梁國威,邵冬華,曹清蕓,王樹琴,王新華,徐雪松
(1.航天中心醫(yī)院 檢驗科,北京100049;2.吉林大學(xué)中日聯(lián)誼醫(yī)院,吉林 長春130033)
2005年多個研究組同時發(fā)現(xiàn)JAK2V617F(JAK2蛋白酪氨酸激酶基因)第1849位點突變(G>T)與骨髓增殖性疾?。∕PDs)有關(guān),該突變可明顯導(dǎo)致真性紅細(xì)胞增多癥(PV)、特發(fā)性血小板增多癥(ET)和骨髓纖維化(IMF)的發(fā)生和發(fā)展[1-5]。2008年世界衛(wèi)生組織(WHO)將JAK2V617F突變納入到上述疾病的診斷標(biāo)準(zhǔn)中[6]。由于JAK2 V617F是獲得性造血干細(xì)胞突變,骨髓和外周血中JAK2V617F呈不同細(xì)胞系的突變。Xu X[7]等報道在37例非MDPs診斷的JAK2V617F患者中,有25例JAK2V617F突變率小于5%,因此,對于JAK2V617F檢測方法的敏感性,特別是少量突變克隆株的檢測,顯得尤為重要。
2008年,LI等[8]報道較低變性溫度下復(fù)合擴增聚合酶鏈反應(yīng)(COLD-PCR)可顯著提高少量突變的檢出率。其中快速COLD-PCR適用于變性溫度(Tc)值降低的突變,其原理是(1)任何一段DNA序列都有其嚴(yán)格、特定的Tc值,Tc值不同可致擴增效率產(chǎn)生巨大差異;(2)當(dāng)PCR反應(yīng)的Tc值設(shè)定在突變(如G:C>A:T;G:C>T:A等)DNA序列時,由于該Tc值低于野生型DNA片段,導(dǎo)致PCR擴增中野生型DNA片段的雙鏈大部分不能完全打開,而該Tc值可使得突變型DNA片段大部分雙鏈打開,由此即可實現(xiàn)對突變型DNA片段進行富集,然后進行分析。
由于JAK2V617F突變是G>T點突變,適合快速COLD-PCR方法,因此,本研究采用TaqMan/MGB突變探針作為突變堿基的指示信號,結(jié)合快速COLD-PCR原理,建立高敏感性的在外周血基因組DNA中定量檢測JAK2V617F的突變率的Taq-Man-COLD-PCR方法。
1.1 純合野生、純合突變和外周血基因組DNA提取 采用天根生化科技(北京)有限公司的血液、細(xì)胞、組織基因組DNA提取試劑盒(目錄號:DP304-02),按試劑盒說明操作。提取的基因組DNA在-80℃凍存?zhèn)溆?。其中純合JAK2V617F突變細(xì)胞株(HEL,人紅白細(xì)胞白血病細(xì)胞,購自中國科學(xué)院細(xì)胞庫)經(jīng)細(xì)胞培養(yǎng)至指數(shù)增長期后,提取基因組DNA;純合野生(健康志愿者)和患者EDTA抗凝外周全血200μl用于基因組DNA提取。
1.2 質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的制備和基因組DNA濃度校準(zhǔn)采用特異引物分別擴增純合突變和純合野生JAK2基因中第13外顯子至第14-15間內(nèi)含子共計1 818 bp,按常規(guī)方法構(gòu)建JAK2V617F野生和突變質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品,構(gòu)建的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品經(jīng)測序確認(rèn),并根據(jù)重組質(zhì)粒分子量將質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品換算并稀釋成1×109~1×105拷貝數(shù)/ml。以質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品作為實時熒光定量PCR檢測標(biāo)準(zhǔn)曲線,將提取的HEL細(xì)胞株、健康志愿者和患者外周血基因組DNA的濃度校準(zhǔn)為5.0×107拷貝數(shù)/ml。
1.3 JAK2V617F突變率標(biāo)準(zhǔn)品配制 將濃度為5.0×107拷貝數(shù)/ml的健康志愿者基因組DNA作為稀釋基質(zhì),加入同等濃度的HEL細(xì)胞基因組DNA,進行濃度梯度稀釋,配制成100%-0.1%的JAK2V617F突變標(biāo)準(zhǔn)品。
1.4 TaqMan-COLD-PCR引物和探針 上游引物:5′-TTG AAG CAG CAA GTA TGA TGA GC-3′;下游引物:5′-AGA AAG GCA TTA GAA AGC CTG TAG T-3′(由北京賽百盛基因技術(shù)有限公司合成)。TaqMan/MGB突變探針:與突變堿基匹配(其中下劃線堿基是突變堿基),5′-FAM-TCC ACA GAA ACA TAC-MGBNFQ-3′;TaqMan/MGB通用探針:避開突變堿基,其與突變和野生皆可完全匹配,5′-VIC-ACA TAC TCC ATA ATT TA-MGBNFQ-3′,TaqMan/MGB探針由美國ABI公司合成。
1.5 檢測儀器和反應(yīng)體系構(gòu)成 20μl反應(yīng)體系,包括Taqman GT Master Mix 2×(購自美國ABI公司,目錄號:4371355)10μl,探針1μl(終濃度0.25μM),上、下游引物各2μl(終濃度分別是0.2 μM),模板2μl(濃度5.0×107拷貝數(shù)/ml),水2 μl。其中,濃度校準(zhǔn)和選擇TaqMan-COLD-PCR 的Tc值時,采用TaqMan/MGB通用探針;檢測JAK2 V617F突變率的標(biāo)準(zhǔn)曲線和標(biāo)本檢測采用Taq-Man/MGB突變探針。濃度校準(zhǔn)儀器采用7500Real-Time PCR系統(tǒng)(美國ABI公司 );TaqMan-COLD-PCR Tc值的選擇和檢測方法建立采用Rotor-Gene Q real-time PCR分析系統(tǒng) (美國QIAGEN公司)。
1.6 擴增條件 TaqMan-COLD-PCR Tc值的選擇:(1)95℃,10min;(2)95℃-76℃,15s,62℃,40 s(讀熒光值),50個循環(huán),以確定最佳Tc值。JAK2 V617F突變率檢測:(1)95℃,10min,(2)95℃,15 s;62℃,40s;8個循環(huán),(3)79.0℃,15s;62℃,60s(讀熒光值);50個循環(huán)。
1.7 臨床標(biāo)本檢測 共計9例患者,其中真性紅細(xì)胞增多癥患者(PV)8例,骨髓纖維化患者(IMF)1例,采用建立的 TaqMan-COLD-PCR方法檢測JAK2V617F突變率,測序確認(rèn)。
1.8 統(tǒng)計學(xué)方法 JAK2V617突變率與循環(huán)閾值(Ct值)間的相互關(guān)系和定標(biāo)曲線的建立采用直線回歸分析,采用SPSS10.0統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計分析,以P<0.05作為差別有顯著性的標(biāo)準(zhǔn)。
2.1 選擇 TaqMan-COLD-PCR 的Tc值 分別以5.0×107拷貝數(shù)/ml濃度的人HEL細(xì)胞株和健康志愿者外周血基因組DNA作為模板,以TaqMan/MGB通用探針作為檢測信號,逐漸降低變性溫度,由95.0℃降至78.7℃。根據(jù)以下原則確定Taq-Man-COLD-PCR的Tc值:(1)突變和野生反應(yīng)體系擴增曲線的Ct值差別最大;(2)突變反應(yīng)體系的擴增效率最佳;最終確定TaqMan-COLD-PCR的Tc值是79.0℃,見圖1。
2.2 TaqMan-COLD-PCR檢測JAK2V617F突變率標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立 將Tc值設(shè)定為79.0℃,將濃度5.0×107拷貝數(shù)/ml的含有100%、10%、1%和0.1%的JAK2V617突變的標(biāo)準(zhǔn)品同時重復(fù)測定2次。結(jié)果顯示,檢測突變率的下限是0.1%,JAK2突變率的對數(shù)值與Ct值間呈線性關(guān)系,線性回歸分析顯示:r=0.993,P<0.001,線性回歸方程是:y=-0.196x+4.186。因此,根據(jù)測定的患者標(biāo)本Ct值,通過回歸方程計算即可獲得該患者JAK2 V617F突變率,計算公式是:JAK2V617F突變率=10(4.186-0.196×Ct值)。見圖2。
圖1 TaqMan-COLD-PCR選擇Tc值的擴增曲線圖
2.3 TaqMan-COLD-PCR方法檢測患者標(biāo)本結(jié)果
測定體系包括100%-0.1%突變率標(biāo)準(zhǔn)品和100%野生純合標(biāo)準(zhǔn)品作為陰性對照,采用建立的TaqMan-COLD-PCR方法對9例患者標(biāo)本進行檢測,擴增曲線見圖3。測定的9例患者中,真紅8例,骨髓纖維化1例,8例真紅中的6例患者JAK2 V617F突變率為18.5%-50.9%,2例真紅和1例骨髓纖維化患者JAK2突變率為陰性。
圖2 TaqMan-COLD-PCR檢測JAK2V617F突變率PCR擴增曲線圖和定標(biāo)曲線圖
圖3 TaqMan-COLD-PCR測定9例患者標(biāo)本擴增曲線圖
2.4 患者標(biāo)本測序結(jié)果
將9例患者標(biāo)本通過常規(guī)PCR擴增后測序(擴增條件和引物同質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品的制備),結(jié)果顯示,TaqMan-COLD-PCR與測序結(jié)果全部符合。見圖4。
本研究采用TaqMan/MGB探針作為檢測信號,結(jié)合COLD-PCR擴增原理,成功建立了在外周血中定量檢測JAK2V617F突變率的TaqMan-COLD-PCR方法,該方法通過測定患者外周血基因組DNA的Ct值,再根據(jù)突變率與Ct值的標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程,計算該測定標(biāo)本中JAK2V617F的突變率。所建立 TaqMan-COLD-PCR 檢測方法 可 對JAK2V617F突變率進行定量檢測,并具有高突變檢測敏感性、高通量檢測、快速和無污染等特點,由于采用外周血標(biāo)本進行檢測,還具有操作簡單的特點。
本研究建立的JAK2V617F突變率檢測方法的檢測下限是0.1%,明顯優(yōu)于其它JAK2V617F的檢測方法。文獻(xiàn)報道,DNA直接測序方法檢測突變率的下限為20%[3];等位基因特異PCR方法 敏感性為1%-3%[9];熒光定量PCR-ARMS原理和溶解曲線方法的敏感性為1%[10,11],限制性片段長度多態(tài)性 (RFLP)的敏感性為20% 左右[4]。由 于JAK2V617F已作為骨髓增殖性疾病重要的分子診斷標(biāo)志物,提高該突變檢測下限的敏感度將有助于臨床對該類疾病的早期診斷。
圖4 9例患者外周血基因組DNA中JAK2 V617F突變測序結(jié)果
COLD-PCR檢測微量突變的原理是基于相同的DNA序列中野生和突變的變性溫度不同所導(dǎo)致的擴增效率差異,對于G:C與T:A的突變導(dǎo)致Tc值僅存在1℃的差異[12],本研究在 TaqMan-COLDPCR Tc值的選擇中也觀察到突變和野生間的擴增效率差異僅相差1℃(79.6℃-78.7℃),在既保證擴增效率又保證擴增效率差異的條件下,每0.1℃的變性溫度改變都對實驗有明顯影響,因此,選擇高精度溫控的PCR擴增儀非常重要,PCR分析儀升溫達(dá)到Tc值的溫度過沖和孔間溫差是影響本實驗精確度和重復(fù)性的關(guān)鍵因素。
由于JAK2V617F是獲得性造血干細(xì)胞突變,因此骨髓和外周血中JAK2V617F呈不同細(xì)胞系的突變。在外周血中,除粒系外,其它細(xì)胞系的基因組DNA 中皆不攜帶JAK2V617F突變[1,2,4],因此,采用外周血基因組DNA檢測JAK2V617F突變率不能達(dá)到100%。本研究通過建立的TaqMan-COLD-PCR方法測定了9例患者外周血中JAK2V617F突變情況,其中6例陽性患者的JAK2V617F突變率為18.5%-50.9%,除外淋巴細(xì)胞基因組后,6例患者外周血中JAK2V617F突變率是26.2%-62.3%。
采用紫外分光光度計進行基因組DNA濃度校準(zhǔn),通過Real-time PCR定量檢測時,其拷貝數(shù)/ml并不相同,因此本研究首先對所有的基因組DNA中JAK2基因拷貝數(shù)/ml的濃度進行校準(zhǔn),然后再進行JAK2V617F突變率標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立和患者標(biāo)本檢測。通過對基因組DNA進行拷貝數(shù)/ml的濃度校準(zhǔn),使得本研究中JAK2V617F突變率的檢測更為準(zhǔn)確。
綜上所述,本研究建立的TaqMan-COLD-PCR方法,以外周血基因組DNA作為檢測標(biāo)本,可對JAK2V617F突變率進行定量檢測,突變率檢測下限為0.1%,該方法在一個反應(yīng)體系內(nèi)即可完成檢測,具有操作簡單、高通量檢測標(biāo)本、重復(fù)性好、檢測報告時間短等特點。由于JAK2V617F突變已作為骨髓增殖性疾病的分子診斷標(biāo)志物,該方法將明顯提高骨髓增殖性疾病的診斷靈敏度,并有助于上述疾病治療過程中治療效果的監(jiān)測。
[1]James C,Ugo V,Le Couedic JP,et al.A unique clonal JAK2mutation leading to constitutive signalling causes polycythaemia vera[J].Nature,2005,434(7037):1144.
[2]Kralovics R,Passamonti F,Buser AS,et al.A gain-of-function mutation of JAK2in myeloproliferative disorders[J].N Engl J Med,2005,352(17):1779.
[3]Levine RL,Wadleigh M,Cools J,et al.Activating mutation in the tyrosine kinase JAK2in polycythemia vera,essential thrombocythemia,and myeloid metaplasia with myelofibrosis[J].Cancer Cell,2005,7(4):387.
[4]Baxter EJ,Scott LM,Campbell PJ,et al.Acquired mutation of the tyrosine kinase JAK2in human myeloproliferative disorders[J].Lancet,2005,365(9464):1054.
[5]Zhao R,Xing S,Li Z,et al.Identification of an acquired JAK2mutation in polycythemia vera[J].J Biol Chem,2005,280(24):22788.
[6]Tefferi A,Vardiman JW.Classification and diagnosis of myeloproliferative neoplasms:the 2008World Health Organization criteria and point-of-care diagnostic algorithms[J].Leukemia,2008,22:14.
[7]Xu X,Zhang Q,Luo J,et al.JAK2(V617F):Prevalence in a large Chinese hospital population[J].Blood,2007,109(1):339.
[8]Li J,Wang L,Mamon H,et al.Replacing PCR with COLD-PCR enriches variant DNA sequences and redefines the sensitivity of genetic testing[J].Nat Med,2008,14(5):579.
[9]Jones AV,Kreil S,Zoi K,et al.Widespread occurrence of the JAK2V617Fmutation in chronic myeloproliferative disorders[J].Blood,2005,106(6):2162.
[10]James C,Delhommeau F,Marzac C,et al.Detection of JAK2 V617Fas a first intention diagnostic test for erythrocytosis[J].Leukemia,2006,20(2):350.
[11]McClure R,Mai M,Lasho T.Validation of two clinically useful assays for evaluation of JAK2V617Fmutation in chronic myeloproliferative disorders[J].Leukemia,2006,20(1):168.
[12]Liew M,Pryor R,Palais R,et al.Genotyping of single-nucleotide polymorphisms by high-resolution melting of small amplicons[J].Clin Chem,2004,50(7):1156.