林喜秀瞿樹林周桔張沙駱劉文鋒劉銘
1湖南師范大學(xué)醫(yī)學(xué)院生理教研室(長沙410013) 2中南大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院
低氧訓(xùn)練研究始于血液成分[1]。之后,關(guān)于心臟功能[2]、肺通氣量[3]等的研究表明:低氧訓(xùn)練利用低氧刺激保護(hù)機(jī)體,提高機(jī)體轉(zhuǎn)運(yùn)氧的能力。不同氧濃度(海拔高度)、低氧刺激時(shí)間、刺激方式等對(duì)機(jī)體細(xì)胞凋亡的影響各異。耐力訓(xùn)練可提高機(jī)體抗疲勞和恢復(fù)能力[4],抑制細(xì)胞凋亡[5];急性、大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)[6,7]及力竭運(yùn)動(dòng)可引起缺血再灌注損傷,細(xì)胞凋亡增加[8]。
低氧訓(xùn)練時(shí),機(jī)體既承受運(yùn)動(dòng)負(fù)荷,同時(shí)處于低氧環(huán)境。那么,心、肝、腎、腦組織如何適應(yīng)這種變化?各組織的細(xì)胞凋亡與不同低氧訓(xùn)練刺激時(shí)間的關(guān)系怎樣?低氧訓(xùn)練后力竭運(yùn)動(dòng)對(duì)機(jī)體不同器官細(xì)胞凋亡及機(jī)制的研究報(bào)道較少。鑒于此,本實(shí)驗(yàn)通過觀察低氧訓(xùn)練后力竭運(yùn)動(dòng)大鼠心、肝、腎、海馬組織細(xì)胞凋亡及HIF-1α、Bcl-2和Bax表達(dá)情況,探討運(yùn)動(dòng)與低氧適應(yīng)的機(jī)理。
70只2~3月齡SD大鼠購于湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物學(xué)部,按體重分層,隨機(jī)分為7組,每組10只,即正常對(duì)照組(A)、高住 8 h 組(B)、高住 12 h 組(C)、常氧運(yùn)動(dòng)組(D)、8 h 高住低練組(E)、12 h 高住低練組(F)和一次力竭運(yùn)動(dòng)組(G)。 D、E、F 組大鼠每天在坡度為0的動(dòng)物跑臺(tái)上以25 m/min的速度訓(xùn)練1 h。每天訓(xùn)練結(jié)束后,將B、E組和C、F組依次放入氧濃度為12.5%(相當(dāng)于海拔4000 m)的低氧艙內(nèi)8 h和12 h。實(shí)驗(yàn)周期為4周,5 d/周。最后一次訓(xùn)練,B、C、D、E、F、G 組均以 25 m/min 的速度跑至力竭。訓(xùn)練中,有時(shí)采用聲、光或毛刷等刺激,偶爾用電刺激,使大鼠持續(xù)運(yùn)動(dòng),保證運(yùn)動(dòng)強(qiáng)度一致。力竭標(biāo)準(zhǔn)參考文獻(xiàn)[9]。實(shí)驗(yàn)過程中,動(dòng)物飼養(yǎng)環(huán)境溫度為25±3℃,自然光照,所有動(dòng)物均自由飲食。動(dòng)物及飼料由湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物學(xué)部提供。
各組動(dòng)物均于最后一次訓(xùn)練后24 h,采用軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院生產(chǎn)的速眠新II(0.8~1.2 ml/kg)腹腔注射麻醉后心臟取血處死,仰臥位固定于手術(shù)臺(tái)上。剪開腹壁,小心切取切取心尖組織、肝左側(cè)葉、腎皮髓質(zhì)交界處、海馬CA1區(qū)組織。
美國Hypoxico公司制造的低氧分壓系統(tǒng),美國TOXIBLAEPGM-36型氧氣監(jiān)測(cè)儀,日本奧林巴斯株式會(huì)社OLYMPUS BX52顯微照相圖像采集系統(tǒng),美國AO公司AG325R型切片機(jī)。
1.4.1 HE染色
將心、肝、腎、海馬組織標(biāo)本置于4%多聚甲醛磷酸緩沖液(0.1M,pH 7.4)中固定約24 h后,常規(guī)石蠟包埋,切片,厚5 μm。再按常規(guī)脫蠟、染色、封片。
1.4.2 HIF-1α、Bcl-2及Bax免疫組化染色
HIF-1α、Bcl-2和Bax蛋白免疫組織化學(xué)檢測(cè)試劑盒由北京中杉金橋生物工程有限公司提供,Santa Cruz Biotechnology LNC公司產(chǎn)品。心、肝、腎、海馬組織石蠟切片放于二甲苯5 min×2次;置于100%、95%、85%乙醇中各2 min復(fù)水;自來水沖洗;3%H2O2室溫孵育10 min;蒸餾水沖洗;PBS浸泡5 min;將切片浸入檸檬酸酸鹽抗原修復(fù)液(pH 6.0)后放入微波爐中加熱15 min,間斷2 min后,再加熱5 min;室溫冷卻后經(jīng)PBS沖洗,5 min×3次;正常山羊血清封閉,室溫孵育10 min,傾去;滴加一抗(Bcl-2和Bax均為1?50);4℃濕盒過夜;次日取出恢復(fù)至室溫后,PBS沖洗5 min×3次;滴加二抗工作液,37℃孵育 30 min;PBS沖洗 5 min×3次;DAB 顯色 5 min;自來水沖洗;蘇木素復(fù)染4 min;自來水沖洗;1%鹽酸酒精分色:自來水沖洗;烤片;封片。HIF-1α蛋白是一種核蛋白,因而在顯微鏡下觀察發(fā)現(xiàn):棕色或棕褐色顆粒主要顯現(xiàn)在組織細(xì)胞核上。Bcl-2、Bax蛋白的表達(dá)產(chǎn)物呈棕黃色顆粒狀,位于胞漿,偶見胞膜(或)核膜,細(xì)胞核被蘇木素復(fù)染成藍(lán)色。在光學(xué)顯微鏡(×400)下每張切片隨機(jī)觀察6個(gè)視野(向同一方向移動(dòng)切片,不重復(fù),不重疊),以Simple PCI圖像分析軟件測(cè)試陽性產(chǎn)物的表達(dá)。采用一定面積中光密度值與陽性面積值的乘積作為陽性指數(shù)(positive index,PI),即陽性指數(shù)=陽性強(qiáng)度光密度值×陽性反應(yīng)面積/測(cè)量面積[10]。
1.4.3 細(xì)胞凋亡檢測(cè)
末端脫氧核苷酸轉(zhuǎn)移酶介導(dǎo)的dUTP缺口末端標(biāo)記法 (terminal deoxynucleotydyl transferase-mediated dUTP nick end labeling,TUNEL)檢測(cè)細(xì)胞凋亡。心、肝、腎、海馬組織石蠟切片常規(guī)脫蠟水化;抗原修復(fù);內(nèi)源性過氧化物酶的阻斷;標(biāo)記;信號(hào)轉(zhuǎn)化和分析;顯色;復(fù)染;梯度酒精脫水、二甲苯透明、中性樹膠封片、鏡檢。普通光學(xué)顯微鏡觀察,陽性凋亡細(xì)胞表現(xiàn)為細(xì)胞核呈棕色或棕褐色著染,部分胞漿也可因胞核DNA碎片溢出而呈陽性著染;正常非凋亡細(xì)胞和陰性對(duì)照細(xì)胞核被蘇木素復(fù)染成藍(lán)色,核相對(duì)較大,形態(tài)大小一致。
用Motic B5顯微攝像系統(tǒng)和MIAS醫(yī)學(xué)圖像分析系統(tǒng)攝像計(jì)數(shù)。光學(xué)顯微鏡(×400)下每張切片隨機(jī)觀察6個(gè)視野,每個(gè)視野至少500個(gè)細(xì)胞水平,以Simple PCI顯微圖像分析軟件計(jì)算每100個(gè)觀察細(xì)胞中的平均陽性凋亡細(xì)胞數(shù),即凋亡指數(shù)(Apoptosis Index,AI)。
表1顯示,兩高住組、常氧運(yùn)動(dòng)組、8 h高住低練組的運(yùn)動(dòng)時(shí)間比12 h高住低練組及一次力竭運(yùn)動(dòng)組明顯延長,有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
表1 各組大鼠運(yùn)動(dòng)至力竭時(shí)間比較
正常對(duì)照組和高住8 h組大鼠心、肝、腎組織細(xì)胞結(jié)構(gòu)完整。高住12 h組、常氧運(yùn)動(dòng)組和8 h高住低練組心尖、肝、腎小球、腎小管上皮細(xì)胞結(jié)構(gòu)未見明顯改變,組織細(xì)胞形態(tài)無異常改變。一次力竭運(yùn)動(dòng)組和12 h高住低練組心、肝細(xì)胞明顯腫脹,間隙明顯增大,細(xì)胞核染色質(zhì)固縮,集聚于核膜周邊,細(xì)胞體變?。荒I小管上皮細(xì)胞水腫樣變性,以近曲小管為重,腎小管管腔擴(kuò)張,管內(nèi)可見管形和脫落細(xì)胞;上皮細(xì)胞核染色質(zhì)集聚周邊,胞漿空泡樣變性(見圖1所示)。常氧運(yùn)動(dòng)組和一次力竭運(yùn)動(dòng)組海馬CA1區(qū)組織改變最明顯,排列散亂,層次不完整,稀疏分布不均勻。
圖2顯示:隨低氧時(shí)間延長,心組織凋亡細(xì)胞逐漸增多。高住8 h組偶見陽染顆粒,高住12 h組陽染顆粒有所增加,12 h高住低練組出現(xiàn)較多散在的陽染顆粒;8 h高住低練組海馬區(qū)可見較多陽性凋亡細(xì)胞,隨低氧時(shí)間延長,海馬組織凋亡細(xì)胞減少。
表2 各組大鼠心、肝、腎、海馬組織細(xì)胞凋亡指數(shù)(AI)比較(%)
表2顯示:與正常對(duì)照組相比,高住12 h組、常氧運(yùn)動(dòng)組、8 h高住低練組和一次力竭運(yùn)動(dòng)組心、肝、腎凋亡指數(shù)均顯著增加(P<0.05),而 8 h、12 h高住低練組海馬組織與正常對(duì)照組相比升高但無顯著性差異。12小時(shí)高住低練組海馬凋亡指數(shù)與常氧運(yùn)動(dòng)組比較顯著增加(P<0.05);與一次力竭運(yùn)動(dòng)相比,高住組、常氧運(yùn)動(dòng)組、8 h高住低練組海馬區(qū)凋亡指數(shù)均明顯降低(P<0.05)。12小時(shí)高住低練組心、肝、腎凋亡指數(shù)較8小時(shí)高住組顯著增加(P<0.05)。
2.4.1 Bax
Bax蛋白主要表達(dá)于細(xì)胞漿,也可見細(xì)胞膜和細(xì)胞漿同時(shí)著色,呈淡棕黃色或棕色,呈鏃狀分布和(或)片狀分布。在顯微鏡下觀察,將切片內(nèi)陽性細(xì)胞率<10%定為陰性顯色,丟棄,不進(jìn)行照像和分析處理;將切片內(nèi)陽性細(xì)胞率≥10%定為陽性顯色,進(jìn)行照像并采集數(shù)據(jù)分析。
常氧對(duì)照組偶見非常淺的Bax蛋白陽性物質(zhì),灰度較弱;低氧對(duì)照組陽性表達(dá)增多,細(xì)胞膜上也有少量表達(dá);常氧運(yùn)動(dòng)組心、肝、腎組織胞漿和胞膜可見較多Bax蛋白表達(dá),呈鏃狀、片狀分布;高住低練8 h組心、肝、腎細(xì)胞漿可見較多陽性物;高住低練12 h組及一次力竭運(yùn)動(dòng)組心、肝、腎細(xì)胞漿和細(xì)胞膜均有陽性物質(zhì),面積較大,呈鏃狀、片狀分布(見圖3腎組織);而正常對(duì)照組、低氧8 h組和低氧12 h組海馬組織CA1區(qū)Bax陽性細(xì)胞個(gè)數(shù)增多;常氧運(yùn)動(dòng)組、一次力竭運(yùn)動(dòng)組可見大量陽性細(xì)胞,8h高住低練組和12h高住低練組海馬組織CA1區(qū)Bax陽性細(xì)胞個(gè)數(shù)逐漸減少(見圖3海馬CA1區(qū))。
由表3可知,與正常對(duì)照組相比,高住12 h組、常氧運(yùn)動(dòng)組、8 h和12 h高住低練組和一次力竭運(yùn)動(dòng)組心、肝、腎組織Bax蛋白表達(dá)陽性指數(shù)均顯著增加(P<0.05),而8 h和12 h高住低練組海馬區(qū)與正常對(duì)照組相比增高但無顯著性差異。12 h高住低練組心、肝、腎組織Bax蛋白表達(dá)與常氧運(yùn)動(dòng)組比較顯著增加(P<0.05);與一次力竭運(yùn)動(dòng)組相比,高住8 h組、高住12 h組、常氧運(yùn)動(dòng)組和8 h高住低練組海馬區(qū)Bax蛋白表達(dá)陽性指數(shù)均顯著降低 (P<0.05)。12 h高住低練組心、肝、腎Bax蛋白表達(dá)陽性指數(shù)比8 h高住組顯著增加(P<0.05),海馬區(qū)則無顯著性差異。
表3 各組大鼠心、肝、腎、海馬組織Bax蛋白表達(dá)陽性指數(shù)(PI)比較
2.4.2 Bcl-2
Bcl-2蛋白陽性信號(hào)主要表達(dá)于細(xì)胞漿和細(xì)胞膜,為棕黃色,略呈顆粒狀。對(duì)照組、低氧8 h組和低氧12 h組心、肝、腎組織Bcl-2陽性細(xì)胞個(gè)數(shù)逐漸增多;常氧運(yùn)動(dòng)組、8h高住低練組和12h高住低練組心、肝、腎Bcl-2陽性細(xì)胞個(gè)數(shù)逐漸減少(見圖4腎組織)。正常對(duì)照組、高住8h組和高住12h組海馬組織CA1區(qū)Bcl-2陽性細(xì)胞個(gè)數(shù)逐漸減少,訓(xùn)練對(duì)照組、8h高住低練組和12h高住低練組海馬組織CA1區(qū)Bcl-2陽性細(xì)胞個(gè)數(shù)逐漸增多 (見圖4海馬CA1區(qū))。
表4顯示。與正常對(duì)照組相比,8 h和12 h高住組、常氧運(yùn)動(dòng)組、8 h和12 h高住低練組和一次力竭運(yùn)動(dòng)組心、肝、腎Bcl-2蛋白表達(dá)陽性指數(shù)均顯著增加(P<0.05),而8 h和12 h高住組、常氧運(yùn)動(dòng)組、一次力竭運(yùn)動(dòng)組海馬組織Bcl-2蛋白表達(dá)陽性指數(shù)顯著下降 (P<0.05);與一次力竭運(yùn)動(dòng)組相比,8 h和12 h高住組、常氧運(yùn)動(dòng)組、8h高住低練組心、肝、腎、海馬Bcl-2蛋白表達(dá)陽性指數(shù)均顯著增加 (P<0.05);12 h高住低練組海馬Bcl-2蛋白表達(dá)陽性指數(shù)較8小時(shí)高住組顯著增加(P<0.05)。
2.4.3 HIF-1α
常氧運(yùn)動(dòng)組心、肝、腎組織可見HIF-1α免疫陽性物質(zhì)表達(dá);8 h高住低練組陽性物質(zhì)較多,主要表達(dá)于胞漿中,部分在胞核中;12 h高住低練組和一次力竭運(yùn)動(dòng)組心、肝、腎組織可見大量HIF-1α免疫陽性物質(zhì),主要表達(dá)于胞漿中,部分在胞核中。正常對(duì)照組、低氧8 h組和低氧12 h組海馬組織CA1區(qū)HIF-1α陽性細(xì)胞個(gè)數(shù)逐漸增多,8 h高住低練組和12 h高住低練組海馬組織HIF-1α陽性細(xì)胞個(gè)數(shù)逐漸減少。圖5顯示:心肌組織對(duì)照組偶見較弱的HIF-1α免疫陽性表達(dá);高住8 h組陽性物質(zhì)主要表達(dá)于胞漿中,部分在胞核中,并分布于心肌纖維、肝竇靜脈及腎小管周圍;高住12 h組陽性物質(zhì)較強(qiáng)表達(dá),主要位于細(xì)胞核,細(xì)胞質(zhì)也少量表達(dá)。
表4 各組大鼠心、肝、腎、海馬組織Bcl-2蛋白表達(dá)陽性指數(shù)(PI)比較
表5顯示,與正常對(duì)照組相比,高住12 h組、常氧運(yùn)動(dòng)組、高住低練組和一次力竭運(yùn)動(dòng)組心、肝、腎組織HIF-1α蛋白表達(dá)陽性指數(shù)均顯著增加 (P<0.05),而高住低練組海馬區(qū)有所增高但無顯著性差異。與常氧運(yùn)動(dòng)組比較,12 h高住低練組心、肝、腎組織HIF-1α蛋白表達(dá)陽性指數(shù)顯著增加(P<0.05),海馬組織區(qū)與之相反;與一次力竭運(yùn)動(dòng)組相比,高住組、常氧運(yùn)動(dòng)組和8 h高住低練組心、肝、腎組織HIF-1α蛋白表達(dá)陽性指數(shù)均明顯降低 (P<0.05);12 h高住低練組心、肝、腎Bax蛋白表達(dá)陽性指數(shù)比8 h高住組顯著增加(P<0.05),海馬組織與之相反。
細(xì)胞異常凋亡在急、慢性器官損害的發(fā)病機(jī)制中起著重要作用[11]。低氧、運(yùn)動(dòng)及低氧運(yùn)動(dòng)與細(xì)胞凋亡存在某種直接或者間接的聯(lián)系[12,13]。 研究表明,低氧對(duì)不同組織細(xì)胞凋亡影響不同。缺氧可以誘導(dǎo)交感神經(jīng)細(xì)胞凋亡[14],對(duì)腎小管上皮細(xì)胞具有直接的致細(xì)胞凋亡作用[15];而抑制肺血管周細(xì)胞凋亡并誘導(dǎo)抑凋亡基因Bcl-2過度表達(dá)[16];胸腺細(xì)胞在低氧狀態(tài)下自發(fā)性凋亡減少[17];Tanaka 等[18]研究培 養(yǎng)的新生鼠心肌細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞凋亡在低氧12小時(shí)即可出現(xiàn),并隨低氧時(shí)間延長逐漸加重;Kohli等[19]建立大鼠常溫肝臟缺血再灌注模型后,發(fā)現(xiàn)肝缺血再灌注損傷的肝細(xì)胞和肝竇狀上皮細(xì)胞的死亡方式主要以細(xì)胞凋亡方式存在,而非傳統(tǒng)的細(xì)胞壞死。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:與正常對(duì)照組相比,12 h高住組細(xì)胞凋亡指數(shù)顯著升高,8 h高住組細(xì)胞凋亡指數(shù)升高,但無顯著性差異;與一次力竭運(yùn)動(dòng)組比,8 h、12 h高住組細(xì)胞凋亡指數(shù)顯著降低。HE染色結(jié)果表明,8 h高住組心、肝、腎、海馬各組織細(xì)胞結(jié)構(gòu)完整,組織上皮細(xì)胞未見特殊改變,12 h高住組各組織細(xì)胞未出現(xiàn)明顯結(jié)構(gòu)改變,而一次力竭運(yùn)動(dòng)組各組織出現(xiàn)明顯病理損傷。這表明4000 m低氧暴露4周后,機(jī)體產(chǎn)生了抗損傷力,使低氧暴露后力竭運(yùn)動(dòng)對(duì)機(jī)體的損傷明顯小于單純一次力竭運(yùn)動(dòng)。缺氧引起的機(jī)能變化有損傷一面,也有抗損傷一面,關(guān)鍵在缺氧發(fā)生的速度、程度、持續(xù)時(shí)間等。模擬海拔4000 m低氧4周后,高住8 h和12 h組心、肝、腎小管、海馬無明顯損傷,可能是氧分壓適宜,或每次低氧持續(xù)時(shí)間、4周低氧適應(yīng)時(shí)間恰當(dāng)。這說明4000 m低氧暴露8 h或12 h作為應(yīng)激源作用強(qiáng)度較緩和,作用時(shí)間恰當(dāng),能提高機(jī)體機(jī)能和運(yùn)動(dòng)能力。
表5 各組大鼠心、肝、腎、海馬組織HIF-1α蛋白表達(dá)陽性指數(shù)(PI)比較
適宜運(yùn)動(dòng)提高機(jī)體運(yùn)動(dòng)能力,未見凋亡明顯發(fā)生[20]。急性運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)骨骼肌細(xì)胞、心肌細(xì)胞、肝細(xì)胞凋亡,且凋亡細(xì)胞數(shù)目隨著運(yùn)動(dòng)速度增加而增加,過度疲勞時(shí)細(xì)胞出現(xiàn)壞死,力竭訓(xùn)練可導(dǎo)致骨骼肌細(xì)胞、心肌細(xì)胞[21]、海馬[22]、腎[23]凋亡率顯著升高。 本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:常氧運(yùn)動(dòng)組可見較多的凋亡細(xì)胞核,其凋亡指數(shù)顯著低于一次力竭運(yùn)動(dòng)組;HE染色結(jié)果中,常氧運(yùn)動(dòng)組心、肝、腎、海馬各組織上皮細(xì)胞未見明顯病理改變,而一次力竭運(yùn)動(dòng)組各組織出現(xiàn)明顯損傷。力竭運(yùn)動(dòng)時(shí),血液重新分配,大量供給骨骼肌,心、肝、腎及腦組織不可避免缺血缺氧,運(yùn)動(dòng)停止后,血液再次重新分配,心、肝、腎及腦組織經(jīng)歷類似缺血再灌注的過程。Cosulich研究[24]表明,這種血流恢復(fù)反而引起細(xì)胞的進(jìn)行性破壞,即再灌注損傷,導(dǎo)致缺血組織損傷。再灌注損傷由多種原因引起,啟動(dòng)自由基連鎖反應(yīng),氧自由基可通過引起細(xì)胞脂質(zhì)過氧化、損傷DNA分子或者調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡相關(guān)基因而誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。本實(shí)驗(yàn)中,中等強(qiáng)度耐力運(yùn)動(dòng)后力竭運(yùn)動(dòng),機(jī)體有一個(gè)長時(shí)間的適應(yīng)過程,力竭運(yùn)動(dòng)后缺血再灌注程度相對(duì)較輕,凋亡機(jī)制的啟動(dòng)可能受到限制,說明中等強(qiáng)度耐力運(yùn)動(dòng)對(duì)機(jī)體有保護(hù)作用。
低氧暴露與運(yùn)動(dòng)雙重刺激對(duì)心、肝、腎、海馬細(xì)胞凋亡的影響如何?本實(shí)驗(yàn)中,鏡下凋亡細(xì)胞呈深棕色陽性,核中有細(xì)微顆粒狀,部分胞漿也因細(xì)胞核DNA碎片溢出而呈陽性著色,而正常細(xì)胞胞核呈藍(lán)色。正常對(duì)照組心、肝、腎組織偶見陽性細(xì)胞核;高住低練組陽性細(xì)胞核較多,特別是12 h高住低練組及一次力竭運(yùn)動(dòng)組,呈強(qiáng)陽性;一次力竭運(yùn)動(dòng)組、常氧運(yùn)動(dòng)組、8h高住低練組和12 h高住低練組海馬組織CA1區(qū)深棕色陽性細(xì)胞核隨低氧持續(xù)時(shí)間延長而表達(dá)減少。與正常對(duì)照組相比,8 h、12 h高住低練組心、肝、腎細(xì)胞凋亡指數(shù)顯著升高,12 h高住低練組比8 h、12 h高住組和常氧運(yùn)動(dòng)組均顯著升高。12 h高住低練組HE染色可見明顯病理損傷,力竭運(yùn)動(dòng)時(shí)間明顯減少。12 h高住低練組細(xì)胞凋亡指數(shù)明顯高于8h高住低練組,說明4000 m低氧暴露12 h后再進(jìn)行運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練,負(fù)荷性缺氧與低氧性缺氧兩者對(duì)心、肝、腎有協(xié)同效應(yīng)。運(yùn)動(dòng)(負(fù)荷性低氧或運(yùn)動(dòng)性缺氧)和低氧暴露(缺氧性低氧或低氧性缺氧)后運(yùn)動(dòng),心、肝、腎可能出現(xiàn)暫時(shí)缺血[25,26],強(qiáng)度降低后血液重新回流,導(dǎo)致再灌注損傷。 Mattson[27]觀察到,短暫腦缺血后,幾分鐘至幾小時(shí)內(nèi)海馬區(qū)神經(jīng)元看似正常,但48~72 h后大多死亡,提示短暫腦缺血時(shí),神經(jīng)元凋亡主要發(fā)生于缺血敏感區(qū),如海馬、紋狀體等。本研究中,常氧運(yùn)動(dòng)組海馬區(qū)可見細(xì)胞凋亡,但與一次性力竭運(yùn)動(dòng)相比明顯降低,說明中等強(qiáng)度耐力訓(xùn)練提高機(jī)體抗細(xì)胞凋亡能力,有保護(hù)機(jī)體的作用,8 h和12 h高住低練組凋亡細(xì)胞指數(shù)隨低氧持續(xù)時(shí)間延長有減少趨勢(shì),推測(cè)是大腦對(duì)低氧刺激的適應(yīng)性改變。在低氧訓(xùn)練中,大腦攜氧能力較單純運(yùn)動(dòng)組高。這說明4周高住低練后力竭運(yùn)動(dòng),使停止運(yùn)動(dòng)后缺氧再灌注的變化幅度比單純一次力竭運(yùn)動(dòng)組小得多,海馬組織損害也減小,表現(xiàn)為8 h和12 h低氧訓(xùn)練組細(xì)胞凋亡指數(shù)較常氧運(yùn)動(dòng)組均降低,且隨低氧適應(yīng)時(shí)間的延長有減小的趨勢(shì)。
高住低練后力竭運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡的可能機(jī)制有:①一方面細(xì)胞內(nèi)游離鈣超載激活鈣離子依賴性的核酸內(nèi)切酶,使雙鏈DNA在核小體Linker部位裂解,形成DNA片段;另一方面鈣超載可激活蛋白酶C,令其轉(zhuǎn)移至細(xì)胞膜表面,使G蛋白磷酶化,胞內(nèi)cAMP 增加,導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[28];②Bcl-2 和 Bax 與細(xì)胞凋亡有密切關(guān)系。Bcl-2水平高于Bax時(shí),形成Bcl-2和Bcl-2同源二聚體,細(xì)胞凋亡受抑制;Bax表達(dá)高于Bcl-2時(shí),則形成Bax和Bax同源二聚體,細(xì)胞凋亡增強(qiáng)。并且,Bcl-2和Bax定位于線粒體膜上,這為其調(diào)控細(xì)胞凋亡提供了條件;③低氧誘導(dǎo)因子-1(HIF-1)作為低氧條件下機(jī)體的調(diào)節(jié)因子,可能在體內(nèi)發(fā)揮多向性調(diào)節(jié)作用。其除了發(fā)揮抗細(xì)胞凋亡方面的作用,它還介導(dǎo)缺氧誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡;④P53是介導(dǎo)HIF-1發(fā)揮促凋亡作用的重要分子。免疫共沉淀等方法證明,HIF-1直接與P53蛋白結(jié)合,增加P53穩(wěn)定性,促進(jìn)P53發(fā)揮促細(xì)胞凋亡的作用[29];⑤機(jī)體不同組織本身具有的特點(diǎn)可能與低氧運(yùn)動(dòng)導(dǎo)致其細(xì)胞凋亡有一定關(guān)系。本研究發(fā)現(xiàn),12 h高住低練對(duì)大腦海馬組織無明顯影響,海馬組織對(duì)低氧刺激反應(yīng)相對(duì)穩(wěn)定,而心、肝、腎對(duì)低氧刺激反應(yīng)較大,出現(xiàn)明顯病理改變。
3.2.1 高住低練對(duì)大鼠心、肝、腎、海馬組織HIF-1α表達(dá)的影響
低氧誘導(dǎo)因子可調(diào)節(jié)血管生成、細(xì)胞增殖、細(xì)胞凋亡、轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)[30]等誘導(dǎo)靶基因表達(dá)的許多生物學(xué)效應(yīng)。同時(shí),它有雙重效應(yīng),輕度低氧時(shí),促進(jìn)其目的基因如促紅細(xì)胞生成素、血管內(nèi)皮生長因子生成,促進(jìn)低氧組織細(xì)胞存活,具有抗凋亡的功能;嚴(yán)重低氧且持續(xù)時(shí)間長時(shí),調(diào)節(jié)凋亡相關(guān)因子如Bax、Bad等,激活Caspases,促進(jìn)低氧誘導(dǎo)的凋亡,即HIF-1的激活影響細(xì)胞增殖和凋亡[31]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:8 h和12 h高住組、常氧運(yùn)動(dòng)、高住低練后力竭運(yùn)動(dòng)或者一次力竭運(yùn)動(dòng),都能促進(jìn)心、肝、腎HIF-1a蛋白表達(dá)顯著增加;與單純低氧暴露組相比,高住低練組HIF-1α蛋白表達(dá)高些;與常氧運(yùn)動(dòng)組比較,高住低練組表達(dá)更顯著,且12 h高住低練組心、肝、腎組織表達(dá)最高;與一次力竭運(yùn)動(dòng)相比,8 h和12 h高住組、常氧運(yùn)動(dòng)組、8 h高住低練組HIF-1α蛋白表達(dá)均明顯降低。而海馬HIF-1α表達(dá)與之相反,高住12 h組HIF-1α表達(dá)最高,高住低練組表達(dá)顯著增加,與一次力竭運(yùn)動(dòng)無顯著差異,高住低練組及一次力竭運(yùn)動(dòng)組表達(dá)高于單純低氧暴露組和常氧運(yùn)動(dòng)組。這表明HIF-1α對(duì)外界形成的低氧產(chǎn)生適應(yīng)性反應(yīng),細(xì)胞通過多個(gè)通路感受低氧,調(diào)控HIF-1α表達(dá),穩(wěn)定其活性,可為減輕低氧對(duì)器官造成的損傷提供物質(zhì)基礎(chǔ)。
3.2.2 高住低練對(duì)大鼠心、肝、腎、海馬細(xì)胞凋亡調(diào)控基因Bax、Bcl-2的影響
Bcl-2、Bax基因主要在凋亡執(zhí)行階段發(fā)揮作用,Bcl-2/Bax蛋白比值決定細(xì)胞是存活還是凋亡,Bcl-2/Bax比值高,細(xì)胞存活率高,反之,細(xì)胞凋亡率高[32]。 Campbell等[33]研究表明,12 周訓(xùn)練促進(jìn) Bax 蛋白表達(dá),抑制Bcl-2蛋白表達(dá),Bcl-2表達(dá)下降,從而導(dǎo)致細(xì)胞凋亡[34]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:與正常對(duì)照組相比,低氧暴露、常氧運(yùn)動(dòng)、高住低練及一次力竭運(yùn)動(dòng),均促進(jìn)心、肝、腎Bcl-2和Bax蛋白表達(dá)顯著增加;單純低氧暴露下,Bcl-2和Bax蛋白表達(dá)顯著高于正常對(duì)照組,隨低氧暴露時(shí)間延長,Bcl-2無顯著增加,8h低氧暴露組Bax蛋白表達(dá)稍低于12 h組;常氧運(yùn)動(dòng)促進(jìn)Bcl-2和Bax蛋白表達(dá)顯著增加;高住低練促進(jìn)Bcl-2蛋白表達(dá),隨著低氧暴露時(shí)間延長,增加不明顯,但仍顯著高于正常對(duì)照組;高住低練組Bax蛋白含量比低氧暴露組顯著增加,與常氧運(yùn)動(dòng)組相比也顯著增加,隨低氧暴露時(shí)間延長呈增長趨勢(shì)。海馬組織與之相反;與一次力竭運(yùn)動(dòng)組比,8 h和12 h高住組、常氧運(yùn)動(dòng)組、8 h高住低練組Bax蛋白表達(dá)值均明顯降低,Bcl-2蛋白表達(dá)明顯增加。Bcl-2蛋白過表達(dá)并不增加細(xì)胞數(shù)而是保護(hù)細(xì)胞、延長細(xì)胞壽命。本實(shí)驗(yàn)中,Bax蛋白表達(dá)明顯上升,Bax/Bcl-2比值增加,消除Bcl-2對(duì)細(xì)胞的保護(hù)作用,導(dǎo)致細(xì)胞凋亡,引起機(jī)體損傷。大鼠力竭時(shí)間卻顯著延長,與Bcl-2蛋白表達(dá)增加一致,反映耐力訓(xùn)練、低氧暴露、高住低練提高機(jī)體運(yùn)動(dòng)能力,Bcl-2/Bax比值增加,保護(hù)機(jī)體免受損傷。
3.2.3 高住低練心、肝、腎、海馬細(xì)胞凋亡與HIF-1α及凋亡相關(guān)因子之間的關(guān)系
Helton[35]和 Rosenberger[36]研 究 表明 ,HIF-1 在大鼠腎缺血再灌注病理損傷中發(fā)揮重要作用。HIF-1α的激活使其蛋白表達(dá)增加,調(diào)節(jié)Bcl-2、Bax、P53基因表達(dá),從而調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,HIF-1α在低氧暴露、常氧運(yùn)動(dòng)、低氧訓(xùn)練作用或一次力竭運(yùn)動(dòng)中上調(diào)Bax,提高Bax/Bcl-2,協(xié)同Bcl-2家族凋亡相關(guān)蛋白表達(dá),在低氧導(dǎo)致心、肝、腎、海馬細(xì)胞凋亡中發(fā)揮促細(xì)胞凋亡的作用。12 h高住低練組及一次力竭運(yùn)動(dòng)組最明顯,表現(xiàn)出HIF-1α在低氧環(huán)境中的病理效應(yīng)。而高住8 h組、高住12 h組、常氧運(yùn)動(dòng)組HIF-lα表達(dá)協(xié)同Bcl-2家族凋亡相關(guān)蛋白表達(dá),發(fā)揮抑制細(xì)胞凋亡作用,表現(xiàn)出HIF-1α在低氧環(huán)境中的生理效應(yīng),提示HIF-1α有雙重效應(yīng)。但HIF-1α雙重效應(yīng)的調(diào)節(jié)機(jī)制仍有待于研究。
中等強(qiáng)度耐力運(yùn)動(dòng)、4000 m低氧暴露8 h或12 h、8 h高住低練提高大鼠有氧代謝能力。低氧、耐力運(yùn)動(dòng)、高住低練、一次力竭運(yùn)動(dòng)可誘導(dǎo)大鼠心、肝、腎、海馬組織HIF-1a、Bcl-2及Bax蛋白表達(dá);細(xì)胞凋亡率與凋亡指數(shù)及病理損傷與運(yùn)動(dòng)強(qiáng)度、低氧刺激有關(guān),12 h高住低練及一次力竭運(yùn)動(dòng)對(duì)運(yùn)動(dòng)能力的影響最明顯。Bcl-2與Bax參與調(diào)控心、肝、腎、海馬組織細(xì)胞凋亡,HIF-1a表達(dá)可能協(xié)同Bcl-2家族凋亡相關(guān)因子的表達(dá),在低氧訓(xùn)練導(dǎo)致的組織細(xì)胞凋亡中發(fā)揮雙重效應(yīng)。低氧刺激對(duì)不同器官影響不一,對(duì)大腦海馬組織影響較小,而對(duì)心、肝、腎影響較大,表現(xiàn)生理性適應(yīng)及病理損傷。
[1]Grassi B,F(xiàn)erretti G,Kayser B,et al.Maximal rate of blood lactate accumulation during exercise at altitude in humans.J Appl Physiol,1995,79(1):331-339.
[2]黃麗英,林文弢,翁錫全.常壓模擬高住低練對(duì)大鼠心肌低氧誘導(dǎo)因子1α基因表達(dá)的影響.中國運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2004,23(2):133-135.
[3]Levine BD,F(xiàn)riedman DB,Engfred K,et al.The effect of normoxic or hypobaric hypoxic endurance training on the hypoxic ventilatory response.Med Sci Sports Exerc,1992,24(7):769-775.
[4]張全江,李秋霞,熊正英,等.小鼠耐力訓(xùn)練后再力竭運(yùn)動(dòng)對(duì)體內(nèi)某些生化指標(biāo)的影響.中國應(yīng)用生理學(xué)雜志,2003,19(4):363-366.
[5]袁海平,陳佩杰,史仍飛,等.運(yùn)動(dòng)性蛋白尿與腎細(xì)胞凋亡及氧自由基代謝的關(guān)系.中國運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2003,22(3):254-257.
[6]Stray-gundersen J,Chapmam RF,Levine BD. “Living HIgh-training Low”Altitude Training Improves Sea Level Performance in Male and Female Elite Runners.Appl Physiol,2001,91(3):1113-1120.
[7]Solaroglu I,Solaroglu A,Kaptanoglu E,et al.Erythropoietin prevents ischemia-reperfusion from inducing oxidative damage in fetal rat brain.Child Nerv Syst,2003,19(1):19-22.
[8]Podhorska-Okolow M,Dziegiel P,Murawska-Cialowicz E,et al.Effects of adaptive exercise on apoptosisin cells of rat renal tubuli.Eur J Appl Physiol,2007,99(3):217-226.
[9]李善妮.急性力竭運(yùn)動(dòng)對(duì)大鼠肝細(xì)胞損傷及凋亡的影響.湖南師范大學(xué)碩士學(xué)位論文,2005.19.
[10]鄭瀾.低氧運(yùn)動(dòng)促進(jìn)肌組織血管生成的機(jī)制.上海體育學(xué)院博士學(xué)位論文,2007.46.
[11]Tushar P,Gregory JG.Apoptosis and hepatobiliary disease.Hepatology,1995,21(6):1725.
[12]楊海平.低氧、運(yùn)動(dòng)對(duì)骨骼肌細(xì)胞凋亡及bcl-2、bax表達(dá)的影響.中國運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2006,25(6):706-709.
[13]Yim JH,Kim YJ,Cho YE,et al.GLTSCR2 sensitizes cells to hypoxic injury without involvement of mitochondrial apoptotic cascades.Pathobiology,2007,74(5);301-308.
[14]Rosenbaum DM,Michaelson M,Batter DK,et al.Evidence for hypoxia-induced,programmed cell death of cultured neruond.Ann Neurol,1994,36:864-870.
[15]王偉銘,陳楠,董德長.Lazarold對(duì)低氧致腎小管上皮細(xì)胞凋亡的保護(hù)作用.腎臟病與透析腎移植雜志,2001,10(4):322-325.
[16]張燕,熊密,車東媛,等.低氧對(duì)培養(yǎng)的肺血管周細(xì)胞凋亡的影響.中國組織化學(xué)與細(xì)胞化學(xué)雜志,1999,8(3):328-331.
[17]Hale LP,Braun RD,Gwinn WM,et al.Hypoxia in the thymus:role of oxygen tension in thymocyte survival.Am J Physiol Heart Cire Physiol,2002,282:H1467-1477.
[18]Tanaka M,Ito H,Adachi S,et al,Hypoxia induces apoptosis with enhanced expression of Fas antigen messenger RNA in cultured neonatal rat cardiomyocytes.Circ Res,1994,75:426-433.
[19]Kohli V,Selzner M,Maden JF,et al.Endothellal cell and hepatocyte death occur by apoptosis after ischemia-reperfusion injury in the rat liver.Transplantation,1999,67(8):1099-1105.
[20]袁海平,陳佩杰,史仍飛,等.運(yùn)動(dòng)性蛋白尿與腎細(xì)胞凋亡及氧自由基代謝的關(guān)系.中國運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2003,22(3):254-257.
[21]Arslan S,Erdem S,Sivir A,et al.Exercise-induced apoptosis of rats skeletal muscle and the effect of meloxicam.Rheumatol Int,2003,21(4):133-136.
[22]Kidwell CS,Saver JL,Mattiello J,et al.Thrombolytic reversal of acute human cerebral ischemic injury shown by diffusion/perfusion magnetic resonance imaging.Ann Neurol,2000,47(4):462-469.
[23]Saikumar P,Venkatachalam MA.Role of apoptosis in hypoxic ischemic damage in the kidney.Semin Nephrol,2003,23(6):511-521.
[24]Cosulich SG,Worrall V,Hedge PT,et al.Regulation of apoptosis by BH3 domains in a cell-free system.Curr Biol,1997,7(12):913-920.
[25]Wei Q,Alam MM,Wang MH,et al.Bid activation in kidney cells following ATP depletion in vitro and ischemia in vivo.Am J Physiol Renal Physiol,2004,286(4):803-809.
[26]Danial NN,Korsmeyer SJ.Cell death:critical control points.Cell,2004,116(2):205-219.
[27]Mattson MP,CulmseeC,Yu ZF,et al.Apoptotic and antiapoptotic mechanism sin stroke.Cell Tissue Res,2000,301(1):173.
[28]Li Z,Bing OH,Long X,et al.Inereased cardiomyeyte apoptosis during the transition to heart Failure in the spontaneously hypertensive rat.Am J fhysiol,1997,272(5 Pt 2):H 2313-2319.
[29]Sj din B,Hellsten Westing Y,Apple FS.Biochemical mechanisms for oxygen free radical formation during exercise.Sports Med,1990,10(2):236-254.
[30]Moritz W,Meier F,Stroka DM,et al.Apoptosis in hypoxic human pancreatic islets correlates with HIF-1alpha expression.FASEB J,2002,16(7):745-747.
[31]Goda N,Ryan HE,Khadivi B,et al.Hypoxia-inducible factor 1 is essential for cell cycle arrest during hypoxia.Mol Cell Biol,2003,23(1):359-369.
[32]Zhu Y,Prehn J,Culmsee C,et al.The beta2-adrenoceptor agonist clenbuterol modulates Bcl-2,Bcl-x land Bax protein expression following transient for brain ischemia.Neurosci,1999,90(4):1255-1263.
[33]Campbell KI,McTiernan A,Li SS,et al.Effect of a 12-month exercise intervention on the apoptotic regulating proteins Bax and Bcl-2 in colon crypts:a randomized controlled trial.Cancer Epidemiol Biomarkers Prev,2007,16(9):1767-74.
[34]Brunelle JK,Santore MT,Budinger GR,et al.c-Myc sensitization to oxygen deprivation-induced cell death is dependent on BaxBak,but is independent of p53 and hypoxia-inducible factor-1.J Biol Chem,2004,279:4305-4312.
[35]Helton R,Cui J,Scheel Jr,et al.Brain-specific knock-out of hypoxia-inducible factor-1 alpha reduces rather than increases hypoxic-ischemic damage.J Neurosci,2005,25:4099-4107.
[36]Rosenberger C,Heyman SN,Rosen S,et al.Upregulation of HIF in experimental acute renal failure:evidence for a protective transcriptional response to hypoxia.Kidney Int,2005,67:531-542.