張 林,李 敏
腱病和肌腱斷裂是運(yùn)動(dòng)中的一種高發(fā)性運(yùn)動(dòng)系統(tǒng)損傷,鑒于腱器官具有代謝相對(duì)較慢的特性,使得損傷發(fā)生后需要較長(zhǎng)時(shí)間的治療和康復(fù),因此,探討腱病的發(fā)病機(jī)制有著重要的意義。腱病發(fā)生的原因很多,但主要原因?yàn)檫^(guò)度使用所導(dǎo)致的疲勞性損傷,這種過(guò)度使用可能與使用頻率較多或/和肌腱承載過(guò)大有關(guān)。目前的研究由于所獲樣本大多局限于疾病的晚期,而且建立符合腱病病因、產(chǎn)生類(lèi)似于人類(lèi)腱病變化的有效模型較少[1],致使鮮有資料系統(tǒng)探討早期腱病的發(fā)生與發(fā)展,這也是導(dǎo)致有效治療和預(yù)防腱病方法缺乏的主要原因。從現(xiàn)有研究文獻(xiàn)來(lái)看,肌腱疲勞性損傷的早期變化與膠原合成有關(guān)。
膠原是肌腱細(xì)胞外基質(zhì)的主要成分,其中最主要的膠原類(lèi)型為膠原I,約占總膠原的95%,其它少量的膠原有膠原III、V、VI、XII和XIV等,這些膠原的量少但作用復(fù)雜,可能在膠原纖維形成、調(diào)節(jié)膠原直徑和其它周?chē)?xì)胞相互作用等一些過(guò)程中具有一定作用。本文綜述了在運(yùn)動(dòng)負(fù)載及疲勞負(fù)載下肌腱的表達(dá)及影響其表達(dá)的機(jī)理,以探討肌腱疲勞性損傷的分子機(jī)制。
I型前膠原羧基端前肽(PICP)和I型前膠原氨基端前肽(PINP)是I型膠原合成的標(biāo)志物,一些學(xué)者采用微透析技術(shù)研究人體跟腱PICP和PINP的變化。Olesen研究發(fā)現(xiàn),馬拉松運(yùn)動(dòng)員36 km、3 h運(yùn)動(dòng)后即刻,跟腱透液中PICP含量下降,但在72 h后升高[2];經(jīng)過(guò)中等強(qiáng)度訓(xùn)練的男性上坡跑(3%,12 km/h,1 h)后,透析液中PICP也出現(xiàn)類(lèi)似的變化[3],但后者與前者相比 PICP是中等程度的升高,這表明運(yùn)動(dòng)使局部膠原合成影響具有運(yùn)動(dòng)劑量依賴性。采用同位素標(biāo)志技術(shù)可更準(zhǔn)確測(cè)量肌腱中膠原變化,通過(guò)服用標(biāo)記的脯氨酸,隨后采用活檢技術(shù)研究膠原合成速率。健康男性單側(cè)踢腿(67%1RM,35 次/min,1 h)活檢組織,電鏡觀察表明肌腱組織正常,運(yùn)動(dòng)后6 h和24 h膠原合成速率增加,72 h開(kāi)始下降但升高仍顯著[4],但是透析液中的PINP在72 h時(shí)顯著下降,出現(xiàn)了直接和間接指標(biāo)測(cè)試結(jié)果不一致,這有可能因?yàn)榍罢邽檫\(yùn)動(dòng)員,而后者為一般男性,也可能因?yàn)閷?duì)于這些人來(lái)說(shuō)相對(duì)負(fù)荷不同有關(guān)。而且女性進(jìn)行同樣的運(yùn)動(dòng)后PINP未見(jiàn)變化[5],也表明運(yùn)動(dòng)后膠原合成的變化可能依賴于一定的激素水平。
mRNA水平可以反映膠原合成的變化,但也有研究證實(shí)膠原mRNA表達(dá)和蛋白水平的表達(dá)差別很小。(1)動(dòng)物研究:大鼠跑臺(tái)運(yùn)動(dòng)(20 m/min,10%,40 min)后,跟腱前膠原Iα1 1 mRNA表達(dá)無(wú)顯著變化,但前膠原IIIα 11mRNA升高顯著[6];12周運(yùn)動(dòng)后跟腱前膠原Iα11mRNA顯著增加,而前膠原IIIα11mRNA表達(dá)回復(fù)到原來(lái)水平[7],這說(shuō)明跟腱在增加負(fù)載時(shí)會(huì)引起組織產(chǎn)生損傷,引起膠原III表達(dá)增加,組織學(xué)研究也證明此時(shí)出現(xiàn)膠原纖維扭曲和斷裂,而12周長(zhǎng)期運(yùn)動(dòng)后對(duì)這種負(fù)載已產(chǎn)生了適應(yīng)性,膠原III表達(dá)回復(fù),主要承擔(dān)力的膠原I表達(dá)增多,組織學(xué)和力學(xué)研究也證實(shí)了該結(jié)論。這在另外一些研究中[8]也得到證實(shí),即長(zhǎng)期訓(xùn)練后膠原III的表達(dá)會(huì)回復(fù),表明肌腱對(duì)所處的力學(xué)環(huán)境已產(chǎn)生了適應(yīng)。而在有的研究中,大鼠經(jīng)過(guò)運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練后膠原I和膠原III的mRNA表達(dá)未見(jiàn)變化,可能與這些動(dòng)物進(jìn)行的都是自主運(yùn)動(dòng)[9,10],相對(duì)負(fù)荷較小有關(guān)。(2)人體研究:目前有學(xué)者采用活檢技術(shù)研究了人體運(yùn)動(dòng)后肌腱中膠原的mRNA水平。健康年輕個(gè)體單側(cè)伸展運(yùn)動(dòng)(70%1RM,10 次/組,3組), 膠原I和膠原IIImRNA在運(yùn)動(dòng)后4 h顯著下降,但24 h 回復(fù)到原來(lái)水平[11]。Heinemeier等采用Miller[4]研究中同樣的運(yùn)動(dòng)模式,采用活檢技術(shù)研究了運(yùn)動(dòng)后2 h、6 h及26 h組織膠原mRNA水平,但都未見(jiàn)變化[12],這表明Miller等[4]的研究中蛋白水平表達(dá)升高并不是基于轉(zhuǎn)錄水平的提高,只能是翻譯速率的增加,中等強(qiáng)度的踢腿運(yùn)動(dòng)不足以使基因在轉(zhuǎn)錄水平發(fā)生變化。一些腦癱患者,由于經(jīng)常承受長(zhǎng)時(shí)間的機(jī)械負(fù)載,肌腱中的膠原I mRNA水平升高[13]。因此,可能對(duì)于人類(lèi)來(lái)說(shuō),運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)膠原表達(dá)的變化需要更高的運(yùn)動(dòng)負(fù)荷,這也再一次證明了運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)膠原合成和運(yùn)動(dòng)模式、時(shí)間和強(qiáng)度有關(guān)。
目前的研究表明,無(wú)論是采用微透析技術(shù)、同位素標(biāo)記還是PCR技術(shù),肌腱承受較大載荷后產(chǎn)生適應(yīng)性變化是明確的,但研究結(jié)果略有不同,可能的機(jī)制與以下幾種因素有關(guān):(1)肌腱上加載的負(fù)荷大小和頻率不同。負(fù)荷的大小可能在一定程度上影響著肌腱是生理性反應(yīng)還是病理性反應(yīng),因此,運(yùn)動(dòng)負(fù)荷在肌腱損傷過(guò)程中具有重要的作用。(2)不同研究對(duì)象肌腱的疲勞性不同。研究表明肌腱的疲勞性與其承載的載荷是相適應(yīng)的[14],不同疲勞性的肌腱對(duì)負(fù)載的反應(yīng)顯然也是不同的。(3)測(cè)量的方法及部位的不同。雖然在一定程度上mRNA水平高低可以反映膠原合成,但是以蛋白表現(xiàn)還是翻譯的過(guò)程尚不清楚。另外,肌腱組織在不同位置代謝不同[10,15],在不同位置進(jìn)行取樣如活檢的位置可能會(huì)影響研究結(jié)果。此外,由于一些研究中僅從分子角度研究了適應(yīng)性變化,無(wú)法知道運(yùn)動(dòng)后肌腱組織學(xué)或力學(xué)上的變化,故不能確定是否產(chǎn)生了微損傷或修復(fù),而且由于大多研究中的負(fù)載都采用了較大的負(fù)載,所以很難說(shuō)以上這些膠原的合成反應(yīng),是一種生理適應(yīng)性的反應(yīng)還是疲勞亞損傷的反應(yīng)。因此,使用同一研究對(duì)象、同一種研究方法和不同大小的負(fù)荷,來(lái)研究肌腱的過(guò)度使用損傷的發(fā)生機(jī)制就顯得特別重要。
早期研究Birch等[16]發(fā)現(xiàn)老年賽馬淺趾屈肌腱的中間區(qū)域與外周區(qū)域相比具有顯著高的膠原III,這可能和老年馬的中間區(qū)域較外周區(qū)域承載較高有關(guān)。現(xiàn)在一些學(xué)者通過(guò)對(duì)肌腱進(jìn)行不同程度的疲勞負(fù)荷加載,來(lái)分析肌腱疲勞損傷后早期的基因反應(yīng)。Fung[17]研究中發(fā)現(xiàn),相對(duì)于肌腱斷裂,在撕裂肌腱中僅表現(xiàn)為膠原ImRNA的增加,不同的是不同疲勞負(fù)載下[0.6%(低)、1.7% (中)、3.5%(高)]肌腱產(chǎn)生更多的反應(yīng),3種膠原亞型表達(dá)都發(fā)生了變化,但不同疲勞負(fù)載膠原變化不同。該研究發(fā)現(xiàn):(1)肌腱低水平疲勞后1 d和3 d膠原ImRNA下調(diào),而中等水平其沒(méi)有變化,但高水平在負(fù)載后1 d和3 d表達(dá)顯著增加。(2)低水平疲勞負(fù)載和中等水平疲勞負(fù)載,膠原IIImRNA顯著增加,但第3 d時(shí)降到原來(lái)水平;高水平負(fù)載后膠原IIImRNA水平在第1 d時(shí)未見(jiàn)變化,但在第3 d時(shí)增加。(3)膠原VmRNA表現(xiàn)同樣的模式,在低水平和中等水平及高水平疲勞時(shí)逐漸增多,但高水平增加幅度大。
Sun等[18]也比較了不同疲勞載荷下肌腱中膠原的變化,大鼠髕腱分別施加了低周載荷(100次)和高周載荷(7 200次),結(jié)果發(fā)現(xiàn):(1)低周負(fù)載后1 d膠原ImRNA沒(méi)有顯著變化,但在7 d后顯著上調(diào),而高周負(fù)載在7 d后下調(diào)。(2)低周負(fù)載后1 d時(shí)膠原IIImRNA上調(diào)7 d后回復(fù),而高周負(fù)載后膠原IIImRNA一直上調(diào),且高周負(fù)載上調(diào)幅度大于低周負(fù)載。(3)高、低周負(fù)載后均引起膠原VmRNA的上調(diào),但具有周期依賴性。(4)膠原XIImRNA低周載荷較高周載荷上調(diào),髕腱疲勞加載后1 d和7 d顯著不同,具有加載周期依賴性。
通常情況下肌腱中主要為膠原I,膠原III被認(rèn)為是在肌腱愈合早期新合成ECM的主要組分[19],膠原V是在肌腱血管壁和降解的成年肌腱中發(fā)現(xiàn)的[20],而且已有研究認(rèn)為膠原V在調(diào)節(jié)膠原裝配過(guò)程中具有重要的作用[21]。肌腱損傷后膠原III表達(dá)增多,在損傷10 d后達(dá)峰值,保持較穩(wěn)定狀態(tài)到28 d隨后逐漸降到損傷前水平[22]。膠原I在損傷后也增加但很慢,因此,膠原III可能在損傷的早期階段具有重要的作用,而膠原I在后期具有作用。
在低疲勞損傷后膠原I的下調(diào)和膠原III、膠原V的上調(diào)反映了低損傷早期階段的分子反應(yīng)。膠原XII與膠原I和蛋白多糖相互作用,連接了膠原纖維之間和膠原纖維與其它ECM組分之間,可能在維持正常ECM穩(wěn)定中維持組織的組分具有一定的作用。因此,低載下膠原I和膠原XII表達(dá)的上調(diào),可能代表了肌腱肥大適應(yīng)性反應(yīng),膠原III表達(dá)的持續(xù)增加意味著微損傷的積累。
有關(guān)肌腱在機(jī)械負(fù)載下膠原表達(dá)變化的機(jī)制尚不清楚,一些離體和在體研究表明,機(jī)械負(fù)載下膠原合成的增多可能是負(fù)載下一些生長(zhǎng)因子表達(dá)的增多。這些生長(zhǎng)因子包括轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子(TGF-β1)、結(jié)締組織生長(zhǎng)因子(CTGF)、胰島素生長(zhǎng)因子(IGF-I)和白介素-6(IL-6)等。
TGF-β1在調(diào)節(jié)肌腱膠原表達(dá)中具有一定作用,韌帶[23]和髕腱成纖維細(xì)胞負(fù)載誘導(dǎo)產(chǎn)生[24]的膠原I和膠原III,直接依賴于TGF-β1的活性,機(jī)械負(fù)載可以誘導(dǎo)TGF-β1的表達(dá)[25]。健康男性運(yùn)動(dòng)后跟腱TGF-β1水平升高[3],但此研究透析液中TGF-β1的升高可能有一部分來(lái)自于循環(huán)血液;進(jìn)行不同類(lèi)型的運(yùn)動(dòng)4 d后,在最后一次訓(xùn)練后24 h跟腱TGF-β1mRNA水平顯著升高,而且這種升高與膠原表達(dá)上調(diào)相一致[26]。但大鼠12周跑步和力量訓(xùn)練及7周的自主負(fù)載跳躍,TGF-β1mRNA水平未見(jiàn)變化,而且膠原表達(dá)也未見(jiàn)變化[9,10]。Heinemeier等采用Miller[3]研究中同樣的運(yùn)動(dòng)模式,使用活檢技術(shù)研究健康男性,發(fā)現(xiàn)運(yùn)動(dòng)后不僅膠原mRNA水平未見(jiàn)變化,TGF-β1 mRNA水平也未見(jiàn)變化[12]。這些研究表明,TGF-β1對(duì)機(jī)械負(fù)載的反應(yīng)及對(duì)膠原合成的誘導(dǎo),也是受負(fù)載的大小影響的。而在腱病中,TGF-β1的表達(dá)雖然增加,但是TGF-βR1的表達(dá)僅分布于血管,而在基質(zhì)中的分布較少,表明TGF-β1通路可能在腱病發(fā)展中因其受體的缺少而阻斷[27]。也有學(xué)者采用2周注射TGF-β1成功建立了腱病模型[28],因此,TGF的作用可能具有“雙面性”,TGF-β1在疲勞性損傷發(fā)展過(guò)程的作用,還有待進(jìn)一步探討。
CTGF被認(rèn)為在成纖維中TGF-β1誘導(dǎo)膠原合成的下游介質(zhì)[29],但很少有數(shù)據(jù)表明CTGF在肌腱中的作用。一項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn)兔子肌腱細(xì)胞,在80 h積累性低重復(fù)負(fù)載下CTGF陽(yáng)性量增多[30],但使用同樣的模型發(fā)現(xiàn)對(duì)CTGFmRNA水平?jīng)]有影響[31]。同樣,大鼠進(jìn)行4 d抗阻訓(xùn)練后,雖然膠原mRNA水平升高,但沒(méi)有發(fā)現(xiàn)CTGF的表達(dá)出現(xiàn)顯著變化[26],而且大鼠12周跑步和力量訓(xùn)練后CTGFmRNA沒(méi)有變化[9],同樣的運(yùn)動(dòng)模式后不僅膠原mRNA水平未見(jiàn)變化,CTGF的mRNA水平也沒(méi)有變化[12]。這些結(jié)果表明,應(yīng)進(jìn)一步思考CTGF在肌腱負(fù)載后的調(diào)節(jié)作用。
IGF-I是一個(gè)負(fù)載下膠原合成增多的因子。離體研究表明,IGF-I以劑量依賴式方式誘導(dǎo)膠原I的合成[32];而系統(tǒng)補(bǔ)給生長(zhǎng)激素可以同時(shí)誘導(dǎo)IGF-I和膠原的表達(dá)[33]。早期的研究發(fā)現(xiàn)肌腱中IGF-I的出現(xiàn)是由于機(jī)械刺激的誘導(dǎo)[34],增加跖肌腱的負(fù)荷后8 d的IGF-1mRNA表達(dá)增多,與膠原I表達(dá)相一致[35];4 d不同類(lèi)型力量運(yùn)動(dòng)后IGF-IEa和MGFmRNA水平顯著增加[36];但成熟大鼠進(jìn)行12周跑步訓(xùn)練后組織學(xué)顯示未產(chǎn)生病理變化,膠原III和IGF-I基因表達(dá)顯著增加[37],大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)后透析液中IGF-I含量雖然沒(méi)有變化,但I(xiàn)GFBP-I含量增加,意味著其生物效應(yīng)的增加[2]。大鼠跑步訓(xùn)練后約12周開(kāi)始出現(xiàn)腱病,此時(shí)IGFI開(kāi)始顯著增加,IRS-I磷酸化在16周顯著增多,而且和IGF-I具有相關(guān)性[34]。因此,IGF-I可能是肌腱在增加負(fù)載或改變負(fù)載時(shí),發(fā)生適應(yīng)變化或出現(xiàn)病理性變化。
IL-6由成纖維細(xì)胞分泌,參與膠原的代謝。離體研究表明,循環(huán)雙向拉伸15 min可以增加IL-6的分泌,且一直保持到8 h后[38]。長(zhǎng)時(shí)間的跑步運(yùn)動(dòng)跟腱透析液中的IL-6顯著增加,并與膠原合成增加相一致(PINP)[39],而且比血液中高出40倍,比肌肉中高10倍,這表明IL-6可由結(jié)締組織分泌[3]。但在36 km的跑步運(yùn)動(dòng)中,跟腱IL-6沒(méi)有增加,且膠原合成也沒(méi)有增加,這可能與該運(yùn)動(dòng)屬于較大的應(yīng)激,對(duì)于大多數(shù)人來(lái)說(shuō)超過(guò)生理承受范圍,表明IL-6受到運(yùn)動(dòng)負(fù)荷的影響。
大多數(shù)研究認(rèn)為運(yùn)動(dòng)肌腱會(huì)產(chǎn)生適應(yīng)性反應(yīng),上調(diào)膠原I和膠原III的合成,但也有一些不同的研究結(jié)果,主要與相對(duì)運(yùn)動(dòng)負(fù)載的大小有關(guān)。不同疲勞負(fù)載下肌腱產(chǎn)生更多的反應(yīng),膠原亞型表達(dá)不同的變化,具有載荷劑量依賴性。低疲勞水平運(yùn)動(dòng)會(huì)使膠原I合成上調(diào),產(chǎn)生有益力學(xué)環(huán)境的重塑;而高水平的疲勞載荷膠原III表達(dá)持續(xù)升高,意味著肌腱病理性損傷,但這種損傷并不像肌腱撕裂那樣可引起典型的愈合反應(yīng)。一些生長(zhǎng)因子有上調(diào)膠原合成的作用,但在機(jī)械負(fù)載下的上調(diào)是適應(yīng)性反應(yīng)還是病理性反應(yīng),也即它們的雙面性還需要進(jìn)一步的探討。
[1]李敏.腱病動(dòng)物模型研究進(jìn)展[J].現(xiàn)代預(yù)防醫(yī)學(xué),2013,40(3):565-567.
[2]Olesen JL, Heinemeier KM, Gemmer C, et al. (2006). Exercise dependent IGF-I, IGFBPs and type-I collagen changes in human peritendinous connective tissue determined by microdialysis[J].J Appl Physiol. 14.
[3]Heinemeier K, Langberg H, Olesen JL, et al. (2003). Role of TGF-beta1 in relation to exercise-induced type I collagen synthesis in human tendinous tissue[J]. J Appl Physiol, 95(6): 2390-2397.
[4]Miller BF, Olesen JL, Hansen M, Dossing S. (2005). Coordinated collagen and muscle protein synthesis in human patella tendon and quadriceps muscle after exercise[J]. J Physiol., 567(Pt 3):1021-1033.
[5]Miller BF, Hansen M, Olesen JL, et al. (2007). Tendon collagen synthesis at rest and after exercise in women[J]. J Appl Physiol,102(2): 541-546,
[6]李敏,王平,張林.急性跑臺(tái)運(yùn)動(dòng)對(duì)大鼠跟腱膠原合成和I GF—I的影響[J].天津體育學(xué)院學(xué)報(bào),2009,24(4):303-305
[7]李敏,王平,張林.長(zhǎng)期跑臺(tái)運(yùn)動(dòng)對(duì)大鼠跟腱膠原和胰島素生長(zhǎng)因子表達(dá)的影響[J].中國(guó)運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2010,29(1):74-76.
[8]艾進(jìn)偉.強(qiáng)化訓(xùn)練對(duì)跟腱塑形改建影響的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和人群干預(yù)研究[DB/OL].中國(guó)學(xué)位論文全文數(shù)據(jù)庫(kù), 2005.
[9]Legerlotz K, Schjerling P, et al. (2006). The effect of running,strength and vibration strength training on the mechanical, morphological and biochemical properties of the Achilles tendon in rat[J]. J Appl Physiol.12.
[10]Marqueti RC, Heinemeier KM, Durigan JL, et al. (2012). Gene expression in distinct regions of rat tendons in response to jump training combined with anabolic androgenic steroid administration[J]. Eur J Appl Physiol. 112(4):1505-1515.
[11]Sullivan BE, Carroll CC, Jemiolo B, et al. (2009). Effect of acute resistance exercise and sex on human patellar tendon structural and regulatory mRNA expression[J]. J Appl Physiol. 106(2):468-475.
[12]Heinemeier KM, Bjerrum SS, Schjerling P, et al. (2011).Expression of extracellular matrix components and related growth factors in human tendon and muscle after acute exercise[J]. Scand J Med Sci Sports.
[13]Gagliano N, Pelillo F, Chiriva-Internati M, et al. (2009). Expression profiling of genes involved in collagen turnover in tendons from cerebral palsy patients[J]. Connect Tissue Res, 50(3):203-208.
[14]Pike AV, Ker RF, Alexander RM. (2000). The development of fatigue in high- and low-stressed tendons of sheep(Ovis aries)[J].The Journal of Experimental Biology,203(14):2187-2193.
[15]Kongsgaard M, Reitelseder S, Pedersen TG, et al. (2007). Region specific patellar tendon hypertrophy in humans following resistance training[J]. Acta Physiol (Oxf). 191(2):111-121.
[16]Birch HL, Bailey JV, Bailey AJ, et al. (1999). Age-related changes to the molecular and cellular components of equine flexor tendons[J]. Equine Vet J, 31(5):391-396.
[17]Fung DT, Wang VM, Andarawis-Puri N, et al. (2010). Early response to tendon fatigue damage accumulation in a novel in vivo model[J]. J Biomech,43(2):274-279.
[18]Sun HB, Andarawis-Puri N, Li Y, et al. (2010). Cycle-dependent matrix remodeling gene expression response in fatigue-loaded rat patellar tendons[J]. J Orthop Res,28(10):1380-1386.
[19]Eriksen HA, Pajala A, Leppilahti J, et al. (2002). Increased content of type III collagen at the rupture site of human Achilles tendon[J]. J Orthop Res,20(6):1352-1357.
[20]Goncalves-Neto J, Witzel SS, Teodoro WR, et al. (2002). Changes in collagen matrix composition in human posterior tibial tendon dysfunction[J]. Joint Bone Spine, 69(2):189-194.
[21]Wenstrup RJ, Florer JB, Brunskill EW, et al. (2004). Type V collagen controls the initiation of collagen fibril assembly[J]. J Biol Chem, Dec 17;279(51):53331-53337.
[22]Galatz LM, Sandell LJ, Rothermich SY, et al. (2006). Characteristics of the rat supraspinatus tendon during tendon-to-bone healing after acute injury[J]. J Orthop Res,24(3):541-550.
[23]Nakatani T, Marui T, Hitora T, et al. Mechanical stretching force promotes collagen synthesis by cultured cells from human ligamentum flavum via transforming growth factor-beta1[J]. J Orthop Res, 20(6):1380-1386.
[24]Yang G, Crawford RC, Wang JH. et al. (2004). Proliferation and collagen production of human patellar tendon fibroblasts in response to cyclic uniaxial stretching in serum-free conditions[J].J Biomech, 37(10):1543-1550.
[25]Skutek M, van Griensven M, Zeichen J, et al. (2001). Cyclic mechanical stretching modulates secretion pattern of growth factors in human tendon fibroblasts[J]. Eur J Appl Physiol, 86(1):48-52.
[26]Heinemeier KM, Olesen JL, Haddad F, et al . (2007). Expression of collagen and related growth factors in rat tendon and skeletal muscle in response to specific contraction types[J]. J Physiol, 582(Pt 3):1303-1316.
[27]Fenwick SA, Curry V, Harrall RL, et al. (2001). Expression of transforming growth factor-beta isoforms and their receptors in chronic tendinosis[J]. J Anat, 199(Pt 3):231-2340.
[28]Bell R, Li J, Gorski DJ, et al. (2013). Controlled treadmill exercise eliminates chondroid deposits and restores tensile properties in a new murine tendinopathy model[J]. Biomech, 46(3):498-505.
[29]Duncan MR, Frazier KS, Abramson S, et al. (1999). Connective tissue growth factor mediates transforming growth factor betainduced collagen synthesis: down-regulation by cAMP[J]. FASEB J, 13(13):1774-1786.
[30]Yang G, Crawford RC, Wang JH. et al. (2004). Proliferation and collagen production of human patellar tendon fibroblasts in response to cyclic uniaxial stretching in serum-free conditions[J]. J Biomech, 37(10):1543-1550.
[31]Asundi KR, King KB, Rempel DM. Et al. (2008). Evaluation of gene expression through qRT-PCR in cyclically loaded tendons:an in vivo model[J]. Eur J Appl Physiol, 102(3):265-270.
[32]Butt RP, Bishop JE. (1997). Mechanical load enhances the stimulatory effect of serum growth factors on cardiac fibroblast procollagen synthesis[J]. J Mol Cell Cardiol , 29(4):1141-1151.
[33]Doessing S, Heinemeier KM, Holm L, et al. (2010). Growth hormone stimulates the collagen synthesis in human tendon and skeletal muscle without affecting myofibrillar protein synthesis[J]. J Physiol, 588(Pt 2):341-351.
[34]Scott A, Cook JL, Hart DA, et al. (2007). Tenocyte responses to mechanical loading in vivo: a role for local insulin-like growth factor 1 signaling in early tendinosis in rats[J]. Arthritis Rheum,56(3):871-881.
[35]Olesen JL, Heinemeier KM, Haddad F, et al. (2006). Expression of insulin-like growth factor I, insulin-like growth factor binding proteins, and collagen mRNA in mechanically loaded plantaris tendon[J].J Appl Physiol, 101(1):183-188.
[36]Heinemeier KM, Olesen JL, Schjerling P, et al. (2007). Shortterm strength training and the expression of myostatin and IGF-I isoforms in rat muscle and tendon: differential effects of specific contraction types[J]. Appl Physiol, 102(2):573-581.
[37]Heinemeier KM, Skovgaard D, Bayer ML, et al. (2012). Uphill running improves rat Achilles tendon tissue mechanical properties and alters gene expression without inducing pathological changes[J]. J Appl Physiol, 113(5):827-836.
[38]Skutek M, van Griensven M, Zeichen J, et al. (2001). Cyclic mechanical stretching enhances secretion of Interleukin 6 in human tendon fibroblasts[J]. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc, 9(5):322-326.
[39]Langberg H, Olesen JL, Gemmer C, et al. (2002). Substantial elevation of interleukin-6 concentration in peritendinous tissue,in contrast to muscle, following prolonged exercise in humans[J]. J Physiol, 542(Pt 3):985-990.