許 勇,王少敏,毛 丹,鄭 榮,王 柯,季 申
(上海市食品藥品檢驗所,上海 201203)
黃曲霉毒素污染問題,已經(jīng)成為世界各國密切關(guān)注的問題之一。黃曲霉毒素是一組具有強毒性和致癌性的次級真菌代謝產(chǎn)物,全球性污染糧食及其制品,給人類的健康造成嚴(yán)重威脅[1]。在黃曲霉產(chǎn)生的十余種毒素中,黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1的毒性及致癌性最強。中藥材或中成藥中黃曲霉毒素的分析方法的研究近年來發(fā)展十分迅速,已有研究表明中藥材及中成藥中黃曲霉毒素的污染不可忽視[2~5]。為了保證臨床用藥的安全性,本文建立了用高效液相色譜串聯(lián)三重四極桿質(zhì)譜對中藥綠豆中的黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1進行了測定。方法簡便、準(zhǔn)確、專屬性強。
1.1 儀器 液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜儀:美國Agilent公司1200液相色譜-API5500三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀,配有電噴霧離子源(ESI);多功能真空樣品處理器;氮氣吹干儀(N-EVAP 112型,美國 Organomation Associates,Inc公司);分析天平(BS2202/TE-612-L/CP225D型電子天平,德國Sartorius公司);HLB 柱(3mL/60mg,Waters,095A)。
1.2 試藥 黃曲霉毒素混合對照品溶液(美國SUPELCO公司提供 Lot:LB 33367,黃曲霉毒素 G2、G1、B2、B1的濃度分別為 0.3 μg·mL-1、1.0 μg·mL-1、0.3 μg·mL-1、1.0 μg·mL-1);綠豆(批號:090721,產(chǎn)地:浙江)。甲醇、乙腈均為色譜純(MERCK公司),試劑均為分析純[中國醫(yī)藥(集團)上?;瘜W(xué)試劑公司]。
2.1 液相色譜條件 色譜柱:Phenomenex SB-C18(2.0mm×50mm,4μm)。以 10mmol·L-1醋酸銨溶液為流動相 A,以甲醇為流動相B,按表1進行梯度洗脫;體積流量:1.0mL·min-1;柱溫:25 ℃;進樣量10μL。
表1 流動相條件
2.2 質(zhì)譜條件 經(jīng)過對毛細(xì)管出口電壓、碰撞池能量等質(zhì)譜參數(shù)的優(yōu)化,最終確定黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1質(zhì)譜條件 見表2。
表2 黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1檢測的質(zhì)譜參數(shù)
2.3 溶液的配制
2.3.1 對照品溶液的制備 取黃曲霉毒素混合對照品溶液,加50%甲醇制成含黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1濃度分別為 30 ng·mL-1、100 ng·mL-1、30 ng·mL-1、100 ng·mL-1的對照品溶液。
2.3.2 供試品溶液的制備 取樣品粉末(過二號篩)5 g,精密稱定,精密加入70%甲醇50mL,超聲處理30min,離心5min(離心速度2500 r·min-1),精密吸取上清液 10mL,用水稀釋至20mL,搖勻,取10mL,通過已經(jīng)處理好的HLB(先用甲醇2mL洗脫,再用水2mL洗脫)柱(流速3mL·min-1),隨后用 30%甲醇2mL 洗脫(流速6mL·min-1),棄去洗脫液,再用1.5mL甲醇洗脫(流速1mL·min-1),收集甲醇洗脫液,用水稀釋至2mL,搖勻,即得。
圖1 黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1對照品(A)、綠豆樣品(B)、綠豆加入對照品(C)、陰性對照(D)的總離子流色譜圖
2.3.3 陰性對照溶液的制備 取缺綠豆的樣品按供試品溶液的制備方法制備陰性對照溶液。陰性樣品溶液在與黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1色譜峰相同位置處無干擾峰,表明樣品中其他成分對黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1的測定無干擾,見圖1。
2.4 方法學(xué)考察
2.4.1 線性關(guān)系考察 取黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1對照品溶液,加75%甲醇配制成5個不同濃度的系列對照品溶液。取樣品5 g,一式5份,按正文所述方法制備供試品溶液,將供試品溶液于40℃氮吹至干,分別精密加入上述系列對照品溶液2mL,渦旋混勻,作為基質(zhì)混合對照品溶液。精密吸取各基質(zhì)混合對照品溶液10μL,進樣分析,記錄各待測組分色譜峰面積,以各成分的進樣量為橫坐標(biāo)(X),各成分的峰面積為縱坐標(biāo)(Y),進行回歸分析,校正曲線,結(jié)果見表3。
表3 回歸方程和相關(guān)系數(shù)
2.4.2 檢測限的測定 取基質(zhì)混合對照品溶液逐步稀釋后,進樣,以峰高為基線噪音3倍計,黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1的最低檢測限分別為 0.11 μg·kg-1、0.03 μg·kg-1、0.01 μg·kg-1、0.02 μg·kg-1。
2.4.3 精密度試驗 取基質(zhì)對照品溶液(黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1濃度分別為 3 ng·mL-1、10 ng·mL-1、3 ng·mL-1、10 ng·mL-1),連續(xù)進樣 6 次,記錄峰面積,結(jié)果黃曲霉毒素 G2、G1、B2、B1峰面積的 RSD 值在0.8% ~2.0%范圍內(nèi),表明測定精密度良好。
2.4.4 重復(fù)性試驗 因樣品未檢出黃曲霉毒素,故采用加樣方法進行重復(fù)性試驗。取本品粉末(過二號篩)5 g(未檢出黃曲霉毒素),一式6份,精密稱定,精密加入黃曲霉毒素對照品溶液0.3mL,按正文方法制備供試品溶液,進樣分析,記錄峰面積,計算回收率。結(jié)果見表4,表明測定重復(fù)性良好。
表4 重復(fù)性試驗結(jié)果(%)
2.4.5 穩(wěn)定性試驗 取中間濃度回收率試驗的供試品溶液,室溫下放置 0、2、4、12、46 h,進樣測定。計算黃曲霉毒素G2、G1、B2、B1濃度,其 RSD 值在 0.5% ~ 1.1% 范圍內(nèi),表明供試品溶液在46 h內(nèi)化學(xué)性質(zhì)穩(wěn)定。
2.4.6 回收率試驗 取本品粉末(過二號篩)5 g(未檢出黃曲霉毒素),一式9份,以3份為一組,分別精密加入黃曲霉毒素 G2、G1、B2、B1對照品溶液各 0.15、0.3、0.5mL,精密加入70%甲醇50mL,余同供試品溶液制備方法制得加樣回收率供試品溶液。依法測定,計算回收率及相應(yīng)RSD值,結(jié)果表明,本方法回收率試驗結(jié)果良好,結(jié)果見表5~7。
表5 低濃度添加水平回收率試驗結(jié)果(%)(黃曲霉毒素 G2、G1、B2、B1 的添加濃度分別為 0.9 μg·kg-1、3 μg·kg-1、0.9 μg·kg-1、3 μg·kg-1)
表6 中間濃度添加水平回收率試驗結(jié)果(%)(黃曲霉毒素 G2、G1、B2、B1 的添加濃度分別為 1.8 μg·kg-1、6 μg·kg-1、1.8 μg·kg-1、6μg·kg-1)
表7 高濃度添加水平回收率試驗結(jié)果(%)(黃曲霉毒素 G2、G1、B2、B1 的添加濃度分別為 3 μg·kg-1、10 μg·kg-1、3 μg·kg-1、10 μg·kg-1)
2.4.7 樣品測定 按擬訂方法測定綠豆樣品,結(jié)果未檢出黃曲霉毒素 G2、G1、B2、B1。
3.1 基質(zhì)效應(yīng)的考察及其消除和補償措施 基質(zhì)效應(yīng)指樣品中除目標(biāo)分析物以外的其他成分對待測物測定值的影響,即基質(zhì)對分析方法準(zhǔn)確測定分析物能力的干擾。根據(jù)基質(zhì)對檢測信號響應(yīng)值的不同影響,可分為基質(zhì)增強效應(yīng)和減弱效應(yīng)。增強效應(yīng)即基質(zhì)成分的存在減少了色譜系統(tǒng)活性位點與待測物分子作用的機會,使得待測物檢測信號增強的現(xiàn)象;減弱效應(yīng)是指基質(zhì)成分的存在使儀器檢測信號減弱的現(xiàn)象。不同的待測物由于化學(xué)結(jié)構(gòu)與性質(zhì)不同,在不同種類的基質(zhì)中表現(xiàn)為不同的基質(zhì)效應(yīng),本文在實驗中對此進行了研究。
試驗中,分別以混合對照品溶液和基質(zhì)混合對照品溶液制備兩條標(biāo)準(zhǔn)曲線,考察兩條標(biāo)準(zhǔn)曲線對加樣回收率結(jié)果的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn),黃曲霉毒素 G2、G1、B2、B1存在基質(zhì)減弱的現(xiàn)象?;旌蠈φ掌啡芤号渲频臉?biāo)準(zhǔn)曲線計算的回收率結(jié)果明顯偏低。因此,為了保證測定結(jié)果準(zhǔn)確可靠,本實驗采用基質(zhì)混合對照品溶液進行方法學(xué)的研究。
目前,文獻報道的中藥中黃曲霉毒素的檢測方法,多數(shù)為酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)和免疫親和柱熒光光度法。但是,因為中藥的成分較為復(fù)雜,化學(xué)成分干擾較多,用ELISA試劑盒測定中藥中黃曲霉毒素,假陽性率較高,不同廠家的試劑盒及各實驗室測定結(jié)果差異較大。免疫親和柱熒光光度法是2010年版《中國藥典》附錄中收載的中藥中黃曲霉素G2、G1、B2、B1的通用測定方法。但此方法所用的免疫親和柱價格比較昂貴,且有時也會出現(xiàn)假陽性。與上述方法相比較,本法采用HLB柱對樣品進行凈化后,通過液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜對樣品進行進樣分析,即降低了分析的成本,提高了檢測的靈敏度,又減少了假陽性,提高了測定的準(zhǔn)確性,有較強的實用性。
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