侯建國(guó),曹玉廷,周漢坤,孟令花,胡富陶,干 寧
(寧波大學(xué)材料科學(xué)與化學(xué)工程學(xué)院,浙江寧波 315211)
臨床上C反應(yīng)蛋白(CRP)檢測(cè)對(duì)冠心病的早期診斷有較高價(jià)值[1-2]。目前檢測(cè)血清中CRP主要基于免疫學(xué)原理,分析方法主要有:熒光、放射、化學(xué)發(fā)光、酶聯(lián)等免疫分析法[3]等。由于上述方法普遍操作繁瑣、儀器龐大、需專業(yè)人員操作[4],不適合于冠心病潛在人群的現(xiàn)場(chǎng)篩查。而開發(fā)一些簡(jiǎn)便、價(jià)廉、精確且易于推廣的CRP現(xiàn)場(chǎng)快速檢測(cè)方法是解決大規(guī)模樣品篩查,并實(shí)現(xiàn)冠心病早期診斷的關(guān)鍵之一,意義重大。電化學(xué)免疫傳感器具有快速、高靈敏、便攜等優(yōu)點(diǎn),在臨床類樣品檢測(cè)中應(yīng)用越來(lái)越廣泛[5],尤其是安培型酶聯(lián)免疫傳感器,可通過(guò)酶催化放大免疫反應(yīng)產(chǎn)生的電流信號(hào),進(jìn)一步提高傳感器靈敏度[6]。目前報(bào)道的安培型酶聯(lián)免疫傳感器缺乏簡(jiǎn)易、高效、穩(wěn)定的抗體和酶固定方法,導(dǎo)致其易失活;而電極無(wú)法更新,修飾麻煩,無(wú)法滿足現(xiàn)場(chǎng)快速檢測(cè)需要[7-8]。解決上述問(wèn)題關(guān)鍵在于尋求新型的抗體標(biāo)記材料,以提高抗體標(biāo)記率;同時(shí)簡(jiǎn)化探針在電極表面修飾過(guò)程[9-10];選擇可批量生產(chǎn),低成本的免疫電極制備方法。
近年來(lái),在納米Fe3O4表面包裹上膠體Au構(gòu)建的Fe3O4(核)/Au(殼)(GMPs)金磁微粒,由于具有良好的生物相容性,超順磁性和導(dǎo)電性[11],受到越來(lái)越多的關(guān)注,被應(yīng)用于生物分子標(biāo)記及免疫磁珠構(gòu)建[12]。崔亞麗等用種子聚合法合成了粒徑約為50 nm的GMPs并用其標(biāo)記抗體[13],由于 GMPs表面大量存在的Au-NPs,可以顯著提高抗體標(biāo)記密度、穩(wěn)定性和生物活性。在外磁場(chǎng)作用下,該類探針即易于實(shí)現(xiàn)對(duì)待測(cè)物的分離富集,又可方便吸附固定在電極表面,由此可構(gòu)建電極表面更新的安培免疫傳感器。CNTs由于其良好的導(dǎo)電性,強(qiáng)大的吸附性能和優(yōu)良的生物相容性[14],已經(jīng)被廣泛用于電極表面修飾材料。含有兩個(gè)氨基的硫堇(Thi)染料分子是一種良好的電子媒介體,由于HRP可以催化Thi和 H2O2之間的氧化還原反應(yīng)[15]。因此,將HRP標(biāo)記抗體和Thi共同修飾到電極上,Thi可作為電極與抗體標(biāo)記HRP酶間的電子傳遞媒介體,可發(fā)展基于Thi-H2O2-HRP的無(wú)媒介體安培免疫傳感器[16]。但是Thi等電子媒介體由于分子量小,水溶性好,將其固定到電極表面時(shí)很容易擴(kuò)散到溶液中,導(dǎo)致傳感器穩(wěn)定性差[17]。CNTs可以與Thi通過(guò)π-π堆積作用[18]結(jié)合形成穩(wěn)定的CNTs-Thi復(fù)合物,當(dāng)其固定到電極后,可有效防止Thi在電極表面泄露。此外,CNTs還可以提高Thi的電子傳輸效率。SPCE是采用絲網(wǎng)印刷工藝,在絕緣基片(如PVC塑料,耐火陶瓷)上沉積一層或數(shù)層印刷油墨制備而成,具有制作簡(jiǎn)便、成本低、樣品消耗量小、可批量化生產(chǎn)等諸多優(yōu)點(diǎn)[19-20]。
綜上所述,我們基于Thi-H2O2-HRP體系,采用GMPs標(biāo)記辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)的抗體(HRP-anti-CRP)制備磁性探針,進(jìn)而組裝在MCNTs-Thi-Nafion修飾的SPCE作為基底電極上,制備了一個(gè)無(wú)媒介、磁性可控、可再生的安培免疫傳感器。Nafion用作膜材料將MCNTs-Thi固定在電極表面,不僅可以阻止MCNTs-Thi在電極表面的流失[21],而且與傳統(tǒng)的安培型酶聯(lián)免疫傳感器相比,其SPCE基底電極可以重復(fù)利用,抗體探針可控固定,修飾過(guò)程簡(jiǎn)單,保證了檢測(cè)穩(wěn)定性與重現(xiàn)性。而由于該類探針具有高的抗體和酶標(biāo)記密度,對(duì)抗原捕獲能力強(qiáng),將其用于血清中痕量CRP檢測(cè),獲得了良好的結(jié)果。
硫堇、牛血清白蛋白(美國(guó)Sigma有限公司),Nafion(分子量:2000,wt%=5.0%,中國(guó)河森有限公司),2-氨基乙硫醇(日本TCI有限公司),甲苯,戊二醛溶液(25%)和H2O2(30%)(上海國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司),多壁碳納米管(MCNTs,直徑小于5 nm,深圳納米技術(shù)港有限公司),0.1 mol/L磷酸緩沖溶液為支持電解質(zhì)(PBS,用 KH2PO4、Na2HPO4和NaCl配制,pH 6.5),C反應(yīng)蛋白定量檢測(cè)試劑盒(酶聯(lián)免疫法),包含一系列不同濃度的CRP標(biāo)準(zhǔn)溶液及辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的CRP抗體(北京科躍中楷生物技術(shù)有限公司),實(shí)驗(yàn)所用試劑均為分析純,實(shí)驗(yàn)用水均為二次去離子水(Millipore公司,美國(guó))。
循環(huán)伏安法(CV),示差脈沖伏安法(DPV)和電化學(xué)阻抗譜(EIS)均在CHI-660B(中國(guó)上海辰華公司)上進(jìn)行。絲網(wǎng)印刷碳電極(SPCE)(西班牙eDAQ技術(shù)公司),其中:工作電極與對(duì)電極均為印刷碳電極,參比電極為印刷Ag/AgCl電極,S-3400N型掃描電子顯微鏡(日本日立公司),H-7650透射電子顯微鏡(日本日立公司),S2 RANGER X射線熒光光譜儀(德國(guó)Bruker公司)。
MCNTs按照文獻(xiàn)報(bào)道[22]直接在 0.5 mol/L 鹽酸中超聲4 h,然后用蒸餾水洗滌直到洗液呈中性,離心,50℃真空干燥24 h。MCNTs(1 mg)和 Thi(2 mg)溶解在1 mL pH 6.5的 PBS中超聲12 h,以形成MCNTs-Thi復(fù)合物,未和MCNTs結(jié)合的Thi可離心去除,獲得純凈的MCNTs-Thi復(fù)合物。最后,取1 mg MCNTs-Thi溶解在含有100 μL 5%Nafion和900 μL 0.1 mol/L pH 6.5 的 PBS 溶液中,在室溫下超聲30 min制備MCNTs-Thi-Nafion溶液。
參照文獻(xiàn)[23]的制備方法,將1.5 mL GMPs(0.5 mg/mL)與0.5 mL 5 mmol/L 2-氨基乙硫醇混合、機(jī)械攪拌24 h,沉淀物用磁鐵轉(zhuǎn)移分離并用二次蒸餾水洗滌,棄上清液,再向上述黑色沉淀中加入2 mL戊二醛的甲苯溶液在室溫下輕輕攪拌反應(yīng)6 h,磁鐵分離,沖洗,并將上述沉淀物與濃度為1.0 mg/mL的HRP-anti-CRP溶液混合,在4℃恒溫?fù)u床反應(yīng)12 h,得到 HRP-anti-CRP/GMPs生物納米粒子。接著,HRP-anti-CRP/GMPs在濃度為 3%的BSA中37℃溫育反應(yīng)1 h,以封閉GMPs剩余的活性位點(diǎn),防止其對(duì)CRP抗原產(chǎn)生非特異性吸附。將制備的HRP-anti-CRP/GMPs納米探針?lè)稚⒃?0 mL pH 6.5 PBS 中,4 ℃儲(chǔ)存,備用。
將SPCE表面依次用無(wú)水乙醇和蒸餾水沖洗幾次,晾干備用,取 5 μL上述制備的 MCNTs-Thi-Nafion溶液滴在SPCE工作電極表面,紅外燈下晾干,作為基底電極。再取5 μL濃度為0.83 mg/mL的磁性納米探針懸浮液滴在電極表面,在SPCE工作電極平面背部加一塊磁場(chǎng)強(qiáng)度為0.3T的圓柱形磁鐵(其圓面和SPCE背面緊貼,如圖1(b))借助磁力將HRP-anti-CRP/GMPs吸附于電極表面,室溫下自然晾干即通過(guò)簡(jiǎn)單的兩步法制得了免疫傳感器(圖1)。每次使用后,移去磁鐵,用蒸餾水沖洗,洗去HRP-anti-CRP/GMPs納米材料以更新電極。此傳感器在4℃下儲(chǔ)存?zhèn)溆谩?/p>
圖1 方案1圖示
該免疫分析是基于免疫結(jié)合物的生成阻礙標(biāo)記酶HRP與Thi之間的電子傳遞而進(jìn)行測(cè)定。首先,測(cè)定SPCE/MCNTs-Thi-Nafion/HRP-anti-CRP/GMPs免疫電極在含4 mmol/L H2O2的pH 6.5的PBS中的峰電流(I0);然后,依次取15 μL不同濃度的CRP標(biāo)準(zhǔn)溶液滴在上述免疫電極表面于30℃溫育15 min。再測(cè)定該免疫傳感器在含有相同濃度H2O2的上述PBS溶液中的峰電流(I)。CRP含量的檢測(cè)是由檢測(cè)傳感器表面免疫反應(yīng)發(fā)生后其對(duì)過(guò)氧化氫的電流響應(yīng)下降值來(lái)進(jìn)行的。該免疫電極在溫育CRP前后的電流響應(yīng)下降值ΔI=I0-I。采用免疫傳感器溫育后電流下降百分率CR%=100×(I0-I)/I0,對(duì)溶液中的CRP進(jìn)行定量,可消除不同電極之間由于表面積不同造成的電流強(qiáng)度差異影響。
圖2 電子顯微鏡表征圖
2.1.1 透射電子顯微鏡(TEM)和掃描電子顯微鏡(SEM)分析。圖2(a)~圖2(c)分別為 MCNTs,MCNTs-Thi和MCNTs-Thi-Nafion/GMPs的TEM表征圖。與單純的 MCNTs(圖2(a))相比,形成的MCNTs-Thi結(jié)合物(圖2(b))明顯直徑變寬,這表明MCNTs的表面已成功結(jié)合了 Thi[24]。圖 2(c)為MCNTs-Thi膜上吸附GMPs后的TEM圖,可清楚地觀察到均勻分散的GMPs顆粒。MCNTs-Thi-Nafion/GMPs的SEM圖(圖2(d))出現(xiàn)了明顯的MCNTs管網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),且出現(xiàn)了大量分散性良好的GMPs,這表明借助于外磁鐵的作用,GMPs已成功固定于MCNTs-Thi-Nafion復(fù)合物膜上。
2.1.2 X射線熒光光譜分析。采用X射線熒光光譜表征HRP-anti-CRP/GMPs復(fù)合物。在HRP-anti-CRP/GMPs納米探針的譜圖上出現(xiàn)了Fe(kα-6.45 keV),Au(LA-9.7 keV)和 S(kα-2.32 keV)的特征峰。
2.1.3 不同修飾層電極的電化學(xué)交流阻抗。電化學(xué)交流阻抗是研究電極表面修飾狀況的一種有效方法。圖3分別為不同階段的修飾電極在5 mmol/L Fe(CN)64-/3-(簡(jiǎn)稱 FeCN,內(nèi)含 0.5 mol/L KCl)溶液中的交流阻抗圖譜,高頻區(qū)的半圓直徑表示電子傳遞阻抗(Ret),低頻區(qū)的線性部分表示擴(kuò)散過(guò)程。圖2現(xiàn)實(shí)了該免疫電極在制備不同階段的阻抗譜,可以很明顯看出,裸SPCE電極的阻抗譜幾乎是一條直線(圖3曲線a),這是典型的擴(kuò)散控制過(guò)程。當(dāng)電極表面修飾MCNTs-Thi-Nafion以后,通過(guò)阻抗譜看出其具有400 Ω的較小電阻(圖3曲線b)。通過(guò)靜電吸附將GMPs組裝到SPCE/MCNTs-Thi-Nafion電極表面,結(jié)果顯示電阻減少至100 Ω(圖3曲線c),這是因?yàn)?GMPs具有良好的導(dǎo)電性,可有效提高FeCN電子傳遞速率。隨著該電極進(jìn)一步固定抗體HRP-anti-CRP,進(jìn)而溫育溶液中CRP抗原,結(jié)果顯示阻抗不斷增加(圖3曲線d和曲線e),這表明:在電極表面的抗體和免疫復(fù)合物大大增加了對(duì)FeCN 電子傳遞的阻抗[27]。
圖3 免疫電極制備過(guò)程中,在0.1 M PBS(pH 6.5)+0.1 M KCl+5.0 mM Fe(CN)64-/3-的交流阻抗圖
圖4顯示了免疫傳感器制備過(guò)程中不同電極在0.1 mol/L pH 6.5的PBS溶液中的循環(huán)伏安圖。由圖4曲線a可以看出在0~-0.8 V的掃描范圍內(nèi),裸電極沒有出現(xiàn)氧化還原峰,而在電極表面修飾一層MCNTs(圖4曲線b)后殘留電流變大,這是因?yàn)镸CNTs增大了電極比表面積,是電極導(dǎo)電性增強(qiáng)。與SPCE/MCNTs修飾電極相比,SPCE/MCNTs-Thi-Nafion修飾電極在-0.3 V左右有一對(duì)穩(wěn)定的準(zhǔn)可逆氧化還原峰曲線(圖4曲線c),該氧化還原峰為Thi的特征峰[26],這表示 MCNTs-Thi牢固結(jié)合并固定在電極上。在 SPCE/MCNTs-Thi-Nafion上吸附GMPs后(圖4曲線d),峰電流明顯增加,這是因?yàn)镚MPs外圍包裹的納米金有促使電子傳輸?shù)淖饔?。GMPs結(jié)合HRP-anti-CRP與BSA之后峰電流下降,是因?yàn)殡姌O之間的內(nèi)阻加大,該結(jié)果和交流阻抗結(jié)論一致(圖4曲線e)。
圖4 不同修飾電極在pH 6.5 PBS緩沖溶液中的循環(huán)伏安響應(yīng)圖
圖5 免疫傳感器加入H2O2前后的循環(huán)伏安圖
圖5的曲線a與 b分別為免疫傳感器加入H2O2前后的循環(huán)伏安圖。從圖5的曲線a可見,在無(wú)H2O2時(shí),電極表面有一對(duì)準(zhǔn)可逆的Thi氧化還原峰。當(dāng)加入4 mmol/L H2O2后,修飾電極的氧化峰電流降低而還原峰電流明顯增加,還原峰電位同時(shí)向負(fù)方向微小移動(dòng)(圖5的曲線b),表現(xiàn)出明顯的酶催化反應(yīng)過(guò)程。該還原電流的增加是由于HRP催化H2O2氧化Thi的反應(yīng)而使電極表面Thi的氧化態(tài)增加所造成的。傳感器在20 ng/mL CRP溶液中溫育后,還原催化電流下降(圖5的曲線c),這是由于電極表面形成的免疫復(fù)合物掩蔽了HRP的活性中心,導(dǎo)致HRP催化氧化Thi的能力下降,峰電流減小。
2.4.1 MCNTs-Thi復(fù)合物和 GMPs在電極表面固定量 滴加 15 μL 含 0.25 ~2.0 mg/mL MCNTs-Thi的Nafion于SCPE表面,探索其在電極表面的最佳濃度。電流響應(yīng)隨著MCNTs-Thi濃度從0.25 mg/mL增加到1.0 mg/mL而逐漸增加,當(dāng)濃度高于1.0 mg/mL時(shí),峰電流又逐漸減小,這可能是因?yàn)殡S著MCNTs-Thi濃度超過(guò)了Nafion飽和吸附量后,會(huì)在電極表面產(chǎn)生流失,所以選擇最終濃度為1.0 mg/mL的MCNTs-Thi滴加在電極表面??疾炝穗姌O表面GMPs的濃度從0.5 mg/mL~1 mg/mL范圍內(nèi)對(duì)電流的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn),峰電流先隨GMPs濃度的增加而增加,在0.83 mg/mL時(shí)達(dá)到最高點(diǎn),由于GMPs高于此濃度后會(huì)有團(tuán)聚現(xiàn)象,由此導(dǎo)致電流下降。因此,選擇0.8 mg/mL GMPs作為修飾最佳濃度。
2.4.2 不同pH、溫育溫度、溫育時(shí)間對(duì)免疫反應(yīng)的影響 免疫反應(yīng)受pH、溫育溫度、溫育時(shí)間等影響,強(qiáng)酸或強(qiáng)堿性環(huán)境會(huì)破壞蛋白質(zhì)微觀結(jié)構(gòu),降低蛋白質(zhì)的活性。此外,Thi的氧化還原過(guò)程需要一個(gè)質(zhì)子。因此,pH值會(huì)影響Thi的電化學(xué)性能。考察免疫電極在pH 5.0~pH 8.0的磷酸鹽緩沖液中對(duì)4 mmol/L H2O2的響應(yīng)(圖6(a))。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),免疫電極在pH 6.5時(shí)響應(yīng)電流最大,故本實(shí)驗(yàn)選擇pH 6.5的PBS。圖6(b)顯示了免疫傳感器在0.5 mmol/L ~5.0 mmol/L H2O2濃度范圍內(nèi)催化電流大小,由圖可知,催化電流隨H2O2濃度的增加而增大,當(dāng)達(dá)到4 mmol/L時(shí),電流響應(yīng)趨于不變,此時(shí)可能溶液中的H2O2達(dá)到了飽和,因此實(shí)驗(yàn)中選擇加入4 mmol/L H2O2。圖6(c)顯示了溫育溫度對(duì)免疫傳感器安培響應(yīng)的影響。當(dāng)溫育溫度從10℃到40℃升高時(shí),免疫傳感器的電流響應(yīng)下降值ΔI也隨之增加,并在35℃達(dá)到最大值。而當(dāng)溫育溫度高于40℃時(shí),可導(dǎo)致抗體蛋白變性,因此選擇35℃作為實(shí)驗(yàn)中溫育溫度。圖6(d)顯示了溫育時(shí)間與免疫傳感器的電流響應(yīng)下降值ΔI的關(guān)系。由圖可示,隨著溫育時(shí)間的增加,免疫傳感器的電流響應(yīng)下降值ΔI隨之增加并趨于一穩(wěn)定值,說(shuō)明此時(shí)抗原-抗體反應(yīng)已達(dá)平衡,在不影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果的情況下,選擇15 min為優(yōu)化的溫育時(shí)間。
圖6 (a)緩沖液pH值;(b)底液中H2O2濃度;(c)傳感器在10 ng/mL CRP中溫育后溫育溫度;(d)傳感器在20 ng/mL CRP中溫育后溫育時(shí)間對(duì)免疫傳感器的影響
在優(yōu)化的測(cè)定條件下,利用SPCE/MCNTs-Thi-Nafion/HRP-anti-CRP/GMPs免疫電極在不同濃度的CRP樣品中溫育,用DPV方法測(cè)定,并獲得了CRP測(cè)定校正曲線。圖7(a)所示,隨著溫育液中CRP含量的增加,免疫傳感器的安培響應(yīng)降低。在高濃度的CRP范圍內(nèi),電流下降百分比(CR%)無(wú)明顯改變,這可能是電極表面CRP的濃度已接近飽和。圖7(b)為CR%與CRP的標(biāo)準(zhǔn)曲線,在0.1 ng/mL~80 ng/mL兩段濃度范圍內(nèi)成線性關(guān)系。回歸方程分別為CR%=6.34C(CRP)+1.02和CR%=0.833C(CRP)+4.27線性相關(guān)系數(shù)分別為0.9983和0.9925。該方法獲得的檢測(cè)下限為0.04 ng/mL(3σ)。
圖7 (a)SPCE/MCNTs-Thi-Nafion/HRP-anti-CRP/GMPs免疫電極對(duì)不同濃度CRP的DPV電流響應(yīng)圖(從 a 到 i的[CRP]=0,0.1,0.5,3.5,5.0,10,50,80,110 ng/mL);(b)CRP 濃度與信號(hào)變化值(CR%)之間的標(biāo)準(zhǔn)曲線
采用4個(gè)同一批次制備的CRP傳感器,對(duì)10 ng/mL的CRP標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行測(cè)定,獲得組間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差 RSD為3.3%(n=4)。同一批次印制的SPCEs結(jié)構(gòu)穩(wěn)定(包括電極材料、面積和碳層厚度等相同),而固定的磁性探針量和分布均一,使得該免疫傳感器具有較好的制備重復(fù)性。免疫電極在4℃冰箱中存放30 d,傳感器在含1 mmol/L H2O2的pH 6.5 PBS溶液中測(cè)定其安培響應(yīng)僅下降為原來(lái)的94%。這表明該傳感器具有較好的儲(chǔ)存穩(wěn)定性,同時(shí)也表明修飾電極可以有效地阻止電子媒介體Thi的流失,且電極表面GMPs/HRP-anti-CRP的生物活性保持良好。
研究了血清中主要可能干擾物對(duì)免疫電極檢測(cè)CRP的影響。結(jié)果表明:當(dāng)傳感器在濃度為20 ZG CRP及分別含有AFP(400 ng/mL)、人免疫球蛋白(HIgG,1μg/mL)、CA19-9(20 ng/mL)、人絨毛膜促性腺激素(HCG,20 ng/mL),以及 2 μg/mL 的 BSA、尿酸、抗壞血酸、多巴胺、L-半胱氨酸等的溶液中溫育,傳感器對(duì)H2O2的電催化信號(hào)在有與沒有干擾物的溶液中僅有4.8%的差別,表明該傳感器選擇性良好。
在本工作中,磁性納米探針可通過(guò)外部磁鐵固定并在測(cè)定后從SPCE上洗脫,從而使SPCE/MCNTs-Thi-Nafion基底電極可更新使用。本文采用同一根Nafion膜修飾電極作為基底電極,在外磁場(chǎng)作用下,重復(fù)固定磁性探針五次,并對(duì)濃度為10 ng/mL的CRP樣品進(jìn)行平行測(cè)定,測(cè)量的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為2.0%。表明該電極具有良好的再生性,Nafion膜基底電極可反復(fù)使用,由此可大大減少電極的使用成本,并簡(jiǎn)化了傳感器的制備過(guò)程。
為了驗(yàn)證此方法應(yīng)用到臨床醫(yī)學(xué)的可能性,對(duì)實(shí)際血清樣品進(jìn)行了檢測(cè)。選取含有3 ng/mL~35 ng/mL CRP的若干血清樣品,取1 mL溶解在5 mL PBS中,采用本法進(jìn)行了測(cè)定并和標(biāo)準(zhǔn)的化學(xué)發(fā)光免疫分析方法(CLA)進(jìn)行了對(duì)照,結(jié)果見表1。
表1 本方法和ELISA方法測(cè)定實(shí)際血清樣品中CRP的結(jié)果比較(n=3)
該法的相對(duì)偏差在1.8%到4.3%之間,表明該傳感器適合用于血清CRP含量的測(cè)定。
本文基于GMPs標(biāo)記酶聯(lián)抗體制備了磁性納米探針,進(jìn)而將其磁性吸附固定在碳納米管修飾絲網(wǎng)印刷電極表面,構(gòu)建了電極表面可更新,可再生使用的安培免疫傳感器,并成功地用于血液中CRP的檢測(cè)。該傳感器具有以下優(yōu)點(diǎn):(1)避免了電解質(zhì)溶液中電子媒介體的加入,減少了背景干擾。(2)合成的磁性納米探針,具有較高的酶標(biāo)抗體標(biāo)記密度,使得其對(duì)CRP抗原捕獲能力大大提高;而富集的HRP酶進(jìn)一步催化放大免疫反應(yīng)產(chǎn)生的電流信號(hào),使得檢測(cè)靈敏度大大增強(qiáng)。(3)磁性探針易于通過(guò)外磁場(chǎng)控制固定和移除電極表面,由此獲得的免疫電極表面可更新使用。(4)每次測(cè)定后只需更換探針即可進(jìn)行下一次檢測(cè),節(jié)約了電極使用成本,縮短了分析時(shí)間。本傳感器具有制作簡(jiǎn)便,磁性可控、穩(wěn)定性和重現(xiàn)性好等優(yōu)點(diǎn)。因此,非常適合于對(duì)人血清中低含量 CRP的檢測(cè),具有潛在的臨床應(yīng)用價(jià)值。
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