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水貂阿留申病分子生物學(xué)及防控技術(shù)研究進(jìn)展

2014-02-11 19:29:35王振軍吳威閆喜軍呼延良浩紀(jì)銀鈴侯海良張蕾李明霞
特產(chǎn)研究 2014年1期
關(guān)鍵詞:水貂基因組病毒

王振軍,吳威,閆喜軍,呼延良浩,紀(jì)銀鈴,侯海良,張蕾※,李明霞

(1.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院特產(chǎn)研究所,長春130112;2.吉林省集安市種子公司,吉林集安134200;3.安華農(nóng)業(yè)保險(xiǎn)股份有限公司吉林省分公司,長春130122;4.吉林省白山市畜牧總站,吉林白山134300)

水貂阿留申病(Aleutian Disease,AD)是由阿留申病毒(Aleutian Mink Disease Virus,ADV)引起的,被稱為毛皮動(dòng)物三大疫病之一。該病可以嚴(yán)重影響水貂的毛皮質(zhì)量,損害其生育能力,降低存活率,給養(yǎng)貂業(yè)帶來巨大的經(jīng)濟(jì)損失[1]。水貂阿留申病的發(fā)病和預(yù)后受到水貂基因型、年齡、毒株種類等多種因素的影響,典型的病理及臨床癥狀主要有以下兩方面:對(duì)于新生幼貂來說,由于體內(nèi)抗體水平低且自身免疫系統(tǒng)尚未發(fā)育完善,ADV可以引發(fā)新生幼貂的急性間質(zhì)性肺炎,死亡率很高;另一方面,對(duì)于成年貂則多是以慢性、持續(xù)性感染為主,以漿細(xì)胞增多、高免疫球蛋白血癥、免疫復(fù)合物介導(dǎo)的腎小球腎炎和動(dòng)脈炎為特點(diǎn),有的病貂還有非化膿性腦膜炎的癥狀[2,3],臨床上可見病貂漸進(jìn)性消瘦、口渴、貪飲等癥狀,母貂除上述癥狀外可見產(chǎn)仔量下降、死胎、流產(chǎn)數(shù)量增多[4];剖檢可見腎臟腫大發(fā)白,脾臟有陳舊的壞死斑等。病貂可通過糞便、唾液長期向外界排毒,養(yǎng)殖場工作人員不規(guī)范的操作也起到了被動(dòng)傳播ADV的作用,所以AD在國內(nèi)水貂養(yǎng)殖場的流行是十分普遍的。由于ADV的感染呈現(xiàn)抗體依賴性增強(qiáng)(ADE)的現(xiàn)象,至今仍無有效的疫苗研發(fā)思路,國內(nèi)、外學(xué)者現(xiàn)多在AD診斷方面開展研究,以期用更加精準(zhǔn)的檢測方法淘汰阿留申病貂。

1 水貂阿留申病的分子生物學(xué)研究進(jìn)展

1.1 ADV的基因組結(jié)構(gòu)

國際病毒分類委員會(huì)(ICTV)第八次會(huì)議將ADV歸類為細(xì)小病毒科(Parvoviridae)細(xì)小病毒亞科(Parvovirinae)阿留申病毒屬(Amdovirus)[5]。ADV是單股負(fù)鏈DNA病毒,基因組全長約4.8Kb,3′端和5′端均含有200bp左右的末端回文序列并形成發(fā)夾結(jié)構(gòu),3′端的發(fā)夾結(jié)構(gòu)較短,5′端的發(fā)夾結(jié)構(gòu)較長,它的主要功能是作為病毒的復(fù)制起始點(diǎn)和包裝信號(hào)[6]。目前,國內(nèi)、外已經(jīng)分離出多種ADV毒株,如高致病性的ADV-Utah、ADV-K、ADV-United等;低致病性的ADV-Pullman等;以及對(duì)水貂無致病力的ADV-G株,它是ADV-Utah株在體外細(xì)胞傳代培養(yǎng)后失去致病力的實(shí)驗(yàn)株,只能造成體外培養(yǎng)的Vero、CRFK等細(xì)胞感染,而并不引起水貂發(fā)病[7]。到目前為止,在世界范圍內(nèi)還沒有任何官方報(bào)道的關(guān)于ADV的基因型,根據(jù)世界各水貂養(yǎng)殖國家的流行病學(xué)調(diào)查,各地都有不同的ADV毒株,甚至同一個(gè)地區(qū)同一個(gè)養(yǎng)殖場都有不同的毒株存在。現(xiàn)今只有ADV-G株病毒完成了全基因組序列的測序工作[6],本文以ADV-G株病毒序列為例對(duì)其進(jìn)行結(jié)構(gòu)和功能方面的簡要說明。

Alexandersen等[8]早在1988年就對(duì)ADV的轉(zhuǎn)錄進(jìn)行了研究,證實(shí)了ADV的開放閱讀框(Open Reading Frame,ORF)主要包括5個(gè):左開放閱讀框(LORF)約長1 859nt,右開放閱讀框(RORF)約長2 105nt和3個(gè)較短的中間開放閱讀框(mid-ORFs),此外,還有啟動(dòng)子序列(TATA box)和polyA位點(diǎn)。整段序列含有2個(gè)啟動(dòng)子P3、P36,由這2個(gè)啟動(dòng)子分別啟動(dòng)轉(zhuǎn)錄,轉(zhuǎn)錄后經(jīng)過mRNA的可變剪接合成R1、R2、R2′、R3、RX 5種mRNA,最終翻譯成ADV的各種蛋白。

1.2 ADV基因的復(fù)制和表達(dá)

ADV屬細(xì)小病毒科成員,它的復(fù)制和轉(zhuǎn)錄是在宿主細(xì)胞核內(nèi)進(jìn)行的,基因組DNA的復(fù)制所需要的DNA聚合酶及輔助因子都依賴于宿主細(xì)胞,而且要求宿主細(xì)胞處于有絲分裂的S期,此時(shí)的宿主細(xì)胞中DNA聚合酶的活性旺盛。當(dāng)被感染的細(xì)胞進(jìn)入有絲分裂S期時(shí),ADV便利用細(xì)胞核內(nèi)高活性的DNA聚合酶進(jìn)行自身基因組的合成,以此來完成自身基因組DNA的復(fù)制[9]。ADV在復(fù)制方式上與其他細(xì)小病毒類似,即先以3′端發(fā)夾結(jié)構(gòu)提供的3′-OH為引物,在DNA聚合酶的作用下合成復(fù)制型中間體,再由復(fù)制型中間體形成子代病毒基因組[10]。在ADV的基因組DNA復(fù)制的過程中,ADV的NS1蛋白起到了關(guān)鍵作用,它的作用包括在特異性位點(diǎn)切斷DNA、ATP酶作用和解旋酶作用[11]。

ADV基因表達(dá)的蛋白包括結(jié)構(gòu)蛋白和非結(jié)構(gòu)蛋白。結(jié)構(gòu)蛋白包括VP1、VP2 2種,是由位于基因組右側(cè)的ORF負(fù)責(zé)編碼的。編碼VP1蛋白的基因(2 043nt)包含了編碼VP2蛋白基因(1 917nt)的全部序列,只是在其5′端較編碼VP2蛋白的基因多出126個(gè)堿基,對(duì)應(yīng)的在表達(dá)的VP1蛋白的N端比VP2蛋白多出了42個(gè)氨基酸殘基;非結(jié)構(gòu)蛋白包括NS1、NS2和NS3,是由位于基因組左側(cè)的ORF編碼的,其中NS1是最大的非結(jié)構(gòu)蛋白,它是經(jīng)過轉(zhuǎn)錄剪接后形成的1 962nt的序列翻譯出的,大小約為72Ku[8,12]。ADV基因的表達(dá)調(diào)控主要在基因的復(fù)制、轉(zhuǎn)錄、轉(zhuǎn)錄后和翻譯4個(gè)環(huán)節(jié)。其中復(fù)制和轉(zhuǎn)錄環(huán)節(jié)是發(fā)生在宿主細(xì)胞核內(nèi)的,主要行使調(diào)控功能的是NS蛋白和ADV基因組自身的調(diào)控單元、末端發(fā)夾結(jié)構(gòu)、啟動(dòng)子區(qū)、polyA等,這些調(diào)節(jié)蛋白和調(diào)控基因共同構(gòu)成了ADV基因組表達(dá)調(diào)節(jié)系統(tǒng)[13]。Christensen等[14]在用昆蟲桿狀病毒表達(dá)體系表達(dá)ADV蛋白時(shí),通過免疫熒光試驗(yàn)證實(shí)了ADV的VP1蛋白、VP2蛋白、NS1蛋白在昆蟲細(xì)胞的細(xì)胞核周圍表達(dá),NS2蛋白在細(xì)胞質(zhì)中表達(dá),所以ADV基因在轉(zhuǎn)錄后和翻譯環(huán)節(jié)也可能發(fā)生在對(duì)應(yīng)的區(qū)域。

1.3 ADV蛋白的功能

1.3.1非結(jié)構(gòu)蛋白在ADV的非結(jié)構(gòu)蛋白中,研究最多的是NS1蛋白,它是病毒在侵染宿主細(xì)胞和復(fù)制時(shí)發(fā)揮功能的一種多功能蛋白,尤其在基因組DNA復(fù)制和啟動(dòng)子調(diào)節(jié)方面發(fā)揮重要作用,分子量約為71Ku。Christensen等[14]曾用昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)成功表達(dá)NS1蛋白,獲得了大量有活性的純化蛋白,此外,Christensen等[15]還認(rèn)為,NS1蛋白存在細(xì)胞抑制作用或細(xì)胞毒作用,因其發(fā)現(xiàn)NS1蛋白在昆蟲細(xì)胞中表達(dá)的時(shí)候引起了細(xì)胞形態(tài)學(xué)的變化,在轉(zhuǎn)染期間重組的桿狀病毒滴度下降了10倍。對(duì)于ADV-NS2蛋白的研究目前尚缺乏充足的資料,但有學(xué)者認(rèn)為其在ADV基因組復(fù)制方面起作用[16]。而ADV-NS3蛋白存在與否還沒有確切的說法,國內(nèi)、外學(xué)者對(duì)其研究較少。Christensen等[14]曾用實(shí)驗(yàn)證實(shí),NS3蛋白在昆蟲細(xì)胞中表達(dá)時(shí)呈彌散式分布,分子量約為10Ku,但對(duì)其功能沒有詳述。

1.3.2結(jié)構(gòu)蛋白ADV的結(jié)構(gòu)蛋白VP1和VP2共同組成了ADV的蛋白衣殼,大小分別約85Ku和75Ku,但是兩者的比例卻相差很大,VP2占約90%,VP1只占約10%[17]??梢夾DV-VP2蛋白占了病毒的絕大部分,所以可以推斷VP2蛋白上存在ADV主要抗原表位,對(duì)此國內(nèi)、外學(xué)者針對(duì)VP2蛋白進(jìn)行了體外表達(dá),并且用多種方法驗(yàn)證了其抗原性良好。Christensen等[14]用昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)表達(dá)2種結(jié)構(gòu)蛋白,并通過免疫熒光證實(shí)其在昆蟲細(xì)胞的細(xì)胞核周圍進(jìn)行表達(dá),而且在電子顯微鏡下觀察到表達(dá)蛋白和ADV-G株病毒的衣殼蛋白很相似,難于區(qū)分;Bloom等[18](1994)用重組的核型多角體病毒表達(dá)了ADV的結(jié)構(gòu)蛋白,并通過CIEP方法證實(shí)其抗原性比商業(yè)抗原更敏感;Anna Knuuttila等[19](2009)用昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)表達(dá)ADV的VP2蛋白并建立了ELISA方法診斷AD,據(jù)報(bào)道,該診斷方法的敏感性和特異性分別達(dá)到了99%和97%;梁冬瑩[20](2007)采用原核表達(dá)系統(tǒng)分段表達(dá)ADV結(jié)構(gòu)蛋白基因,經(jīng)過CIEP驗(yàn)證重組蛋白在診斷試驗(yàn)中重復(fù)性、敏感性和特異性均較好,這些研究均證實(shí)ADV的VP2蛋白有很好的反應(yīng)原性。

2 水貂阿留申病診斷方法的研究進(jìn)展

自1956年發(fā)現(xiàn)AD以來,各國學(xué)者都在尋找一種能夠防治該病的方法,因ADV病毒感染后會(huì)呈現(xiàn)抗體依賴性增強(qiáng)的現(xiàn)象[21],所以很難通過研制有效的疫苗來控制預(yù)防該病,因此各國學(xué)者在ADV的檢測手段上不斷創(chuàng)新,通過定期對(duì)ADV病貂的篩查、淘汰病貂來凈化貂場,進(jìn)而達(dá)到防控該病的目的。ADV的檢測方法有多種,主要有病原學(xué)、血清學(xué)和分子生物學(xué)診斷,以下將分別予以介紹。

2.1 病原學(xué)診斷

這種診斷方法有賴于電子顯微鏡技術(shù)。對(duì)感染病貂的臟器(肝臟、脾臟、腎臟或淋巴結(jié))進(jìn)行研磨并超速離心后,用除菌膜過濾上清液,進(jìn)行負(fù)染后在電子顯微鏡下可直接觀察病毒粒子,病毒粒子直徑22nm~25nm,呈正20面體[22]。這種檢測方法周期長,且不容易與其他細(xì)小病毒區(qū)分,一般只用于輔助檢測,不適合臨床檢測。

2.2 血清學(xué)診斷

血清學(xué)診斷是應(yīng)用最為廣泛的診斷方法,具體的檢測方法主要有以下幾種:碘凝集試驗(yàn)(IAT)、對(duì)流免疫電泳(CIEP)、酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)、間接免疫熒光、免疫復(fù)合物(CIC)檢測等。

2.2.1碘凝集試驗(yàn)Henson等[23]于1962年率先將IAT應(yīng)用于水貂阿留申病的檢測,IAT的檢測原理是:ADV感染后血液內(nèi)的丙種球蛋白增多,當(dāng)丙種球蛋白增加到一定濃度后會(huì)和碘發(fā)生凝集反應(yīng)。但是這種檢測方法是非特異性的,所有能夠引起丙種球蛋白增多的疾病都可以發(fā)生碘凝集反應(yīng),比如結(jié)核、肝腎等疾病均可呈現(xiàn)IAT陽性反應(yīng)[24]。而且在ADV感染的初期,血液中的丙種球蛋白并沒有明顯地升高,到感染后的3周~4周才出現(xiàn)較高水平的丙種球蛋白,所以IAT無法檢測ADV感染初期的水貂,也就錯(cuò)失了從根本上撲滅該病的機(jī)會(huì),這樣IAT在ADV的篩查上存在很高的假陰性和假陽性率,因此這種方法被應(yīng)用多年但始終沒能達(dá)到撲滅該病的目的。

2.2.2對(duì)流免疫電泳(CIEP) 1972年由Cho等[25]在加拿大應(yīng)用CIEP診斷水貂阿留申病,這是在世界上首次將這種方法用于檢測水貂阿留申病,我國從20世紀(jì)80年代起開始應(yīng)用CIEP來檢測阿留申病,直到現(xiàn)在這種方法是國內(nèi)、外公認(rèn)的檢測ADV的黃金法則。CIEP的原理是:抗原抗體在電場的作用下和ADV相向運(yùn)動(dòng),當(dāng)兩者相遇之后會(huì)在瓊脂凝膠板中形成清晰的沉淀線。研究顯示,水貂在感染ADV后9d~11d就可以產(chǎn)生沉淀抗體,并能夠穩(wěn)定地維持6個(gè)月以上,這種方法無論在特異性還是敏感性、重復(fù)性上都遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于IAT法,很快在世界各水貂養(yǎng)殖國家應(yīng)用,并一直沿用至今[26]。我國在20世紀(jì)80年代由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院特產(chǎn)研究所研制的水貂阿留申病CIEP抗原獲得批準(zhǔn),并成功商業(yè)化,廣泛應(yīng)用于海關(guān)以及國內(nèi)水貂養(yǎng)殖單位。目前國外也有用CIEP法并輔助PCR法來共同檢測AD的報(bào)道[27]。

2.2.3酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)早在1982年,國外學(xué)者Wright等[28]嘗試了用ELISA方法檢測ADV,并對(duì)這種方法的檢測結(jié)果做出了評(píng)價(jià),但由于當(dāng)時(shí)該方法存在很高的假陰性率,所以不是一種有效地檢測AD的方法。吳威等[29]用感染水貂ADV-G株病毒的貓腎細(xì)胞CRFK建立了檢測水貂阿留申病病毒抗體的PPA—ELISA方法,這種方法的敏感性較CIEP高,有快速準(zhǔn)確的優(yōu)點(diǎn)。隨著對(duì)ADV結(jié)構(gòu)蛋白的深入研究和分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,現(xiàn)在國內(nèi)、外已經(jīng)有報(bào)道用分子生物學(xué)的手段將ADV的VP2基因克隆到表達(dá)載體上,然后在特定的表達(dá)系統(tǒng)中批量表達(dá)VP2蛋白,再用表達(dá)的VP2蛋白作為包被抗原,進(jìn)而建立一種更加快速靈敏地檢測AD的ELISA方法。如Anna Knuuttila等用昆蟲桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)成功表達(dá)了VP2蛋白;梁冬瑩等用原核表達(dá)系統(tǒng)成功地表達(dá)了VP2蛋白,而且以上方法表達(dá)的蛋白經(jīng)過驗(yàn)證其敏感性和特異性均較高,但是用這些方法表達(dá)出的蛋白未經(jīng)純化,其中含有大量的細(xì)胞成分,若對(duì)該抗原進(jìn)行純化,其特異性和敏感性會(huì)更高。

2.2.4間接免疫熒光試驗(yàn)Porter等[30]在1969年用這種方法檢測AD,該法需要利用細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)對(duì)培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行同步接毒,在細(xì)胞出現(xiàn)病變后,再用待檢血清中和病毒,最后用熒光二抗反應(yīng)后在熒光顯微鏡下觀察熒光現(xiàn)象。雖然這種方法在診斷方面很特異,但由于這種方法周期長、步驟繁瑣、重復(fù)性差等缺點(diǎn)不適合應(yīng)用于臨床診斷。

2.2.5循環(huán)免疫復(fù)合物檢測(CIC) ADV感染水貂后在體內(nèi)形成抗原抗體復(fù)合物,由于AD主要是由免疫復(fù)合物引起的疾病,所以檢測水貂體內(nèi)CIC含量也可以作為一種診斷依據(jù)。1997年,趙元楷等[31]建立了應(yīng)用聚乙二醇(PEG)沉淀比濁法檢測阿留申病貂血清中CIC的新方法并獲得應(yīng)用。也有學(xué)者建議在貂場選種時(shí),同時(shí)應(yīng)用CIEP法和CIC檢測法,挑選免疫復(fù)合物OD值低的留作種用[23]。

2.3 分子生物學(xué)診斷

2.3.1聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR) 自20世紀(jì)80年代PCR技術(shù)發(fā)明以來,在分子生物學(xué)領(lǐng)域得到普遍應(yīng)用,它利用高溫變性、低溫退火、中溫延伸3個(gè)步驟循環(huán)往復(fù),可以使待擴(kuò)增的DNA片段在數(shù)小時(shí)內(nèi)復(fù)制上百萬倍,從而實(shí)現(xiàn)了基因的體外擴(kuò)增。PCR技術(shù)被廣泛應(yīng)用在疾病檢測方面。根據(jù)GenBank上公布的ADV序列,用引物設(shè)計(jì)軟件設(shè)計(jì)出針對(duì)ADV的特異性引物,用這種特異性引物進(jìn)行PCR檢測,可以十分敏感、特異地檢測出待檢物中是否有ADV,其準(zhǔn)確性和特異性要高于CIEP。國外早已有關(guān)于用PCR方法檢測水貂阿留申病的報(bào)道,但國內(nèi)目前對(duì)AD的檢測還是依賴于CIEP。Jensen等[32]研究證實(shí)了PCR檢測ADV的敏感性要高于CIEP。2012年在丹麥舉行的國際科學(xué)大會(huì)毛皮動(dòng)物產(chǎn)業(yè)分會(huì)上,有關(guān)于用PCR方法防控ADV的報(bào)道,A.Cepica等[27]指出,從20世紀(jì)70年代中期加拿大等國就開始用CIEP法防控水貂阿留申病,經(jīng)過近40年的努力,水貂阿留申病得到了有效地控制,但還是有小范圍的流行,因?yàn)椴《驹诟腥舅蹰_始時(shí)隱藏在感染水貂體內(nèi),這時(shí)很難用血清學(xué)手段檢測出來,這樣就造成漏檢,漏檢的假陰性水貂在過了病毒的潛伏期后就會(huì)表現(xiàn)出癥狀。隱藏在環(huán)境中的病毒,隨時(shí)可能潛伏到動(dòng)物體內(nèi)并對(duì)動(dòng)物造成感染,所以他認(rèn)為用CIEP和PCR 2種方法來共同監(jiān)測AD是更為有效的方法。

此外,國外還有用核酸雜交技術(shù)對(duì)貂群進(jìn)行阿留申病的普檢的報(bào)告,如Haas L等[33]就用Southern blot方法分析了從感染水貂的脾臟、腎臟、淋巴結(jié)、骨髓等臟器中提取的DNA樣品,結(jié)果顯示只在脾臟和骨髓中檢測到了病毒DNA的復(fù)制。目前國外在這方面研究較多,國內(nèi)沒有這方面研究的報(bào)道。

綜上所述,CIEP法仍是目前應(yīng)用最多、最廣泛的檢測AD的方法,這種方法要求的檢測設(shè)備相對(duì)簡單,便于操作,易于推廣,而且檢測成本較低。隨著對(duì)ADV-VP2蛋白的研究的深入和分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,各國學(xué)者探索了多種針對(duì)VP2蛋白的體外表達(dá)的方法并開始應(yīng)用表達(dá)抗原研究新的AD診斷方法,比如ELISA、膠體金等,這些檢測方法將是未來AD診斷防控的新趨勢(shì)。但在新的檢測手段尚未成熟之前,CIEP還是檢測AD的主要方法。

3 阿留申病的防制

國外在AD的控制和撲滅措施上做法比較徹底,比如在丹麥,法律規(guī)定每個(gè)農(nóng)場每年都要上交AD檢測報(bào)告,用于引種的水貂必須在引種前檢測AD陰性,而一個(gè)貂場經(jīng)CIEP檢測有3個(gè)以上的水貂呈血清學(xué)陽性或即使僅在1只水貂體內(nèi)檢測到了ADV,這個(gè)農(nóng)場則被視為ADV感染的農(nóng)場[34],而對(duì)被認(rèn)定為ADV感染農(nóng)場的水貂則要全群撲殺。但國內(nèi)由于特殊的養(yǎng)殖模式,AD在貂場的流行很普遍,目前還做不到全群撲殺,只能通過篩查逐步淘汰ADV陽性貂。AD現(xiàn)在沒有特異性的預(yù)防和治療方法,因此防制該病主要依賴針對(duì)傳染病的綜合防制措施。

3.1 最重要的在于飼養(yǎng)管理

給予水貂新鮮、優(yōu)質(zhì)、全價(jià)的飼料,以提高機(jī)體免疫力,降低發(fā)病率。

3.2 嚴(yán)格遵守養(yǎng)殖場獸醫(yī)衛(wèi)生制度

對(duì)籠舍等用具定期進(jìn)行火焰消毒,糞便及時(shí)清理并作無害化處理,地面、籠舍要堅(jiān)持用消毒液消毒,這是防止該病傳播和流行的有效辦法。

3.3 建立定期檢疫淘汰制度

建議貂場在每年的打皮期和配種期前進(jìn)行CIEP的篩查,淘汰陽性貂,這樣可以將貂場的感染貂控制在較低的范圍內(nèi)。

3.4 建立完善的引種檢疫工作

對(duì)引進(jìn)種貂要進(jìn)行嚴(yán)格的檢疫,不但要求CIEP檢測陰性,有條件的要進(jìn)行PCR檢測,這樣可以保證引進(jìn)種貂無ADV感染。

3.5 抗病貂新品種的培育

通過雜交育種的辦法培育抗AD的水貂新品種,此法周期較長,但能從根本上阻斷AD。

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