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菜籽粕混合菌固體發(fā)酵脫毒條件的響應(yīng)面優(yōu)化研究

2013-08-22 06:48:50蘭時(shí)樂(lè)毛小偉肖調(diào)義王紅權(quán)鄧元元
關(guān)鍵詞:硫代菜籽菌種

蘭時(shí)樂(lè) 毛小偉 肖調(diào)義 王紅權(quán) 鄧元元 譚 斌

(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),長(zhǎng)沙410128)

菜籽粕在我國(guó)的年產(chǎn)量在600萬(wàn)t左右[1],是一種潛在營(yíng)養(yǎng)價(jià)值很高的植物蛋白質(zhì)資源[2-3]。由于菜籽粕中含有硫代葡萄糖甙,在芥子酶作用下 產(chǎn) 生 唑 烷 硫 酮(OZT)、異 硫 氰 酸 酯(ITC)等有毒物質(zhì)以及植酸、單寧等抗?fàn)I養(yǎng)因子,其中OZT、ITC等能損害動(dòng)物甲狀腺功能,可能造成牲畜中毒死亡[4]。據(jù)齊廣海等[5]預(yù)測(cè),到2020年中國(guó)蛋白質(zhì)飼料的供需缺口將達(dá)到4 800萬(wàn)t。因此,研究開(kāi)發(fā)綠色、安全的可部分或全部替代魚(yú)粉等的蛋白質(zhì)飼料,無(wú)疑會(huì)對(duì)我國(guó)畜牧業(yè)的發(fā)展起到積極的推動(dòng)作用。為改善菜籽粕的飼用價(jià)值,國(guó)內(nèi)外許多研究工作者進(jìn)行了大量的研究。菜籽粕脫毒的方法主要有物理、化學(xué)及微生物發(fā)酵等脫毒方法[6-7]。由于物理和化學(xué)脫毒法投資大、技術(shù)發(fā)展不成熟或直接影響飼料的適口性等,均難以工業(yè)化生產(chǎn)。采用微生物固態(tài)發(fā)酵對(duì)菜籽粕脫毒并應(yīng)用于動(dòng)物養(yǎng)殖的研究,國(guó)內(nèi)外已有大量報(bào)道[8-12],主要集中在脫毒菌種的篩選和混菌發(fā)酵條件的簡(jiǎn)單優(yōu)化[13-14]?;诓俗哑晒虘B(tài)發(fā)酵脫毒過(guò)程影響因素較多,且將菜籽粕發(fā)酵脫毒后作為畜禽和水產(chǎn)養(yǎng)殖大宗飼料的生產(chǎn)過(guò)程參數(shù)優(yōu)化的報(bào)道較少,因此確定其最優(yōu)發(fā)酵脫毒過(guò)程參數(shù)尤為重要。本研究采用混合菌劑固體發(fā)酵菜籽粕,生產(chǎn)無(wú)毒菜籽粕飼料。采用Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)完成整個(gè)優(yōu)化過(guò)程,確定其最佳發(fā)酵脫毒條件,以降低菜籽粕中硫代葡萄糖苷的含量。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

1.1.1 發(fā)酵菌種

發(fā)酵菌種由本實(shí)驗(yàn)室自行研制,主要由枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)、納豆芽孢桿菌(Bacillus natto)、地衣芽孢桿菌(Bacillus licheniformis)、側(cè)胞芽孢桿菌(Bacillus lateraporus)、丁酸梭狀芽孢桿菌(Clostridium butyricum)及酵母菌(Saccharomyces cerevisiae)組成,各菌種的比例為1∶1∶1∶1∶2∶1。粉末狀固體,活菌數(shù)>1010CFU/g。

1.1.2 培養(yǎng)基

菌種活化培養(yǎng)基(牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基):牛肉膏0.5%,蛋白胨1%,氯化鈉0.5%,瓊脂1.5%~2.0%,pH 7.0~7.2,121℃滅菌25min。

液體種子培養(yǎng)基:牛肉膏0.5%,蛋白胨1%,氯化鈉0.5%,葡萄糖5%,pH 7.0~7.2,45 ℃滅菌25min。

固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基主要成分包括菜籽粕、麥麩、葡萄糖、硫酸銨,由湘北水產(chǎn)飼料有限公司提供。菜籽粕的硫代葡萄糖苷含量為3.74mg/g。

1.2 試驗(yàn)方法

1.2.1 菌種培養(yǎng)

斜面菌種培養(yǎng):將保存于冰箱的斜面菌種接種于新鮮斜面培養(yǎng)基上,37℃恒溫培養(yǎng)36h。

液體菌種培養(yǎng):將培養(yǎng)36h的斜面菌種分別接種于液體菌種培養(yǎng)基中,37℃、150r/min條件下振蕩培養(yǎng)18~24h。

1.2.2 固態(tài)發(fā)酵脫毒培養(yǎng)

按比例稱(chēng)取粉碎至20目的菜籽粕和麥麩10kg于塑料桶中(容積為15L),將葡萄糖和硫酸銨溶于水后加入菜籽粕中,調(diào)節(jié)含水量和pH,按要求接入培養(yǎng)好的液體菌種,攪拌均勻,置于不同溫度下靜置發(fā)酵5d,發(fā)酵過(guò)程中通過(guò)翻料和通風(fēng)控制發(fā)酵溫度。

1.2.3 發(fā)酵條件研究

1.2.3.1 單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì)

以葡萄糖和硫酸銨添加量、料水比、接種量、起始pH、發(fā)酵溫度及發(fā)酵時(shí)間為單因素,考察其對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響。每組試驗(yàn)設(shè)3個(gè)重復(fù)。

分別在固體發(fā)酵培養(yǎng)基中加入0、0.5%、1.0%、1.5%、2.0%和2.5%的葡萄糖,其他條件不變,發(fā)酵結(jié)束后測(cè)定發(fā)酵物料中的硫代葡萄糖苷的含量,并計(jì)算其降解率。

分別在固體發(fā)酵培養(yǎng)基中加入0、0.5%、1.0%、1.5%、2.0%和2.5%的硫酸銨,其他條件不變,發(fā)酵結(jié)束后測(cè)定發(fā)酵物料中的硫代葡萄糖苷的含量,并計(jì)算其降解率。

調(diào)節(jié)起始料水比分別為1.00∶0.35、1.00∶0.40、1.00∶0.45、1.00∶0.50、1.00∶0.55、1.00∶0.60 和1.00∶0.65,其他條件不變,發(fā)酵結(jié)束后測(cè)定發(fā)酵物料中的硫代葡萄糖苷的含量,并計(jì)算其降解率。

用稀酸或稀堿分別調(diào)節(jié)發(fā)酵培養(yǎng)基的pH為5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0和8.5,在 上 述 獲 得 適宜的發(fā)酵條件基礎(chǔ)上,發(fā)酵結(jié)束后測(cè)定發(fā)酵物料中的硫代葡萄糖苷的含量,并計(jì)算其降解率。

分別選擇30、35、40、45、50和55℃作為發(fā)酵溫度,其他條件不變,發(fā)酵結(jié)束后測(cè)定發(fā)酵物料中的硫代葡萄糖苷的含量,并計(jì)算其降解率。

將培養(yǎng)好的固體菌種按3%、4%、5%、6%、7%、8%的接種量接入固體發(fā)酵培養(yǎng)基中,其他條件不變,發(fā)酵結(jié)束后測(cè)定發(fā)酵物料中的硫代葡萄糖苷的含量,并計(jì)算其降解率。

根據(jù)發(fā)酵溫度、料水比、起始pH、接種量、葡萄糖和硫酸銨添加量對(duì)硫代葡萄糖苷的降解效果結(jié)果,研究發(fā)酵時(shí)間對(duì)硫代葡萄糖苷降解效果的影響。

1.2.3.2 最佳發(fā)酵條件研究

在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上,采用Design Expert 7.1.6軟件,根據(jù) Box-Benhnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,選取影響較大的接種量、發(fā)酵溫度、料水比和發(fā)酵時(shí)間4因素,建立硫代葡萄糖苷降解率與各因素之間的數(shù)學(xué)模型,通過(guò)計(jì)算來(lái)優(yōu)化最佳的發(fā)酵條件,以確定菜籽粕發(fā)酵脫毒的最佳條件。

1.2.4 測(cè)定方法

將發(fā)酵好的菜籽粕于55~60℃條件下烘干,粉碎至80目后進(jìn)行相關(guān)指標(biāo)測(cè)定。

硫代葡糖糖苷降解率按照王寧惠[15]的方法進(jìn)行測(cè)定,計(jì)算公式為:

硫代葡糖糖苷降解率(%)=(發(fā)酵前硫代葡糖糖苷

含量-發(fā)酵后硫代葡糖糖苷含量)/發(fā)酵前硫代葡糖糖苷含量×100。

2 結(jié)果與分析

2.1 單因素試驗(yàn)

單因素試驗(yàn)篩選最適葡萄糖添加量、硫酸銨添加量、起始pH、料水比、發(fā)酵時(shí)間、發(fā)酵溫度等對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響。

2.1.1 葡萄糖添加量對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響

由表1可見(jiàn),隨著葡萄糖添加量的增加,硫代葡萄糖苷降解率也隨之增加,當(dāng)葡萄糖添加量為1.0%時(shí),硫代葡萄糖苷降解率到達(dá)77.31%,但葡萄糖添加量超過(guò)1.0%,硫代葡萄糖苷降解率明顯下降。其主要原因是葡萄糖添加量過(guò)大,改變了發(fā)酵培養(yǎng)基的碳氮比(C/N),從而影響了微生物酶的合成和分泌。

表1 葡萄糖添加量對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響Table 1 Effects of glucose addition on degradation rate of glucosinolate %

2.1.2 硫酸銨添加量對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響

由表2可見(jiàn),硫酸銨添加量為0.5%時(shí),硫代葡萄糖苷降解率最高,達(dá)到77.53%,故選擇硫酸銨最適添加量為0.5%。

表2 硫酸銨添加量對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響Table 2 Effects of(NH4)2SO4addition on degradation rate of glucosinolate %

2.1.3 料水比對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響

由表3可見(jiàn),隨著料水比的增加,硫代葡萄糖苷降解率增加,當(dāng)料水比為1.00∶0.55時(shí),硫代葡萄糖苷降解率為81.38%。但料水比超過(guò)1.00∶0.55,硫代葡萄糖苷降解率明顯下降。水是微生物進(jìn)行生命活動(dòng)不可缺少的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),但物料中含水量太低,培養(yǎng)基中營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)不能得到充分的溶解而影響微生物對(duì)其的吸收和利用;而物料中含水量太高時(shí),導(dǎo)致培養(yǎng)基的通透性降低而影響氧氣的傳遞,同樣影響微生物的生長(zhǎng)和代謝,進(jìn)而影響硫代葡萄糖苷的降解。

表3 料水比對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響Table 3 Effects of the ratio of substrate to water on degradation rate of glucosinolate %

2.1.4 起始pH對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響

培養(yǎng)基的酸堿度是影響微生物生長(zhǎng)和代謝的主要因素之一,適宜的酸堿度有利于微生物對(duì)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的吸收利用及代謝。由表4可知,培養(yǎng)基酸堿度過(guò)高或過(guò)低都對(duì)硫代葡萄糖苷降解率有較明顯的影響,當(dāng)起始pH為6.0時(shí),硫代葡萄糖苷的降解率達(dá)到79.04%。

2.1.5 發(fā)酵溫度對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響

不同的微生物都有其適宜的生長(zhǎng)溫度和酶最佳反應(yīng)溫度,在混合菌發(fā)酵中必須都處在一個(gè)適宜的溫度才能發(fā)揮各菌的優(yōu)勢(shì),否則達(dá)不到混菌發(fā)酵的目的。由表5可見(jiàn),當(dāng)發(fā)酵溫度為45℃時(shí),硫代葡萄糖苷降解率最高,達(dá)到82.34%,溫度升高,硫代葡萄糖苷降解率下降。

表4 起始pH對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響Table 4 Effects of initial pH value on degradation rate of glucosinolate %

表5 發(fā)酵溫度對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響Table 5 Effects of cultural temperature on degradation rate of glucosinolate %

2.1.6 接種量對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響

由表6可知,隨著接種量的增大,硫代葡萄糖苷降解率增加,當(dāng)接種量為7%時(shí),硫代葡萄糖苷降解率為82.32%。因?yàn)檫m宜的接種量可以縮短菌種生長(zhǎng)的延遲期,使降解硫代葡萄糖苷的酶系提前合成和分泌,但過(guò)大的接種量會(huì)導(dǎo)致培養(yǎng)基中的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)過(guò)快消耗,且代謝副產(chǎn)物的積累較多,從而改變微生物生長(zhǎng)和代謝的環(huán)境條件,影響酶系的合成。因此,采用7%的接種量較為適宜。

表6 接種量對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響Table 6 Effects of inoculation amount on degradation rate of glucosinolate %

2.1.7 發(fā)酵時(shí)間對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響

由表7可見(jiàn),發(fā)酵前期是菌種生長(zhǎng)期,硫代葡萄糖苷降解率隨發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)提高較快,至發(fā)酵168h,硫代葡萄糖苷降解率達(dá)93.16%,發(fā)酵144h后,硫代葡萄糖苷降解率增加較為緩慢。主要原因是隨發(fā)酵時(shí)間延長(zhǎng),培養(yǎng)基中營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)逐步消耗,微生物生長(zhǎng)和代謝速度變慢,酶分泌量減少,導(dǎo)致硫代葡萄糖苷降解率增加量降低。綜合考慮,選擇適宜的發(fā)酵時(shí)間為144h。

表7 發(fā)酵時(shí)間對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響Table 7 Effects of fermentation time on degradation rate of glucosinolate %

2.2 響應(yīng)面發(fā)酵條件優(yōu)化

2.2.1 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果分析

基于單因素試驗(yàn)結(jié)果,選取接種量、發(fā)酵溫度、料水比和發(fā)酵時(shí)間對(duì)硫代葡萄糖苷降解率影響較大的4個(gè)因素,硫代葡萄糖苷降解率為響應(yīng)值,每個(gè)因素取3個(gè)水平,進(jìn)行響應(yīng)面分析設(shè)計(jì)和試驗(yàn),進(jìn)一步優(yōu)化各因素的參數(shù)值。各因素水平的編碼表見(jiàn)表8。

經(jīng)軟件Design Expert 7.1.6設(shè)計(jì)響應(yīng)面分析試驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)表9。

表8 試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素水平及編碼Table 8 Design of experimental factors and codes

表9 Box-Benhnken響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 9 Box-Benhnken response surface design and results

根據(jù)表9試驗(yàn)結(jié)果,采用 Design-Expert 7.1.6軟件對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析。由表10可知,X1、X2、X3、X4、X21、X22、X23、X24對(duì) 硫 代 葡 萄 糖 苷 降 解 率(Y)的影響極顯著(P<0.000 1),說(shuō)明接種量、發(fā)酵溫度、料水比和發(fā)酵時(shí)間是發(fā)酵過(guò)程中的重要因素,但交互作用不顯著(P>0.05)。失擬項(xiàng)不顯著(P>0.05),說(shuō)明數(shù)據(jù)中沒(méi)有異常點(diǎn),模型適當(dāng)。

表10 響應(yīng)面結(jié)果方差分析Table 10 Analysis of variance of experimental results of response surface

用Design-Expert 7.1.6軟件分析模型的可信 度,結(jié)果見(jiàn)表11。

表11 二次回歸方程的方差分析Table 11 Analysis of variance of the quadratic model

根據(jù)響應(yīng)面系數(shù)的回歸分析,得到該次模型的擬合方程為:Y=94.215 9+1.463 8 X1-2.597 1X2+1.427 0X3+1.822 2X4+0.435 3X1X2-0.068 9X1X3+0.024 7X1X4+0.218 5X2X3-0.192 4 X2X4+0.660 8 X3X4-3.382 6 X21-6.827 7 X22-1.864 7 X23-5.378 9 X24?;貧w方程的方差分析結(jié)果見(jiàn)表10、表11。從表10、表11可以看出,回歸模型極顯著(P<0.001),失擬項(xiàng)不顯著(P=0.973 6),表明回歸方程擬合度良好;回歸方程的復(fù)相關(guān)系數(shù)為0.990 0,表明99.00%的硫代葡萄糖苷降解率變化可由此模型解釋?zhuān)c實(shí)際情況擬合很好;校正相關(guān)系數(shù)為0.978 4。硫代葡萄糖苷降解率變異系數(shù)為0.74%,信噪比為34.328,說(shuō)明模型可信度較高。該方程為菜籽粕混合菌發(fā)酵脫毒提供了一個(gè)合適的模型,因此可用上述模型代替真實(shí)試驗(yàn)點(diǎn)對(duì)混合菌發(fā)酵菜籽粕脫毒進(jìn)行分析和預(yù)測(cè)。

2.2.2 響應(yīng)面分析

采用Design Expert 7.1.6軟件對(duì)回歸模型進(jìn)行規(guī)范分析,接種量、發(fā)酵溫度、料水比和發(fā)酵時(shí)間4個(gè)因素交互影響硫代葡萄糖苷降解率的響應(yīng)面圖和等高線(xiàn)圖見(jiàn)圖1~圖6。

圖1 發(fā)酵溫度和接種量對(duì)硫代葡萄糖苷降解率影響的相應(yīng)面圖和等高線(xiàn)圖Fig.1 Response surface and contour graph of the effects of fermentation temperature and inoculation amount on degradation rate of glucosinolate

圖2 料水比和接種量對(duì)硫代葡萄糖苷降解率影響的相應(yīng)面圖和等高線(xiàn)圖Fig.2 Response surface and contour graph of the effects of ratio of substrate to water and inoculation amount on degradation rate of glucosinolate

圖3 發(fā)酵時(shí)間和接種量對(duì)硫代葡萄糖苷降解率的影響相應(yīng)面圖和等高線(xiàn)圖Fig.3 Response surface and contour graph of the effects of fermentation time and inoculation amount on degradation rate of glucosinolate

圖4 發(fā)酵溫度和料水比對(duì)硫代葡萄糖苷降解率影響的相應(yīng)面圖和等高線(xiàn)圖Fig.4 Response surface and contour graph of the effects of fermentation temperature and ratio of subtrate to water on degradation rate of glucosinolate

圖5 發(fā)酵溫度和發(fā)酵時(shí)間對(duì)硫代葡萄糖苷降解率影響的相應(yīng)面圖和等高線(xiàn)圖Fig.5 Response surface and contour graph of the effects of fermentation temperature and fermentation time on degradation rate of glucosinolate

圖6 發(fā)酵時(shí)間和料水比對(duì)硫代葡萄糖苷降解率影響的相應(yīng)面圖和等高線(xiàn)圖Fig.6 Response surface and contour graph of the effects of fermentation time and ratio of substrate to water on degradation rate of glucosinolate

等高線(xiàn)的形狀可以反映出因素之間交互效應(yīng)的強(qiáng)弱,圓形表示兩因素不顯著,而橢圓則表示較為顯著[16]。當(dāng)發(fā)酵時(shí)間和接種量處于最佳水平時(shí),發(fā)酵溫度和接種量的交互作用見(jiàn)圖1。

由圖1可以看出,隨著發(fā)酵溫度升高,硫代葡萄糖苷降解率先上升后迅速下降;隨著接種量增加,硫代葡萄糖苷降解率先上升后下降,說(shuō)明發(fā)酵溫度和接種量存在顯著的交互作用。當(dāng)發(fā)酵溫度和發(fā)酵時(shí)間處于最佳水平時(shí),料水比和接種量的交互作用見(jiàn)圖2。由圖2可以看出,隨著料水比和接種量的增加,硫代葡萄糖苷降解率呈先迅速上升后下降的趨勢(shì),但接種量較大時(shí),硫代葡萄糖苷降解率較料水比增加下降明顯,說(shuō)明二者對(duì)硫代葡萄糖苷降解率有顯著的影響。當(dāng)發(fā)酵溫度和料水比處于最佳水平時(shí),發(fā)酵時(shí)間和接種量的交互作用見(jiàn)圖3。由圖3可以看出,隨著發(fā)酵時(shí)間和接種量的延長(zhǎng)和增加,硫代葡萄糖苷降解率呈先迅速上升后明顯下降趨勢(shì),說(shuō)明二者對(duì)硫代葡萄糖苷降解率有極顯著的影響,二者交互作用形成的曲面為拋物面,也說(shuō)明發(fā)酵時(shí)間和接種量之間存在交互作用。當(dāng)發(fā)酵時(shí)間和接種量處于最佳水平時(shí),發(fā)酵溫度和料水比的交互作用見(jiàn)圖4。由圖4可以看出,當(dāng)發(fā)酵溫度較低時(shí),硫代葡萄糖苷降解率隨著發(fā)酵溫度的升高而升高,而發(fā)酵溫度超過(guò)+0.5水平時(shí),硫代葡萄糖苷降解率迅速下降;硫代葡萄糖苷降解率隨料水比增加而升高,在接近+1.0水平時(shí)有所下降。這說(shuō)明發(fā)酵溫度和料水比對(duì)硫代葡萄糖苷降解率有顯著的影響。當(dāng)接種量和料水比處于最佳水平時(shí),發(fā)酵溫度和發(fā)酵時(shí)間的交互作用見(jiàn)圖5。由圖5可以看出,隨著發(fā)酵溫度和發(fā)酵時(shí)間的提高和延長(zhǎng),硫代葡萄糖苷降解率呈先迅速上升后迅速下降的趨勢(shì),說(shuō)明二者對(duì)硫代葡萄糖苷降解率有極顯著的影響。當(dāng)發(fā)酵溫度和接種量處于最佳水平時(shí),發(fā)酵時(shí)間和料水比的交互作用見(jiàn)圖6。由圖6可以看出,發(fā)酵時(shí)間和料水比交互作用顯著。

2.2.3 顯著因素水平優(yōu)化

運(yùn)用Design Expert 7.1.6對(duì)回歸模型進(jìn)行進(jìn)行規(guī)范性分析,尋求最大硫代葡萄糖苷降解率的穩(wěn)定點(diǎn)及對(duì)應(yīng)的因素水平,結(jié)合圖1~圖6給出的回歸方程的三維響應(yīng)面圖以及等高線(xiàn)圖可知,回歸模型存在穩(wěn)定點(diǎn),穩(wěn)定點(diǎn)即最大值。對(duì)回歸方程分別求一階偏導(dǎo)等于零,結(jié)果如下:

1.4638-6.765 2 X1+0.435 3 X2-0.068 8 X3+0.024 7 X4=0,

-2.597 1+0.435 3 X1-13.655 3 X2+0.218 5 X3-0.192 4 X4=0,

1.4270-0.068 9 X1+0.218 5 X2-3.729 4 X3+0.660 8 X4=0,

1.8222+0.024 7 X1-0.192 4 X2+0.660 8 X3-10.757 9 X4=0。

解方程組得到模型的最佳因素編碼為:X1=0.204 1,X2=-0.180 1,X3=0.403 4,X4=0.197 8,將其代入回歸方程,得到預(yù)測(cè)硫代葡萄糖苷降解率最大值為94.925 1%。各個(gè)編碼所對(duì)應(yīng)的 X1、X2、X3、X4實(shí)際取值為接種量為7.7%,發(fā)酵溫度為44.1℃,料水比1.000∶0.585,發(fā)酵時(shí)間52.6h。

2.2.4 模型的驗(yàn)證

為了驗(yàn)證模型的有效性,根據(jù)優(yōu)化試驗(yàn)所得的各因素優(yōu)化值,即接種量7.7%,發(fā)酵溫度44℃,料水比1.000∶0.585,發(fā)酵時(shí)間53h條件下進(jìn)行菜籽粕脫毒發(fā)酵試驗(yàn),重復(fù)3次試驗(yàn),測(cè)得的硫代葡萄糖苷降解率平均值為94.850 6%(表12)。與理論預(yù)測(cè)值94.925 1%接近,相對(duì)誤差為0.078%,可見(jiàn)該模型能較好地預(yù)測(cè)菜籽粕發(fā)酵脫毒情況。

表12 響應(yīng)面試驗(yàn)的驗(yàn)證Table 12 Certification of response surface experiment

3 討 論

本文通過(guò)優(yōu)化菜籽粕作為主要基質(zhì)混合菌種固體發(fā)酵脫毒生產(chǎn)畜禽及水產(chǎn)養(yǎng)殖飼料的發(fā)酵過(guò)程參數(shù),建立了關(guān)鍵因子影響硫代葡萄糖苷的二次多項(xiàng)數(shù)學(xué)模型,系統(tǒng)研究并確定了菜籽粕固體發(fā)酵脫毒的工藝條件,為實(shí)現(xiàn)菜籽粕微生物發(fā)酵脫毒工業(yè)化生產(chǎn)提供了理論依據(jù)。通過(guò)響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)得到了接種量、發(fā)酵溫度、料水比和發(fā)酵時(shí)間對(duì)硫代葡萄糖苷降解率影響的數(shù)學(xué)模型:Y=94.215 9+1.463 8 X1-2.597 1 X2+1.427 0 X3+1.822 2 X4+0.435 3 X1X2-0.068 9 X1X3+0.024 7 X1X4+0.218 5 X2X3-0.192 4 X2X4+0.660 8X3X4-3.382 6X21-6.827 7X22-1.864 7X23-5.378 9 X24。統(tǒng)計(jì)分析結(jié)果表明,該模型的相關(guān)系數(shù)R2=0.978 4,模型與實(shí)際情況符合很好,證明該模型能反映出4個(gè)因子對(duì)混合菌固體發(fā)酵菜籽粕硫代葡萄糖苷降解率的影響。硫代葡萄糖苷降解率變異系數(shù)為0.74%,信噪比為34.328,說(shuō)明試驗(yàn)的可靠性較高,此模型能較好地反映試驗(yàn)結(jié)果。

微生物發(fā)酵菜籽粕脫毒的關(guān)鍵是菌種選擇,不同微生物菌種對(duì)硫代葡糖糖苷的降解能力不同,篩選優(yōu)良的微生物菌種是影響菜籽粕脫毒效果的首要條件。在國(guó)內(nèi)外所采用的微生物脫毒法中,大多是采用單一或復(fù)合菌種進(jìn)行固體發(fā)酵[9,13,17-22],除了微 生 物 菌 種 的 影 響 外,固 體 發(fā) 酵過(guò)程中基質(zhì)的含水量、pH、輔料添加、通氣量、溫度、培養(yǎng)基的組成等對(duì)發(fā)酵效果有著很大的影響[23-24]。蔣玉琴等[9]利用乳酸菌、酵母菌、少孢子根霉菌混合培養(yǎng)得到的復(fù)合菌系發(fā)酵菜籽粕,在pH 4.7、含水量85%~90%條件下發(fā)酵32h,硫代葡萄糖苷降解率達(dá)71.6%;陸豫等[10]使用白地霉和米曲霉脫毒菜籽粕,在料水比1∶2,29℃發(fā)酵47 h,硫代葡萄糖苷降解率達(dá)97.0%;孫林等[25]比較植物乳桿菌、枯草芽孢桿菌、蠟樣芽孢桿菌及酪酸梭狀芽孢桿菌對(duì)硫代葡萄糖苷降解情況,其中以植物乳桿菌降解效果最好,適宜條件下48h硫代葡萄糖苷降解率可達(dá)85.19%;李延海等[26]利用白地霉K對(duì)菜籽餅進(jìn)行微生物發(fā)酵脫毒試驗(yàn)研究,ITC、OZT含量分別降低了83.81%、83.19%。本研究結(jié)果表明,在單因素試驗(yàn)結(jié)果基礎(chǔ)上,選用接種量、料水比、發(fā)酵溫度和發(fā)酵時(shí)間采用響應(yīng)面法對(duì)發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,菜籽粕中硫代葡萄糖苷降解率達(dá)94.850 6%,高于國(guó)內(nèi)外報(bào)道的有關(guān)菜籽粕發(fā)酵脫毒的文獻(xiàn)資料結(jié)果。

4 結(jié) 論

① 菜籽粕脫毒的最優(yōu)條件為:接種量7.7%,發(fā)酵溫度44.1℃,料水比1.000∶0.585,發(fā)酵時(shí)間52.6h,硫代葡萄糖苷降解率最高為94.925 1%。

② 通過(guò)驗(yàn)證試驗(yàn),測(cè)得硫代葡萄糖苷平均降解率為94.850 6%,與理論預(yù)測(cè)值相比,相對(duì)誤差僅為0.078%,說(shuō)明模型能較好地預(yù)測(cè)混合菌固體發(fā)酵菜籽粕脫毒的實(shí)際情況,具有較強(qiáng)的生產(chǎn)指導(dǎo)意義。

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