趙瑞杰, 孫 莉, 劉星苗, 梁 浩, 趙麗輝, 程 焱
羥基紅花黃色素A抑制腦組織蛋白質(zhì)硝基化的體外研究
趙瑞杰1, 孫 莉2, 劉星苗2, 梁 浩2, 趙麗輝1, 程 焱2
目的 研究羥基紅花黃色素A(HSYA)對(duì)體外亞鐵血紅素/亞硝酸鈉/過氧化氫(heme/NaNO2/ H2O2)途徑引起腦組織蛋白質(zhì)硝基化的抑制作用。方法 模擬體內(nèi)heme/NaNO2/H2O2硝基化途徑,分別以牛血清白蛋白和腦組織蛋白為硝基化底物,分為對(duì)照組及藥物干預(yù)組,HSYA的終濃度依次為0.01mmol/L、0.1mmol/L、1mmol/L。以Western blotting法檢測(cè)蛋白質(zhì)酪氨酸硝基化水平。結(jié)果 Heme/NaNO2/H2O2途徑可引起牛血清白蛋白和腦組織蛋白顯著的硝基化修飾,加入不同濃度HSYA后,蛋白質(zhì)硝基化水平均呈劑量依賴性地降低,其中以1mmol/L HSYA的抑制作用最明顯,與對(duì)照組相比,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均<0.05)。結(jié)論 HSYA可劑量依賴性地抑制heme/NaNO2/H2O2途徑在體外對(duì)腦組織蛋白的硝基化修飾;提示HSYA抑制蛋白質(zhì)硝基化反應(yīng)可能是其對(duì)抗腦血管疾病與神經(jīng)系統(tǒng)變性疾病的分子機(jī)制之一。
羥基紅花黃色素A;亞鐵血紅素;蛋白質(zhì)硝基化
氧化應(yīng)激狀態(tài)下,機(jī)體內(nèi)氧化系統(tǒng)與抗氧化防御系統(tǒng)的平衡遭到破壞,體內(nèi)生成過多的高活性分子如活性氧自由基(reactire oxygen species,ROS)和活性氮自由基(reactive nitrogen species,RNS)會(huì)導(dǎo)致氨基酸殘基氧化修飾及改變蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)與功能,引起組織損傷。3-硝基酪氨酸(3-nitrotyrosine,3-NT)作為RNS攻擊蛋白質(zhì)酪氨酸的產(chǎn)物,它的產(chǎn)生被認(rèn)為是體內(nèi)蛋白質(zhì)硝基化的標(biāo)志[1,2]。研究表明,體內(nèi)蛋白質(zhì)硝基化的兩條主要通路包括過氧亞硝基離子(peroxynitrite,ONOO-)依賴途徑和亞鐵血紅素/亞硝酸鈉/過氧化氫(heme/NaNO2/H2O2)途徑[1]。目前,對(duì)ONOO-依賴途徑關(guān)注較多,而對(duì)heme/NaNO2/H2O2途徑研究較少,但是在生理病理?xiàng)l件下,究竟哪種途徑起主要作用,還未有結(jié)論。紅花為菊科植物紅花(Carthamus tinctorius L)的干燥花,是傳統(tǒng)的活血化瘀類中藥。目前認(rèn)為,紅花活血化瘀的主要成分集中在水溶性的黃色素部分,紅花黃色素中含量最高且具有活性的成分為羥基紅花黃色素A(Hydroxysafflower yellow A,HSYA)[3]。研究表明,HSYA具有心腦血管保護(hù)作用,其機(jī)制與抑制血小板聚集、抗氧化應(yīng)激等作用有關(guān)[4~6]。本研究通過體外構(gòu)建heme/NaNO2/H2O2硝基化途徑,觀察該途徑能否產(chǎn)生腦組織蛋白質(zhì)硝基化修飾以及HSYA對(duì)該途徑引起的蛋白質(zhì)硝基化是否具有抑制作用,為HSYA在預(yù)防和治療腦血管疾病和神經(jīng)系統(tǒng)變性疾病等領(lǐng)域提供分子機(jī)制方面的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1 材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 健康雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠20只,體重340±10g,由中國(guó)人民解放軍軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。分籠喂養(yǎng),于室溫、自然光環(huán)境下給予充足的食物和水,自然晝夜循環(huán)。所有動(dòng)物均于實(shí)驗(yàn)室飼養(yǎng)1w后進(jìn)入實(shí)驗(yàn)。
1.1.2 主要試劑和藥品 (1)一抗:鼠抗硝基酪氨酸單克隆抗體(工作濃度為1∶1000)購(gòu)自美國(guó)Cayman Chemical公司;鼠抗甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)單克隆抗體(工作濃度為1∶1000)購(gòu)自北京中衫金橋生物技術(shù)有限公司。(2)二抗:辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的山羊抗鼠IgG(工作濃度為1∶2500)購(gòu)自北京中衫金橋生物技術(shù)有限公司。(3)其他試劑和藥品:氯化高鐵血紅素(ferriprotoporphyrin IX,Hemin)和牛血清白蛋白(BSA)為美國(guó)Sigma公司產(chǎn)品,Hemin溶于二甲亞砜(DMSO,美國(guó)Sigma公司)溶液中,儲(chǔ)存液濃度為10mmol/L,使用時(shí)以濃度為0.1mmol/L的氫氧化鈉稀釋至所需工作濃度,避免反復(fù)凍融;苯甲基磺酰氟(PMSF)為北京索萊寶科技有限公司產(chǎn)品;考馬斯亮蘭R-250為美國(guó)Amresco公司產(chǎn)品;Super ECL Plus超敏發(fā)光液為美國(guó)Pierce公司產(chǎn)品;聚偏二氟乙烯(PVDF)膜為美國(guó) Millipore公司產(chǎn)品;羥基紅花黃色素 A (Hydroxysafflor yellow A,HSYA)凍干粉由浙江永寧藥業(yè)股份有限公司惠贈(zèng);過氧化氫(H2O2)、亞硝酸鈉(NaNO2)均為國(guó)產(chǎn)分析純。
1.1.3 主要儀器 恒溫水浴箱購(gòu)自德國(guó)Julabo公司;Western blotting電泳與轉(zhuǎn)膜系統(tǒng)為美國(guó)BIO-RAD公司產(chǎn)品;低溫超速離心機(jī)為德國(guó)Heraeus公司產(chǎn)品;凝膠成像儀為美國(guó)Syngene公司產(chǎn)品。
1.2 方法
1.2.1 實(shí)驗(yàn)分組 (1)對(duì)照組:反應(yīng)底物為組織蛋白或BSA,反應(yīng)體系為hemin、NaNO2、H2O2; (2)低、中、高3個(gè)藥物濃度干預(yù)組:在對(duì)照組的基礎(chǔ)上分別加入終濃度為0.01mmol/L、0.1mmol/L、1mmol/L的HSYA。
1.2.2 組織蛋白提取 SD大鼠處置前12h禁食,自由飲水。10%水合氯醛麻醉后斷頭處死,冰盒內(nèi)快速分離大腦和心臟,用4℃生理鹽水漂洗組織,并仔細(xì)去除蛛網(wǎng)膜,用濾紙吸干組織表面的液體。組織稱重后,切碎置于4℃磷酸鹽緩沖液(50mmol/L,pH 7.4)中,并加入PMSF(終濃度為0.2mmol/L),于冰上研缽充分研磨,靜置30min,4℃13000r/min離心15min,取上清備用。Lowry法進(jìn)行蛋白濃度測(cè)定。
1.2.3 體外heme/NaNO2/H2O2途徑誘導(dǎo)蛋白質(zhì)硝基化 Heme/NaNO2/H2O2反應(yīng)體系:Hemin 100μmol/L、NaNO210mmol/L、H2O21mmol/L。不同濃度的 HSYA(終濃度分別為 0、0.01mmol/L、0.1mmol/L、1mmol/L)與BSA(終濃度為2mg/ml)或組織蛋白(終濃度為9mg/ml)37℃水浴預(yù)孵育5min,之后加入heme/NaNO2/H2O2反應(yīng)體系,繼續(xù)37℃水浴孵育30min,取出冰上終止反應(yīng)。
1.2.4 Western blotting法檢測(cè)3-NT表達(dá) 上述反應(yīng)液按照蛋白樣品體積與4×上樣緩沖液體積為3:1的比例加入4×上樣緩沖液,混合后煮沸15min,冰上冷卻。取50μg蛋白樣品上樣,于體積分?jǐn)?shù)為10%十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)中分離,初始階段維持電壓80V,待溴酚藍(lán)進(jìn)入分離膠時(shí)電壓調(diào)至150V,至溴酚藍(lán)跑出分離膠時(shí)終止電泳。轉(zhuǎn)至PVDF膜上,80V電壓共轉(zhuǎn)膜80min。磷酸鹽緩沖液沖洗PVDF膜10min(×3次),5%脫脂奶粉室溫封閉2h;加入一抗(鼠抗硝基酪氨酸單克隆抗體),于4℃孵育過夜;PVDF膜與辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗室溫孵育1h,磷酸鹽緩沖液沖洗5min(×3次)。Super ECL Plus超敏發(fā)光液按照比例(1∶1)混合后加于PVDF膜上,在凝膠成像系統(tǒng)中激發(fā),采集圖像。磷酸鹽緩沖液沖洗顯影后的PVDF膜5min(×3次),浸于10ml洗脫緩沖液[含62.50mmol/L Tris-HCI(pH值6.80),體積分?jǐn)?shù)為2%十二烷基磺酸鈉(SDS),100mmol/L β-巰基乙醇],55℃恒溫水浴箱孵育35min,磷酸鹽緩沖液沖洗5min(×3次),以GAPDH作為內(nèi)參照物,檢測(cè)步驟同上。Quantity One凝膠圖像分析軟件進(jìn)行灰度值分析,目的蛋白質(zhì)灰度值與參照物灰度值進(jìn)行對(duì)比。組織蛋白選用GAPDH作為內(nèi)參照物;而BSA電泳后的凝膠則用考馬斯亮蘭著色以測(cè)定其上樣總蛋白量。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 應(yīng)用SPSS 17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。所得實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以±s表示,兩樣本均數(shù)的比較采用兩獨(dú)立樣本的t檢驗(yàn);多個(gè)樣本均數(shù)間的比較采用單因素方差分析,兩兩比較行LSD-t檢驗(yàn)。以P≤0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 HSYA對(duì)體外heme/NaNO2/H2O2途徑引起B(yǎng)SA硝基化的影響 Western blotting檢測(cè)結(jié)果顯示,BSA在 heme/NaNO2/H2O2反應(yīng)體系(hemin 25μmol/L、NaNO25mmol/L、H2O21mmol/L)中孵育30min可被顯著硝基化,分別加入 0.01mmol/L、0.1mmol/L、1mmol/L HSYA,可不同程度地抑制該硝基化(Nitro-BSA)反應(yīng),以1mmol/L HSYA的抑制作用最明顯(見圖1),與對(duì)照組相比,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均<0.05,見表1)。
2.2 HSYA對(duì)體外heme/NaNO2/H2O2途徑引起腦組織蛋白質(zhì)硝基化的影響 以Western blotting法檢測(cè)腦組織蛋白質(zhì)體外硝基化水平,同時(shí)以心肌組織蛋白質(zhì)作為對(duì)照。結(jié)果顯示,在與BSA相同的heme/NaNO2/H2O2反應(yīng)體系中,腦組織蛋白質(zhì)未顯示硝基化反應(yīng),但心肌組織可檢測(cè)到3-NT的存在,1mmol/L HSYA可抑制心肌蛋白質(zhì)硝基化反應(yīng),與對(duì)照組相比,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見圖2、表2)。之后進(jìn)一步增加heme/NaNO2/H2O2體系的反應(yīng)濃度(hemin 100μmol/L、NaNO210mmol/L、H2O21mmol/L),腦組織可檢測(cè)到大量3-NT的存在;分別加入 0.01mmol/L、0.1mmol/L、1mmol/L HSYA,可不同程度地抑制該硝基化反應(yīng),以1mmol/ L HSYA的抑制作用最明顯(見圖3),與對(duì)照組相比,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P均<0.05,見表3)。
圖1 HSYA對(duì)體外heme/NaNO2/H2O2途徑引起B(yǎng)SA硝基化的影響
圖2 HSYA對(duì)體外heme/NaNO2/H2O2途徑引起心肌組織蛋白質(zhì)硝基化的影響
圖3 HSYA對(duì)體外heme/NaNO2/H2O2途徑引起腦組織蛋白質(zhì)硝基化的影響
表1 不同濃度HSYA干預(yù)后Nitro-BSA表達(dá)水平的比較(±s,相對(duì)灰度值)
表1 不同濃度HSYA干預(yù)后Nitro-BSA表達(dá)水平的比較(±s,相對(duì)灰度值)
組間兩兩比較行LSD-t檢驗(yàn):(1)∶(2)~(1)∶(4)P均= 0.000;(2)∶(3)P=0.001;(2)∶(4)與(3)∶(4)P均=0.000
組別 樣本例數(shù) Nitro-BSA F值 P值對(duì)照組(1)低濃度組(2)中濃度組(3)高濃度組(4) 5 5 5 5 2.31±0.06 1.55±0.09 1.37±0.05 0.74±0.05 490.852 0
表2 HSYA干預(yù)后心肌組織3-NT表達(dá)水平的比較(±s,相對(duì)灰度值)
表2 HSYA干預(yù)后心肌組織3-NT表達(dá)水平的比較(±s,相對(duì)灰度值)
組別 樣本例數(shù) 3-NT t值 P值對(duì)照組HSYA干預(yù)組5 5 21.68±1.36 15.40±1.24 7.599 0
表3 不同濃度HSYA干預(yù)后腦組織3-NT表達(dá)水平的比較(±s,相對(duì)灰度值)
表3 不同濃度HSYA干預(yù)后腦組織3-NT表達(dá)水平的比較(±s,相對(duì)灰度值)
組間兩兩比較行LSD-t檢驗(yàn):(1)∶(2)P=0.002;余P均= 0.000
組別 樣本例數(shù) 3-NT F值 P值對(duì)照組(1)低濃度組(2)中濃度組(3)高濃度組(4) 5 5 5 5 16.70±1.25 14.50±1.03 11.58±0.89 0.45±0.09 302.633 0
Heme/NaNO2/H2O2途徑是蛋白質(zhì)硝基化途徑之一,在該途徑中H2O2與NaNO2是使硝基化發(fā)生的必需物質(zhì)[7];heme的主要成分為原卟啉IX和鐵,而鐵是其發(fā)揮催化作用的關(guān)鍵物質(zhì)[7~9],在體內(nèi)主要存在于血紅蛋白、肌紅蛋白、細(xì)胞色素類物質(zhì)、過氧化物酶等含鐵卟啉的蛋白質(zhì)中。Hemin為heme的氧化形式,具有同樣的催化蛋白質(zhì)硝基化的作用[7]。BSA為牛血清中分子量為68kDa的球蛋白,成分比較單一,而腦組織中蛋白質(zhì)成分復(fù)雜,含有抗氧化與促氧化等物質(zhì),因此,我們?cè)隗w外構(gòu)建heme/ NaNO2/H2O2硝基化途徑,首先研究HSYA對(duì)BSA硝基化的抑制作用,在此基礎(chǔ)上,進(jìn)一步研究HSYA對(duì)腦組織蛋白質(zhì)硝基化的抑制作用。
本研究結(jié)果顯示,BSA在 heme/NaNO2/H2O2反應(yīng)體系中可被硝基化修飾;腦組織在該反應(yīng)體系中也可被硝基化,且表現(xiàn)為多種分子量的蛋白質(zhì)均可被硝基化。該結(jié)果提示,heme/NaNO2/H2O2途徑可能參與了病理情況下腦組織蛋白質(zhì)的硝基化修飾。Heme具有親脂性和較強(qiáng)的促硝基化效應(yīng),極易滲透細(xì)胞膜和細(xì)胞器膜,造成脂質(zhì)、DNA、細(xì)胞骨架的損傷[10]。大量研究表明,在發(fā)生出血性卒中、出血性腦梗死、顱腦創(chuàng)傷、神經(jīng)系統(tǒng)變性疾病等病理情況下,局部過量蓄積的 heme具有神經(jīng)毒性[10~19]。在發(fā)生出血性卒中后,富含血紅蛋白的紅細(xì)胞在病變局部蓄積,其分解后釋放出大量的heme,同時(shí)在出血性卒中引發(fā)的氧化應(yīng)激狀態(tài)下,NO2-與H2O2生成增多,使heme/NaNO2/H2O2途徑發(fā)生的可能性大大增加,導(dǎo)致蛋白質(zhì)硝基化修飾[15,16]。同時(shí)在某些神經(jīng)系統(tǒng)變性疾病(如帕金森病、阿爾茨海默病、肌萎縮側(cè)索硬化等)中神經(jīng)元蛋白質(zhì)硝基化也可能部分與heme或含heme的蛋白有關(guān)[17~19]。同時(shí)在這里值得提出的是,在與BSA相同的heme/NaNO2/H2O2反應(yīng)體系中,腦組織蛋白質(zhì)未顯示硝基化修飾,而心肌組織中可檢測(cè)到3-NT,可能與心肌組織本身富含肌紅蛋白有關(guān)。
在本研究中,HSYA對(duì)BSA和腦組織蛋白質(zhì)的硝基化修飾具有抑制作用,且該作用呈劑量依賴性;提示HSYA對(duì)heme/NaNO2/H2O2途徑誘導(dǎo)的蛋白質(zhì)硝基化反應(yīng)具有抑制作用。目前研究認(rèn)為,3-NT的生成是一種特殊的氧化反應(yīng)[1,20],因此應(yīng)用抗氧化劑通常是抑制自由基、鐵介導(dǎo)的蛋白質(zhì)硝基化的策略[8]。HSYA屬于黃酮類物質(zhì)中的查爾酮類,其分子中含多個(gè)酚羥基,而后者已被證明具有清除羥自由基、抑制脂質(zhì)過氧化等抗氧化功能[21]。因此推測(cè),HSYA抑制heme/NaNO2/H2O2途徑誘導(dǎo)的蛋白質(zhì)硝基化可能為其酚羥基的作用。與本研究結(jié)果相一致,黃酮類中的其他物質(zhì)(如黃芩素、槲皮素等)也被證明可抑制heme/NaNO2/H2O2途徑誘導(dǎo)的蛋白質(zhì)硝基化[22]。據(jù)此,我們推測(cè)HSYA對(duì)蛋白質(zhì)酪氨酸硝基化修飾的抑制作用與其抗氧化作用密不可分,這可能與其本身分子結(jié)構(gòu)和自由基清除能力有關(guān)。
綜上所述,羥基紅花黃色素A可劑量依賴性地抑制heme/NaNO2/H2O2途徑在體外對(duì)腦組織蛋白的硝基化修飾,提示這可能是其對(duì)抗腦血管疾病與神經(jīng)系統(tǒng)變性疾病的分子機(jī)制之一。
[1]Peluffo G,Radi R.Biochemistry of protein tyrosine nitration in cardiovascular pathology[J].Cardiovasc Res,2007,75(2):291-302.
[2]Pacher P,Beckman JS,Liaudet L.Nitric oxide and peroxynitrite in health and disease[J].Physiol Rev,2007,87(1):315-424.
[3]祝 明,郭增喜.紅花藥材中紅花黃色素含量的測(cè)定[J].中藥材,2000,23(8):458-459.
[4]Wei X,Liu H,Sun X,et al.Hydroxysafflor yellow A protects rat brains against ischemia-reperfusion injury by antioxidant action[J]. Neurosci Lett,2005,386(1):58-62.
[5]王 天,傅風(fēng)華,韓 冰,等.羥基紅花黃色素A對(duì)實(shí)驗(yàn)性心肌梗死大鼠的保護(hù)作用及機(jī)制[J].中草藥,2007,38(12):1853-1856.
[6]臧寶霞,金 鳴,司 南,等.羥基紅花黃色素A對(duì)血小板活化因子的拮抗作用[J].藥學(xué)學(xué)報(bào),2002,37(9):696-699.
[7]Bian K,Gao Z,Weisbrodt N,et al.The nature of heme/iron-induced protein tyrosine nitration[J].Proc Natl Acad Sci USA,2003,100 (10):5712-5717.
[8]Lu N,Zhou G,Pei D,et al.Peroxynitrite and heme protein-mediated nitrative/oxidative modification of human plasma protein:the role of free radical scavenging vs.complex forming[J].Toxicol In Vitro,2009,23(7):1227-1233.
[9]Lu N,Zhang M,Li H,et al.Completely different effects of desferrioxamine on hemin/nitrite/H2O2-induced bovine serum albumin nitration and oxidation[J].Chem Res Toxicol,2008,21(6):1229-1234.
[10]Jeney V,Balla J,Yachie A,et al.Pro-oxidant and cytotoxic effects of circulating heme[J].Blood,2002,100(3):879-887.
[11]Chen-Roetling J,Li Z,Chen M,et al.Heme oxygenase activity and hemoglobin neurotoxicity are attenuated by inhibitors of the MEK/ ERK pathway[J].Neuropharmacology,2009,56(5):922-928.
[12]Chen-Roetling J,Chen L,Regan RF.Apotransferrin protects cortical neurons from hemoglobin toxicity[J].Neuropharmacology,2011,60 (2-3):423-431.
[13]Dang TN,Robinson SR,Dringen R,et al.Uptake,metabolism and toxicity of hemin in cultured neurons[J].Neurochem Int,2011,58 (7):804-811.
[14]Benvenisti-Zarom L,Chen-Roetling J,Regan RF.Inhibition of the ERK/MAP kinase pathway attenuates heme oxygenase-1 expression and heme-mediated neuronal injury[J].Neurosci Lett,2006,398 (3):230-234.
[15]Robinson SR,Dang TN,Dringen R,et al.Hemin toxicity:a preventable source of brain damage following hemorrhagic stroke[J].Redox Rep,2009,14(6):228-235.
[16]Levy YS,Streifler JY,Panet H,et al.Hemin-induced apoptosis in PC12 and neuroblastoma cells:implications for local neuronal death associated with intracerebral hemorrhage[J].Neurotox Res,2002,4 (7-8):609-616.
[17]Zecca L,Youdim MB,Riederer P,et al.Iron,brain ageing and neurodegenerative disorders[J].Nat Rev Neurosci,2004,5(11):863-873.
[18]Lee DW,Andersen JK,Kaur D.Iron dysregulation and neurodegeneration:the molecular connection[J].Mol Interv,2006,6(2):89-97.
[19]Tohgi H,Abe T,Yamazaki K,et al.Remarkable increase in cerebrospinal fluid 3-nitrotyrosine in patients with sporadic amyotrophic lateral sclerosis[J].Ann Neurol,1999,46(1):129-131.
[20]陳剛領(lǐng),劉 俊,卞 卡.蛋白質(zhì)特殊氧化與疾病關(guān)系的研究進(jìn)展[J].中國(guó)藥理學(xué)通報(bào),2009,25(5):561-565.
[21]金 鳴,李金榮,吳 偉.紅花黃色素抗氧化作用的研究[J].中國(guó)中藥雜志,2004,29(5):447-449.
[22]Zhao Y,Li H,Gao Z,et al.Effects of flavonoids extracted from Scutellaria baicalensis Georgi on hemin-nitrite-H2O2induced liver injury[J].Eur J Pharmacol,2006,536(1-2):192-199.
Study on the inhibitory effect of Hydroxysafflor yellow A to brain protein nitration in vitro
ZHAO Rui-jie,SUN Li,LIU Xing-miao,et al.(Department of Neurology,People’s Hospital of Xingtai,Xingtai054031,China)
ObjectiveTo study the inhibitory effect of Hydroxysafflor yellow A(HSYA)on brain protein nitration induced by heme/NaNO2/H2O2system in vitro.MethodTo simulate in vivo heme/NaNO2/H2O2system-induced nitrative pathway,with bovine serum albumin(BSA)and brain protein for nitrification substrates respectively,preincubated with or without HSYA(at final concentrations of 0.01,0.1,1mmol/L)at 37℃ for 5min,and then Hemin,NaNO2,H2O2were added,the mixture was further incubated at 37℃ for 30 min,which could be detectable by Western blotting using anti-nitrotyrosine antibody.ResultsHeme/NaNO2/H2O2system could induce significant protein tyrosine nitrative modification to BSA and brain protein in vitro.HSYA pretreatment showed a very strong capacity to dose-dependently inhibitionion in 3-nitrotyrosine formation,especially at highest concentration(1mmol/L),the differences between with and without HSYA were statistically significant(P<0.05,for all).ConclusionHSYA could dose-dependently inhibit brain protein nitrative modification induced by heme/NaNO2/H2O2system in vitro,which may be one of the molecular mechanisms to against cerebrovascular and neurodegenerative diseases.
Hydroxysafflor yeHow A;Heme;Protein nitration
Q51
A
1003-2754(2013)03-0204-04
2012-11-01;
2013-01-12
國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(81070968)
(1.河北省邢臺(tái)市人民醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)二科,河北 邢臺(tái)054031;2.天津醫(yī)科大學(xué)總醫(yī)院天津市神經(jīng)病學(xué)研究所,天津300052)
孫 莉,E-mail:sunli_2000@hotmail.com