楊妍梅,馮若飛,馬忠仁
(1.西北民族大學(xué)生物工程與技術(shù)國(guó)家民委重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,甘肅蘭州730030;2.甘肅省動(dòng)物細(xì)胞工程技術(shù)研究中心,甘肅蘭州730030;3.西北民族大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州730030)
狂犬病(Rabies)俗稱瘋狗病,又稱恐水癥,是由狂犬病病毒(Rabies virus,RV)引起的一種人畜共患的急性接觸性傳染病,發(fā)病后病死率幾乎為100%。我國(guó)是狂犬病的高發(fā)地區(qū),感染狂犬病死亡人數(shù)居世界第二,僅次于印度。當(dāng)今世界,狂犬病仍然是一種高發(fā)的人畜共患病,無論在發(fā)達(dá)國(guó)家[1],還是發(fā)展中國(guó)家[2],都是重點(diǎn)防控的傳染病??袢≡谖覈?guó)曾一度得到有效控制,值得關(guān)注的是我國(guó)城鄉(xiāng)養(yǎng)犬、貓等寵物的家庭迅速增加,野犬、貓的數(shù)量均呈現(xiàn)增多趨勢(shì)[3],使該病的發(fā)病率近年有上升趨勢(shì)。
狂犬病病毒是彈狀病科(Rhabdoviridae)狂犬病病毒屬的成員,為不分節(jié)段的單股負(fù)鏈RNA病毒,基因組長(zhǎng)度為11 928nt~11 932nt,編碼5種結(jié)構(gòu)蛋白,順次為核蛋白(N)、磷酸蛋白(M1)、基質(zhì)蛋白(M2)、糖蛋白(G)和 RNA聚合酶(L),分別由對(duì)應(yīng)的5種結(jié)構(gòu)基因編碼,其中N基因具有毒株間相對(duì)保守和高拷貝復(fù)制的特點(diǎn),成為病毒分型、系統(tǒng)發(fā)生分析和分子診斷的目標(biāo)序列[4]??袢?shí)驗(yàn)室診斷方法主要包括酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzymelinked immunosorbent assay,ELISA)、熒光抗體技術(shù)(fluorescence antibody,F(xiàn)A)方法、快速熒光抑制灶技術(shù)(RFFIT)、反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(reverse transcription-polymerase chain reaction,RT-PCR)、熒光定量RT-PCR,環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)和基因芯片(Genechip)等方法[5]。本文就這些方法在狂犬病病毒檢測(cè)上的應(yīng)用進(jìn)行歸納和總結(jié)。
自從1881年巴斯德把人的狂犬病病毒經(jīng)家兔傳代而分離到固定毒以來,現(xiàn)世界各地都已分離到了狂犬病病毒。狂犬病病毒的分離方法可分為兩種,一種是實(shí)驗(yàn)動(dòng)物分離,先將含有狂犬病病毒的腦組織懸液在易感動(dòng)物體內(nèi)接種,再進(jìn)行狂犬病病毒的分離,并對(duì)易感動(dòng)物的腦組織采用免疫熒光技術(shù)檢測(cè)[6]。另一種是易感細(xì)胞培養(yǎng),培養(yǎng)24h~48h后,用免疫熒光檢測(cè)狂犬病病毒包涵體,即Negri小體[7]。由于細(xì)胞培養(yǎng)有許多優(yōu)點(diǎn),可提高疫苗的質(zhì)量及病毒的含量;可以結(jié)合免疫學(xué)技術(shù)和病毒學(xué)技術(shù)發(fā)展成各種快速、簡(jiǎn)便的測(cè)定狂犬病病毒的方法,這就使在實(shí)驗(yàn)室對(duì)狂犬病病毒的研究變得容易進(jìn)行,所以它是病毒學(xué)上最常用的分離病毒的方法。
酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)檢測(cè)在一般實(shí)驗(yàn)室即可進(jìn)行,既可測(cè)抗原又可測(cè)抗體,快速簡(jiǎn)便,單流程數(shù)小時(shí)即可完成,適合做批量樣品檢測(cè),價(jià)格低廉,是最適合大范圍狂犬病病毒篩查的一種方法,但是該方法存在操作過程繁瑣,與實(shí)驗(yàn)人員的熟練程度呈正相關(guān)的缺點(diǎn)。已有報(bào)道的ELISA檢測(cè)法主要有競(jìng)爭(zhēng)法、雙抗夾心法、間接法等,成功的ELISA法檢測(cè)的靈敏度和特異性都應(yīng)在85%以上[8-9]。
Feyssaguet M 等[8]報(bào) 道 的 PLATELIATM RABIESⅡELISA試劑盒采用狂犬病病毒糖蛋白包被檢測(cè)板,與RFFIT檢測(cè)比較靈敏度為98.6%,特異度為99.4%,基本上可以替代RFFIT進(jìn)行狂犬病病毒中和抗體檢測(cè)。羅金燕等[10]將狂犬病病毒糖蛋白(G蛋白)中和抗原表位串聯(lián)表達(dá)的重組蛋白作為抗原,建立了檢測(cè)RABV中和抗體的間接ELISA技術(shù)。該方法與快速熒光灶抑制試驗(yàn)(RFFIT)的陽性符合率為88%,陰性符合率為96%,具有良好的特異性和重復(fù)性。宮苗苗等[11]以原核表達(dá)的狂犬病病毒M蛋白為檢測(cè)抗原,建立了間接ELISA抗體檢測(cè)方法,并利用該方法與商品化試劑盒同時(shí)檢93份臨床血清樣品,結(jié)果二者的符合率為89.2%,由此可見,該方法比較靈敏。Kazuak等將常規(guī)的酶聯(lián)免疫技術(shù)和微量技術(shù)相結(jié)合檢測(cè)中和抗體,結(jié)果是快速熒光抑制灶技術(shù)(RFFIT)一致,并且比RFFIT快速易行。
熒光抗體技術(shù)是以熒光物標(biāo)記抗體進(jìn)行抗原定位的技術(shù),熒光抗體技術(shù)包括熒光抗體染色技術(shù)(FAT)和快速熒光抑制灶技術(shù)(RFFIT)。該技術(shù)在檢測(cè)動(dòng)物和人狂犬病病毒時(shí)快速且敏感,是狂犬病診斷的金標(biāo)準(zhǔn)。
熒光抗體方法有直接和間接兩種,它可檢測(cè)病毒抗原,對(duì)病毒在細(xì)胞中進(jìn)行定位。該方法既靈敏、特異性又高,應(yīng)用價(jià)值非常高。該法可直接涂片檢測(cè),也能用于檢測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)或被接種小鼠的腦組織中狂犬病病毒抗原是否存在[12]。對(duì)于新鮮病料,F(xiàn)A法可以快速得出結(jié)果,準(zhǔn)確率可達(dá)95%~99%。FA法與其他任何檢測(cè)方法相同,其可靠性主要影響因素有狂犬病病毒、樣品性質(zhì)和實(shí)驗(yàn)人員的熟練程度[13]。其特異性和靈敏度,一定程度上依賴于親和力、梯度及特異性結(jié)合狂犬病病毒核蛋白的最佳熒光抗體。Sylvia Z[14]檢測(cè)了800多份來自14種不同動(dòng)物的懷疑有狂犬病病毒的腦組織,用新鮮病料同時(shí)用福爾馬林固定,熒光抗體方法檢測(cè)兩種病料的陽性結(jié)果符合率達(dá)99.8%,未出現(xiàn)假陽性,對(duì)兩種病料的特異性均達(dá)100%。因此得出結(jié)論,用FA方法檢測(cè)狂犬病病毒抗原,用新鮮病料或用經(jīng)福爾馬林固定后的病料,效果是等同的。
中和抗體效價(jià)快速熒光灶抑制技術(shù)(RFFIT)是世 界 衛(wèi) 生 組 織 ((World Health Organization,WHO)推薦的檢測(cè)狂犬病病毒中和抗體的標(biāo)準(zhǔn)試驗(yàn)方法[15],主要應(yīng)用于狂犬病疫苗的免疫學(xué)效果評(píng)估[16-17]和狂犬病病毒中和抗體替代檢測(cè)試劑和方法的評(píng)估[18-19],是狂犬病疫苗及中和抗體診斷試劑評(píng)價(jià)的關(guān)鍵技術(shù)。
1979年,Englene等把RFFIT和微量技術(shù)結(jié)合起來測(cè)定中和抗體,與MNT比較,結(jié)果一致,并推薦為測(cè)定中和抗體的標(biāo)準(zhǔn)方法。對(duì)RFFIT的改進(jìn)的研究一直在進(jìn)行,法國(guó)Pharpr D等[20]在RFFIT結(jié)果的自動(dòng)化判讀方面獲得成功,日本Khawplod P等[21]應(yīng)用表達(dá)綠色熒光蛋白的rHEP-GFP重組狂犬病病毒作為攻擊病毒進(jìn)行RFFIT,可以直接觀察結(jié)果。呂新軍等[22]研究表明,RFFIT檢測(cè)體系穩(wěn)定性良好,可用于其他樣品檢測(cè)。完善了體系靈敏度、特異性、穩(wěn)定性、重復(fù)性等主要指標(biāo)的評(píng)價(jià),同時(shí)說明他們采用與熒光顯微鏡配套的電腦成像系統(tǒng)進(jìn)行結(jié)果觀察,為RFFIT結(jié)果的觀察提供方便。吳小紅等[23]采用RFFIT和小鼠中和試驗(yàn)檢測(cè)我國(guó)抗狂犬病免疫球蛋白國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)品的GMT,結(jié)果兩種方法的檢測(cè)結(jié)果之間呈正相關(guān)。
常用的血清學(xué)技術(shù)除中和試驗(yàn)外,還有補(bǔ)體結(jié)合試驗(yàn)、間接熒光抗體試驗(yàn)、交叉保護(hù)試驗(yàn)、血凝抑制試驗(yàn)以及間接免疫酶試驗(yàn)等等。近年來單克隆抗體技術(shù)也可用于狂犬病的診斷。
反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)是熒光抗體方法的補(bǔ)充,檢測(cè)結(jié)果較直觀,易于判定,獲得的序列能夠直接用毒株的系統(tǒng)發(fā)生分析,但是,RT-PCR檢測(cè)狂犬病病毒缺乏規(guī)范性程序,許多實(shí)驗(yàn)室出現(xiàn)污染或假陰性問題[24]。但由于RT-PCR能夠?qū)Ω咄繕悠返膶?shí)現(xiàn)快速檢測(cè),因此該方法還是得到了廣泛的運(yùn)用。江禹等[25]建立了能夠有效擴(kuò)增7種基因型RV基因組片段的套式RT-PCR(nested RTPCR)方法。該方法能夠檢測(cè)到4.6個(gè)TCID50的SRV9固定毒。對(duì)街毒腦組織樣品檢測(cè)的靈敏度較乳鼠腦內(nèi)接種試驗(yàn)(MIT)高出100倍,對(duì)3種鼠腦固定毒、12種犬腦街毒樣品的檢測(cè)結(jié)果與FAT檢測(cè)結(jié)果一致。Aravindh Babu R P等[26]利用3種不同引物組合評(píng)價(jià)RT-PCR快速檢測(cè)狂犬病不同動(dòng)物腦組織的的敏感性和特異性,其檢測(cè)結(jié)果與FAT檢測(cè)結(jié)果100%相符。Wacharapluesadee S等[27]利用RT-PCR方法從保存達(dá)16年的狂犬病人腦樣品中檢測(cè)出狂犬病病毒N基因的150bp目的條帶,但用免疫組化反應(yīng)中陽性率較低。Whitby J E等[28]將RT-PCR和PCR-ELISA相結(jié)合,可區(qū)分經(jīng)典的狂犬病病毒和歐洲蝙蝠狂犬病病毒,結(jié)果顯示,該法比Southern blot敏感100倍,具有快速、敏感和簡(jiǎn)便等優(yōu)點(diǎn)。
熒光定量PCR檢測(cè)方法是一種敏感、快速、重復(fù)性好的高通量檢測(cè)手段。國(guó)內(nèi)外應(yīng)用這一技術(shù)已經(jīng)建立了多種檢測(cè)RABV的熒光定量PCR方法。該技術(shù)自1991年首次用于RABV的實(shí)驗(yàn)室診斷以來,已成為 WHO和世界動(dòng)物衛(wèi)生組織(Office International Des Epizooties,OIE)推薦的標(biāo)準(zhǔn)方法[29],但是該方法易出現(xiàn)假陽性,這有待深入研究。
針對(duì)我國(guó)狂犬病的流行特點(diǎn),許運(yùn)斌等[30]針對(duì)RABV N基因保守序列設(shè)計(jì)并合成了一套簡(jiǎn)并引物和TaqMan探針,在優(yōu)化反應(yīng)條件的基礎(chǔ)上,建立了檢測(cè)RABV核酸的一步法熒光定量RT-PCR(qRT-PCR)檢測(cè)方法,他們建立的qRT-PCR與套式RT-PCR的符合率為100%。檢測(cè)29份新鮮和5份腐敗的臨床犬腦組織樣品,qRT-PCR與套式RTPCR均檢測(cè)出12份陽性的新鮮樣品和5份陽性的腐敗樣品。高志強(qiáng)等[29]建立了古典狂犬病病毒熒光RT-PCR檢測(cè)技術(shù),并應(yīng)用該技術(shù)對(duì)寵物醫(yī)院提供的犬唾液樣品進(jìn)行了檢測(cè),結(jié)果顯示熒光RTPCR試驗(yàn)結(jié)果同病毒分離檢測(cè)結(jié)果均為陰性,沒有發(fā)現(xiàn)陽性樣本,但從采集的流浪犬唾液樣品中檢出了陽性樣本。Crepin P等研究表明,采用常規(guī)的RT-PCR方法可從唾液樣品或CSF樣品中檢出狂犬病病毒核酸,而且有時(shí)與死后確診結(jié)果符合率達(dá)100%[31-32]。Wakeley P R 等[33]建立了 TaqMan實(shí)時(shí)熒光RT-PCR用于檢測(cè)狂犬病病毒,結(jié)果其靈敏度高于常規(guī)的RT-PCR方法,與套式RT-PCR靈敏度相同[29]。結(jié)合TaqMan基因型特異探針的RTPCR的方法能快速有效鑒別病毒。實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR檢測(cè)唾液樣品比傳統(tǒng)RT-PER的靈敏度高。Hughes J G等[34]設(shè)計(jì)一個(gè)檢測(cè)組織樣品狂犬病病毒RNA的TaqMan PCR方法,并證明該方法敏感性、特異性均較高。Supaporn W 等[35]利用TaqMan實(shí)時(shí)定量RT-PCR對(duì)非神經(jīng)樣本進(jìn)行狂犬病病毒RNA檢測(cè)的特異性為100%。
環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(LAMP)是2000年由Notomi T等[36]首先報(bào)道的一種新穎的核酸擴(kuò)增技術(shù),即核酸環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)。LAMP技術(shù)采用能特異識(shí)別靶序列上6個(gè)位點(diǎn)的4條引物及一種具有鏈置換活性的DNA聚合酶,在恒溫條件(60℃~65℃)下,1h內(nèi)其擴(kuò)增效率可達(dá)到109~1010個(gè)數(shù)量級(jí),具有特異性強(qiáng)、等溫靈敏、操作簡(jiǎn)單、結(jié)果易判定等優(yōu)點(diǎn),但是其有易污染的致命的缺點(diǎn)。
許丹等[37]檢測(cè)17份臨床樣本的結(jié)果顯示,LAMP法和傳統(tǒng)PCR法的敏感性一致,陽性檢出率均為23.5%。該法操作簡(jiǎn)單,整個(gè)試驗(yàn)過程比普通PCR法節(jié)省時(shí)間1.5h。黃元等[38]針對(duì)狂犬病病毒的核衣殼蛋白基因(N基因)和大轉(zhuǎn)錄酶蛋白基因(L基因)中的高度保守區(qū)段分別設(shè)計(jì)了一套引物,建立了檢測(cè)狂犬病病毒的快速一步式反轉(zhuǎn)錄-環(huán)介導(dǎo)恒溫?cái)U(kuò)增(RT-LAMP)方法。RT-LAMP具有良好的特異性,靈敏度比RT-套式PCR高10倍以上。該方法靈敏、快速 、簡(jiǎn)便,在基層比較適用。已有報(bào)道Saitou Y 等[39]和 Hayman D T 等[40]通過使用 RTLAMP法來檢測(cè)狂犬病病毒。
基因芯片(又稱DNA芯片、生物芯片)是在20世紀(jì)80年代中期提出的。基因芯片的測(cè)序原理是雜交測(cè)序方法,即通過與一組已知序列的核酸探針雜交進(jìn)行核酸序列測(cè)定的方法,在一塊基片表面固定了序列已知的八核苷酸的探針?;蛐酒哂行滦突?、高通量、高度平行性和高速性的特點(diǎn),已經(jīng)廣泛應(yīng)用于發(fā)現(xiàn)與疾病相關(guān)的新基因、基因表達(dá)譜分析、藥物的研究與開發(fā)等諸多方面[41-42]。張偉等[43]在探針反相雜交技術(shù)的基礎(chǔ)上,融合基因芯片的基本原理、核酸分子堿基互補(bǔ)配對(duì)的原則和酶聯(lián)顯色技術(shù)的基本原理建立了RABV低密度基因芯片。檢測(cè)160份可疑犬的血的結(jié)果表明該方法比ELISA和 RT-PCR靈敏度高、特異性強(qiáng)[44]。王振全等[45]在靶基因的上游引物5′端標(biāo)記了生物素Biotin,提高了雜交特異性和靈敏度。診斷基因芯片由于在每份檢測(cè)樣品中都設(shè)置陽性和陰性參照,并通過分子雜交進(jìn)行確認(rèn),有效地克服了PCR易被污染的缺點(diǎn)。利用計(jì)算機(jī)分析軟件進(jìn)行分析、確診,大大降低了在結(jié)果判斷過程中的主觀因素,使各個(gè)實(shí)驗(yàn)室得到的結(jié)果具有可比性,而且診斷基因芯片檢測(cè)樣本量越大,成本越低;不僅快速、準(zhǔn)確、敏感,而且可以同時(shí)進(jìn)行多種病毒的檢測(cè),有利于大規(guī)模推廣應(yīng)用。
狂犬病是危害人類生命的重大疫病之一,急需一種快速、準(zhǔn)確的診斷方法,同時(shí),國(guó)際上也亟待一套規(guī)范化的診斷程序。血清學(xué)方法是狂犬病病毒實(shí)驗(yàn)室診斷的主要方法,快速、簡(jiǎn)便、低成本并以重組蛋白作為診斷抗原的血清學(xué)方法是現(xiàn)階段的發(fā)展趨勢(shì)。ELISA方法較為常用,適用于醫(yī)院內(nèi)大批量血液的篩查,也可用于確診。PCR方法作為血清學(xué)方法的有效補(bǔ)充,但引物的特異性和靈敏度仍待提高。RFFIT技術(shù)快速、精確和重復(fù)性好。LAMP檢測(cè)方法的優(yōu)點(diǎn)和血清學(xué)方法的優(yōu)點(diǎn)相似,但是其易污染。熒光定量PCR檢測(cè)是一種快速、靈敏、高特異性、污染率低以及可廣泛應(yīng)用于我國(guó)狂犬病病毒檢測(cè)的方法?;蛐酒夹g(shù)有效地克服了PCR易被污染的缺點(diǎn),具有高的靈敏度、特異性和可靠性。未來的發(fā)展趨勢(shì)是在這些診斷方法中篩選出簡(jiǎn)單、快速、準(zhǔn)確并且成本低、易推廣的診斷技術(shù)。
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