魏杰 張玲 馬振華 聶竹蘭 高澤霞
摘?要:本文采取寶生物公司RNAiso plus試劑從寬口裂腹魚肌肉、腦、腎臟、肝臟、腸、性腺、心臟中提取總RNA,分析了所提寬口裂腹魚不同組織總RNA的質(zhì)量高低,及造成質(zhì)量不同的具體原因,旨在為其他科研工作者在分析RNA質(zhì)量時(shí)提供基礎(chǔ)理論依據(jù)。
關(guān)鍵詞:寬口裂腹魚?組織?總RNA
中圖分類號(hào):Q52 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1674-098X(2012)10(a)-0019-03
寬口裂腹魚(Schizothorax eurystomus
(Kessler))屬鯉科、裂腹魚亞科、裂腹魚屬[1],分布于新疆塔里木河水系阿克蘇河(庫(kù)馬力克河、托什干河、阿克蘇河)、渭干河(木扎提河、克孜爾河、渭干河、克孜爾水庫(kù)、東方紅水庫(kù))、葉爾羌河(塔什庫(kù)爾干河、葉爾羌河、提孜那普河),是塔里木河水系的土著魚類[2]。隨著新疆水產(chǎn)業(yè)的發(fā)展,塔里木河土著魚類的研究項(xiàng)目呈上升趨勢(shì),尤其在土著魚類基礎(chǔ)生物學(xué)方面,研究較多[3-5]。但對(duì)于土著魚類分子生物學(xué)方面,僅見于扁吻魚、塔里木裂腹魚及斑重唇魚線粒體DNA部分序列片段與基礎(chǔ)遺傳多樣性方面的研究[6-7]。而對(duì)于塔里木河土著魚類中寬口裂腹魚的分子生物學(xué)方面尚未見報(bào)道。
本實(shí)驗(yàn)主要探討了寬口裂腹魚不同組織總RNA提取與質(zhì)量,分析了不同組織所提RNA質(zhì)量高低及其出現(xiàn)差異的原因。RNA分離提取是分子生物學(xué)研究的基本內(nèi)容,也是功能基因組學(xué)研究技術(shù)的重要基礎(chǔ)。因此,寬口裂腹魚不同組織總RNA提取和純化的研究對(duì)于寬口裂腹魚cDNA文庫(kù)的構(gòu)建,Northern雜交分析,定量PCR以及利用mRNA差異顯示技術(shù)篩選感興趣的相關(guān)基因等提供科技支撐。
1材料與方法
1.1材料
寬口裂腹魚由拜城縣漁民采用三層拉網(wǎng)于黑英山段黑孜爾河捕獲。平均體長(zhǎng)17.8cm,暫養(yǎng)在玻璃缸內(nèi)。
1.2玻璃器皿及塑料制品的處理
一次性塑料制品均在0.1%的DEPC水中
浸泡過夜,之后高壓蒸汽滅菌(121℃30min)。普通玻璃和金屬器皿于180℃干烤8h以上。用于RNA電泳的電泳槽先用去污劑洗干凈,雙蒸水沖洗,自然干燥后,用滅菌的0.1% DEPC浸泡24h。
1.3試劑
DEPC(焦碳酸二乙酯)、RNAiso Plus(寶生物公司(大連))、6×Loading buffer、氯仿、異丙醇、無水乙醇、EDTA(乙二胺四乙酸)、Tris(三羥甲基氨基甲烷)堿、冰醋酸。
1.4方法
準(zhǔn)備工作:DEPC水(DEPC:ddH2O = 1:10000)浸泡所要使用的槍頭和EP管(1.5ml)過夜,然后經(jīng)高壓滅菌后回收滅過菌的DEPC水①以制備1×TAE緩沖液;同時(shí)預(yù)留部分未浸泡過槍頭和EP管且稀釋過的DEPC水②,同樣滅菌后于-20℃保存以備溶解RNA。
(1)活體取樣,取0.1g左右寬口裂腹魚肌肉、腦、腎臟、肝臟、腸、性腺、心臟放入加有1ml的RNAiso Plus(寶生物公司(大連))的EP管,待所取樣本全部完成后再進(jìn)行勻漿,整個(gè)實(shí)驗(yàn)操作在冰浴上進(jìn)行,以免RNA降解。
(2)將(1)中組織倒入已滅菌的5mL組織勻漿器中,同時(shí)加入0.6~1.0mL的RNAiso Plus和0.4~0.6mL的DEPC水,然后在冰上勻漿至無顆?;蛎黠@組織塊。
(3)將上述勻漿液裝入新的1.5mL EP管中(一般可裝兩管),冰上靜止5min左右,然后≥12000rpm,4℃離心5min。
(4)取上清液于新的1.5mL EP管中,每管取0.5mL即可,然后加入1/5 RNAiso Plus體積的氯仿,即0.4mL,加入氯仿后需立即用手劇烈振蕩15s以混勻。
(5)充分混勻后(無分相現(xiàn)象),≥12000rpm,4℃離心15min,即會(huì)分層:上層清液,中層為白色蛋白質(zhì),下層為帶鮮紅色的有機(jī)相。
(6)取0.6mL上清液于新的1.5mLEP管中,并加入等體積的異丙醇,然后充分混勻,冰上靜止10min,≥12000rpm,4℃離心10min。
(7)棄上清液,此時(shí)可見管底有白色沉淀,切勿將其傾倒,而后沿壁緩慢加入1.0mL經(jīng)冷處理過75%乙醇(RNase-free),清洗沉淀,≥12000rpm,4℃離心5min。
(8)小心棄去乙醇,盡量除盡乙醇,然后室溫干燥5min左右,切莫離心或者加熱;加入20~50μl的RNase-free water(即DEPC水,上標(biāo)為②)溶解,待完全溶解后-80℃保存。
(9)總RNA的濃度及純度測(cè)定
核酸蛋白測(cè)定儀:測(cè)定RNA溶液的吸光值,比較A260/A280的值,保證其在1.8~2.2為比較合適的值;同時(shí)測(cè)定其濃度(取1ul樣品于50μL滅菌的0.1%DEPC水中,再用biophotometer蛋白核酸測(cè)定儀測(cè)定A260及A280值。RNA純度按A260/A280之比值判斷;RNA濃度=樣品濃度×50μL)。
(10)瓊脂糖電泳檢測(cè)
所用瓊脂糖凝膠及電解液均用DEPC處理過的水配制(上標(biāo)為①),電泳檢核糖體RNA的28s、18s和5.8s。
2結(jié)果與分析
2.1樣品的濃度與純度
經(jīng)核酸蛋白測(cè)定儀測(cè)定:肝臟,心臟,肌肉2,肌肉的A260/A280值在1.8~2.2;肝臟、腦和腸的樣品濃度均較高,但是腦和腸A260/A280值小于1.8;心臟2和腎臟2的樣品濃度較低,A260/A280值亦小于1.8,具體見表1。
核酸蛋白測(cè)定儀260nm的讀數(shù)用于測(cè)定DNA或RNA的濃度,280nm的讀數(shù)用于測(cè)定DNA或RNA的純度[8-9],由表1結(jié)果可知:
(1)肝臟,心臟,肌肉2,肌肉的樣品較純。
4個(gè)樣品以肝臟的濃度最高,可用后續(xù)的分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)。肌肉2、肌肉與心臟的樣品濃度較低,出現(xiàn)這種結(jié)果的原因在于,肌肉組織相對(duì)于肝臟要堅(jiān)韌,本次實(shí)驗(yàn)勻漿時(shí)沒有充分研磨;若研磨時(shí)間過長(zhǎng)RNA會(huì)降解,研磨時(shí)間不足,RNA提取量少。而心臟組織大小與魚體大小有關(guān),魚體偏小,心臟亦小,在勻漿過程中,對(duì)于靜脈竇及動(dòng)脈球部分難于磨碎,所以樣品濃度偏低。
(2)腦、腸的樣品濃度較高;心臟2和腎臟2的樣品濃度較低。
它們的A260/A280值均小于1.8,表示存在蛋白質(zhì)的污染,這是由于實(shí)驗(yàn)過程中用槍頭吸取水相的過程中,用力過大,將中間的蛋白層吸入,使蛋白質(zhì)混入RNA提取液中。腦和腸需進(jìn)一步純化才能用于后續(xù)分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)。
2.2樣品總RNA1%瓊脂糖凝膠電泳
從泳道中的亮帶可以看出,本次電泳時(shí)間(20min)過長(zhǎng),其中的28s和18s有亮帶處rRNA的比率不是2:1[10]。泳道1(肌肉)、4(肝臟)、5(腦)、7(腸)、8(腦2)、9(肌肉2)和 10(心臟2)均可見三條清晰亮帶28S、18S和5S,但其中的28srRNA處的亮帶不是最亮,說明有部分RNA降解;在泳道4、5、8中5s處最亮,說明降解的較多。
泳道2(腎臟)則無亮帶,說明腎臟的RNA完全被降解,造成這種后果的原因有多種:①取樣時(shí)間過長(zhǎng),或者樣品保存不當(dāng),導(dǎo)致細(xì)胞組織壞死;②勻漿時(shí)間過長(zhǎng),空氣中的RNase進(jìn)入勻漿管中,RNA降解;③勻漿不夠徹底,細(xì)胞未破碎,RNA無法從細(xì)胞中游離出來;④在加入氯仿后,未及時(shí)振蕩EP管中的樣品,使得DNA,RNA,蛋白質(zhì)無法分開;具體原因有待進(jìn)一步研究。
泳道3(性腺)在5s處有亮帶,而且很寬,18s和28s則完全看不見,說明這個(gè)電泳RNA完全降解了,全部降解成5S大小的片段,嚴(yán)重降解的片段往往是和5s大小近似。因此在跑電泳的時(shí)候,就會(huì)在5s處重疊。但是這個(gè)降解是提取操作不當(dāng)而降解還是電泳過程中降解的,還需進(jìn)一步探究。
泳道6(心臟)沒有出現(xiàn)28s,28srRNA降解為18srRNA。泳道11(腎臟2)在28s和18s處有亮帶,沒有出現(xiàn)5s,可能有DNA污染,或者是異丙醇沒有混合均勻?qū)е?,不?huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。具體見圖1。
綜上分析:寬口裂腹魚不同組織RNA提取后經(jīng)核酸蛋白測(cè)定儀檢測(cè)知:肝臟、心臟、肌肉和肌肉2,A260/A280在范圍1.8~2.0之間,說明樣品提取的比較純;但樣品腦,腸,心臟2和腎臟2的A260/A280均在1.8以下,表示受到蛋白質(zhì)污染,需要純化樣品;心臟、肌肉和肌肉2的樣品濃度均較低,但是它們的A260/A280卻在1.8~2.0之間,說明樣品未受污染,只是某些組織中本來RNA含量就少,或研磨時(shí)間不足。經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)知:肌肉、肝臟、腦、腸、腦2、肌肉2、心臟2都可以看見明顯的亮帶,說明樣品比較純,可以用于后續(xù)實(shí)驗(yàn);而腎臟和性腺的RNA完全降解則不能用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
綜合核酸蛋白測(cè)定儀與1%瓊脂糖檢測(cè)結(jié)果,本次采用RNAiso Plus試劑,在肝臟中所提取的總RNA質(zhì)量高,效果好,可以用于進(jìn)一步的cDNA文庫(kù)的構(gòu)建,目的基因的克隆與表達(dá),Northern雜交分析以及利用mRNA差異顯示技術(shù)篩選。
3結(jié)語(yǔ)
目前,RNA提取方法有多種,Chirgwin[11]等采用異硫氰酸胍/氯化銫法成功獲得收率和品質(zhì)均較高的RNA,但該方法操作繁瑣。Feramisco[12]等介紹了硫氰酸胍/熱酚法獲得高質(zhì)量RNA。Logemann[13]等采用氯化胍法分離了植物組織中的RNA。Cathala[14]采用氯化鋰/異硫氰酸胍法獲得了既有活性又較完整的RNA。謝保勝[10]、吳旭東[15]等采用異硫氰酸胍法提取了可用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)的斑馬魚和黃河鯰的總RNA,這兩個(gè)實(shí)驗(yàn)在Chomczynski[16]等提出的一步法基礎(chǔ)上進(jìn)行了優(yōu)化,該方法該法與(異)硫氰酸胍/氯化銫法超速離心法相比,具有簡(jiǎn)便、經(jīng)濟(jì)和高效的特點(diǎn),能同時(shí)迅速地處理多個(gè)標(biāo)本,且RNA的完整性與純度均很高;但該法不適合從富含甘油三酯的脂肪組織中提取RNA,而且有時(shí)RNA會(huì)帶有多糖和蛋白多糖的污染,這些污染將影響乙醇沉淀后RNA的溶解,同時(shí)抑制RT-PCR反應(yīng),并通過結(jié)合到膜上而影響RNA雜交中的印跡步驟。
本課題組則采用大連寶生物公司的RNAiso Plus試劑對(duì)寬口裂腹魚不同組織總RNA提取量及其質(zhì)量進(jìn)行了初步分析。RNAiso Plus試劑采用劇烈的蛋白變性劑,能夠抑制RNA酶活性,還能有效地解離核蛋白與核酸的復(fù)合體,是獲得高純度RNA比較理想的方法[17],但是在提取寬口裂腹魚總RNA時(shí),質(zhì)量并不高,主要原因在于:
(1)沒有RNA專用操作區(qū),公共實(shí)驗(yàn)室內(nèi)實(shí)驗(yàn)人員較多,來回走動(dòng),影響RNA提取質(zhì)量。
(2)本次RNA提取時(shí)間是在夏季,天氣炎熱,實(shí)驗(yàn)室內(nèi)沒有空調(diào)極易受汗液污染。
(3)在勻漿器中加入RNAiso Plus試劑后,研磨時(shí)間短,細(xì)胞未破裂,導(dǎo)致心臟、肌肉和肌肉2等組織所提RNA量不足。
(4)加氯仿劇烈震蕩分層后,操作者在用移液器移取上清液時(shí)用力過大,吸入了中間有機(jī)相的蛋白質(zhì)層,使腦,腸,心臟2和腎臟2等組織所提RNA受到蛋白質(zhì)污染。
(5)電泳時(shí)間一般用8min,本次電泳時(shí)間過長(zhǎng)(20min),造成RNA降解,使其中的28srRNA電泳條帶不呈最亮,28s和18s有亮帶處rRNA的比率亦不是2:1。
通過實(shí)驗(yàn),得出以下6點(diǎn)建議。
(1)要有RNA專用操作區(qū),應(yīng)保持清潔,并定期除菌;離心機(jī)、自動(dòng)移液器、試劑等應(yīng)專用。
(2)用于RNA實(shí)驗(yàn)的玻璃器皿清潔后于180℃干熱滅菌8h;塑料制品用0.1%的DEPC水浸泡過夜,經(jīng)高壓蒸汽滅菌后于80℃烘箱中干燥。
(3)實(shí)驗(yàn)過程中應(yīng)戴一次性口罩和橡膠手套,并經(jīng)常更換,以防止手、臂上的細(xì)菌和真菌以及汗液中的RNase污染實(shí)驗(yàn)器材。
(4)實(shí)驗(yàn)人員避免說話或來回走動(dòng),以免唾液與空氣中的RNase污染。
(5)配制溶液用的酒精、異丙醇等均采用未開封的新瓶,溶液需用滅菌的DEPC水配制。
(6)DEPC(焦碳酸二乙酯)在提取RNA的過程中,可用來抑制RNase的活性。
參考文獻(xiàn)
[1]中國(guó)科學(xué)院動(dòng)物研究所等編著.新疆魚類志[M].烏魯木齊:新疆人民出版社,1979.
[2]馬燕武,郭焱,張任銘,等.新疆塔里木河水系土著魚類區(qū)系組成與分布[J].水產(chǎn)學(xué)報(bào),2009,33(6):949-956.
[3]田永勝,王國(guó)英,潘育英.新疆土著魚類的數(shù)值分類[J].八一農(nóng)學(xué)院學(xué)報(bào),1994,17(1):86-93.
[4]王德忠.新疆的裂腹魚亞科魚類研究[J].干旱區(qū)研究,1998,15(4):26-32.
[5]任波,馬燕武,吐爾遜,等.新疆渭干河土著魚類[J].水產(chǎn)學(xué)雜志,2005,18(2):53-58.
[6]楊天燕,孟瑋,張人銘,等.2種珍稀裂腹魚類線粒體DNA部分序列片段的比較分析[J].動(dòng)物學(xué)雜志,2011,46(3):47-54.
[7]閻雪嵐,楊金權(quán),唐文喬,等.基于線粒體Cytb基因序列變異的克孜河塔里木裂腹魚和斑重唇魚遺傳多樣性[J].動(dòng)物學(xué)雜志,2009,44(5):8-13.
[8]嚴(yán)海燕.基因工程與分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)教程[M].武漢:武漢大學(xué)出版社,2009.
[9]劉志國(guó).基因工程原理與技術(shù)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2010:35-36.
[10] 謝保勝,藤原滋樹.斑馬魚總RNA提取和純化[J].生物學(xué)雜志,2007,24(6):67-68,76.
[11]Chirgwin F M,Przybbyla A E,
Macdonald R J et al.Isolation of
biologically active ribonucleic acid from
sourcesenriched in ribonuclease[J].
Biochemistry,1997,18(24):5294-5299.
[12]Feramisco J R,Helfman D M,Smart J E,et al.Isolation of cullar total RNA with guanidium/hot phenol method[A].In:Maniatis Teds,Molecular Cloning[C].New York:Cold Spring Harbor LaboratoryPress,1992:194-195.
[13]Logemann J,Schell J,Wilmitzer L.Improved methods for the isolation of RNA from plant tissues[J].Anal Biochem,1987,163(1):16-20.
[14]Cathala G A.Method for isolation of intact,translationally active RNA[J].Anal Biochem,1987,163:16-17.
[15]吳旭東,侯玉霞,張文吉.黃河鯰不同組織中RNA提取純化方法研究[J].淡水漁業(yè),2006,36(2):24-26.
[16]Chomczynski P,Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction[J].Anal Biochem,
1987,162:156-159.
[17]曹建斌.RNA的提取及3種RNA提取試劑盒的比較[J].科技情報(bào)開發(fā)與經(jīng)濟(jì),2008,18(10):206-207.