王 玨， 黃偉聰， 鄭亮承， 孫成超， 鄭 哲

(1溫州醫(yī)學(xué)院附屬第一醫(yī)院心胸外科，浙江 溫州325000;2阜外心血管病醫(yī)院外科，北京100037)

心肌梗死是危害人類(lèi)健康、造成心源性死亡的主要因素之一，心肌梗死過(guò)程中心肌細(xì)胞缺血缺氧會(huì)造成細(xì)胞不可逆轉(zhuǎn)的死亡或凋亡，進(jìn)而引起心功能不全［1］。心肌細(xì)胞凋亡在心梗后心臟重塑及心力衰竭的病理生理過(guò)程中扮演了重要角色，減少心肌細(xì)胞凋亡能改善心梗后心功能，改善心臟重塑過(guò)程［2］。MicroRNA(miRNA)在機(jī)體內(nèi)主要通過(guò)抑制mRNA 轉(zhuǎn)錄或促mRNA 降解來(lái)行使負(fù)向調(diào)控基因表達(dá)的功能，參與機(jī)體各種疾病的發(fā)生發(fā)展過(guò)程［3］。研究發(fā)現(xiàn)在心臟中miRNA 能夠調(diào)控各種心臟疾病的病理生理過(guò)程［4］。MicroRNA-24(miR-24)是一種心臟富集的miRNA，有報(bào)道顯示抑制miR-24 能夠誘導(dǎo)視網(wǎng)膜細(xì)胞的凋亡水平［5］，然而相關(guān)于miR-24 在心梗后的變化及其作用機(jī)制國(guó)內(nèi)外鮮有報(bào)道。本研究旨在觀察miR-24 對(duì)于缺血缺氧條件下心肌細(xì)胞凋亡水平的調(diào)節(jié)，探討miR-24 對(duì)心肌梗死后心功能及心肌細(xì)胞凋亡水平的影響。

材 料 和 方 法

1 材料

1.1 動(dòng)物 本實(shí)驗(yàn)所使用的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物為12 周齡，25 ～30 g 的C57BL/6 雄性小鼠用于心肌梗死模型的制作;出生后1 ～3 d SPF 級(jí)Sprague-Dawley(SD)大鼠乳鼠用于獲得原代心肌細(xì)胞。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物均購(gòu)自北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。所有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)均得到北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院阜外心血管病醫(yī)院動(dòng)物委員會(huì)的批準(zhǔn)，所有操作均按照《北京實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理?xiàng)l理(1996)》的相關(guān)規(guī)定進(jìn)行。

1.2 主要試劑和儀器 細(xì)胞轉(zhuǎn)染的miRNA 前體Pre-miRTMmiR-24 Precursor 或抑制劑Anti-miRTMmiR-24 Inhibitors，及轉(zhuǎn)染試劑脂質(zhì)體siPORT NeoFX Transfection Agent 均由ABI 合成;組織轉(zhuǎn)染miRNA慢病毒由上海吉?jiǎng)P生物有限公司合成;qRT-PCR 試劑Power SYBR green PCR master mix、TaqMan Universal PCR Mix、TaqMan microRNA Assay 均購(gòu)自ABI;MMLV 逆轉(zhuǎn)錄酶、Caspase-Glo? 3/7 Assay 購(gòu)自Promega，TUNEL 染色試劑盒(Roche)，Genbox 厭氧產(chǎn)氣包(Biomerieux)，DAPI 細(xì)胞核染液(碧云天生物技術(shù)研究所);小動(dòng)物超聲心動(dòng)圖儀(Visualsonics)，12 MHz 頻率超聲探頭(Philips);小動(dòng)物呼吸機(jī)(Harvard Apparatus);倒置相差/熒光顯微鏡(Olympus);ABI-7300 熒光實(shí)時(shí)定量PCR 儀(ABI);CO2恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱(Napco 5410-220)。

2 方法

2. 1 小鼠心肌梗死模型的制備及轉(zhuǎn)染 雄性C57BL/6 小鼠25 ～30 g 用2%水合氯醛(100 mg/kg)腹腔注射麻醉。直視下氣管切開(kāi)，小動(dòng)物呼吸機(jī)輔助呼吸，潮氣量7 ～8 mL，呼吸頻率每分鐘120 次，呼吸比1∶2。左第4 肋間入胸，識(shí)別前降支走行范圍，7/0 滑線結(jié)扎前降支，當(dāng)左心室前壁部分顏色轉(zhuǎn)為蒼白且出現(xiàn)心電圖示波為心肌梗死表現(xiàn)時(shí)確認(rèn)本模型制作成功。轉(zhuǎn)染用慢病毒由上海吉?jiǎng)P生物有限公司合成，慢病毒構(gòu)建方法參見(jiàn)參考文獻(xiàn)［6］，小鼠心梗模型隨機(jī)分為假手術(shù)組、空載體組(攜帶GFP 的慢病毒空載體以4 ×107TU 的病毒數(shù)進(jìn)行心肌組織局部注射轉(zhuǎn)染，n=53)、miR-24 轉(zhuǎn)染組(攜帶miR-24 的慢病毒，以4 ×107TU 的病毒數(shù)進(jìn)行心肌組織局部注射，n=35)及單純心肌梗死組(n=21)。

2.2 小動(dòng)物心臟超聲心動(dòng)圖檢測(cè) 心梗后2 周，異氟醚吸入麻醉動(dòng)物，取仰臥位。使用Vevo 770 High-Resolution Imaging System 超聲儀，探頭頻率為RMV 704(40 MHz )。取左室乳頭肌水平二維左室短軸切面，記錄左室收縮期末徑及左室舒張期末徑，由超聲心動(dòng)圖電腦自動(dòng)計(jì)算左室射血分?jǐn)?shù)(left ventricular ejection fraction，LVEF)和左室短軸縮短率(left ventricular fractional shortening，LVFS)，取連續(xù)3 個(gè)心動(dòng)周期的平均值。

2.3 乳鼠心肌細(xì)胞的轉(zhuǎn)染及缺血缺氧模型 取新生1 ～3 d SD 大鼠乳鼠，無(wú)菌條件下剔出心臟，去除心房、大血管等結(jié)締組織，加入配置的胰酶心肌細(xì)胞消化液進(jìn)行消化;收集組織消化懸液離心，棄上清，用含10%FBS 的DMEM 培養(yǎng)液重懸細(xì)胞，進(jìn)行心肌細(xì)胞培養(yǎng)，詳細(xì)方法參見(jiàn)參考文獻(xiàn)［7］。按5 ×104/cm2的密度接種至細(xì)胞培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)板。用siPORT轉(zhuǎn)染miRNA 到心肌細(xì)胞，轉(zhuǎn)染后12 h 進(jìn)行缺血缺氧處理［7］，轉(zhuǎn)染方法按照ABI 公司實(shí)驗(yàn)操作流程進(jìn)行，轉(zhuǎn)染終濃度為30 μmol/L。心肌細(xì)胞缺血缺氧方法，將心肌細(xì)胞培養(yǎng)液置換為無(wú)血清DMEM 培養(yǎng)基，并將培養(yǎng)皿放于缺氧罐內(nèi)，在缺氧罐中放置Genbox 厭氧產(chǎn)氣包，制造缺血缺氧模型，最后將缺氧罐放置于37 ℃5% CO2培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)，缺血缺氧后48 h收集細(xì)胞進(jìn)行下一步的實(shí)驗(yàn)。miRNA 轉(zhuǎn)染心臟心肌細(xì)胞功能研究實(shí)驗(yàn)分組:正常未處理組(培養(yǎng)條件同處理組)、miRNA 轉(zhuǎn)染對(duì)照組(30 μmol/L)和miR-24前體或抑制劑轉(zhuǎn)染組(30 μmol/L)。

3 實(shí)驗(yàn)指標(biāo)的檢測(cè)

3.1 心肌組織Masson 染色病理學(xué)檢測(cè) 石蠟切片常規(guī)脫蠟入水，雙蒸水洗。蒸餾水沖洗干凈入Ⅰ液染2 min;再次蒸餾水流水沖洗干凈，入II 液染15 min;液染5 min(苯胺藍(lán)2.5 g，冰乙酸2 mL，蒸餾水100 mL)。1%冰乙酸溶液浸洗5 min。梯度乙醇脫水，入二甲苯，中性樹(shù)脂封片。

3.2 心肌細(xì)胞caspase-3/7 活性測(cè)定 培養(yǎng)的心肌細(xì)胞約為4 ×107/L，96 孔板，待測(cè)各孔添加100 μL細(xì)胞懸液。將caspase-Glo 試劑按照1∶1 原則加入各孔中。300 ～500 r/min 的轉(zhuǎn)速輕柔混勻30 秒，室溫(18 ～22 ℃)孵育2 h。孵育后的樣品板放入VeritasTM發(fā)光檢測(cè)儀中，檢測(cè)每個(gè)樣品的熒光值，進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。

3.3 TUNEL 染色石蠟包埋組織切片檢測(cè) 常規(guī)脫蠟處理組織切片，梯度乙醇浸洗，滴加蛋白酶K 溶液，室溫孵育。滴加100 μL 1 ×TdT 平衡緩沖液，室溫孵育10 ～30 min。在每個(gè)樣本上滴加60 μL TdT標(biāo)記反應(yīng)混合物。封口膜覆蓋樣本。于37 ℃孵育60 ～90 min。465 ～495 nm 波長(zhǎng)綠色熒光激發(fā)并對(duì)被標(biāo)記的凋亡細(xì)胞進(jìn)行分析。

3.4 實(shí)時(shí)定量PCR miRNA 檢測(cè) 以心肌梗死邊帶為標(biāo)志，區(qū)分心梗區(qū)、心梗周邊區(qū)及遠(yuǎn)心梗區(qū)［8］，抽提組織RNA 后，利用TaqMan MicroRNA Assay Kit 中的特異性莖環(huán)逆轉(zhuǎn)錄引物和TaqMan MicroRNA Reverse Transcript Kit 對(duì)單種類(lèi)型的miRNA 進(jìn)行特異性的逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)，合成相應(yīng)的miRNA-莖環(huán)引物cDNA。利用TaqMan MicroRNA Assay Kit 中的TaqMan探針和miRNA 特異引物進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR 反應(yīng)(TaqMan qPCR)，檢測(cè)miRNA 表達(dá)水平。以U6 snRNA 為內(nèi)參，反應(yīng)體系為20 μL，2-ΔΔCt方法計(jì)算目標(biāo)miRNA 的相對(duì)表達(dá)水平。定量反應(yīng)條件為95 ℃10 min，擴(kuò)增1 個(gè)循環(huán)，95 ℃15 s，擴(kuò)增40 個(gè)循環(huán)，62℃1 min 擴(kuò)增40 個(gè)循環(huán)，在每個(gè)循環(huán)的62 ℃時(shí)測(cè)定熒光。

3.5 表達(dá)譜芯片檢測(cè) 心肌細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-24 后表達(dá)譜芯片檢測(cè)由北京博奧生物有限公司完成，使用Affymetrix 生物芯片檢測(cè)技術(shù)，分別對(duì)miR-24 過(guò)表達(dá)轉(zhuǎn)染組及對(duì)照組進(jìn)行檢測(cè)，每組進(jìn)行2 次實(shí)驗(yàn)，具體方法按照CapitalBio 公司實(shí)驗(yàn)操作流程進(jìn)行。差異表達(dá)基因符合以下標(biāo)準(zhǔn):(1)符合表達(dá)基因的判定標(biāo)準(zhǔn);(2)兩組間基因點(diǎn)信號(hào)比值＞1.5 或＜0.5。獲得表達(dá)譜芯片結(jié)果后，刪除熒光信號(hào)弱的基因及沒(méi)有基因名稱(chēng)的基因，以1.5 倍標(biāo)準(zhǔn)篩選基因，以TargetScan 6.2 網(wǎng)絡(luò)數(shù)據(jù)庫(kù)為參照進(jìn)行生物信息學(xué)分析(http://www. targetscan. org/)，獲得miR-24 的可能作用靶點(diǎn)。

4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

用SPSS 13.0 統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean ±SD)表示，多組間比較采用單因素方差分析(ANOVA)，組間兩兩比較采用最小顯著差異法(LSD 法)，以P ＜0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

結(jié) 果

1 心梗組織中miR-24 表達(dá)水平的變化

qRT-PCR 檢測(cè)發(fā)現(xiàn)，相對(duì)于假手術(shù)組，心肌梗死區(qū)及心肌梗死周邊區(qū)的miR-24 表達(dá)量明顯下調(diào)，這種下調(diào)在1 周左右達(dá)高峰(P ＜0.01)，在2 周時(shí)與假手術(shù)組比較仍有顯著差異(P ＜0.01)，在4 周左右恢復(fù)到假手術(shù)組水平，見(jiàn)圖1。

Figure 1. miR-24 was down-regulated in different areas of the hearts after MI. miRNAs were isolated in different areas of the infracted heart and sham-operated hearts 1，2，and 4 weeks after MI. qRT-PCR was performed to determine the level of miR-24. IA:infarct area;BA:border area. Mean ± SD. n =3. ＊＊P ＜0.01 vs sham group.圖1 小鼠心梗后局部組織miR-24 表達(dá)水平降低

2 miR-24 轉(zhuǎn)染改善心梗后心功能

構(gòu)建miR-24 慢病毒，心肌內(nèi)局部注射過(guò)表達(dá)miR-24，轉(zhuǎn)染慢病毒后3 d，用qRT-PCR 方法檢測(cè)轉(zhuǎn)染局部miR-24 表達(dá)水平，結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染miR-24 慢病毒后局部miR-24 表達(dá)水平較對(duì)照組升高(3. 98 ±0.50)倍(P ＜0.01)，見(jiàn)圖2。超聲心動(dòng)圖顯示，轉(zhuǎn)染miR-24 能顯著改善心梗后2 周小鼠心功能，心梗模型各組心功能較正常假手術(shù)組有明顯減低(P ＜0.01);miR-24 轉(zhuǎn)染組(LV-miR-24)與空白慢病毒轉(zhuǎn)染組(LV-GFP)比較，LVEF 和LVFS 明顯升高(P ＜0.05)，miR-24 轉(zhuǎn)染組左室收縮末內(nèi)徑較空白慢病毒轉(zhuǎn)染組下降(P ＜0.05)，而miR-24 轉(zhuǎn)染組左室舒張末內(nèi)徑與空白慢病毒轉(zhuǎn)染組間無(wú)明顯差異(P ＞0.05)，見(jiàn)表1。

Figure 2. Expression of miR-24 in vivo and in vitro detected by qRT-PCR. A:cardiomyocytes (in vitro);B:border area (in vivo).Mean±SD. n=3. ＊＊P ＜0.01 vs control or LV-GFP.圖2 組織及細(xì)胞水平轉(zhuǎn)染miR-24 的表達(dá)情況

表1 miR-24 改善心梗后心功能Table 1. miR-24 improved heart functions after MI (mean±SD.n=9)

3 miR-24 轉(zhuǎn)染減少心梗面積

以上述攜帶miR-24 慢病毒轉(zhuǎn)染后的心梗模型，用Masson 染色方法檢測(cè)miR-24 轉(zhuǎn)染組及對(duì)照組心梗面積，結(jié)果發(fā)現(xiàn)miR-24 轉(zhuǎn)染能減少心梗2 周后心梗面積36.9%(P ＜0.01)，并且轉(zhuǎn)染miR-24 后小鼠心梗區(qū)域的瘢痕組織明顯增厚，局部膨出減少，見(jiàn)圖3。

Figure 3. Lentiviral-mediated miR-24 transfection in vivo results in reduced scar formation after MI (Masson's trichrome staining，scale bar=1 mm). LV-GFP:lentiviral-GFP;LV-miR-24:lentiviral-miR-24.Mean±SD.n=6. ＊＊P ＜0.01 vs model.圖3 miR-24 轉(zhuǎn)染減少心梗后心梗面積

4 miR-24 轉(zhuǎn)染減少心梗區(qū)域細(xì)胞凋亡

心梗模型組織局部轉(zhuǎn)染miR-24，于心梗后1 周，使用TUNEL 組織染色檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況，結(jié)果提示局部轉(zhuǎn)染miR-24 能明顯減少TUNEL 染色陽(yáng)性細(xì)胞，抑制局部組織細(xì)胞凋亡，見(jiàn)圖4。

Figure 4. miR-24 decreased cell apoptosis in MI model (TUNEL staining). Upper figures:bar =100 μm;green indicates TUNEL positive cells，white arrows denote TUNEL positive areas. Lower figures:bar =50 μm;brown indicates TUNEL positive cells.圖4 miR-24 轉(zhuǎn)染減少心梗區(qū)域凋亡細(xì)胞數(shù)量

5 心肌細(xì)胞轉(zhuǎn)染miR-24 減少缺血缺氧造成的心肌細(xì)胞凋亡

對(duì)乳鼠心肌細(xì)胞應(yīng)用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染pre-miR-24 前體或anti-miR-24 抑制劑，qRT-PCR 檢測(cè)心肌細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率，結(jié)果提示miR-24 前體能將心肌細(xì)胞miR-24表達(dá)水平升高到(12.2 ±1.3)倍(P ＜0.01)，而miR-24 抑制劑則能將心肌細(xì)胞miR-24 表達(dá)水平降低到(29 ±4)%(P ＜0.01)，見(jiàn)圖2。將轉(zhuǎn)染miR-24 后心肌細(xì)胞進(jìn)行缺血缺氧處理，結(jié)果提示在心肌細(xì)胞過(guò)表達(dá)miR-24 能減少缺血缺氧誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡，較對(duì)照組有顯著差異(P ＜0.01)，而轉(zhuǎn)染miR-24 抑制劑則輕度增加心肌細(xì)胞在缺血缺氧條件下的凋亡(P ＜0.05)，見(jiàn)圖5。

Figure 5. miR-24 inhibited cardiomyocyte apoptosis induced by hypoxia and serum deprivation. Cardiomyocytes transfected with pre-miR-24 mimic or anti-miR-24 inhibitor were treated with hypoxia and serum deprivation for 48 h. Caspase-3 and-7 activity was assayed by Caspase-Glo luminescence assay.NC-mim:negative mimic control;NC-inh:negative inhibitor control. Mean ±SD.n=9. ＊＊P ＜0.01 vs NC-min;#P ＜0.05 vs NC-inh.圖5 miR-24 抑制缺血缺氧造成的心肌細(xì)胞凋亡

6 表達(dá)譜芯片檢測(cè)miR-24 作用靶點(diǎn)

為明確miR-24 調(diào)控心肌細(xì)胞凋亡的具體作用靶位點(diǎn)，通過(guò)表達(dá)譜芯片檢測(cè)miR-24 轉(zhuǎn)染組及對(duì)照組心肌細(xì)胞mRNA 表達(dá)水平的差異。結(jié)果提示miR-24 轉(zhuǎn)染組相對(duì)對(duì)照組有49 個(gè)基因的表達(dá)水平達(dá)到1.5 倍以上升高，216 個(gè)基因表達(dá)水平0.5 倍以上降低。通過(guò)對(duì)miRNA 靶點(diǎn)數(shù)據(jù)庫(kù)TargetScan 的生物信息學(xué)分析，發(fā)現(xiàn)miR-24 的作用靶點(diǎn)中凋亡相關(guān)基因BCL2L11、ANK3 和SGPL1 的表達(dá)水平均下降，并且這3 個(gè)基因具有與miR-24 的保守結(jié)合位點(diǎn)，見(jiàn)圖6。

討 論

心肌細(xì)胞缺血缺氧造成的心肌細(xì)胞凋亡是心肌梗死后心功能不全，心衰的關(guān)鍵作用因素，如何減少心肌細(xì)胞在缺血缺氧條件下的凋亡成為現(xiàn)今心肌梗死研究的關(guān)鍵。本實(shí)驗(yàn)以小鼠心肌梗死模型為體內(nèi)研究對(duì)象，以乳鼠心肌細(xì)胞缺血缺氧模型為體外研究對(duì)象，來(lái)研究miR-24 對(duì)心肌細(xì)胞缺血缺氧后凋亡水平的調(diào)控作用，并對(duì)其可能作用靶位點(diǎn)進(jìn)行檢測(cè)和分析?，F(xiàn)今多種細(xì)胞被使用來(lái)進(jìn)行心肌細(xì)胞凋亡水平的研究，包括大鼠H9c2 細(xì)胞系、大鼠乳鼠原代細(xì)胞及小鼠心肌細(xì)胞，而大鼠乳鼠心肌細(xì)胞又以其收集培養(yǎng)技術(shù)的成熟穩(wěn)定被廣泛采用，而國(guó)內(nèi)外相關(guān)心肌組織及細(xì)胞實(shí)驗(yàn)也大都采用小鼠心臟模型加大鼠乳鼠心肌細(xì)胞原代模型進(jìn)行檢測(cè)［9］。

近年來(lái)的研究發(fā)現(xiàn)，miRNAs 作為一種轉(zhuǎn)錄后調(diào)控因子，能夠同時(shí)靶向作用于多個(gè)不同通路中相關(guān)蛋白質(zhì)的信使RNA，從轉(zhuǎn)錄水平或轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)基因表達(dá)［10］，進(jìn)而從整體水平實(shí)現(xiàn)對(duì)細(xì)胞內(nèi)多種因子的表達(dá)乃至多條信號(hào)通路的“網(wǎng)狀”調(diào)控［11］。在心臟中miRNA 也被發(fā)現(xiàn)能調(diào)節(jié)心肌各種病理生理過(guò)程，包括心臟重塑、心臟發(fā)育、心肌纖維化、血管再生及心肌細(xì)胞凋亡［4，12］。現(xiàn)今已發(fā)現(xiàn)miR-499 能通過(guò)P53 通路作用于心肌細(xì)胞缺血再灌注損傷導(dǎo)致的凋亡，miR-21 通過(guò)抑制過(guò)氧化氫來(lái)調(diào)控心肌細(xì)胞死亡和凋亡［13］。本研究發(fā)現(xiàn)miR-24 能通過(guò)減少心肌細(xì)胞在缺血缺氧條件下的凋亡水平來(lái)改善心肌梗死后心臟重塑。miR-24 是一種在心肌組織中高表達(dá)的miRNA，在腫瘤細(xì)胞中，研究表明miR-24 能夠作用于DND1 蛋白，進(jìn)而減少腫瘤細(xì)胞凋亡水平［14］。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)miR-24 在心肌梗死組織中表達(dá)量降低，心梗組織中轉(zhuǎn)染過(guò)表達(dá)miR-24 能夠減少心梗面積，改善心功能，并且在心肌細(xì)胞缺血缺氧模型中過(guò)表達(dá)miR-24 同樣能抑制心肌細(xì)胞凋亡水平。

Figure 6. Possible targets of miR-24. A:hierarchical clustering of 265 mRNAs expressed in pre-miR-24 and control groups. The gene expression levels are represented by using a green-red color scheme，with the green corresponding to lower than median expression levels，the black corresponding to equal to median，and the red corresponding to higher than median expression levels. The scale indicates log10 ratio values. B:predicting putative miR-24 binding sites to apoptosis-regulating genes (potential complementary residues shown in red)by TargetScan.圖6 miR-24 作用于心肌細(xì)胞凋亡的可能靶位點(diǎn)

本實(shí)驗(yàn)采用慢病毒心肌內(nèi)局部注射的方式進(jìn)行轉(zhuǎn)染。許多方法都被使用轉(zhuǎn)染miRNA，比如微環(huán)，腺病毒、寡核苷酸、antagomir 和慢病毒。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染起效快，但相對(duì)維持時(shí)間較短，而慢病毒能穩(wěn)定持續(xù)地表達(dá)miRNA，并能較長(zhǎng)時(shí)間維持表型變化，近期文獻(xiàn)報(bào)道慢病毒心肌內(nèi)直接注射介導(dǎo)基因轉(zhuǎn)染，產(chǎn)生的炎癥和免疫反應(yīng)較低，具有很好的組織相容性，動(dòng)物模型的死亡率沒(méi)有變化［15］。本實(shí)驗(yàn)也發(fā)現(xiàn)慢病毒載體能有效轉(zhuǎn)染miRNA，并引起的毒副作用較小。

表達(dá)譜芯片由于其高靈敏度、高通量等優(yōu)點(diǎn)被廣泛使用檢測(cè)基因表達(dá)水平的變化，本研究通過(guò)對(duì)miR-24 作用靶點(diǎn)的表達(dá)譜芯片檢測(cè)及生物信息學(xué)分析，發(fā)現(xiàn)miR-24 可引起心肌細(xì)胞大量基因表達(dá)的變化，而相關(guān)凋亡調(diào)控，其可能作用于3 個(gè)凋亡相關(guān)基因BCL2L11、ANK3 和SGPL1。其中bcl-2 基因已被證明與細(xì)胞凋亡水平相關(guān)［16］。由于miRNA 作用靶點(diǎn)的多樣性，miR-24 可能通過(guò)一個(gè)或多個(gè)靶點(diǎn)基因作用于心肌細(xì)胞凋亡過(guò)程。

miRNA 不同于普通的蛋白受體阻滯劑，它能在整體上調(diào)控疾病進(jìn)程，能成為良好的治療作用靶點(diǎn)，現(xiàn)已有部分臨床及臨床前實(shí)驗(yàn)開(kāi)展，取得了一定的成效。本研究發(fā)現(xiàn)miR-24 能作用于心肌細(xì)胞缺血缺氧條件下的凋亡過(guò)程，進(jìn)而改善心梗后心功能，為臨床心梗治療提供了新的治療靶點(diǎn)，也為miRNA 的功能提供了新的作用機(jī)制。

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