陳濤 王海燕 陳彩珍 盧健
青少年健康評(píng)價(jià)與運(yùn)動(dòng)干預(yù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,華東師范大學(xué)體育與健康學(xué)院(上海 200241)
了解衛(wèi)星細(xì)胞激活過程中的控制因素,有利于設(shè)計(jì)出更好的促進(jìn)骨骼肌發(fā)育和修復(fù)方案,以應(yīng)用到運(yùn)動(dòng)科學(xué)(提高運(yùn)動(dòng)員機(jī)能表現(xiàn))和健康科學(xué)(特別是肌肉萎縮和Sarcopenia的治療方法)領(lǐng)域。
衛(wèi)星細(xì)胞的激活是提供新的肌細(xì)胞核(融合成新的肌纖維或當(dāng)前肌纖維肥大)的第一步,骨骼肌發(fā)育、損傷修復(fù)的過程中同樣需要衛(wèi)星細(xì)胞的激活。在成體骨骼肌中,處于靜息狀態(tài)的衛(wèi)星細(xì)胞只在適當(dāng)?shù)臈l件(損傷、運(yùn)動(dòng)刺激、牽拉或去神經(jīng))下被激活(進(jìn)入細(xì)胞周期)[1]。激活的衛(wèi)星細(xì)胞移位到損傷位點(diǎn),進(jìn)行DNA復(fù)制,增殖、分化融合到肌纖維上或形成新的肌纖維,通過這種途徑,肌細(xì)胞核增加,也為骨骼肌肥大奠定基礎(chǔ)。
衛(wèi)星細(xì)胞的激活過程伴隨著復(fù)雜的生物學(xué)調(diào)節(jié)機(jī)制,衛(wèi)星細(xì)胞的活化、增殖和成肌分化是由細(xì)胞連接、細(xì)胞與細(xì)胞外間質(zhì)的相互作用及生長因子決定的,如胰島素樣生長因子1(IGF-1)、成纖維細(xì)胞生長因子(GFF)、肝細(xì)胞生長因子(HGF)、一氧化氮(NO)在肌衛(wèi)星細(xì)胞激活中的信號(hào)作用已被很多研究證實(shí)[2]。
目前國內(nèi)學(xué)者多采用體外細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)研究衛(wèi)星細(xì)胞的增殖和分化能力,已取得顯著成果。例如,路睿睿等[3]采用脂多糖刺激體外培養(yǎng)的骨骼肌衛(wèi)星細(xì)胞,觀察肌衛(wèi)星細(xì)胞產(chǎn)生肝細(xì)胞生長因子及肌衛(wèi)星細(xì)胞增殖分化的變化,發(fā)現(xiàn)脂多糖可誘導(dǎo)肌衛(wèi)星細(xì)胞自分泌肝細(xì)胞生長因子,并促進(jìn)肌衛(wèi)星細(xì)胞增殖分化。邵素霞等[4]研究發(fā)現(xiàn)肝細(xì)胞生長因子對(duì)骨骼肌衛(wèi)星細(xì)胞具有較強(qiáng)的促增殖作用。
國外學(xué)者則多從分子水平的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路入手,研究HGF等生長因子對(duì)肌衛(wèi)星細(xì)胞的生物學(xué)調(diào)節(jié)機(jī)制。NO-HGF-c-met通路被認(rèn)為是衛(wèi)星細(xì)胞激活過程中非常重要的一條信號(hào)通路,因?yàn)樵诒姸嗟纳L因子中,HGF是唯一一個(gè)能把安靜狀態(tài)下的衛(wèi)星細(xì)胞激活并促進(jìn)其進(jìn)入細(xì)胞周期的生長因子[5,6]。
HGF因?qū)Ω渭?xì)胞具有很強(qiáng)的絲裂原作用而被命名為肝細(xì)胞生長因子[7]。1987年,Stoker等[8]發(fā)現(xiàn)成纖維細(xì)胞分泌一種能促進(jìn)上皮細(xì)胞集落擴(kuò)散的細(xì)胞因子,稱為離散因子(SF),后來研究發(fā)現(xiàn)SF即HGF[9],隨著研究的深入,發(fā)現(xiàn)HGF/SF作為一種多效能的細(xì)胞因子,在許多細(xì)胞和組織中發(fā)揮促細(xì)胞發(fā)育和分化的作用。HGF/SF的信號(hào)作用是由原癌基因c-met編碼的跨膜受體蛋白所介導(dǎo)的[10]。Jennische[11]等在再生的骨骼肌中檢測(cè)到 HGF mRNA,第一個(gè)將HGF與骨骼肌聯(lián)系起來。而后Tatsumi等[5]在安靜和激活狀態(tài)下的骨骼肌衛(wèi)星細(xì)胞膜上均發(fā)現(xiàn)了HGF及其受體c-met。轉(zhuǎn)基因小鼠過度表達(dá)HGF會(huì)導(dǎo)致骨骼肌異位發(fā)育,提示HGF在骨骼肌發(fā)育的過程中具有生理上的分散作用[12]。此外,Bladt等發(fā)現(xiàn)c-met突變小鼠不能形成正常的骨骼肌群[13]。1995年Allen等發(fā)現(xiàn)HGF激活大鼠離體骨骼肌衛(wèi)星細(xì)胞,促使其進(jìn)入細(xì)胞周期[6]。1998年Tatsumi也證實(shí)在大鼠骨骼肌中,HGF通過其受體c-met能激活衛(wèi)星細(xì)胞[5]。此后一系列包括對(duì)培養(yǎng)離體肌原細(xì)胞、單根肌纖維及活體骨骼肌的研究均證實(shí)HGF通過與衛(wèi)星細(xì)胞膜上的c-met結(jié)合激活衛(wèi)星細(xì)胞[14,15]。一般情況下,HGF位于肌細(xì)胞外區(qū)域,有可能與細(xì)胞外基質(zhì)主要組成部分——蛋白聚糖連接在一起,當(dāng)骨骼肌損傷時(shí),HGF能快速從細(xì)胞外基質(zhì)釋放出來并與衛(wèi)星細(xì)胞膜上的 c-met結(jié)合,激活衛(wèi)星細(xì)胞[5,16]。
內(nèi)源性NO是在一氧化氮合酶(nitric oxide synthase,NOS)和還原型尼克酰胺嘌呤二核苷酸(ANPDH)的共同作用下,利用L-Arg和活性分子氧生成的。NOS在多種細(xì)胞中均有表達(dá),目前已確定有3種NOS同工酶,分別是神經(jīng)原型(neuronal-NOS,nNOS)、內(nèi)皮型(endothelial-NOS,eNOS)和誘導(dǎo)型(inducible-NOS,iNOS)[17]。骨骼肌中主要表達(dá)nNOS,Ⅰ型和Ⅱ型肌纖維中均有nNOS表達(dá),nNOS通過與抗肌萎縮蛋白-糖蛋白復(fù)合體結(jié)合分布在骨骼肌細(xì)胞膜上[18]。正常情況下,骨骼肌中的NO處于非常低的水平,衛(wèi)星細(xì)胞也處于安靜狀態(tài),在運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練、負(fù)重、損傷、剪切應(yīng)力或機(jī)械牽拉的刺激下,NOS的表達(dá)或活性增加[19]。2000 年 Anderson[15]研究證實(shí)擠壓損傷的骨骼肌中,NO的快速釋放是誘導(dǎo)衛(wèi)星細(xì)胞肥大并脫離其毗鄰衛(wèi)星細(xì)胞的關(guān)鍵。2002年Anderson等[16]又通過離體培養(yǎng)單根肌纖維發(fā)現(xiàn),NO可以激活安靜狀態(tài)下的衛(wèi)星細(xì)胞,阻斷NO的合成,也阻斷了衛(wèi)星細(xì)胞的激活。
Tatsumi等[20]采用細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù),利用真空負(fù)壓牽拉刺激,從9月齡SD大鼠骨骼肌中分離出安靜狀態(tài)下的衛(wèi)星細(xì)胞,牽拉刺激12、24、48小時(shí)后發(fā)現(xiàn),激活狀態(tài)的衛(wèi)星細(xì)胞數(shù)量顯著增加,與HGF激活離體大鼠骨骼肌衛(wèi)星細(xì)胞的情況一致[20,21],使用HGF阻滯劑可以降低機(jī)械牽拉誘導(dǎo)的衛(wèi)星細(xì)胞激活的數(shù)量。其后發(fā)現(xiàn)2小時(shí)的牽拉即可誘導(dǎo)衛(wèi)星細(xì)胞的激活,且抑制HGF的活性,發(fā)現(xiàn)衛(wèi)星細(xì)胞的激活數(shù)量明顯減少,幾乎與對(duì)照組無差異。對(duì)牽拉2小時(shí)組培養(yǎng)基進(jìn)行免疫印跡檢測(cè),發(fā)現(xiàn)具有活性的HGF,并且其能夠激活未牽拉組衛(wèi)星細(xì)胞。為了確定HGF的來源及HGF是否定位在c-met呈陽性的衛(wèi)星細(xì)胞上,Tatsumi[20]等又使用了免疫熒光雙標(biāo)記技術(shù),結(jié)果證實(shí)HGF主要集中在細(xì)胞膜表面。使用1.0M濃度的NaCl洗滌牽拉12小時(shí)組的衛(wèi)星細(xì)胞以去除細(xì)胞外的HGF,牽拉誘導(dǎo)的激活作用消失,繼續(xù)牽拉刺激該組發(fā)現(xiàn),衛(wèi)星細(xì)胞依然可被內(nèi)源性的HGF激活。這些研究為牽拉刺激誘導(dǎo)的衛(wèi)星細(xì)胞激活作用是通過細(xì)胞外基質(zhì)HGF釋放實(shí)現(xiàn)的提供了有力的證據(jù)。
為了研究NO在HGF釋放過程中的作用,Tatsumi等[21,22]通過添加NOS抑制劑 (L-NAME),發(fā)現(xiàn)牽拉刺激衛(wèi)星細(xì)胞的激活作用消失,增加HGF可以使這種激活作用得到恢復(fù),說明L-NAME并非直接抑制衛(wèi)星細(xì)胞的激活,而是通過抑制HGF從而抑制衛(wèi)星細(xì)胞的激活。用免疫印跡法檢測(cè)該組培養(yǎng)基,發(fā)現(xiàn)HGF并未釋放出來。此外,給非牽拉組添加亞硝基五氰絡(luò)鐵酸鈉二水化合物(一種NO供體),發(fā)現(xiàn)衛(wèi)星細(xì)胞激活的速度增加,用免疫印跡法檢測(cè)培養(yǎng)基,也能檢測(cè)出HGF。這些結(jié)果表明,機(jī)械牽拉作用誘導(dǎo)的HGF從其細(xì)胞外基質(zhì)儲(chǔ)存庫中的釋放依賴NO的生成[22]。
2006年,Yamada等[23]發(fā)現(xiàn)基質(zhì)金屬酶蛋白(MMPs)介導(dǎo)了NO誘導(dǎo)的HGF釋放。MMPs的活性受到抑制的情況下,可阻斷HGF的釋放和后繼的衛(wèi)星細(xì)胞的激活。MMPs是一個(gè)鋅依賴的肽鏈內(nèi)切酶大家族,目前已明確其有25個(gè)家族成員,均有一個(gè)前肽區(qū)和一個(gè)包含鋅離子的催化區(qū)域。作為肽鏈內(nèi)切酶,其家族成員可以降解數(shù)種細(xì)胞外基質(zhì)蛋白,如膠原蛋白、彈力蛋白、纖維結(jié)合蛋白、蛋白聚糖等[24]。MMP-2、3、7和9在骨骼肌中均有表達(dá)[25,26],其中 MMP2、3、9 可以裂解硫酸類肝素蛋白多糖的核心蛋白,這些金屬蛋白酶可能通過調(diào)節(jié)細(xì)胞外基質(zhì)的完整和組成,在骨骼肌發(fā)育和修復(fù)過程中發(fā)揮重要作用[25]。NO可直接亞硝基化MMP,調(diào)節(jié)其活性。此外,有相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),NO可上調(diào)MMP-2和MMP-9的蛋白表達(dá)水平和酶活性。2008年,Yamada等[26]在對(duì)離體培養(yǎng)的大鼠骨骼肌衛(wèi)星細(xì)胞施以30μM亞硝基鐵氰化鈉(一種NO供體)或機(jī)械牽拉2小時(shí)的過程中,發(fā)現(xiàn)非活性的MMP-2前體(72 kDa)轉(zhuǎn)變成了成熟體(52 kDa),在加入NOS抑制劑L-NAME 10μM后,這種轉(zhuǎn)變同樣被抑制。在非牽拉組中,添加1μMNOC-7(可以自發(fā)生成NO),發(fā)現(xiàn)重組的MMP-2蛋白轉(zhuǎn)化為成熟體MMP-2(52 kDa),免疫印跡檢測(cè)該組培養(yǎng)基發(fā)現(xiàn)HGF。因此可以推測(cè)NO激活的MMP2也許介導(dǎo)了HGF從細(xì)胞外基質(zhì)中的釋放,從而激活衛(wèi)星細(xì)胞。
2009年,Tatsumi[27]等發(fā)現(xiàn)鈣 -鈣調(diào)蛋白同樣可以誘導(dǎo)HGF的釋放并激活衛(wèi)星細(xì)胞,并且可能在NO合成過程中起到一種信號(hào)作用。在體外培養(yǎng)的衛(wèi)星細(xì)胞培養(yǎng)基中添加鈣離子載體,2小時(shí)后HGF釋放并激活衛(wèi)星細(xì)胞,這種效果與機(jī)械牽拉或添加NO供體一樣。添加鈣調(diào)蛋白抑制劑可以消除這種激活作用。該研究結(jié)果提示,可能是鈣-鈣調(diào)蛋白通過激活NO的合成介導(dǎo)了細(xì)胞外基質(zhì)釋放HGF,從而激活衛(wèi)星細(xì)胞。
綜合以上一系列研究,可將NO依賴的衛(wèi)星細(xì)胞激活信號(hào)通路歸納如下,即衛(wèi)星細(xì)胞激活的分子機(jī)制是一系列分子級(jí)聯(lián)應(yīng)答反應(yīng)的結(jié)果,包括鈣-鈣調(diào)蛋白的形成、NOS的激活、NO的生成、MMP的激活、HGF的釋放、HGF與其受體c-met的結(jié)合等。
衛(wèi)星細(xì)胞是出生后骨骼肌中固有的、具有增殖分化潛能的肌源性干細(xì)胞,大部分處于靜息狀態(tài)。當(dāng)骨骼肌受到損傷、運(yùn)動(dòng)刺激或機(jī)械牽拉時(shí),衛(wèi)星細(xì)胞被激活,進(jìn)而增殖、分化,融合到臨近的肌纖維上,以促進(jìn)受損肌纖維修復(fù)再生或運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)的骨骼肌肥大。目前的研究結(jié)果表明,機(jī)械刺激觸發(fā)的一系列級(jí)聯(lián)反應(yīng)需要NO-MMP2-HGF-c-met的參與,這可能就是骨骼肌將機(jī)械變化轉(zhuǎn)化為化學(xué)信號(hào)從而激活衛(wèi)星細(xì)胞的分子機(jī)制。當(dāng)然,調(diào)節(jié)衛(wèi)星細(xì)胞機(jī)能的信號(hào)通路還有很多,錯(cuò)綜復(fù)雜,因此需要對(duì)“機(jī)械-生物學(xué)”在骨骼肌衛(wèi)星細(xì)胞激活過程中的作用和機(jī)制進(jìn)行深入研究和理解。
[1]Wozniak AC,Kong J,Bock E,et al. Signaling satellite-cell activation in skeletal muscle:markers,models,stretch,and potential alternate pathways. J Muscle Nerve,2005,31(3):283-300.
[2]Kadi F,Charifi N,Denis C,et al. The behaviour of satellite cells in response to exercise:what have we learned from human studies? Pfl ugers Arch,2005,451(2):319-327.
[3] 路睿睿,白祥軍. 脂多糖誘導(dǎo)體外培養(yǎng)骨骼肌衛(wèi)星細(xì)胞表達(dá)肝細(xì)胞生長因子的變化. 中國組織工程研究與臨床康復(fù),2007,11(46):9246-9249.
[4] 邵素霞,馬洪駿,趙春芳,等. EGF、bEFG和PHGF對(duì)大鼠骨骼肌衛(wèi)星細(xì)胞增殖的影響. 中國細(xì)胞生物學(xué)學(xué)報(bào),2004,26:425-428.
[5]Tatsumi R,Anderson JE,Nevoret CJ,et al. HGF/SF is present in normal adult skeletal muscle and is capable of activating satellite cells. Dev Biol,1998,194(1):114-128.
[6]Allen RE,Sheehan SM,Taylor RG,et al. Hepatocyte growth factor activates quiescent skeletal muscle satellite cells in vitro. J Cell Physiol,1995,165 :307-312.
[7]Nakamura T,Nishizava T,Hagiya M,et al. Molecular cloning and expression of human hepatocyte growth factor . Nature,1989,342:440-443.
[8]Stoker M,Gherardi E,Perryman M,et al. Scatter factor is a fi broblast-derived modulator of epithelial cell mobility. Nature,1987,327:239-242.
[9]Weidner KM,Arakaki N,Hartmann G,et al. Evidence for the identity of human scatter factor and human hepatocyte growth factor. Proc Natl Acad Sci,1991,88(16)7001-7005.
[10]Bottaro DP,Rubin JS,F(xiàn)aletto DL,et al. Identification of the hepatocyte growth factor receptor as the c-met proto-oncogene product. Science,1991,251(4995):802-804.
[11]Jennische E,Ekberg S,Matejka GL. Expression of hepatocyte growth factor in growing and regenerating rat skeletal muscle. Am J Physiol,1993,265(1):C122-C128.
[12]Takayama H,La Rochelle WJ,Anver M,et al. Scatter factor/hepatocyte growth factor as Regulator of skeletal muscle and nertal crest development. Proc Natl Acad Sci USA,1996,93(12):5866-5871.
[13]Bladt F,Riethmacher D,Isenmann S,et al. Essential role for the c-met receptor in the migration of myogenic precursor cells into the limb bud. Nature,1995,376 :768-771.
[14]Tatsumi R,Hattori A,Ikeuchi Y,et al. Release of hepatocyte growth factor from mechanically stretched skeletal muscle satellite cells and role of pH and nitric oxide.Mol Biol Cell,2002,13(8):2909-2918.
[15]Anderson,JE. A role for nitric oxide in muscle repair:nitric oxide-mediated activation of muscle satellite cells.Mol Biol Cell,2000,11(5):1859-1874.
[16]Anderson J,Pilipowicz O. Activation of muscle satellite cells in single-fi ber cultures. Nitric Oxide,2002,7(1):36-41.
[17]Pacher P,Beckman JS,Liaudet L. Nitric oxide and peroxynitrite in health and disease. Physiol Rev,2007,87(1):315-424.
[18]Stamler JS,Meissner G. Physiology of nitric oxide in skeletal muscle. Physiol Rev,2001,81:209-237.
[19]Tidball JG,Lavergne E,Lau KS,et al. Mechanical loading regulates NOS expression and activity in developing and adult skeletal muscle. Am J Physiol,1998,275:C260-C266.
[20]Tatsumi R,Yamada M,Katsuki Y,et al. Low-pH preparation of skeletal muscle satellite cells can be used to study activation in vitro. Int J Biochem Cell Biol,2006,38(10):1678-1685.
[21]Tatsumi R,Sheehan SM,Iwasaki H,et al. Mechanical stretch induces activation of skeletal muscle satellite cells in vitro. Exp Cell Res,2001,267(1):107-114.
[22]Tatsumi R,Liu X,Pulido A,et al. Satellite cell activation in stretched skeletal muscle and the role of nitric oxide and hepatocyte growth factor. Am J Physiol Cell Physiol,2006,290(6):C1487-C1494.
[23]Yamada M,Tatsumi R,Kikuiri T,et al. Matrix metalloproteinases are involved in mechanical strech-induced activation of skeletal muscle satellite cells. Muscle Nerve,2006,34(3):313-319.
[24]Ganea E,Trifan M,Laslo AC,et al. Matrix metalloproteinases:useful and deleterious. Biochem Soc Trans,2007,35(4):689-691.
[25]Carmeli E,Moas M,Reznick AZ,et al. Matrix metalloproteinases and skeletal muscle:a brief review. Muscle Nerve,2004,29(2):191-197.
[26]Yamada M,Tatsumi R,Sankoda Y,et al. Matrix metalloproteinase-2 mediates stretch-induced activation of skeletal muscle satellite cells in a nitric oxide-dependent manner. Int J Biochem Cell Biol,2008,40(10):2183-2191.
[27]Tatsumi R,Wuollet AL,Tabata K,et al. A role for calcium-calmodulin in regulating nitric oxide-production during skeletal muscle satellite cell activation. Am J Physiol Cell Physiol,2009,296(4):C922-C929.
中國運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志2011年10期