趙春梅,崔繼哲,金榮榮
(1.哈爾濱市農(nóng)業(yè)科學院,哈爾濱 150070;2.哈爾濱師范大學生命科學與技術(shù)學院,哈爾濱 150025)
土壤鹽漬化是影響世界農(nóng)作物產(chǎn)量的重要因素[1]。植物鹽害主要包括滲透脅迫和離子脅迫兩個方面。滲透脅迫引起植物體內(nèi)缺水從而抑制植物生長發(fā)育,引起蒸騰過程中水蒸發(fā)量減少,影響低遷移率離子運輸。離子脅迫表現(xiàn)在兩方面,產(chǎn)生Na+和Cl-毒害作用和抑制其他離子(如K+,Ca2+,NO3-,SO42-等)吸收。細胞中多數(shù)酶活性由K+激活,當細胞吸收過多的Na+會導(dǎo)致與酶結(jié)合的K+被Na+替代而影響酶功能。因此,在高鹽環(huán)境下維持體內(nèi)的滲透穩(wěn)定、離子平衡以及離子的正確分布對植物進行正常的生命活動至關(guān)重要。
K+是大多數(shù)陸生植物體內(nèi)最主要的無機陽離子,在維持細胞質(zhì)中的電荷平衡、液泡滲透壓以及激活酶反應(yīng)等方面起重要作用。由于Na+和K+理化性質(zhì)相似,K+結(jié)合轉(zhuǎn)運蛋白的轉(zhuǎn)運位點會因大量Na+的競爭而與Na+結(jié)合,且在土壤中K+濃度很低,植物要維持體內(nèi)正常的K+濃度需具備高親和K+轉(zhuǎn)運蛋白系統(tǒng)。
一些K+轉(zhuǎn)運蛋白(如HAK/KUP/KT基因家族成員)對K+具有高親和性,在K+吸收過程起關(guān)鍵作用,尤其是在低K+情況下。大麥HvHAK1轉(zhuǎn)運蛋白吸收K+的KM為27 mmol·L-1[1]。HvHAK1 作為高親和K+吸收系統(tǒng),其表達受K+饑餓誘導(dǎo)[2]。Gierth等通過基因芯片研究表明AtHAK5是唯一應(yīng)答外部低濃度K+的高親和K+轉(zhuǎn)運蛋白,在酵母突變體內(nèi)表達的動力學特性與植物中高親和K+吸收模式十分相似[3-4]。T-DNA插入突變體athak5雖然表型沒有明顯變化,但對Rb+(K+)的高親和吸收有顯著影響[2]。胡椒中K+饑餓能夠增加CaHAK1的轉(zhuǎn)錄表達,不過這種轉(zhuǎn)錄表達受NH4+抑制[5]。athak5與atakt1雙突變體中AtHAK5介導(dǎo)低于0.01 mmol·L-1K+的吸收,AtHAK5和AtAKT1能夠介導(dǎo)0.01~0.05 mmol·L-1K+的吸收,在更高K+時,AtAKT1參與低親和K+的吸收[6]。OsHAK5是Na+不敏感型K+轉(zhuǎn)運蛋白,僅對K+呈現(xiàn)高的轉(zhuǎn)運活性,在煙草中表達增加鹽脅迫下K+積累[7]。
小麥TaHKT1轉(zhuǎn)運蛋白在酵母中表達呈現(xiàn)高親和K+吸收,KM大約為3 μmol·mL-1[8]。TaHKT1在酵母和非洲爪蛙卵母細胞中表達呈現(xiàn)高親和K+/Na+共轉(zhuǎn)運,低親和Na+轉(zhuǎn)運。細胞外微物質(zhì)的量濃度Na+條件下TaHKT1呈現(xiàn)高親和K+吸收,而高濃度Na+環(huán)境下TaHKT1介導(dǎo)的K+吸收受阻[9]。小麥和水稻根中TaHKT1與OsHKT2受低濃度K+誘導(dǎo)表達,而這兩個蛋白在爪蛙卵母細胞和酵母中均呈現(xiàn)K+與Na+的同向轉(zhuǎn)運,這說明K+/Na+共轉(zhuǎn)運可能更利于植物從低濃度K+環(huán)境中吸收K+。酵母和卵母細胞中表達的AtHKT1卻僅轉(zhuǎn)運Na+[10]。在酵母中HvHKT1和TaHKT1 cDNA既可表達K+/Na+共轉(zhuǎn)運蛋白,又可表達僅轉(zhuǎn)運K+或Na+的蛋白。異源表達的HKT1功能差異與cDNA插入的載體密切相關(guān)[11]。
通常情況下K+的高親和吸收是由轉(zhuǎn)運蛋白介導(dǎo),K+的低親和吸收是由K+離子通道介導(dǎo)。AtAKT1是根外周細胞中的離子通道,通過T-DNA突變體證明AtAKT1能夠從濃度為10 μmol·L-1的K+溶液中吸收 K+[12]。當外部 K+的濃度在 10 μmol·L-1~1000 mmol·L-1且不存在NH4+時,AtAKT1能夠介導(dǎo)55%~63%K+吸收。Gierth等對野生型與突變型植物的動力學研究表明,在微物質(zhì)的量范圍內(nèi)AtAKT1表現(xiàn)為低親和K+吸收,這與AtAKT1在微物質(zhì)的量濃度范圍內(nèi)介導(dǎo)的55%~63%K+吸收相矛盾,是Gierth使用Rb+代替K+進行研究導(dǎo)致的[2]。因為轉(zhuǎn)運蛋白對Rb+和K+不加區(qū)分,而離子通道的情況與轉(zhuǎn)運蛋白不同,所以它介導(dǎo)Rb+的吸收要比K+少。NH4+特異地抑制非離子通道系統(tǒng)對K+的吸收,如抑制HAK/KUP/KT家族對K+的吸收。擬南芥幼苗在含有毫物質(zhì)的量濃度NH4+的培養(yǎng)基上能夠通過AtAKT1吸收K+,因此AKT1在低K+且存在NH4+的情況下對K+的吸收起重要作用。
當K+進入到根細胞共質(zhì)體后,開始向其他細胞輸送。K+穿越各種類型細胞轉(zhuǎn)運主要由離子通道介導(dǎo)。擬南芥SKOR基因在根的中柱鞘中高表達,它編碼向外輸出離子的通道蛋白SKOR,SKOR在K+從擬南芥根向地上部分輸送過程中起重要作用。SKOR敲除的擬南芥突變體地上部分K+含量減少一半,表明SKOR介導(dǎo)K+向木質(zhì)部輸送。SKOR離子通道的門控受到細胞外部K+濃度調(diào)控,只有當K+流動的驅(qū)動力量向外時SKOR才打開。K+依賴的門控決定簇與通道孔相鄰,它影響電壓及對K+濃度變化的感知[13]。KORC是高選擇K+向木質(zhì)部運輸?shù)碾x子通道,需要細胞內(nèi)微物質(zhì)的量濃度水平的Ca2+才能打開KORC通道。高親和HAK轉(zhuǎn)運蛋白在K+運輸方面也起重要作用。AtHAK5在地上部分和根細胞中表達以及玉米葉片木質(zhì)部Rb+的滲透性與K+的滲透性相似,這表明高親和的HAK吸收系統(tǒng)不僅僅限于從土壤中吸收K+到根表皮和皮層細胞中。
AKT2和KAT2是位于韌皮部的K+通道。AKT2形成弱的內(nèi)向整流K+電導(dǎo),整流水平受磷酸化控制。AKT2在葉片和根韌皮部維管結(jié)構(gòu)中表達,AKT2可能與K+在源葉中的儲存及在庫器官中的釋放有關(guān)。在鹽脅迫情況下,根中SKOR與地上部分AKT2的表達是上調(diào)的,這加快了導(dǎo)管組織中K+的循環(huán)速率,并增強K+在根與地上部分中的再分布。KAT2是僅在葉片中表達的內(nèi)向整流K+通道,它的作用可能與源葉的K+儲存相關(guān)。Xicluna等發(fā)現(xiàn)AKT2和KAT2相互作用,具有弱的內(nèi)向整流K+電導(dǎo)的特征[14]。
在鹽脅迫條件下Na+及其他陽離子進入植物體內(nèi)對于植物保持滲透平衡及減緩水脅迫至關(guān)重要。過多的Na+在細胞內(nèi)聚集會對植物產(chǎn)生毒害作用甚至導(dǎo)致植物死亡。植物生理條件下細胞內(nèi)K+/Na+比是很高的,K+濃度為100~200 mmol·L-1,Na+為 1~10 mmol·L-1。Na+進入到根中的速率非常高[15]。在Na+進入到根細胞的起始階段主要由單向的轉(zhuǎn)運蛋白以及離子通道介導(dǎo)的被動運輸過程,這些蛋白包括LCT1、NSCC(主要是CNGC和GLR)和HKT。
低親和性陽離子轉(zhuǎn)運蛋白(LCT1)是非選擇性的陽離子轉(zhuǎn)運蛋白,在酵母中不但介導(dǎo)K+的流入,而且還介導(dǎo) Na+、Rb+、Li+、Cs+和 Ca2+的吸收。LCT1能夠介導(dǎo)酵母中低親和的K+和陽離子轉(zhuǎn)運[16]。酵母中當高濃度Ca2+(20 mmol·L-1)存在條件下LCT1對Na+超級敏感。小麥中當外部Na+較低情況下LCT1與Na+親和力卻達不到飽和狀態(tài),因此LCT1是Ca2+不敏感型的Na+轉(zhuǎn)運蛋白[17]。
在高濃度NaCl環(huán)境中非選擇性離子通道(NSCC)是介導(dǎo)Na+進入植物根的主要途徑[18]。環(huán)核苷酸門控通道(CNGC)是動植物細胞中普遍存在的離子通道基因家族。AtCNGC3主要在根皮層和表皮細胞中表達。酵母中AtCNGC3表達不但介導(dǎo)Na+和K+的吸收,還能夠促進NaCl脅迫下突變體幼苗的生長,說明它限制突變體對Na+的吸收[19]。離子化谷氨酸受體(GLRs)與谷氨酸相互作用形成具有高透性的陽離子通道。GLR2.3影響Ca2+的再分布,但過表達GLR2.3會產(chǎn)生對Na+和K+的超敏性。Demarche等指出環(huán)境因子對原生質(zhì)體中谷氨酸的影響尚不清楚,但是激活這些通道卻與原生質(zhì)體中谷氨酸相關(guān),說明GLR在Na+吸收中起作用[20]。
HKT1介導(dǎo)Na+驅(qū)動的高親和K+吸收以及低親和Na+吸收。水稻根中只有在缺少K+的情況下才呈現(xiàn)對Na+的高親和吸收,但不伴隨K+的共轉(zhuǎn)運[21]。HKT1的轉(zhuǎn)錄表達在K+饑餓時有明顯提高。在大麥、小麥和水稻中當K+饑餓時會有高親和Na+吸收,在水稻中這種高親和吸收會受到K+強烈抑制[22]。對Na+的高親和吸收是對K+的補充。水稻的OsHKT1與OsHKT2相似性高達91%,但是OsHKT1與AtHKT1相似只轉(zhuǎn)運Na+,而OsHKT2卻與TaHKT1相似共轉(zhuǎn)運K+、Na+[21]。在未受鹽脅迫時,水稻鹽敏感型品種中OsHKT2表達較耐鹽品種OsHKT2的表達要少,但在鹽脅迫下耐鹽品種OsHKT1表達下調(diào),說明鹽脅迫下進入耐鹽品種的Na+有所減少[23]。Jabnoune等研究顯示OsHKT1;1和OsHKT1;3,在非洲爪蟾卵母細胞中表達僅對Na+具有滲透性,而OsHKT2;1表現(xiàn)為K+/Na+共轉(zhuǎn)運[24]。煙草中OsHKT2;1介導(dǎo)Na+吸收,OsHKT2;2介導(dǎo)K+/Na+共轉(zhuǎn)運,在這種情況下細胞外K+促進Na+吸收,當Na+濃度達到毫物質(zhì)的量時,OsHKT2;2不需要K+就可以介導(dǎo)Na+吸收[25]。
Na+通過共質(zhì)體和非原生質(zhì)體途徑由根細胞進入到木質(zhì)部。在中等鹽分條件下,擬南芥SOS1介導(dǎo)Na+進入木質(zhì)部,伴隨著蒸騰流將Na+轉(zhuǎn)運到地上部分;在高鹽情況下,木質(zhì)部薄壁細胞內(nèi)較高的Na+濃度及質(zhì)膜去極化作用促使Na+進入到木質(zhì)部。Na+不管是貯存在木質(zhì)部還是沉積在根中柱對植物都是有害無益,AtHKT1;1的失活可以避免這種毒害的發(fā)生,這說明Na+從木質(zhì)部的流出可能與AtHKT1;1相關(guān)。在sos3或hkt1;1突變體中都增加了根和地上部分Na+的積累,但是在sos3和hkt1;1雙突變體中Na+濃度卻與野生型植物相近。Davenport等通過研究野生型、athkt1和sos1突變體對Na+的吸收轉(zhuǎn)運表明AtHKT1;1控制Na+由木質(zhì)部釋放[26]。AtCHX21在內(nèi)皮層細胞質(zhì)膜上表達起離子選擇功能。chx21突變體植物與野生型相比木質(zhì)部具有較低的Na+濃度,在葉片中Na+積累也少,表明AtCHX21可能與Na+從內(nèi)皮細胞向中柱轉(zhuǎn)運相關(guān)[27]。
單向進入到根的Na+會由于Na+大量地向其他組織外流來維持穩(wěn)定狀態(tài)。質(zhì)膜上Na+/H+逆向轉(zhuǎn)運蛋白介導(dǎo)的Na+主動運輸推動Na+的外排作用。在擬南芥中SOS1基因產(chǎn)物介導(dǎo)細胞內(nèi)Na+的外排。質(zhì)膜上Na+/H+逆向轉(zhuǎn)運的Na+由質(zhì)子的流入提供能量。SOS2基因編碼的蛋白激酶由SOS3激活。SOS3是Ca2+結(jié)合蛋白,與SOS2相互作用。Qiu等研究表明SOS1,SOS2和SOS3植物質(zhì)膜Na+/H+交換的活性比野生型小[28]。通過對Na+的積累及動力學研究表明SOS1植物在高鹽濃度下積累過多Na+,說明SOS1對根中Na+的外排起重要作用[26]。擬南芥中SOS1還與Na+長距離運輸相關(guān),過表達SOS1顯示地上部分及木質(zhì)部Na+濃度都有所下降。將SOS1的啟動子與GUS融合來研究SOS1的表達方式顯示GUS活性主要存在于植物維管周圍的內(nèi)部組織中。根中GUS活性主要定位在中柱鞘和木質(zhì)部導(dǎo)管邊緣的薄壁細胞中,莖和葉柄中GUS活性主要限于木質(zhì)部或共質(zhì)體邊緣的薄壁細胞中。在根尖的表皮細胞中也有SOS1的表達,但是根尖中缺少大液泡而無法將Na+區(qū)室化,SOS1則將Na+排到土壤中來防止Na+在根尖細胞中積累。
植物逆向轉(zhuǎn)運蛋白最初在甜菜根細胞中被發(fā)現(xiàn)的,它能將Na+固定到液泡中[29]。Na+/H+交換由質(zhì)子泵V-ATPase和V-Ppase產(chǎn)生的跨液泡膜的H+電化學勢梯度驅(qū)動。第一個克隆的植物Na+/H+逆向轉(zhuǎn)運蛋白基因是AtNHX1[30]。酵母突變體nhx1中表達AtNHX1會降低突變體對NaCl的敏感性,并可提高細胞內(nèi)Na+區(qū)室化作用。從表達AtNHX1酵母中分離到的液泡表現(xiàn)出低親和電化學Na+/H+交換。AtNHX1在pH梯度下對Na+和K+轉(zhuǎn)運的親和力相似。通過恢復(fù)nhx1酵母對NaCl和KCl的耐性試驗發(fā)現(xiàn)OsNHX1、InNHX1和InNHX2對Na+和K+具有雙重選擇性[31-32]。酵母中表達C-末端截段的AtNHX1會改變其對離子的特異性[33],說明在生理條件下其對Na+/K+的選擇是由C-末端調(diào)控的。
在轉(zhuǎn)LeNHX2基因酵母和植物中LeNHX2蛋白定位在液泡前體和高爾基體上。它能夠補充酵母突變體nhx1對鹽的敏感性,并影響K+而不是Na+在細胞內(nèi)的區(qū)室化。在體外脂蛋白體中重新構(gòu)建的LeNHX2能夠催化K+/H+的交換,但只能催化少量的Na+/H+交換。AtNHX5與LeNHX2一樣主要是轉(zhuǎn)運K+。在酵母突變體nhx1中表達AtNHX1和AtNHX2能夠增加Na+和K+的積累。AtNHX5在酵母突變體nhx1中表達對Na+的積累要少于AtNHX1和AtNHX2[34]。這類轉(zhuǎn)運蛋白定位不是在液泡而是內(nèi)涵體的區(qū)室內(nèi),增強對離子的選擇性,說明內(nèi)膜系統(tǒng)依賴K+/H+的交換調(diào)控pH以阻止在內(nèi)涵體腔內(nèi)有毒害Na+積累。
鹽芥在鹽脅迫下葉片中Na+的積累很低。Wang等發(fā)現(xiàn)在高鹽處理過程中,擬南芥根中的K+濃度顯著下降,在鹽芥中K+濃度變化卻并不明顯[35]。擬南芥中這種K+的變化是由于鹽誘導(dǎo)根細胞膜去極化產(chǎn)生的。擬南芥的去極化作用強于鹽芥,這將導(dǎo)致K+外流。鹽芥單向流入根的Na+要比擬南芥低,而擬南芥根中外排的Na+要高于鹽芥,說明鹽芥保持較低的Na+是由于Na+流入的較少,而不是由于Na+的外排作用引起。王學征等研究表明,番茄耐鹽品種的Na+/K+低于鹽敏感品種,離子在體內(nèi)的區(qū)域化分布情況是,較耐鹽品種的Na+在根莖中的分配比例較高,鹽敏感品種趨向于向葉片分配,K+在較耐鹽品種的分布集中于葉片[36]。
Takahashi等發(fā)現(xiàn)PhaHAK5(高親和K+轉(zhuǎn)運蛋白)僅在鹽敏感型蘆葦中表達,在耐鹽蘆葦中沒有表達[37]。在鹽脅迫情況下PhaHAK5轉(zhuǎn)化的酵母吸收K+的能力要低于轉(zhuǎn)化PhaHAK1的酵母,并且轉(zhuǎn)化PhaHAK5的酵母呈現(xiàn)出Na+通透性,這不僅說明PhaHAK5是Na+進入細胞的一種途徑,也說明耐鹽與非耐鹽植物應(yīng)答鹽脅迫的機制有所不同。
研究者對K+吸收和轉(zhuǎn)運相關(guān)的轉(zhuǎn)運蛋白和離子通道研究得比較多,但是對K+吸收和轉(zhuǎn)運調(diào)控機制卻知之甚少。Xu等研究表明,在低K+條件下CIPK23調(diào)節(jié)K+的吸收[38]。CIPK23在低K+脅迫下正調(diào)控K+轉(zhuǎn)運蛋白AKT1,而CBL1和CBL9是CIPK23正調(diào)控上游元件。低K+脅迫信號引發(fā)細胞質(zhì)Ca2+信號導(dǎo)致位于細胞膜上的Ca2+應(yīng)答元件CBL1和CBL9的激活。在質(zhì)膜,CIPK23將AKT1磷酸化,激活A(yù)KT1對K+的吸收。Li等通過酵母雙雜交方法證明AKT1的C-末端與CIPK23相互作用。在卵母細胞中共表達CIPK23和CBL1,CIPK23不僅表現(xiàn)更強的激酶活性,而且表現(xiàn)對AKT1-GST更強的磷酸酸化活性[39]。將AKT1中ATP-結(jié)合賴氨酸突變后與CBL1和AKT1在卵母細胞中表達發(fā)現(xiàn)AKT1不再有活性,說明CIPK23對AKT1的磷酸化是AKT1具有活性所必需的,并且此調(diào)控是Ca2+依賴的。Pandey等研究發(fā)現(xiàn),CIPK9在植物適應(yīng)K+缺乏的過程中起重要作用。T-DNA插入CIPK9的突變擬南芥中低K+會影響植物生長,但CIPK9突變體并不影響K+吸收,說明植物內(nèi)部K+池在耐低K+過程中也起關(guān)鍵作用[40]。轉(zhuǎn)OsMAPK4基因水稻表現(xiàn)出對高鹽耐受性,表明OsMAPK4基因參與多種植物耐逆過程,并起正調(diào)控作用[41]。
擬南芥鹽超敏感調(diào)控途徑是目前研究得比較清楚的調(diào)控方式。Martinez-Atienza等用分離的水稻SOS1(OsSOS1)化缺少質(zhì)膜Na+流出系統(tǒng)的酵母突變體,OsSOS1通過減少細胞內(nèi)Na+的凈含量抑制酵母突變體對Na+的敏感性[42]。擬南芥蛋白激酶復(fù)合體SOS2/SOS3可以增強OsSOS1的活性,并且OsSOS1作為AtSOS2的磷酸化底物。在水稻中分離出相當于SOS2和SOS3功能類似蛋白-OsCIPK24和OsCBL4。這表明單子葉植物與雙子葉植物在鹽敏感途徑調(diào)控上呈現(xiàn)一致性。擬南芥中細胞分裂素作用于轉(zhuǎn)錄因子ARR1和ARR12調(diào)控AtHKT1;1的表達,從而調(diào)控Na+在地上部分積累[43]。
植物耐鹽不僅要適應(yīng)Na+毒害,還要適應(yīng)水匱乏和營養(yǎng)物質(zhì)獲取不足等問題。植物應(yīng)對鹽脅迫依賴于K+營養(yǎng)狀況,植物細胞內(nèi)高K+/Na+比率是植物耐鹽過程的決定因素。轉(zhuǎn)運蛋白和離子通道參與這一系列過程,K+吸收由高親和K+吸收系統(tǒng)介導(dǎo),而Na+吸收則通過選擇系統(tǒng)介導(dǎo),植物將K+定位到植物地上部位,將Na+區(qū)室化到液泡。隨著一些基因和蛋白逐步被發(fā)現(xiàn)及對這些轉(zhuǎn)運蛋白和離子通道的深入研究,植物耐鹽機制將得到進一步揭示。
[1] 化燁,才華,柏錫,等.植物耐鹽基因工程研究進展[J].東北農(nóng)業(yè)大學學報,2010,41(10):150-156.
[2] Santa-Maria G E,Rubio F,Dubcovsky J,et al.The HAK1 gene of barley is a member of a large gene family and encodes a highaffinity potassium transporter[J].Plant Cell,1997(9):2281-2289.
[3] Gierth M,Maser P,Schroeder J I.The potassium transporter AtHAK5 functions in K+deprivation-induced high-affinity K+uptake and AKT1 K+channel contribution to K+uptake kinetics in Arabidopsis roots[J].Plant Physiol,2005,137:1105-1114.
[4] Rodriguez-Navarro A,Rubio F.High-affinity potassium and sodium transport systems in plants[J].J Exp Bot,2006,57:1149-1160.
[5] Martínez-Cordero M A,Mart?ínez V,Rubio F.High-affinity K+uptake in pepper plants[J].J Exp Bot,2005,56:1553-1562.
[6] Rubio F,Alemán F,Nieves-Cordones M,et al.Studies on Arabidopsis athak5,atakt1 double mutants disclose the range of concentrations at which AtHAK5,AtAKT1 and unknown systems mediate K uptake[J].Plant Physiol,2010,139(2):220-228.
[7] Horie T,Sugawara M,Okada T,et al.Rice sodium-insensitive potassium transporter,OsHAK5,confers increased salt tolerance in tobacco BY2 cells[J].J Biosci Bioeng,2011,111(3):346-356.
[8] Schachtman D P,Schroeder J I.Structure and transport mechanism of a high-affinity potassium uptake transporter from higher plants[J].Nature,1994,370:655-658.
[9] Rubio F,Gassmann W,Schroeder J I.Sodiumdriven potassium uptake by the plant potassium transporter HKT1 and mutations conferring salt tolerance[J].Science,1995,270:1660-1663.
[10] Uozumi N,Kim E J,Rubio F,et al.The Arabidopsis HKT1 gene homolog mediates inward Na+currents in Xenopus laevis oocytes and Na+uptake in Saccharomyces cerevisiae[J].Plant Physiol,2000,122:1249-1259.
[11] Haro R,Ba~nuelos M A,Senn M E,et al.HKT1 mediates sodium uniport in roots:Pitfalls in the expression of HKT1 in yeast[J].Plant Physiol,2005,139:1495-1506.
[12] Hirsch R E,Lewis B D,Spalding E P,et al.A role for the AKT1 potassium channel in plant nutrition[J].Science,1998,280:918-921.
[13] Johansson I,Wulfetange K,Porée F,et al.External K+modulates the activity of the Arabidopsis potassium channel SKOR via an unusual mechanism[J].Plant J,2006,46(2):269-281.
[14] Xicluna J,Lacombe B,Dreyer I,et al.Increased functional diversity of plant K+channels by preferential heteromerization of the shaker-like subunits AKT2 and KAT2[J].J Biol Chem,2007,282(1):486-494.
[15] Britto D T,Kronzucker H J.Futile cycling at the plasma membrane:A hallmark of low-affinity nutrient transport[J].Trends Plant Sci,2006(11):529-534.
[16] Schachtman D P,Kumar R,Schroeder J I,et al.Molecular and functional characterization of a novel low-affinity cation transporter(LCT1)in higher plants[J].Proc Natl Acad Sci USA,1997,94:11079-11084.
[17] Amtmann A,Fischer M,Marsh E L,et al.The wheat cDNA LCT1 generates hypersensitivity to sodium in a saltsensitive yeast strain[J].Plant Physiol,2001,126:1061-1071.
[18] Horie T,Schroeder J I.Sodium transporters in plants:Diverse genes and physiological functions[J].Plant Physiol,2004,136:2457-2462.
[19] Gobert A,Park G,Amtmann A,et al.Arabidopsis thaliana cyclic nucleotide gated channel 3 forms a non-selective ion transporter involved in germination and cation transport[J].J Exp Bot,2006,57:791-800.
[20] Demarche B,Essah P A,Tester M.Glutamate activates cation currents in the plasma membrane of Arabidopsis root cells[J].Planta,2004,219:167-175.
[21] Horie T,Costa A,Kim T H,et al.Rice OsHKT2;1 transporter midiates large Na+influx component into K+-starved root for growth[J].EMBO,2007,26:3003-3014.
[22] Horie T,Yoshida K,Nakayama H,et al.Two types of HKT transporters with different properties of Na+and K+transport in Oryza sativa[J].Plant J,2001,27:129-138.
[23] Kader M A,Seidel T,Golldack D,et al.Expressions of OsHKT1,OsHKT2 and OsVHA are differently regulated under NaCl stress in saltsensitive and salt-tolerant rice(Oryza sativa L.)cultivars[J].J Exp Bot,2006,57:4257-4268.
[24] Jabnoune M,Espeout S,Mieulet D,et al.Diversity in expression patterns and functional properties in the rice HKT transporter family[J].Plant Physiol,2009,150(4):1955-1971.
[25] Yao X,Horie T,Xue S,et al.Differential sodium and potassium transport selectivities of the rice OsHKT2;1 and OsHKT2;2 transporters in plant cells[J].Plant Physiol,2010,152(1):341-355.
[26] Davenport R J,Muoz-Mayor A,Jha D.The Na+transporter AtHKT1;1 controls retrieval of Na+from the xylem in Arabidopsis[J].Plant Cell Env,2007,30:497-507.
[27] Hall D,Evans A R,Newbury H J,et al.Functional analysis of CHX21:A putative sodium transporter in Arabidopsis[J].J Exp Bot,2006,57:1201-1210.
[28] Qiu Q S,Guo Y,Dietrich M A,et al.Regulation of SOS1,a plasma membrane Na+/H+exchanger in Arabidopsis thaliana,by SOS2 and SOS3[J].Proc Natl Acad Sci USA,2002,99:8436-8441.
[29] Blumwald E,Poole R J.Na+/H+antiport in isolated tonoplast vesicles from storage tissue of Beta vulgaris[J].Plant Physiol,1985,78:163-167.
[30] Gaxiola R A,Rao R,Sherman A,et al.The Arabidopsis thaliana proton transporters,AtNhx1 and Avp1,can function in cation detoxification in yeast[J].Proc Natl Acad Sci USA,1999,96:1480-1485.
[31] Fukuda A,Nakamura A,Tagiri A,et al.Function,intracellular localization and the importance of salt tolerance of a vacuolar Na+/H+antiporter from rice[J].Plant Cell Physiol,2004,45:146-159.
[32] Ohnishi M,Fukada-Tanaka S,Hoshino A,et al.Characterization of a novel Na+/H+antiporter gene InNHX2 and comparison of InNHX2 with InNHX1,which is responsible for blue flower coloration by increasing the vacuolar pH in the Japanese morning glory[J].Plant Cell Physiol,2005,46:259-267.
[33] Yamaguchi T,Apse M P,Shi H,et al.Topological analysis of a plant vacuolar Na+/H+antiporter reveals a luminal C terminus that regulates antiporter cation selectivity[J].Proc Natl Acad Sci USA,2003,100:12510-12515.
[34] Yokoi S,Quintero F J,Cubero B,et al.Differential expression and function of Arabidopsis thaliana NHX Na+/H+antiporters in the salt stress response[J].Plant J,2002,30:1-12.
[35] Wang B,Davenport R J,Volkov V,et al.Low unidirectional sodium influx into root cells restricts net sodium accumulation in Thellungiella halophila,a salt-tolerant relative of Arabidopsis thaliana[J].J Exp Bot,2006,57:1161-1170.
[36] 王學征,李秋紅,吳鳳芝.NaCl脅迫下栽培型番茄Na+、K+吸收、分配和轉(zhuǎn)運特性[J].中國農(nóng)業(yè)科學,2010,43(7):1423-1432.
[37] Takahashi R,Nishio T,Ichizen N,et al.High-affinity K+transporter PhaHAK5 is expressed only in salt-sensitive reed plants and shows Na+permeability under NaCl stress[J].Plant Cell Rep,2007,26(9):1673-1679.
[38] Xu J,Li H D,Chen L Q,et al.A protein kinase,interacting with two calcineurin B-like proteins,regulates K+transporter AKT1 in Arabidopsis[J].Cell,2006,125:1347-1360.
[39] Li L,Kin B G,Chwonf Y H,et al.A Ca2+signaling pathway regulates a K+channel for low-response in Arabidopsis[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103:12625-12630.
[40] Pandey G K,Cheong Y H,Kim B G,et al.CIPK9:A calcium sensor-interacting protein kinase required for low-potassium tolerance in Arabidopsis[J].Cell Res,2007,17:411-421.
[41] 柏錫,朱延明,李麗文,等.轉(zhuǎn)OsMAPK4基因水稻耐鹽性分析[J].東北農(nóng)業(yè)大學學報,2009,40(8):53-57.
[42] Martínez-Atienza J,Jiang X,Garciadeblas B,et al.Conservation of the salt overly sensitive pathway in rice[J].Plant Physiol,2007,143:1001-1012.
[43] Mason M G,Jha D,Salt D E,et al.Type-B response regulators ARR1 and ARR12 regulate expression of AtHKT1;1 and accumulation of sodium in Arabidopsis shoots[J].Plant J,2010,64(5):753-763.