張 濤, 魏紀(jì)珍, 張麗麗, 陸 瓊, 梁革梅*, 楊 朗
(1.廣西大學(xué)農(nóng)學(xué)院,南寧 530004; 2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,植物病蟲害生物學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100193; 3.廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,南寧 530007)
Bt毒蛋白與昆蟲中腸上皮細(xì)胞的刷狀緣膜囊泡(br ush bor der membrane vesicles,BBMV)上的一個(gè)或多個(gè)受體結(jié)合是其發(fā)揮毒性的關(guān)鍵[1]。已經(jīng)報(bào)道的受體蛋白主要有鈣黏蛋白(cadherin,CAD)、氨肽酶N(aminopeptidase N,APN)、糖脂類碳水化合物、肌動(dòng)蛋白、堿性磷酸酯酶和V-ATP酶亞基A等,昆蟲對(duì)Bt產(chǎn)生抗性與其中腸的受體蛋白直接相關(guān),受體蛋白的突變、表達(dá)量、結(jié)合能力的改變等是昆蟲對(duì)Bt毒素產(chǎn)生抗性的主要原因[2]。
APN是第一個(gè)被發(fā)現(xiàn)的、在Bt毒素殺蟲機(jī)制中起作用的毒素受體蛋白。2002年Gill等采用顯微注射法獲得了含煙草天蛾(Manduca sexta)APN基因的轉(zhuǎn)基因黑尾果蠅(Drosophila mel anogaster)品系,APN在非敏感宿主果蠅中腸和中胚層獲得了表達(dá),這種轉(zhuǎn)基因品系果蠅對(duì)Cry1 Ac毒素變得很敏感,該研究首次從蟲體水平證實(shí)APN可作為Cry1Ac毒蛋白的功能性受體[3]。Rajagopal等利用RNA干擾技術(shù)(RNAi)抑制斜紋夜蛾(Spodoptera litura)幼蟲中腸APN的表達(dá),發(fā)現(xiàn)可降低斜紋夜蛾對(duì)Bt的敏感性,證明APN是Bt毒素的受體,并與毒素蛋白發(fā)揮毒力有關(guān)[4]。
Vadla mudi等[5]首次報(bào)道了鈣黏蛋白是煙草天蛾中腸上皮組織中一種Cry1A的受體(BT-R1),能特異性地與Cry1 Ab結(jié)合。Nagamatsu等[6]將家蠶鈣黏蛋白BtR175在Sf9細(xì)胞系中進(jìn)行表達(dá),發(fā)現(xiàn)Bt R175的表達(dá)導(dǎo)致了膜對(duì)Cry1Aa滲透量的改變,進(jìn)一步證實(shí)了類鈣黏蛋白是Cry1Aa的一種受體。隨后的研究還表明,鈣黏蛋白不僅是毒素在鱗翅目昆蟲中腸上皮細(xì)胞上的特異性受體,還參與了啟動(dòng)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑[2,7-9]。
隨著轉(zhuǎn)Bt基因棉花在我國的大面積商業(yè)化種植,棉鈴蟲(Helicover paar migera)的危害得到了很好的控制[10]。但由于轉(zhuǎn)入的Bt基因在作物體內(nèi)持續(xù)表達(dá),使得害蟲在整個(gè)生長周期都受到Bt殺蟲蛋白的高壓選擇,因而棉鈴蟲對(duì)Bt的抗性問題是影響未來轉(zhuǎn)基因棉花發(fā)展的關(guān)鍵因素。關(guān)于棉鈴蟲APN和CAD基因克隆、表達(dá)、及突變、缺失等變化與抗性的關(guān)系已經(jīng)進(jìn)行了一些研究,本文主要是利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù),比較Bt抗性和敏感棉鈴蟲中腸兩種主要受體蛋白—鈣黏蛋白和氨肽酶N的表達(dá)量變化,分析受體蛋白表達(dá)量變化與抗性的關(guān)系,進(jìn)一步明確棉鈴蟲對(duì)Bt的抗性機(jī)制,為抗性治理策略的制定提供理論依據(jù)。
敏感品系(96S):1996年采自河南省新鄉(xiāng)棉田、在室內(nèi)用人工飼料飼養(yǎng)至今,期間未接觸任何殺蟲劑。
抗性品系(Bt R):用Cry1Ac毒蛋白在室內(nèi)篩選了175代,相對(duì)抗性倍數(shù)為3 536.5倍。篩選方法見梁革梅等[11]。
棉鈴蟲在溫度(27±2)℃,相對(duì)濕度(75±10)%,光周期L∥D=14 h∥10 h的條件下飼養(yǎng)。幼蟲在指形管中用人工飼料飼養(yǎng),人工飼料配方參照梁革梅等[12]方法,成蟲在產(chǎn)卵籠中用10%糖水補(bǔ)充營養(yǎng)。
主要試劑:RNA分離試劑(Trizol)、DNA酶試劑盒和c DNA合成試劑盒購自美國Invitrogen公司;實(shí)時(shí)熒光定量PCR及常規(guī)PCR試劑購自大連寶生物公司(Ta Ka Ra)。其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
主要儀器:7500 Fast實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀,美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司(Applied Biosystems Incorporation,ABI)公司;凝膠成像系統(tǒng),美國伯樂公司(BIO-RAD Corporation);5417R 冷凍離心機(jī),德國艾本德(Eppendorf Cor poration)公司。
1.3.1 棉鈴蟲總RNA的提取
由于1、2、3齡棉鈴蟲的蟲體較小,取整頭幼蟲備用;解剖4、5齡棉鈴蟲幼蟲,截取中腸,用生理鹽水(0.7%)沖洗干凈后,用吸水紙將液體吸干。所有樣品立即放入液氮中,之后置-80℃冰箱保存?zhèn)溆?。采用多頭提取方法,每個(gè)齡期棉鈴蟲所用幼蟲頭數(shù)分別為:1齡80頭,2齡40頭,3齡15頭,4齡15頭,5齡10頭。試驗(yàn)重復(fù)3次。
用Invitrogen公司的Trizol試劑盒提取棉鈴蟲總RNA,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測其質(zhì)量,用分光光度計(jì)檢測其純度并定量,-80℃保存。
1.3.2 cDNA的合成
先用DNaseⅠ去除RNA中的基因組DNA,再根據(jù)Invitrogen公司的Super ScriptⅢFirst-Strand試劑盒操作說明合成c DNA。
1.3.3 常規(guī)PCR模板檢測
取經(jīng)過消化后的RNA和反轉(zhuǎn)錄得到的c DNA分別用Actin引物進(jìn)行常規(guī)PCR,以證明RNA中無基因組DNA污染和反轉(zhuǎn)錄得到的c DNA符合試驗(yàn)要求。
Actin-F:5′-CATCTACGAGGGTTACGC-3′,Tm 50.8℃;
Actin-R:5′-CATCTGTTGGAAGGTGGA-3′,Tm 50.8℃。
擴(kuò)增長度574 bp,由Invitr ogen公司合成。
PCR反應(yīng):模板1μL,加入10×Ex Taq緩沖液5μL(含 Mg2+),正向和反向引物各1μL(10μmol/L),d NTP 4μL(2.5 mmol/L),Ex Taq DNA 聚合酶0.25μL(5 U/μL),加水至50μL,混勻。反應(yīng)程序:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性1 min,55℃退火1 min,72℃延伸1 min,共30個(gè)循環(huán);72℃保溫10 min。1%瓊脂糖凝膠電泳查看結(jié)果。
1.3.4 實(shí)時(shí)熒光定量 PCR(real-ti me quantitative PCR,Rq-PCR)
引物及探針合成:參考Gen Bank登錄號(hào)分別為AF519180、AF441377和X97615的CAD、APN1和actin基因全長設(shè)計(jì)引物。以actin為內(nèi)參基因。采用Taq Man技術(shù)進(jìn)行熒光定量PCR。探針5′端為FA M標(biāo)記,探針3′端為Eclipse標(biāo)記。q RT-PCR上游引 物 (f or war d pri mer-F)、下 游 引 物 (reverse pri mer-R)、探針(probe-P)設(shè)計(jì)序列見表1。所需引物及探針由大連寶生物公司合成。
表1 實(shí)時(shí)熒光定量PCR引物及探針序列
Rq PCR反應(yīng)體系:在冰上配制25μL反應(yīng)體系,包括Premix Ex Taq 12.5μL,滅菌蒸餾水(dd H2O)8.7μL,正向和反向引物各1μL(10μmol/L),ROX Reference DyeⅡ(50×)0.4μL,熒光探針溶液0.4μL,c DNA 1μL,振蕩器混勻。每個(gè)樣品設(shè)3個(gè)重復(fù),每個(gè)探針設(shè)3個(gè)空白對(duì)照。試驗(yàn)重復(fù)3次。
RqPCR反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性1 min;95℃5 s,60℃25 s,40個(gè)循環(huán);60℃25 s期間收集熒光信號(hào)。
RqPCR引物擴(kuò)增效率檢驗(yàn):以96S的c DNA為模板,初始濃度定為1,加水稀釋5、10、50、100、500、1 000倍,得到濃度分別為0.2、0.1、0.02、0.01、0.002、0.001,加上初始濃度,共7個(gè)不同濃度的c DNA模板。以此c DNA模板,按照上述實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)體系和程序配制反應(yīng)液,每個(gè)模板設(shè)4個(gè)重復(fù),每個(gè)基因設(shè)4個(gè)空白對(duì)照。
表達(dá)量的計(jì)算參考Livak和Schmittgen[13]的方法,即2-△△CT法:首先,對(duì)所有測試樣本和校正樣本,用目的基因的CT值減去內(nèi)參基因的CT值,△CT=目的基因CT-內(nèi)參基因CT。然后,用校正樣本的△CT值歸一試驗(yàn)樣本的△CT值,△△CT=樣本的△CT-參照的△CT。最后,計(jì)算基因表達(dá)量比率,2-△△CT=樣本表達(dá)量比值。分別以96S品系1齡幼蟲的CAD和APN1的表達(dá)量為1進(jìn)行比較。同一齡期抗、感棉鈴蟲表達(dá)量的差異比較采用t測驗(yàn);同一品系、不同齡期間的比較采用兩因素方差分析,用LSD法進(jìn)行多重比較。用DPS軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。
根據(jù)反應(yīng)導(dǎo)出的數(shù)據(jù),以△CT(目的基因CAD\APN1的CT值減去內(nèi)參基因actin的CT值)為Y軸,以不同稀釋濃度的c DNA模板的-lg值為X軸作圖,“C”為c DNA的相對(duì)濃度,進(jìn)行探針可靠性驗(yàn)證。結(jié)果表明:CAD(-0.002 8)和APN1(0.020 5)的方程
斜率的絕對(duì)值都小于0.1,符合試驗(yàn)要求,證明試驗(yàn)所 設(shè)計(jì)的探針符合熒光定量PCR試驗(yàn)要求(圖1)。
圖1 CAD、APN1與β-actin探針可靠性驗(yàn)證
圖2顯示了抗、感棉鈴蟲CAD的相對(duì)表達(dá)量,結(jié)果表明:與敏感品系相比,抗性品系的1齡、2齡棉鈴蟲CAD表達(dá)量明顯降低(p值分別為0.002、0.007 3),差異達(dá)到極顯著水平;但抗、感品系3齡、5齡幼蟲CAD的表達(dá)量差異不顯著(p值分別為0.92、0.53);抗性品系4齡幼蟲的CAD表達(dá)量反而略高于敏感品系,差異達(dá)到顯著水平(p=0.022)。但整體比較抗、感品系棉鈴蟲幼蟲的CAD表達(dá)量,抗性品系幼蟲的CAD表達(dá)量顯著降低,差異極顯著(p<0.001)。
圖2 抗、感品系棉鈴蟲的CAD相對(duì)表達(dá)量
不同齡期的棉鈴蟲幼蟲CAD表達(dá)量差異也極顯著(表2)。在敏感品系96S中,1齡幼蟲CAD的表達(dá)量最高,其次是2齡、5齡幼蟲,3齡、4齡幼蟲的表達(dá)量最低;而在抗性品系中各齡期幼蟲CAD表達(dá)量由高到低的順序?yàn)椋?齡>5齡>4齡>3齡>2齡,其中4齡、3齡、2齡間差異不顯著。
表2 不同齡期棉鈴蟲幼蟲CAD表達(dá)量的比較1)
抗、感棉鈴蟲APN1的相對(duì)表達(dá)量如圖3所示,結(jié)果表明:與敏感品系相比,抗性品系的2齡棉鈴蟲APN1表達(dá)量明顯降低(p=0.003 6),差異達(dá)到極顯著水平;但抗、感品系1齡、3齡、5齡幼蟲APN1的表達(dá)量差異不顯著(p值分別為0.057、0.996 8、0.647 9);抗性品系4齡幼蟲的 APN1表達(dá)量反而略高于敏感品系,差異達(dá)到顯著水平(p=0.012)。但比較抗、感品系1齡~5齡棉鈴蟲幼蟲整體APN1的表達(dá)量,抗性品系幼蟲的APN1表達(dá)量顯著低于敏感品系,差異達(dá)到極顯著(p<0.001)。
圖3 抗、感品系棉鈴蟲的APN1相對(duì)表達(dá)量
不同齡期的棉鈴蟲幼蟲APN1表達(dá)量差異也極顯著(表3)。在敏感品系96S中,1齡、2齡幼蟲APN1的表達(dá)量明顯高于其他齡期幼蟲,其次是5齡幼蟲,3、4齡幼蟲的表達(dá)量最低;而在抗性品系中各齡期幼蟲APN1表達(dá)量由高到低的順序?yàn)椋?齡>5齡>4齡>2齡>3齡,各齡期間差異都達(dá)到極顯著。
表3 不同齡期棉鈴蟲幼蟲APN1表達(dá)量的比較1)
CAD的表達(dá)量及其分布在不同昆蟲、不同時(shí)期是不同的,而且由于抗性的產(chǎn)生可能會(huì)造成表達(dá)量的不穩(wěn)定。如Midboe等發(fā)現(xiàn),BT-R(鈣黏蛋白)只在煙草天蛾幼蟲期表達(dá),在卵和成蟲期不表達(dá),幼蟲的不同發(fā)育時(shí)期表達(dá)量也不同,表達(dá)量隨著幼蟲蟲齡增長而增加[18];王桂榮等運(yùn)用RT-PCR技術(shù),分析了鈣黏蛋白基因在棉鈴蟲敏感品系不同組織中的表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)鈣黏蛋白主要在棉鈴蟲中腸表達(dá),在前、后腸表達(dá)量很低,在腸道以外的組織中不表達(dá)[19];Carriére等利用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)分析棉紅鈴蟲[Pectinophor a gossy piell a (Saunders)]的鈣黏蛋白基因表達(dá)量,發(fā)現(xiàn)鈣黏蛋白在幼蟲期表達(dá)量最高,在成蟲和胚胎中也都表達(dá),在敏感棉紅鈴蟲所有時(shí)期的表達(dá)都比較穩(wěn)定,但抗性品系Bt R 1齡~3齡幼蟲的表達(dá)量最高,其次是4齡幼蟲和成蟲,在蛹和胚胎中表達(dá)量最低,且4齡幼蟲前腸和中腸表達(dá)量最高[20]。作者的試驗(yàn)結(jié)果顯示,不僅抗性棉鈴蟲的CAD表達(dá)量不穩(wěn)定,而且敏感品系棉鈴蟲的CAD表達(dá)量也不穩(wěn)定,1齡幼蟲的表達(dá)量最高,其次是2齡、5齡幼蟲,3齡、4齡表達(dá)量最低,抗性品系還表現(xiàn)為表達(dá)量提前降低。這進(jìn)一步說明了不同齡期幼蟲CAD表達(dá)量的變化趨勢在不同昆蟲間差異較大。
APNs在不同昆蟲、不同時(shí)期體內(nèi)的分布及其表達(dá)量也是不同的,如蘋淺褐卷蛾(Epip hyas postvittana)已被分離的5個(gè)APN基因在整個(gè)幼蟲期都表達(dá),表達(dá)量隨齡期的增大而增加,且中腸中的表達(dá)量最高[14];Angelucci等測量了棉鈴蟲中腸APN的表達(dá)量,發(fā)現(xiàn)APN1-APN4也在棉鈴蟲的整個(gè)幼蟲期都表達(dá)[15];Crava等測定了歐洲玉米螟(Ostrinia nubilalis)幼蟲期 APN的mRNA表達(dá)量,發(fā)現(xiàn)APN在幼蟲各個(gè)齡期都表達(dá),5齡幼蟲中APNs主要在中腸表達(dá)[16]。本研究通過實(shí)時(shí)熒光定量PCR的方法,比較了不同齡期棉鈴蟲幼蟲的APN1表達(dá)量,也發(fā)現(xiàn)APN1在敏感品系1齡~5齡幼蟲期都表達(dá),但表達(dá)量隨齡期的增加呈現(xiàn)“V”字形變化,1齡、2齡幼蟲的表達(dá)量最高,3齡、4齡時(shí)顯著降低,到5齡時(shí)表達(dá)量又有所增加。造成這種結(jié)果的原因還需要進(jìn)一步分析。
雖然抗性品系不同齡期棉鈴蟲的APN1表達(dá)量變化趨勢與敏感品系相近,但表現(xiàn)為表達(dá)量提前降低,與1齡幼蟲相比,2齡幼蟲的表達(dá)量顯著降低,2齡、3齡幼蟲的表達(dá)量最低,4齡、5齡又逐漸升高。Chougule等曾報(bào)道,取食不同飼料會(huì)造成棉鈴蟲APNs表達(dá)量的差異[17],所以我們分析抗性品系棉鈴蟲一直取食含Bt毒蛋白的飼料,可能是造成APN1表達(dá)量提前降低的主要原因。
鈣黏蛋白和APNs的表達(dá)量與抗性存在明顯相關(guān)性,已先后通過PCR、Norther n blot、RNAi等技術(shù)在不同昆蟲中得到了證實(shí)。如王桂榮等利用RTPCR技術(shù)比較了抗、感棉鈴蟲CAD的表達(dá),發(fā)現(xiàn)棉鈴蟲對(duì)Cr y1 Ac產(chǎn)生抗性后,鈣黏蛋白的表達(dá)量明顯降低[19];Carriére等利用實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 技術(shù),發(fā)現(xiàn)了棉紅鈴蟲抗性品系鈣黏蛋白表達(dá)量不穩(wěn)定的現(xiàn)象[20];Herrero等通過Nort her n blot比較了甜菜夜蛾(Spodopter a exigua)的APNs表達(dá)量,發(fā)現(xiàn)APN1在抗性昆蟲中不表達(dá),說明APN1的不表達(dá)與甜菜夜蛾對(duì)Cry1Ca的抗性相關(guān)[21];Rajagopal等構(gòu)建了斜紋夜蛾的ds RNA,并將其注入5齡幼蟲的血淋巴中,干擾了APN基因的RNA轉(zhuǎn)錄,48 h后處理組幼蟲APN的表達(dá)比對(duì)照組減少了80%,而LC50提高了70%,證明APN的表達(dá)量與幼蟲的敏感性是顯著相關(guān)的[4];Yang等[22]發(fā)現(xiàn) Cry1 Ab抗性小蔗螟品系中,APN1、APN2和APN3的表達(dá)量相對(duì)于敏感品系都有不同程度的下降;利用RNAi技術(shù)降低敏感昆蟲體內(nèi)3種APN的表達(dá)量后,敏感性伴隨著APN表達(dá)量的下降而出現(xiàn)了下降。
作者的結(jié)果也發(fā)現(xiàn)抗性品系棉鈴蟲的CAD和APN1表達(dá)量都明顯降低,尤其是1、2齡幼蟲時(shí)表現(xiàn)明顯,抗、感品系差異極顯著。這也再次證明了昆蟲中腸的鈣黏蛋白、APN表達(dá)量的下降與抗性相關(guān)。但在試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),抗性品系4齡棉鈴蟲幼蟲的APN1和CAD表達(dá)量反而比敏感品系高,這可能與抗性品系幼蟲一直取食含Bt的飼料有關(guān)。本研究在試驗(yàn)中采用了實(shí)時(shí)熒光定量PCR的方法測定APN1和CAD的表達(dá)量,比以前采用其他方法測定的結(jié)果具有更好的即時(shí)性、良好的重復(fù)性、特異性及準(zhǔn)確性。這些結(jié)果將為我們進(jìn)一步了解APN和CAD的功能及與抗性的關(guān)系奠定基礎(chǔ)。
[1] FerréJ,Van Rie J.Bioche mistr y and genetics of insect resistance to Bacill us t huringiensis[J].Annu Rev Ento mol,2002,47:501-533.
[2] Pigott C R,Ellar D J.Role of receptors in Bacill us thuringiensis crystal t oxin activity[J].Microbiol Mol Biol Rev,2007,71:255-281.
[3] Gill M,Ellar D.Transgenic Dr osophil a reveals a f unctional in vivo receptor f or t he Bacill us thuringiensis toxin Cry1 Ac[J].Insect Mol Biol,2002,11:619-625.
[4] Rajagopal R,Sivaku mar S,Agrawal N,et al.Silencing of midgut a minopeptidase N of Spodopter a litur a by doublestranded RNA establishes its role as Bacill us thuringiensis t oxin receptor[J].J Biol Chem,2002,277(49):46849-46851.
[5] Vadla mudi R,Weber E,Ji I,et al.Cloning and expression of a receptor f or an insecticidal toxin of Bacill us thuringiensis[J].J Biol Chem,1995,270:5490-5494.
[6] Nagamatsu Y,Toda S,Ya maguchi F,et al.Identification of Bo mbyx mori midgut receptor f or Bacill us thuringiensis insecticidal Cry1 A(a)toxin[J].Biosci Biotechnol Biochem,1998,62:718-726.
[7] Zhang X,Candas M,Griko N B,et al.Cytotoxicity of Bacill us thuringiensis Cry1 Ab toxin depends on specific binding of the toxin to the cadherin receptor BT-R1 expressed in insect cells[J].Cell Death Differ,2005,12:1407-1416.
[8] Bravo A,Gomez I,Conde J,et al.Oligomerization triggers binding of a Bacill us thuringiensis Cry1 Ab pore-f or ming toxin to aminopeptidase N receptor leading to insertion into membrane microdomains[J].Biochi m Biophys Acta,2004,1667(1):38-46.
[9] Griffitts J S,Aroian R V.Many roads to resistance:how invertebrates adapt to Bt toxins[J].Bio Essays,2005,27(6):614-624.
[10]Wu K,Lu Y,F(xiàn)eng H,et al.Suppression of cotton boll wor m in multiplecrops in China in areas wit h Bt toxin-containing cotton[J].Science,2008,321:1676-1678.
[11]梁革梅,譚維嘉,郭予元.棉鈴蟲對(duì)轉(zhuǎn)Bt基因棉的抗性篩選及遺傳方式的研究[J].昆蟲學(xué)報(bào),2000,43(S1):57-62.
[12]梁革梅,譚維嘉,郭予元.棉鈴蟲人工飼料技術(shù)的改進(jìn)[J].植物保護(hù),1999,25(2):15-17.
[13]Livak K J,Sch mittgen T D.Analysis of relative gene expression data using real-ti me quantitative PCR and t he 2-ΔΔCTmet hod[J].Met hods,2001,25:402-408.
[14]Si mpson R M,Poulton J,Mar k wick N P.Expression levels of aminopeptidase-N genes in the lightbrown apple moth,Epiphyas postvittana[J].Insect Science,2008,15:505-512.
[15]Angelucci C,Barrett-Wilt G A,Hunt D F,et al.Diversity of aminopeptidases,derived fro m f our lepidopteran gene duplications,and polycalins expressed in t he midgut of Helicover pa ar miger a:identification of pr oteins binding t heδ-endotoxin,Cry1 Ac of Bacill us thuringiensis[J].Insect Biochem Molec Biol,2008,38:685-696.
[16]Crava C M,Bel Y,Lee S F,et al.St udy of t he a minopeptidase N gene fa mily in t he lepidopterans Ostrinia nubil alis(Hübner)and Bombyx mori (L.):Sequences,mapping and expression[J].Insect Bioche m Mol Biol,2010,40:506-515.
[17]Chougule N P,Giri A P,Sainani M N,et al.Gene expression patterns of Helicover pa ar migera gut proteases[J].Insect Bioche m Mol Biol,2005,35(4):355-367.
[18]Midboe E G,Candas M,Bulla L A.Expression of a midgutspecific cadherin BT-R1 during t he develop ment of Manduca sexta lar va[J].Co mp Biochem Physiol B,2003,135(1):125-137.
[19]王桂榮,吳孔明,梁革梅,等.棉鈴蟲中腸鈣粘蛋白基因的克隆、表達(dá)及Cr y1 A結(jié)合區(qū)定位[J].中國科學(xué)C輯:生命科學(xué),2004,34(6):1-10.
[20]Carriére Y,Sho walter A M,F(xiàn)abrick J A,et al.Cadherin gene expression and effects of Bt resistance on sper m transfer in pink boll wor m[J].J Insect Physiol,2009,55:1058-1064.
[21]Herrero S,Gechev T,Bakker P L,et al.A Bacill us thuringiensis Cry1Ca-resistant Spodopter a exigua lacks expression of one of f our a minopeptidase N genes[J].BMC Geno mics,2005,6:96.
[22]Yang Y,Zhu Y C,Ottea J,et al.Molecular characterization and RNA interference of t hree midgut aminopeptidase N isozy mes from Bacill us thuringiensis-susceptible and-resistant strains of sugarcane borer,Diatraea saccharalis[J].Insect Bioche m Mol Biol,2010,40(8):592-603.