謝金文,沈 旭,林初文,沈志強
新城疫(Newcastle disease,ND)是由新城疫病毒(Newcastle disease virus,NDV)引起的多種禽類易感的一種急性、高度接觸性、毀滅性傳染病,也是目前嚴重危害我國養(yǎng)禽業(yè)的重要疫病之一。
反向遺傳學(xué)(reverse genetics)是相對經(jīng)典遺傳學(xué)而言的。經(jīng)典遺傳學(xué)是從生物的表型、性狀到遺傳物質(zhì)來研究生命的發(fā)生與發(fā)展規(guī)律,而反向遺傳學(xué)與經(jīng)典遺傳學(xué)的研究思路正好相反,是直接從生物遺傳物質(zhì)入手,通過對遺傳物質(zhì)進行加工和修飾來研究基因突變后產(chǎn)生的生物體的特性(表型和性狀等),從而確定生物體基因組的結(jié)構(gòu)與功能以及這些突變可能對生物體特性的影響。與之相關(guān)的各種研究技術(shù)統(tǒng)稱為反向遺傳學(xué)技術(shù)(reverse genetics manipulation technique)[1-3],主 要 包 括 RNA 干 擾(RNA interference,RNAi)技術(shù)、基因沉默技術(shù)、基因體外轉(zhuǎn)錄技術(shù)等,是DNA重組技術(shù)應(yīng)用范圍的擴展與延伸。目前,該技術(shù)已廣泛應(yīng)用于生命科學(xué)的各個研究領(lǐng)域,RNA病毒研究的快速發(fā)展正得益于此[4-7]。該方法不僅能夠研究病毒基因的功能,而且可以用病毒表達外源基因。
病毒載體(virus vector)是利用重組DNA技術(shù)將外源基因插入經(jīng)過改造的病毒基因組內(nèi)部,而后感染細胞,使外源基因在細胞內(nèi)得到有效表達。病毒載體作為一種常用于分子生物學(xué)的工具,多應(yīng)用于基礎(chǔ)研究、疫苗研究和基因治療等方向。隨著反向遺傳學(xué)技術(shù)的發(fā)展,催生出了許多RNA病毒載體,如新城疫病毒(NDV)載體等。隨著反向遺傳學(xué)操作技術(shù)的發(fā)展,越來越多的RNA病毒成為病毒載體的研究對象。
重組NDV作為活病毒載體疫苗具有極為突出的優(yōu)點:NDV弱毒疫苗長期以來一直用于家禽防疫,其安全有效性已被充分證明。NDV弱毒苗可同時誘導(dǎo)全身性體液免疫、局部黏膜免疫及細胞免疫的形成,產(chǎn)生更加全面、確實的保護。NDV可在體內(nèi)增殖并長期表達抗原基因,因此可以誘導(dǎo)持久的保護作用。NDV疫苗可通過飲水、噴霧、滴鼻、點眼或注射多種方式給苗,使用極為方便。NDV弱毒具有高滴度的雞胚生長特性,生產(chǎn)成本低廉。NDV遺傳相對穩(wěn)定,僅有一個血清型,毒株間發(fā)生重組及毒力返強可能性很小。復(fù)制過程在胞漿內(nèi)完成,從RNA到RNA,不存在DNA階段,故其基因組不會與宿主細胞DNA整合,沒有人工轉(zhuǎn)基因的風(fēng)險。NDV不能在人的正常細胞中復(fù)制,對人一般沒有感染性,即使是感染了野生型NDV也只是引起輕微的疾病。一般認為,NDV尤其是弱毒株對人類是安全的。因為上述諸多優(yōu)點,NDV作為病毒載體的應(yīng)用研究也受到了越來越多的關(guān)注[8-9]。本文即對新城疫病毒反向遺傳載體的應(yīng)用進展作一綜述。
早在2000年,Krishnamurphy等[10]即首次將氯霉素乙酰轉(zhuǎn)移酶基因(CAT)插人到中等毒力毒株Beaudette C株HN基因和L基因之間的間隔區(qū)構(gòu)建重組病毒。與親本株野生病毒相比,該重組病毒在雞胚成纖維細胞(CEF)上的復(fù)制速度和產(chǎn)量均有所下降,但是該重組病毒在CEF上能穩(wěn)定表達CAT活性8代以上,首次證明NDV可以作為外源基因的表達載體。
2001年,Nakaya T等[11]把流感病毒(Avian influenza viruses,AIV)A/WSN/33株的 HA 基因插入到NDV弱毒株Hitchner B1基因組的P基因和M基因之間,獲得了含有流感病毒HA基因的重組新城疫病毒rNDV/B1-HA。rNDV/B1-HA在雞胚連續(xù)傳10代后仍能穩(wěn)定地表達流感HA蛋白,并且重組病毒已經(jīng)致弱。動物實驗顯示重組rNDV/B1-HA對小鼠沒有毒性,小鼠免疫重組病毒后,能夠檢測到針對流感病毒HA的高滴度抗體,并且免疫小鼠能夠抵抗致死劑量流感病毒A/WSN/33的攻擊。該年,Huang等[12]將CAT基因插入 NDV La Sota株基因組的3′遠端緊靠NP基因位置,獲得含有CAT基因的重組新城疫病毒rLa Sota/CAT。連續(xù)傳代12次,該重組病毒仍能高水平的表達外源基因CAT,表達的CAT的活性是2000年Krishnamurphy等[10]構(gòu)建的重組病毒rNDV/BC/CAT表達的CAT活性的11倍。
2002年,Mebatsion等[13]運用反向遺傳學(xué)成功獲得了缺乏NP基因優(yōu)勢免疫抗原表位(IDE)的NDV。鼠肝炎病毒(MHV)S2糖蛋白的一個B細胞抗原表位插入到NP蛋白中來替代NP-IDE,表達MHV的重組病毒被成功的生成,用重組病毒免疫的雛雞能夠產(chǎn)生MHV S2糖蛋白的特異性抗體。因此,在NP基因的可突變區(qū)插入保護性表位構(gòu)建標(biāo)記疫苗,有助于在臨床上對NDV進行鑒別診斷。
2003年,Engel-Herbert等[14]把綠色熒光蛋白(GFP)基因插入新城疫病毒Clone 30毒株基因組的F基因和HN基因之間,獲得了重組病毒rNDV/GFP1。rNDV/GFP1在雞胚中可穩(wěn)定地表達GFP,并且其在雞胚中的增殖能力以及對雞胚的致病性與母本Clone 30毒株沒有明顯的區(qū)別。利用GFP的自發(fā)熒光特性,可以很容易的在器官和組織中發(fā)現(xiàn)感染的細胞,因此能夠更清楚地了解NDV在體內(nèi)的分布和致病性等情況,顯示了NDV作為疫苗載體的巨大潛力。同年,Zhao等[15]對NDV作為載體的可行性進行了深入研究。他們將人的分泌型堿性磷酸酶(SEAP)基團作為報告基因,分別插入NDV基因組的 NP-P、M-F、HN-L、基因組5′端,結(jié)果實驗中獲得的重組病毒都能夠不同程度地表達SEAP基因。
SEAP被插入的前3個位置,無論是在細胞上還是在雞胚上都能得到高效表達,3者之間的表達水平相當(dāng),且活性不受影響;而插入基因組5′端這個位置的重組病毒對SEAP基因的表達量則低了不少。從外源基因插入NDV的位置來看,其插入位置越接近NDV基因組的3′末端,其病毒蛋白表達水平有可能越高。實驗為以NDV為疫苗載體,插入一個或多個外源基因,構(gòu)建多價疫苗提供了更多的插入位點的選擇。
2004年,Huang等[16]又將雞傳染性法氏囊病毒(IBDV)變異株GLS-5的VP2基因插入到體內(nèi)復(fù)制能力較強、免疫原性良好的NDV La Sota疫苗株基因組的3′端,拯救出能夠表達VP2蛋白的重組新城疫病毒rLa Sota/VP2。該重組病毒在雞胚上連續(xù)傳12代均可保持遺傳性狀的穩(wěn)定和表達VP2蛋白,且VP2蛋白不整合到重組病毒粒子中;利用該重組株免疫2日齡SPF雛雞21d后,90%以上可有效抵御IBDV變異株GS-5及新城疫強毒Texas GB的攻擊;加強免疫后則可100%的保護。Nakaya等[17]利用反向遺傳技術(shù),將猴免疫缺陷癥病毒(Simian immunodeficiency virus,SIV)病毒的 Gag蛋白在NDV中進行了表達,發(fā)現(xiàn)拯救的重組病毒可誘導(dǎo)針對Gag蛋白的特異性細胞免疫反應(yīng)。進一步研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)用表達SIV Gag蛋白免疫原部分的重組AIV加強免疫后,則激發(fā)更強的免疫反應(yīng),表明重組的NDV或AIV可作為預(yù)防愛滋?。ˋIDS)或其他傳染病的候選疫苗。
2005年,Bukreyev A 等[18]將人Ⅲ 型副流感病毒HN基因插入NDV基因組的P基因與M基因之間,獲得重組新城疫病毒。動物實驗表明,免疫該重組病毒的試驗動物可產(chǎn)生針對副流感病毒HN蛋白的較高的抗體水平,能夠獲得較好的免疫效果。
2006年,南京農(nóng)業(yè)大學(xué)葛金英等[19]把表達野生型和突變型H5亞型高致病性禽流感HA基因插入到NDV La Sota株基因組的P基因和 M基因之間,獲得了含有禽流感病毒HA基因的重組新城疫病毒rLa Sota-HAmut。將rLa Sota-HAmut株和NDV La Sota株,感染CEF后收取細胞液,接種10日齡SPF雞胚,La Sota-HA株接種雞胚內(nèi)達到與親本La Sota疫苗株相似的生長滴度,接種9-10日齡SPF雞胚后120h內(nèi)不致死雞胚,并且免疫低日齡SPF雞可誘導(dǎo)高水平的NDV和H5N1亞型AIV特異保護性抗體反應(yīng),顯示該疫苗株作為活病毒載體疫苗具有高度安全、雞胚生長適應(yīng)性及良好的免疫原性。同年,Man等[20]以 NDV B1株為載體,構(gòu)建了能夠表達H7亞型禽流感病毒的HA蛋白的重組新城疫病毒,用該重組病毒免疫的雞可同時獲得抵抗NDV強毒和H7AIV的能力:免疫后的雛雞可以完全抵抗NDV強毒的攻擊,對H7N7高致病性AIV也有90%的保護率。Veits等[21]構(gòu)建了表達AIV H5亞型HA的NDV。在Clone 30株NDV F基因和HN基因之間插入高致病性禽流感 A/chicken/Italy/8/98 株 (H5N2 型 )HA 的ORF,記為NDVH5。然后在 NDVH5的基礎(chǔ)上NDV HA ORF內(nèi)的轉(zhuǎn)錄終止信號通過沉默突變被消除產(chǎn)生重組毒株NDVH5m。實驗結(jié)果表明,與NDVH5進行對照,NDVH5m產(chǎn)生了2.7倍的全長HA轉(zhuǎn)錄本,表達了較高水平的HA,同時也使較多的HA蛋白進入病毒外膜。1日齡雛雞腦內(nèi)接種后,2種重組病毒均無毒。用NDVH5m免疫雛雞后,再分別用致死劑量的velogenic型NDV或高致病性AIV進行攻毒,發(fā)現(xiàn)用NDVH5m誘導(dǎo)的NDV抗體和AIV抗體對雛雞有很好的保護率,異常的是流感病毒的脫落沒有被觀測到。此外,用NDVH5m免疫接種,在血清學(xué)上可將禽流感疫苗接種產(chǎn)生的抗體與野毒感染產(chǎn)生的NP蛋白抗體相區(qū)別。因此,重組體NDVH5m可作為一個非常合適的二價疫苗候選毒株。
2007 年,Dinapoli等[22]將 高 致 病 性 禽 流 感(HPAIV)H5N1HA基因插入新城疫病毒基因組中,研制出一種可表達HPAIV H5N1HA蛋白的試驗型弱毒疫苗,并將其直接接種呼吸道。研究表明:該疫苗可預(yù)防H5N1所帶來的死亡和降低發(fā)病率,此外還可誘導(dǎo)大量的黏膜免疫球蛋白A的反應(yīng)。在呼吸道誘導(dǎo)局部免疫反應(yīng)的最大特點是很可能在爆發(fā)或流行中減少或防止病毒傳染。該重組新城疫病毒是一個疫苗候選株,可用于臨床評價人類HPAIV疫苗。同年,Dinapoli等[23]還將與嚴重急性呼吸系統(tǒng)綜合征相關(guān)的冠狀病毒SARS-CoV的S蛋白插入NDV弱毒株的P-M位點,構(gòu)建了重組新城疫病毒表達載體。通過呼吸道用2個劑量的疫苗免疫非洲綠猴,其產(chǎn)生的中和抗體效價相當(dāng)于非洲綠猴免疫其他試驗制備的SARSV疫苗并再用SARSV攻毒產(chǎn)生二次反應(yīng)時的抗體效價。當(dāng)動物免疫重組病毒并用高劑量的SARSV攻毒時,在病毒復(fù)制的高峰期直接檢測肺組織病毒量,結(jié)果與對照組動物相比,免疫組動物肺部SARSV效價降低。證實其在靈長類動物中具有較好的免疫原性和保護性,是一種非常有潛力的疫苗載體。
2008年,葛金英等[24]又以La Sota株為載體,構(gòu)建了表達超強毒vvIBDV GX分離株VP2基因的重組 La Sota疫苗株rLa Sota-VP2。重組疫苗株rLa Sota-VP2以106.0EID50一次免疫7 日齡 SPF雛雞,免疫后3周對新城疫強毒致死攻擊100%保護,對vvIBDV攻擊免疫保護率達90%以上。重組病毒rLa Sota-VP2保持了La Sota親本疫苗株高滴度的雞胚生長特性、高度生物安全性及遺傳穩(wěn)定性。為研制傳染性法氏囊?。鲁且咧亟M二聯(lián)活載體疫苗奠定了基礎(chǔ)。
2009年,胡順林等[25]利用反向遺傳技術(shù)將NDV強毒株ZJ1的F裂解位點序列進行改造,成功拯救 出 重組 毒 株 NDV/ZJ1HN。利 用 NDV/ZJ1HN免疫2周齡雞,免疫后4周用基因Ⅶ型NDV強毒株進行攻毒可獲得比傳統(tǒng)疫苗La Sota株更好的免疫保護,提示NDV/ZJ1HN有可能作為一個理想候選疫苗株用于生產(chǎn)中對基因Ⅶ型NDV流行株的防控。同年,Nayak B等[26]將 H5N1亞型高致病 性禽 流感病 毒 A/Vietnam/1203/2004 的HA基因插入到NDV La Sota株中,獲得了含有禽流感病毒HA基因的重組新城疫病毒rNDV-HA,用其免疫14日齡SPF雞,免疫3周后對H5N1亞型禽流感病毒及新城疫強毒均具有較好的保護。陳化蘭等[27]應(yīng)用新城疫病毒為骨架的反向遺傳學(xué)平臺,得到表達H5N1亞型禽流感HA蛋白的重組病毒,動物實驗表明,免疫雞產(chǎn)生很強的抗體水平,能夠?qū)ν蛣e和不同型別的H5N1病毒攻擊產(chǎn)生保護力。
當(dāng)前,利用反向遺傳操作技術(shù),以NDV作為疫苗載體的研究已經(jīng)得到快速的發(fā)展。相信隨著分子生物學(xué)各項技術(shù)的發(fā)展,NDV作為一種有效的病毒載體定會受到越來越多的關(guān)注、具有越來越廣闊的應(yīng)用前景。
[1]Wang XL,Wang XL,Li XY,etal.Application of reverse genetics technique in Newcastle disease virus[J].Chin J Vet Sci,2008,28(5):618-622.(in Chinese)王學(xué)理,王興龍,李曉艷,等.反向遺傳操作在新城疫病毒中的應(yīng)用[J].中國獸醫(yī)學(xué)報,2008,28(5):618-622.
[2]Zhao CG,Song SL,Zhao JX,etal.Progress on technique of reverse genetics in Newcastle disease virus[J].Chin J Vet Med,2011,47(10):56-59.(in Chinese)趙長光,宋松林,趙繼勛,等.新城疫病毒反向遺傳技術(shù)研究進展[J].中國獸醫(yī)雜志,2011,47(10):56-59.
[3]Yang B,Wang XF,Wang FL.Application of reverse genetics techique[J].China Anim Husbandry Vet Med,2008,35(12):62-64.(in Chinese)楊彬,王雪峰,王鳳龍.反向遺傳學(xué)技術(shù)的應(yīng)用[J].中國畜牧獸醫(yī),2008,35(12):62-64.
[4]Chaudhry Y,Skinner MA,Goodfellow IG.Recovery of genetically defined murine norovirus in tissue culture by using a fowlpox virus expressing T7RNA polymerase[J].J Gen Virol,2007(8):2091-2100.DOI:10.1099/vir.0.82940-0
[5]Zuniga A,Wang Z,Liniger M,etal.Attenuated measles virus as a vaccine vector[J].Vaccine,2007,25(16):2974-2983.DOI:10.1016/j.vaccine.2007.01.064
[6]Kobayashi T,Antar AA,Boehme KW,etal.A plasmid-based reverse genetics system for animal double-stranded RNA viruses[J].Cell Host Microbe,2007,1(2):147-157.DOI:10.1016/j.chom.2007.03.003
[7]Zhang Y,Li L,Li X,etal.Technique of reverse genetics and its application in RNA virus[J].Progr Vet Med,2008,29(3):60-63.(in Chinese)張英,李莉,李旭,等.反向遺傳學(xué)技術(shù)及在RNA病毒研究中的應(yīng)用[J].動物醫(yī)學(xué)進展,2008,29(3):60-63.8Sun YZMu LZDing Z.Progress on the Newcastle disease virus vector[J].Progr Vet Med,2009,30(11):91-94.(in Chinese)孫玉章,母連志,丁壯.新城疫病毒載體研究進展[J].動物醫(yī)學(xué)進展,2009,30(11):91-94.
[9]Wang YS,You YJ,Duan ZQ.Progress on technique of reverse genetics in Newcastle disease virus[J].China Poultry,2009,31(23):58-61.(in Chinese)王延樹,尤永君,段占起.新城疫病毒反向遺傳技術(shù)的研究進展[J].中國家禽,2009,31(23):58-61.
[10]Krishnamurthy S,Huang ZH,Samal SK.Recovery of a virulent strain of Newcastle disease virus from cloned cDNA:expression of a foreign gene results in growth retardation and Attenuation[J].Virology,2000,278(1):168-182.DOI:10.1006/viro.2000.0618
[11]Nakaya T,Cros J,Park MS,etal.Recombinant Newcastle disease virus as a vaccine vector[J].J Virol,2001,75:11868-11873.DOI:10.1128/JVI.75.23.11868-11873.2001
[12]Huang ZH,Krishnamurthy S,Panda A,etal.High-level expression of a foreign gene from the most 3-proximal locus of a recombinant Newcastle disease virus[J].J Gen Viro1,2001,82(Pt 7):1729-1736.
[13]Mebatsion T,Koolen MJ,de Vaan LT,etal.Newcastle disease virus(NDV)marker vaccine:an immunodominant epitope on the nucleoprotein gene of NDV can be deleted or replaced by a foreign epitope[J].J Virol,2002,76(20):10138-10146.DOI:10.1128/JVI.76.20.10138-10146.2002
[14]Engel-Herbeat I,Werner O,Teitke JP.Characterization of a recombinant Newcastle disease virus expressing the green fluorescent protein[J].J Virol Met,2003,108(1):19-28.DOI:10.1016/S0166-0934(02)00247-1
[15]Zhao H,Peeters BP.Recombinant Newcastle disease virus as a viral vector:effect of genomic location of foreign gene on gene expression and virus replication[J].J Gen Virol,2003,84(4):781-788.DOI:10.1099/vir.0.18884-0
[16]Huang ZH,Elankumaran S,Yunus A,etal.A recombinant Newcastle disease virus(NDV)expressing VP2protein of infectious bursal disease virus(IBDV)protects against NDV and IBDV[J].J Virol,2004,78(18):10054-10063.DOI:10.1128/JVI.78.18.10054-10063.2004
[17]Nakaya Y,Nakaya T,Park MS,etal.Induction of cellular immune responses to simian immunodeficiency virus gag by two recombinant negative-strand RNA virus vectors[J].J Virol,2004,78(17):9366-9375.DOI:10.1128/JVI.78.17.9366-9375.2004
[18]Bukreyev A,Huang ZH,Yang L,etal.Recombinant Newcastle disease virus expressing a foreign viral antigen is atenuated and highly immunogenic in primates[J].J Virol,2005,79(21):13275-13284.DOI:10.1128/JVI.79.21.13275-13284.2005
[19]Ge JY.Reverse genetics manipulation fundamental and application of Newcastle disease virus[D].Nanjing:Nanjing Agricultural University,2006:75-79.(in Chinese)葛金英.新城疫病毒反向遺傳操作基礎(chǔ)與應(yīng)用研究[D .南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué),2006:75-91.
[20]Park MS,Steel J,García-Sastre A,etal.Engineered viral vaccine constructs with dual specificity:avian influenza and Newcastle disease[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2006,103(21):8203-8208.DOI:10.1073/pnas.0602566103
[21]Veits J,Wiesner D,F(xiàn)uchs W,etal.Newcastle disease virus expressing H5hemagg-lutinin gene protects chickens against Newcastle disease and avian influenza[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2006,103(21):8197-8202.DOI:10.1073/pnas.0602461103
[22]Dinapoli JM,Yang L,Suguitan A Jr,etal.Immunization of primates with a Newcastle disease virus-vectored vaccine via the respiratory tract induces a high titer of serum neutralizing antibodies against highly pathogenic Avian influenza virus[J].J Virol,2007,81(21):11560-11568.DOI:10.1128/JVI.00713-07
[23]Dinapoli JM,Kotelkin A,Yang L,etal.Newcastle disease virus,a host range-restricted virus ,as a vaccine vector for intranasal immunization against emerging pathogens[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2007,104(23):9788-9793.DOI:10.1073/pnas.0703584104
[24]Ge JYWen ZYGao HLetal.Generation of recombinant Newcastle disease virus LaSota vaccine strain expressing VP2 gene of very virulent infectious bursal disease virus isolated from cDNA clone[J].Scientia Agricultura Sinica,2008,41(1):243-251.(in Chinese)葛金英,溫志遠,高宏雷,等.表達傳染性法氏囊病毒超強毒株流行株VP2基因重組新城疫病毒La Sota疫苗株的構(gòu)建[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,41(1):243-251.
[25]Hu SL,Ma HL,Wu YT,etal.A vaccine candidate of attenuated genotype Ⅶ Newcastle disease virus generated by reverse genetics[J].Vaccine,2009,27(6):904-910.DOI:10.1016/j.vaccine.2008.11.091
[26]Nayak B,Rout SN,Kumar S,etal.Immunization of chickens with Newcastle disease virus expressing H5hemagglutinin protects against highly pathogenic H5N1avian influenza viruses[J].PLoS One,2009,4(8):e6509.DOI:10.1371/journal.pone.0006509
[27]Chen HL,Bu ZG.Development and application of avian influenza vaccines in China[J].Curr Top Microbiol Immunol,2009,333:153-162.DOI:10.1007/978-3-540-92165-3_7