黃小妹, 陳文莉, 袁靜萍, 楊月紅, 王 銀, 胡曉松, 曾星若, 方 詢
武漢市中心醫(yī)院1腎病科2病理科,武漢 430014
近日節(jié)律是生物體24h當(dāng)中生理及行為的變化規(guī)律。在哺乳動(dòng)物,近日節(jié)律的控制器——時(shí)鐘基因主要在視上核交叉系統(tǒng)(suprachiasmatic nucleus,SCN),近年研究認(rèn)為在外周組織如心肌細(xì)胞、肝臟、腎臟等也有時(shí)鐘基因的表達(dá),并與生物體的生理及病理變化有關(guān)系。目前已發(fā)現(xiàn)的哺乳動(dòng)物時(shí)鐘基因包括周期基因1-3(period1-3,per1-3)、羥受體核轉(zhuǎn)位蛋白基因(brain and muscle Arnt-Like protein-1,bmal1)、時(shí)鐘基因(clock)、隱花色素基因(cryptochrome,cry),以及時(shí)鐘輸出基因白蛋白Dbox 結(jié)合蛋白基因(Albumin D-element-binding protein,dbp)等[1-3]。
血管緊張素Ⅱ(Angiotensin Ⅱ,AngⅡ)作為一種授時(shí)因子可以誘導(dǎo)外周組織時(shí)鐘基因的表達(dá)[4-5],并且作為腎素-血管緊張素系統(tǒng)(renin-angiotensin system,RAS)中的重要成員在慢性腎?。╟hronic kidney disease,CKD)的病理和發(fā)病機(jī)制中起重要作用。血管緊張素轉(zhuǎn)換酶抑制劑(Angiotensin-converting enzyme inhibitor,ACEI)不僅抑制循環(huán)中AngⅡ活性,還抑制腎組織局部AngⅡ的活性。本研究擬用ACEI類藥物苯那普利治療5/6腎切除大鼠(5/6subtotal nephrectomy,STNx),觀察其對(duì)腎組織時(shí)鐘基因per2、bmal1及dbp 及其蛋白產(chǎn)物表達(dá)節(jié)律的影響。
SPF級(jí)雄性Wistar大鼠95只,體重200~220 g,由湖北省疾控中心實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供并飼養(yǎng)于SPF動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室。
兔抗大鼠PER2 多克隆抗體(sc-25363,美國(guó)Santa Cruz公司),兔抗大鼠DBP 多克隆抗體(sc-98411,美國(guó)Santa Cruz公司)及兔抗BMAL1多克隆抗體(sc-48790,美國(guó)Santa Cruz公司),苯那普利(北京諾華制藥有限公司,x1483),AngⅡ放免試劑盒(碘125放射免疫分析藥盒,北京科美東雅)。所用引物per2,bmal1及dbp及內(nèi)參18sRNA 的基因序列通過(guò)GenBank獲得,見(jiàn)表1。
Wistar大鼠先適應(yīng)性喂養(yǎng)7d,隨機(jī)分為3組,假手術(shù)組(30 只),5/6 腎大部切除組(模型組,32只),苯那普利治療組(BM 組,33只)。造模方法參見(jiàn)以往報(bào)道[6-7]。
造模后次日將大鼠置于12h-12h明暗交替的環(huán)境飼養(yǎng)。7AM 開(kāi)燈,7PM 關(guān)燈。7AM 記為ZT0時(shí),8AM 記為ZT1時(shí),依次類推。造模次日苯那普利治療組每天早上7AM (ZT0)用苯那普利10mg/kg灌胃,其余兩組用等量生理鹽水灌胃。大鼠自由進(jìn)食及飲水。造模后第11周留取24h尿標(biāo)本檢測(cè)尿蛋白定量。第12 周處死大鼠。分別在7AM(ZT0),11AM(ZT4),3PM(ZT8),7PM(ZT12),11PM(ZT16),3AM(ZT20)各時(shí)間點(diǎn)3組各處死5只大鼠,取出腎組織及血標(biāo)本。腎組織標(biāo)本用冰鹽水灌洗后置于凍存管中,立即置于液氮罐中,再轉(zhuǎn)移至-80℃冰箱保存?zhèn)錂z,檢測(cè)前將腎組織取出,制備組織均漿。血標(biāo)本置于肝素鈉抗凝管中用于檢測(cè)腎功能。
表1 引物序列Table 1 Primer Sequences
放免法檢測(cè)AngⅡ。檢測(cè)前將腎組織取出,制備組織均漿。分別檢測(cè)血漿及腎組織均漿中AngⅡ濃度(pg/mL)。由武漢大學(xué)附屬湖北省人民醫(yī)院核醫(yī)學(xué)科檢測(cè)。
檢測(cè)腎組織per2,bmal1及dbp基因mRNA 表達(dá)。檢測(cè)方法參見(jiàn)以往報(bào)道[6-7]。
剪取全腎組織約200mg,加入50μL蛋白裂解液,制備腎組織勻漿,12 000g、4℃,離心30 min。取1μL上清加入99μL 三蒸水中混勻,加500μL考馬斯亮藍(lán)混勻,10 min后測(cè)濃度,取余下上清與樣品緩沖液混合。中高火煮沸7 min,放入-80℃凍存。檢測(cè)時(shí)將樣本點(diǎn)在SDS-聚丙酰胺凝膠跑膠,初用60V 跑膠,待跑至分離膠后改用100V,直到溴酚藍(lán)接近跳水。用PVDF 膜轉(zhuǎn)膜,350 mA 30 min。室溫條件下,5%脫脂奶粉封閉1h,放在搖床上搖,封一抗,4℃過(guò)夜;室溫復(fù)溫20 min PBST 洗膜1h(搖床上搖),封二抗。PBST 洗膜(搖床上搖)1~3h,BCIP∶NBT∶AP buffer按1∶1∶250配成4mL在小皿里避光顯色,以β-actin為內(nèi)參,計(jì)算相對(duì)吸光度值。
全部數(shù)據(jù)采用SPSS 16.0及Matlab7.1統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行處理,計(jì)量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示。組間資料比較采用雙因素方差分析(two-way ANOVA)。當(dāng)時(shí)鐘基因mRNA 表達(dá)符合近日節(jié)律時(shí),采用Halberg 余弦法(cosinor)分析,當(dāng)檢測(cè)指標(biāo)不符合余弦函數(shù)時(shí),用非配對(duì)t檢驗(yàn)(unpaired ttest)。研究血漿及腎組織中AngⅡ與腎組織時(shí)鐘基因及時(shí)鐘基因蛋白相關(guān)性時(shí)采用Spearman相關(guān)分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
5/6 腎大部切除大鼠(模型組)12 周時(shí)腎功能BUN、Scr明顯高于假手術(shù)組,尿蛋白排泄量也明顯高于假手術(shù)組,苯那普利(BM 組)治療后BUN、Scr及尿蛋白排泄量低于模型組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。說(shuō)明12周時(shí)慢性腎衰模型制備成功,苯那普利能改善腎功能,具有腎保護(hù)作用,見(jiàn)表2。
表2 各組大鼠腎功能及24h尿蛋白定量(±s,n=5)Table 2 BUN,Scr and 24-h(huán) urine protein excretion in each group(±s,n=5)
表2 各組大鼠腎功能及24h尿蛋白定量(±s,n=5)Table 2 BUN,Scr and 24-h(huán) urine protein excretion in each group(±s,n=5)
與假手術(shù)組比較,*P<0.01;與BM 組比較,#P<0.01
組別 BUN(mmol/L) Scr(mmol/L) 24h尿蛋白定量(mg)假手術(shù)組8.2±1.9 35.2±7.4 4.1±1.5模型組28.5±7.6*# 131.2±24.5*#73.8±11.4*#BM 組16.9±5.3*92.4±17.9*32.7±5.3*
假手術(shù)組腎AngⅡ谷(T)、峰值(P)時(shí)間分別在ZT12、ZT4,P/T 為8.48;模型組ZT4 時(shí)達(dá)峰值,ZT12~ZT20 等時(shí)間均在谷值附近波動(dòng),P/T 為9.08。用苯那普利治療后腎AngⅡ水平明顯降低,振幅減弱,P/T 為4.74。假手術(shù)和模型組間腎AngⅡ水平無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P=0.306),BM 組腎AngⅡ水平明顯低于假手術(shù)和模型組(P=0.012);各組不同時(shí)間點(diǎn)腎AngⅡ表達(dá)有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05),見(jiàn)圖1A。血漿AngⅡ水平假手術(shù)組谷、峰值時(shí)間分別為ZT0、ZT20,P/T 為1.51;模型組峰值提前至ZT16,P/T 為1.95;BM 組用苯那普利治療后血漿AngⅡZT4~ZT20均在低水平波動(dòng),明顯低于假手術(shù)和模型組(P<0.05),谷、峰值點(diǎn)分別在ZT4、ZT0,P/T 為3.41。各組不同時(shí)間點(diǎn)血漿AngⅡ節(jié)律有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P=0.018),見(jiàn)圖1B。
將圖1A 與圖1B結(jié)合看,腎局部AngⅡ節(jié)律與血漿中不一致:假手術(shù)組與模型組的腎組織及血漿AngⅡ在各時(shí)間點(diǎn)的波動(dòng)趨勢(shì)相反,而且AngⅡ在腎局部的水平明顯高于血漿。
圖1 各組腎組織(A)及血漿(B)AngⅡ節(jié)律Fig.1 Daily profile of AngⅡin the kidney(A)and plasma(B)in each group
見(jiàn)圖2。假手術(shù)組合模型組bmal1 mRNA 谷峰值點(diǎn)相同,模型組per2 mRNA 峰值時(shí)間提前4 h;BM 組bmal1 mRNA 峰值時(shí)間后移4h;dbp 及per2mRNA 近日節(jié)律消失。具體描述見(jiàn)以往報(bào)道[6-7]。
BMAL1蛋白假手術(shù)組谷值(T)時(shí)間在ZT0時(shí),隨后表達(dá)逐漸增強(qiáng),在ZT12達(dá)到峰值(P),P/T為2.88;而模型組峰值時(shí)間提前到ZT8,振幅增強(qiáng),P/T 為38.34;BM 組表達(dá)趨勢(shì)及谷、峰值時(shí)間與假手術(shù)組相似,P/T 為3.16,各組不同時(shí)點(diǎn)間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。DBP 蛋白假手術(shù)組自ZT0到ZT16時(shí)均在較高水平表達(dá),谷、峰值時(shí)間分別在ZT20及ZT8 時(shí),P/T 為12.29;模型組谷、峰值時(shí)間與假手術(shù)組相同,但表達(dá)水平增強(qiáng),振幅明顯增加,P/T 為103.2;與假手術(shù)組比較有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.028);BM 組DBP 表達(dá)趨勢(shì)及谷、峰值時(shí)間也與假手術(shù)組相似,P/T 為21.23,各組不同時(shí)點(diǎn)間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。PER2假手術(shù)組谷、峰值時(shí)間分別在ZT16、ZT4,P/T 為8.79,模型組谷、峰值時(shí)間均前移4h,分別在ZT12及ZT0,P/T 為9.33,而B(niǎo)M 組PER2谷、峰值時(shí)間與模型組相似,P/T 為11.28;各組不同時(shí)點(diǎn)間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖3。
圖2 各組時(shí)鐘基因bmal1、dbp及per2mRNA 表達(dá)節(jié)律(real-time PCR)Fig.2 Daily profile of bmal1,dbp and per2mRNA expression in the kidney in each group(real-time PCR)
圖3 各組時(shí)鐘蛋白BMAL1、DBP及PER2的表達(dá)節(jié)律(Western blot)Fig.3 Daily profile of the expression of BMAL1,DBP and PER2proteins in the kidney in each group(Western blot)
各組腎AngⅡ呈現(xiàn)近日節(jié)律,BM 組腎AngⅡ峰值位相較假手術(shù)和模型組后移約6h;假手術(shù)和模型組時(shí)鐘基因per2、bmal1mRNA 表達(dá)呈近日節(jié)律,BM 組per2 mRNA 近日節(jié)律消失,bmal1峰值位相后移4h;3組dbp mRNA 節(jié)律不符合余弦規(guī)律;3組時(shí)鐘蛋白PER2、DBP、BMAL1均表現(xiàn)出近日節(jié)律,其中模型組DBP、BMAL1 振幅增強(qiáng),峰值位相各組也有區(qū)別,見(jiàn)表3。
表3 各組大鼠腎時(shí)鐘基因mRNA 24h表達(dá)節(jié)律的余弦分析Table 3 Cosinor analysis of 24-h(huán) pattern of clock gene mRNA and protein expression in each group
續(xù)表
將血漿及腎組織中AngⅡ與組織中per2、bmal1及時(shí)鐘基因蛋白PER2、BMAL1、DBP 行Spearman相關(guān)性檢驗(yàn),結(jié)果發(fā)現(xiàn)假手術(shù)組和模型組腎組織AngⅡ與腎時(shí)鐘基因bmal1呈正相關(guān),rs=0.532,P=0.015,其余指標(biāo)無(wú)相關(guān)性。
腎組織中時(shí)鐘基因的表達(dá)呈近日節(jié)律,蛋白質(zhì)表達(dá)的峰值時(shí)間比mRNA 滯后4~8h。腎組織中時(shí)鐘基因蛋白的近日節(jié)律與腎臟生理功能的近日節(jié)律性比較吻合:如腎小球?yàn)V過(guò)率(GFR)及腎血流量的峰值在17∶00,谷值時(shí)間在5∶00[8-9],與BMAL1及DBP的谷峰值時(shí)間較為吻合;腎臟電解質(zhì)排泄(如尿鉀、尿鈉排泄)白天(8∶00~16∶00)明顯高于夜晚[10],這與PER2 及DBP 的表達(dá)水平及時(shí)間也比較吻合。我們的結(jié)果說(shuō)明腎臟生理功能的近日節(jié)律性是受腎內(nèi)在的時(shí)鐘基因控制的。
5/6腎切除大鼠時(shí)鐘基因及其蛋白質(zhì)表達(dá)節(jié)律及水平發(fā)生改變。在蛋白質(zhì)水平,5/6 腎切除大鼠PER2 的谷、峰值時(shí)間均提前4h,而B(niǎo)MAL1 及DBP的振幅明顯增加。慢性腎衰時(shí)腎臟功能表現(xiàn)出的異常節(jié)律與時(shí)鐘基因及其蛋白質(zhì)的近日節(jié)律及表達(dá)水平發(fā)生變化有關(guān)。國(guó)外學(xué)者證實(shí)clock基因敲除小鼠或dbp/hlf/tef缺乏小鼠在涉及水、鈉平衡的關(guān)鍵性調(diào)節(jié)因子如血管加壓素V2受體、水通道-2、水通道-4等的表達(dá)發(fā)生改變,相應(yīng)地表現(xiàn)出糖尿病性尿崩癥、鈉排泄失調(diào)及低血壓等[11]。而涉及電解質(zhì)及酸堿平衡的關(guān)鍵NHE3 是直接受腎內(nèi)clock:bmal1 異質(zhì)二聚體調(diào)節(jié)的時(shí)鐘控制基因,在CRY1/2(-/-)小鼠NHE3 近日節(jié)律表達(dá)被阻斷[12]。
以往的研究證實(shí),循環(huán)RAAS 存在近日節(jié)律[13-14]。本研究證實(shí),腎組織AngⅡ存在近日節(jié)律,而且腎AngⅡ節(jié)律與循環(huán)節(jié)律不相同,假手術(shù)及模型組血漿及腎局部AngⅡ的谷峰趨勢(shì)相反。苯那普利治療后血漿及腎組織中AngⅡ水平明顯下降,說(shuō)明ACEI藥物對(duì)循環(huán)及組織中AngⅡ水平均有明顯抑制作用,并改變了其表達(dá)節(jié)律性。
腎局部AngⅡ與腎臟近日節(jié)律系統(tǒng)之間有相關(guān)性。中樞性時(shí)鐘基因與外周組織時(shí)鐘基因的分子學(xué)機(jī)制相同,但是授時(shí)因子不同。中樞節(jié)律系統(tǒng)(SCN)的授時(shí)因子是光線,而外周器官節(jié)律器的授時(shí)因子是神經(jīng)內(nèi)分泌因子[15-16]。用原代細(xì)胞培養(yǎng)體系,Nonaka等[5]已證實(shí)AngⅡ是血管平滑肌細(xì)胞內(nèi)近日節(jié)律器的授時(shí)因子,另有一些研究提示AngⅡ是通過(guò)血管緊張素1型或2型受體(AT1/2-R)影響中樞或外周組織近日節(jié)律系統(tǒng)[3-4]。本文用在體動(dòng)物研究循環(huán)及腎組織局部AngⅡ與腎臟時(shí)鐘基因表達(dá)的關(guān)系。結(jié)果發(fā)現(xiàn),循環(huán)AngⅡ水平及節(jié)律與腎組織時(shí)鐘基因bmal1、per2 及dbp 及其蛋白BMAL1、PER2、DBP之間無(wú)關(guān);而腎局部AngⅡ水平及節(jié)律與bmal1 mRNA 表達(dá)水平及節(jié)律呈正相關(guān):腎組織AngⅡ及bmal1 mRNA 表達(dá)趨勢(shì)及其谷、峰值時(shí)間均一致。用苯那普利抑制腎組織AngⅡ水平后,bmal1 的峰值后移。腎組織AngⅡ與per2 mRNA 的表達(dá)趨勢(shì)相反,但是其峰值時(shí)間與per2mRNA 谷值時(shí)間相差4h,提示兩者之間有一定關(guān)聯(lián)。我們的結(jié)果提示腎局部AngⅡ與腎臟近日節(jié)律系統(tǒng)間的相關(guān)性,而循環(huán)AngⅡ?qū)δI時(shí)基因影響不大,但腎AngⅡ與近日節(jié)律系統(tǒng)之間的因果關(guān)系還不清楚。我們猜測(cè)5/6腎切除大鼠腎組織中異常的AngⅡ節(jié)律及水平作為內(nèi)部授時(shí)因子通過(guò)AT1/2型受體影響腎組織近日節(jié)律系統(tǒng),而腎近日節(jié)律系統(tǒng)發(fā)生改變后通過(guò)時(shí)鐘控制基因等途徑改變其下游靶基因的近日節(jié)律性,并最終導(dǎo)致腎臟的各項(xiàng)功能發(fā)生變化。
本研究中dbp mRNA 不符合余弦曲線表達(dá)形式。dbp表達(dá)最豐富的組織不是腎臟而是肝臟,而不同組織中時(shí)鐘基因的表達(dá)節(jié)律及水平會(huì)有差別,以后的研究需進(jìn)一步深入。
值得注意的是,我們用苯那普利抑制腎臟AngⅡ水平后發(fā)現(xiàn)腎臟時(shí)鐘基因及時(shí)鐘基因蛋白的表達(dá)節(jié)律及時(shí)相發(fā)生變化,但是mRNA 與蛋白的變化不同:per2及dbp的mRNA 表達(dá)節(jié)律性消失,bmal1的峰值后移4h,近日節(jié)律性仍保持;但是,PER2及DBP蛋白表達(dá)仍維持近日節(jié)律性。我們推測(cè)原因可能有以下幾點(diǎn):bmal1、per2及dbp的轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)還有除AngⅡ外的其他因素參與;腎時(shí)鐘基因系統(tǒng)的調(diào)節(jié)還受中樞神經(jīng)系統(tǒng)[17]及其他內(nèi)分泌因子如糖皮質(zhì)激素[18]以及RAAS 系統(tǒng)其他組分的影響;AngⅡ除是腎時(shí)鐘基因的授時(shí)因子外,其本身表現(xiàn)出的近日節(jié)律性很可能也是時(shí)鐘基因控制基因的產(chǎn)物,從而與時(shí)鐘基因形成反饋環(huán)。對(duì)此我們將進(jìn)一步深入研究。
致謝:感謝武漢大學(xué)生命科學(xué)院鄭凌教授對(duì)本研究的大力幫助;感謝EYE 統(tǒng)計(jì)工作室段凌對(duì)本研究提供的統(tǒng)計(jì)幫助。
[1] Balsalobre A.Clock genes in mammalian peripheral tissues[J].Cell Tissue Res,2002,309(1):193-199.
[2] Liu S,Cai Y,Sothern R B,et al.Chronobiological analysis of circadian patterns in transcription of seven key clock genes in six peripheral tissues in mice[J].Chronobiol Int,2007,24(5):793-820.
[3] HerichováI,Mravec B,Stebelová K,et al.Rhythmic clock gene expression in heart,kidney and some brain nuclei involved in blood pressure control in hypertensive TGR(mREN-2)27rats[J].Mol Cell Biochem,2007,296(1/2):25-34.
[4] Naito Y,Tsujino T,Kawasaki D,et al.Circadian gene expression of clock genes and plasminogen activator inhibitor-1in heart and aorta of spontaneously hypertensive and Wistar-Kyoto rats[J].J Hypertens,2003,21(6):1107-1115.
[5] Nonaka H,Emoto N,Ikeda K,et al.Angiotensin Ⅱinduces circadian gene expression of clock genes in cultured vascular smooth muscle cells[J].Circulation,2001,104(15):1746-1748.
[6] 黃小妹,陳文莉.5/6腎切除大鼠腎組織時(shí)鐘基因的表達(dá)[J].華中科技大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2012,41(1):80-83.
[7] 黃小妹,陳文莉,丁國(guó)華,等.苯那普利對(duì)5/6腎切除大鼠腎組織時(shí)鐘基因表達(dá)的影響[J].中華腎臟病雜志,2012,28(4):327-328.
[8] Wesson L G.Diurnal circadian rhythms of renal function and electrolyte excretion in heart failure[J].Int J Chronobiol,1979,6(2):109-117.
[9] Wesson L G.Diurnal circadian rhythms of electrolyte excretion and filtration rate in end-stage renal disease[J].Nephron,1980,26(5):211-214.
[10] Cohn C,Webb L,Joseph D.Diurnal rhythms in urinary electrolyte excretions by the rat:Influence of feeding habits[J].Life Sci I,1970,9(14):803-809.
[11] Zuber A M,Centeno G,Pradervand S,et al.Molecular clock is involved in predictive circadian adjustment of renal function[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2009,106(38):16523-16528.
[12] Saifur Rohman M,Emoto N,Nonaka H,et al.Circadian clock genes directly regulate expression of the Na(+)/H(+)exchanger NHE3in the kidney[J].Kidney Int,2005,67(4):1410-1419.
[13] Portaluppi F,Bagni B,degli Uberti E,et al.Circadian rhythms of atrial natriuretic peptide,renin,aldosterone,cortisol,blood pressure and heart rate in normal and hypertensive subjects[J].J Hypertens,1990,8(1):85-95.
[14] Brandenberger G,F(xiàn)ollenius M,Goichot B,et al.Twenty-fourhour profis of plasma renin activity in relation to the sleepwake cycle[J].J Hypertens,1994,12(3):277-283.
[15] Mahoney C E,Brewer D,Costello M K,et al.Lateralization of the central circadian pacemaker output:a test of neural control of peripheral oscillator phase[J].Am J Physiol,2010,299(3):R751-R761.
[16] Durgan D J,Hotze M A,Tomlin T M,et al.The intrinsic circadian clock within the cardiomyocyte[J].Am J Physiol,2005,289(4):H1530-H1541.
[17] Eleswarapu S,Jiang H.Growth hormone regulates the expression of hepatocyte nuclear factor-3gamma and other liver-enriched transcription factors in the bovine liver[J].J Endocrinol,2005,184(1):95-105.
[18] Balsalobre A,Brown S A,Marcacci L,et al.Resetting of circadian time in peripheral tissues by glucocorticoid signaling[J].Science,2000,29;289(5488):2344-2347.