytogenes的基因組后,用合成的兼并引物進(jìn)行普通PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增結(jié)果見圖1。由圖1可知,擴(kuò)增的條帶大小與預(yù)期的188bp接近,經(jīng)寶生物工程(大連)有限公司測序,測序結(jié)果表明,擴(kuò)增片段與序列完全相符,說明設(shè)計的兼并引物能夠擴(kuò)增出特異的電泳條帶。

圖1 兼并引物PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.1 Result of PCR of degenerate Primer

2.2 重組質(zhì)粒的鑒定

重組質(zhì)粒通過PCR和酶切鑒定后,將呈陽性重組質(zhì)粒送往寶生物工程(大連)有限公司測序后,與NCBI網(wǎng)站上進(jìn)行在線BLAST比對分析,結(jié)果表明擴(kuò)增 產(chǎn) 物 與 L.monocytogenes的hly基 因 相 應(yīng) 區(qū) 域 99%同源。

2.3 熒光定量PCR特異性檢測

用建立的熒光定量PCR方法檢測20株實驗菌株,結(jié)果見圖2、圖3,5株L.monocytogenes(ATCC 19111、ATCC 19112、ATCC 19115、ATCC 15313、GIM 1.229)均有擴(kuò)增曲線生成,結(jié)果為陽性,且循環(huán)閾值均小于30,其他15株非L.monocytogenes菌株及陰性對照無菌水的檢測結(jié)果為陰性,雖然有個別菌株生成擴(kuò)增曲線,但由于在35個循環(huán)之后生成,且觀察其熔解曲線可知在80~90℃沒有生成特異性熔解峰,故實驗證明建立的該熒光定量PCR方法特異性較好。

圖2 特異性擴(kuò)增曲線Fig.2 Primary curve of specificity

圖3 特異性熔解曲線Fig.3 Melting curve of specificity

2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立及靈敏度的確定

以制備的陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品作為模板,進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,獲得熒光定量PCR擴(kuò)增曲線、熔解曲線,見圖4、圖5。以各陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品拷貝數(shù)的對數(shù)為橫坐標(biāo),其對應(yīng)的Cq值為縱坐標(biāo),建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,見圖6。由圖6可知,循環(huán)閾值(Cq值)和各陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品拷貝數(shù)的對數(shù)具有良好的線性關(guān)系,標(biāo)準(zhǔn)曲線的相關(guān)系數(shù)為R2=0.9993,線性方程為:y=-3.73x+ 44.696。

圖4 陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品擴(kuò)增曲線Fig.4 Primary curve of plasmid standards

圖5 陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品熔解曲線Fig.5 Melting curve of plasmid standards

圖6 標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.6 Standard curve

由圖4可以得出當(dāng)陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的濃度為7.69×10copies/μL時,仍有擴(kuò)增曲線出現(xiàn),表明建立的檢測方法靈敏度為7.69×10copies/μL。

2.5 人工污染鮮切甜瓜最低檢出限的確定

方法1.8中人工污染的鮮切甜瓜原菌液及8個稀釋度菌液的菌落計數(shù)結(jié)果為約3.11×100~3.11×108cfu/mL,且按照1.5進(jìn)行的熒光定量PCR擴(kuò)增結(jié)果如圖7、圖8所示。由圖7可知,菌濃度為3.11×10cfu/mL時仍有擴(kuò)增曲線,Cq值均小于35,而菌濃度為3.11cfu/mL時未出現(xiàn)擴(kuò)增曲線,表明該方法對鮮切甜瓜中L.monocytogenes的最低檢出限為3.11×10cfu/mL。以菌濃度的對數(shù)為橫坐標(biāo),其對應(yīng)的Cq值為縱坐標(biāo),建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,見圖9。標(biāo)準(zhǔn)曲線的相關(guān)系數(shù)為R2=0.9958,表示線性關(guān)系良好,線性方程為:y=-3.19x+37.38。

圖7 人工污染鮮切甜瓜的熒光定量PCR擴(kuò)增曲線Fig.7 Primary curve of real time PCR of artificial contamination fresh cut melon

圖8 人工污染鮮切甜瓜的熒光定量PCR熔解曲線Fig.8 Melting curve of real time PCR of artificial contamination fresh cut melon

圖9 標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.9 Standard curve

3 結(jié)論與討論

L.monocytogenes在自然界分布廣泛,可以造成多種食品污染。2011年9月美國爆發(fā)大規(guī)模甜瓜中李斯特菌中毒事件,導(dǎo)致全美24個州出現(xiàn)李斯特菌感染病例,截止2011年12月,30人確認(rèn)因感染李斯特菌 死 亡[1]。 該 事 件 表 明 植 物 性 食 品 同 樣 存 在 污 染L.monocytogenes的危險,從而對人體健康造成危害,應(yīng)予以高度重視。鮮切果蔬作為即食性食品,存在新鮮、健康、衛(wèi)生、方便等優(yōu)點,深受人們青睞。但在其加工及儲運過程中如果不注意衛(wèi)生,也會受到微生物等的污染。而鮮切果蔬一旦受到微生物的污染,將會帶來巨大的損失。因此本研究以此為切入點,選取鮮切甜瓜為材料,進(jìn)行了熒光定量PCR快速檢測L.monocytogenes的初步研究。

實現(xiàn)快速、特異地檢測食品中的L.monocytogenes,選擇合適的靶基因、設(shè)計合適的引物是關(guān)鍵。根據(jù)文獻(xiàn)報道,目前在L.monocytogenes的熒光定量PCR檢測中,選擇的靶基因和引物各不相同[2-7]。而hly基因為L.monocytogenes所特有,且在不同菌株之間具有較高的保守性,由其編碼的李斯特菌溶血素(LLO)被認(rèn)為是李斯特菌主要的致病因子[8-9]。因此,本研究選擇hly基因作為熒光定量PCR反應(yīng)的靶基因。然后從GenBank數(shù)據(jù)庫中下載多條不同來源的hly基因序列,用軟件DNAMAN進(jìn)行比對,找出相似片段,根據(jù)相似片段進(jìn)行兼并引物的設(shè)計。在相關(guān)文獻(xiàn)報道中,兼并引物的使用比較鮮見,而本研究設(shè)計的兼并引物可對不同來源的L.monocytogenes進(jìn)行檢測,擴(kuò)大食品中L.monocytogenes的檢測范圍,可作為通用引物。

本研究利用所設(shè)計的引物定量PCR擴(kuò)增5株L.monocytogenes,均產(chǎn)生擴(kuò)增曲線。而同時定量擴(kuò)增其他15株非L.monocytogenes有5株細(xì)菌在35個循環(huán)之后產(chǎn)生擴(kuò)增曲線,其余10株均未產(chǎn)生擴(kuò)增曲線,通過其熔解曲線可知,產(chǎn)生擴(kuò)增曲線的5株細(xì)菌在80~90℃沒有生成特異性熔解峰,說明建立的熒光定量PCR方法具有較好的特異性。但是對于部分細(xì)菌溶解曲線出現(xiàn)的小峰,相關(guān)資料表明可能是由于引物二聚體的存在造成的結(jié)果。所以近一步優(yōu)化熒光定量PCR反應(yīng)的條件,減少非特異性擴(kuò)增,降低引物二聚體造成的不良影響尤其重要,作者接下來將針對這一問題進(jìn)行近一步研究。上述建立的熒光定量PCR方法也具有較高的靈敏度,可檢測到7.69×10copies/μL的陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品,在人工污染鮮切甜瓜樣品的檢測中,最低檢出限為3.11×10cfu/mL。

本研究建立的熒光定量PCR檢測方法實現(xiàn)了在人工污染鮮切甜瓜樣品中的初步應(yīng)用,為保障鮮切果蔬的食品安全奠定了基礎(chǔ)。即使目前大規(guī)模爆發(fā)果蔬類食品污染L.monocytogenes而導(dǎo)致人類患病的報道為數(shù)不多,但個別L.monocytogenes中毒事件屢見不鮮,所以仍應(yīng)該提高重視,盡快研究出更快、更有效的檢測方法,實現(xiàn)防患于未然。

[1]關(guān)棣鍇,胡文忠,姜愛麗,等.鮮活農(nóng)產(chǎn)品中單核細(xì)胞增多性李斯特菌快速檢測技術(shù)的研究進(jìn)展[J].食品工業(yè)科技,2013(11):361-368.

[2]Hassan Dadkhah,Mohammad Reza Bassami,Saeed Hashemi,et al.Evaluation and comparison of SYBR Green I Real-Time PCR and TaqMan Real-Time PCR methods for quantitative assay of Listeria monocytogenes in nutrient broth and milk[J]. African Journal of Microbiology Research,2012,6(9):1908-1917.

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Establishment and preliminary application of real-time fluorogenic quantitative PCR assay to rapid detection of Listeria monocytogenes

GUAN Di-kai1,2,HU Wen-zhong2,*,PIAO Yong-zhe2,CHEN Chen2,JIANG Ai-li2,WANG Yun-zhao2
(1.College of Food,Dalian Polytechnic University,Dalian 116034,China;2.College of Life Science,Dalian Nationalities University,Dalian 116600,China)

Hly gene of Listeria monocytogenes was using as the target gene,a pair of degenerate primers were designed with Primer 5.0 , and the method of real-time fluorogenic quantitative PCR assay to detection of Listeria monocytogenes was established.The specificity and sensitivity of plasmid standard and different strains were verified,its preliminary application in Artificial inoculation fresh-cut melon was realized.The results showed that the method had good specificity and sensitivity,and sensitivity for plasmid standard was 7.69 × 10copies/μL,the minimum detection limit of artificial inoculation fresh-cut melon was 3.11×10cfu/mL.

Listeria monocytogenes;real-time fluorogenic quantitative PCR;hly;fresh-cut melon

TS07

A

1002-0306(2014)20-0049-05

10.13386/j.issn1002-0306.2014.20.001

2014-05-12

關(guān)棣鍇(1988-),女,在讀碩士研究生,研究方向:食品科學(xué)。

* 通訊作者:胡文忠(1959-),男,博士,教授,研究方向:食品科學(xué)。

國家自然科學(xué)基金項目(31172009,31340038);國家科技支撐計劃項目(2012BAD38B05);大連市科技計劃項目(2012E13SF106);大連市金州新區(qū)科技計劃項目(2012-A1-049)。

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