徐小燕,楊雪,夏蒲,邢亞楠,關(guān)一夫,鄭華川
(中國(guó)醫(yī)科大學(xué) 1.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院生物化學(xué)與分子生物學(xué)教研室;2.基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病理生理學(xué)教研室;3.附屬第一醫(yī)院腫瘤外科,沈陽(yáng)110001)
隨著蛋白質(zhì)組學(xué)的發(fā)展,確定蛋白質(zhì)在細(xì)胞內(nèi)定位的的重要性日益彰顯。在研究細(xì)胞不同組份的時(shí)候,細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)這兩個(gè)細(xì)胞組份最受關(guān)注,這就要求研究者對(duì)細(xì)胞的核、質(zhì)蛋白進(jìn)行有效的分離提取,從而可以將分離出來(lái)的核蛋白用于轉(zhuǎn)錄調(diào)控方面的研究,降低蛋白表達(dá)的背景噪聲,為蛋白功能研究奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)[1]。本研究利用培養(yǎng)的癌細(xì)胞系,建立了一種比較經(jīng)濟(jì)、便捷的細(xì)胞核質(zhì)蛋白分離方法,約90 min就可以完成培養(yǎng)細(xì)胞的細(xì)胞核蛋白和質(zhì)蛋白的分離。
RPMI 1640、MEM、DMEM 和 Ham F12購(gòu)自海克隆生物化學(xué)制品有限公司,胎牛血清、青霉素和鏈霉素購(gòu)自 Thermo公司,一抗 Bag-1、GRP78、parafibromin、lamin B以及β-actin購(gòu)自Santa Cruz公司,抗ING5抗體購(gòu)自Proteintech公司,HRP連接的二抗IgG購(gòu)自DAKO公司,Thermo NE-PER誖Nuclear and Cytoplasmic Extraction試劑盒購(gòu)自 Thermo公司,Ambion PARISTM試劑盒購(gòu)自Ambion公司。胃癌細(xì) 胞 系 MKN28、MKN45、 KATOIII、HGC-27、GT-3TKB 和 AGS,肺癌細(xì)胞系 H-446、H-460、MS-1、PC14、AoI和SQ-5分別由神奈川癌中心高野康雄教授饋贈(zèng)。
RLN裂解液(配方來(lái)自Qiagen公司的RNeasy誖Mini試劑盒)的主要成分為50 mmol/L Tris-HCl(pH 7.4)、140 mmol/L NaCl、1.5 mmol/L MgCl2和 0.5%Nonidet P-40(1.06 g/ml)。RIPA裂解液的主要成分為 50 mmol/L Tris-HCl (pH 7.4)、150 mmol/L NaCl、1%Triton X-100、1% 脫氧膽酸鈉、0.1%SDS和1 mmol/L EDTA(pH 8.0)。蛋白酶抑制劑的主要成分為苯甲基磺酰氟(phenylmethanesulfonyl fluoride,PMSF)、抑肽酶(aprotinin)、亮抑酶肽(leupeptin)和抑肽素(pepstain A)。
分別使用含有10%胎牛血清、1×105U/L青霉素 、100 mg/L 鏈 霉 素 的 RPMI 1640(MKN28、MKN45、 KATOIII、H-446、H-460、MS-1 和 PC14)、MEM(HGC-27、AoI 和 SQ-5)、DMEM(GT-3TKB)和Ham F12(AGS)培養(yǎng)基在 37 ℃、5%CO2、飽和濕度的環(huán)境下培養(yǎng)癌細(xì)胞。
收集1×107個(gè)新鮮培養(yǎng)的細(xì)胞,用PBS洗1次,冰上放置。冰上預(yù)冷的100~500μl的細(xì)胞分離緩沖液重懸細(xì)胞,冰上靜置5~10 min。4℃條件下500 g離心樣品1~5 min,小心吸取胞質(zhì)成分。冰上預(yù)冷的細(xì)胞分離緩沖液清洗核沉淀。細(xì)胞破碎緩沖液裂解核沉淀后收集核蛋白。
按照說(shuō)明書操作,收集細(xì)胞,PBS洗2遍,加入收集細(xì)胞10倍體積的細(xì)胞質(zhì)蛋白抽提試劑A,渦旋儀渦旋5 s,把細(xì)胞沉淀完全懸浮并分散開(kāi),冰上靜置10~15 min。加入細(xì)胞體積一半的細(xì)胞質(zhì)蛋白抽提試劑B,渦旋5 s,冰上靜置5 min,渦旋5 s,4℃條件下12 000~16 000 g離心5 min,立即吸取上清,抽提得到的即為細(xì)胞質(zhì)蛋白。完全吸盡殘余上清,向沉淀加入2.5倍體積的細(xì)胞核蛋白抽提試劑B,渦旋15~30 s,把細(xì)胞沉淀完全懸浮并分散開(kāi)。然后放回冰浴中,每隔1~2 min再高速劇烈渦旋15~30 s,共30 min。4℃條件下15 000 g離心10 min,立即吸取上清,抽提得到的即為細(xì)胞核蛋白。
收集2×107個(gè)細(xì)胞,用細(xì)胞體積3~4倍的RLN裂解液 (含 8.5%PMSF、0.1%Aprotinin、0.1%Leupeptin和0.035%Pepstain A蛋白酶抑制劑),冰上靜置20 min。4℃條件下3 000 g離心10 min,提取上清。加入原收集細(xì)胞4倍體積的RLN裂解液,吹打混勻,洗核沉淀。4℃條件下3 000 g離心10 min。徹底棄掉上清,加入RIPA裂解液100μl,在需要加入RIPA裂解液前數(shù)分鐘內(nèi)加入上述蛋白酶抑制劑。吹打混勻后,冰上靜置10 min。冰浴超聲工作5 s,間歇5 s,共3次。4℃條件下12 000 g離心20 min。提取上清即為所需的核蛋白。
將收集的細(xì)胞按照上述3種方法提取胞質(zhì)蛋白和核蛋白后,采用Bradford法測(cè)定提取液中的蛋白濃度。各取50μg蛋白定量上樣,行聚丙烯酰胺凝膠電泳,濃縮膠電壓80 V,分離膠電壓110 V,150 mA電流半干轉(zhuǎn)膜120 min。用含5%脫脂奶粉的封閉液于室溫下?lián)u動(dòng)封閉1 h,分別加入一抗Bag-1(1∶500稀釋)、GRP78(1∶500稀釋)、ING5(1∶500稀釋)、parafibromin(1∶100 稀釋)、lamin B(1∶1 000稀釋)和β-actin(1∶1 000稀釋),4℃過(guò)夜。室溫下加入二抗(1∶5 000稀釋)孵育2 h。TBST洗膜,ECL法顯色,暗室中壓片、顯影、定影。
利用Thermo的試劑盒提取核質(zhì)蛋白后進(jìn)行Western blot檢測(cè),結(jié)果如圖1所示,在MKN28等5種胃癌細(xì)胞系中,36 kDa Bag-1存在于 MKN28、AGS、MKN45和 KATO-Ⅲ的胞質(zhì)中,32 kDa異構(gòu)體存在于HGC27細(xì)胞質(zhì)中,β-actin為質(zhì)蛋白檢測(cè)的內(nèi)參。雖然在AGS和HGC-27細(xì)胞核蛋白中有內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的標(biāo)志性蛋白GRP78出現(xiàn),但32 kDa和36 kDa異構(gòu)體在AGS細(xì)胞核中、50 kDa異構(gòu)體在HGC27細(xì)胞核中呈強(qiáng)表達(dá)。
利用Ambion的試劑盒提取核質(zhì)蛋白后進(jìn)行Western blot檢測(cè),結(jié)果如圖2所示,在MKN28等5種胃癌細(xì)胞系中,ING5蛋白主要在細(xì)胞核中表達(dá)。我們用質(zhì)蛋白內(nèi)參β-actin標(biāo)記核蛋白的污染程度,結(jié)果發(fā)現(xiàn)其在核內(nèi)表達(dá)極少。ING5蛋白在細(xì)胞質(zhì)里有少量表達(dá),但是我們通過(guò)免疫組化方法已經(jīng)確認(rèn)了這種表達(dá)來(lái)自于核蛋白污染。
利用本實(shí)驗(yàn)室自建的方法提取核質(zhì)蛋白后進(jìn)行Western blot檢測(cè),結(jié)果如圖3所示,在H-446等6種肺癌細(xì)胞系中,parafibromin主要是在6種肺癌細(xì)胞系的細(xì)胞核中表達(dá)。雖然PC-14和AoI兩種細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)中有parafibromin表達(dá),其表達(dá)水平與核蛋白內(nèi)參lamin B表達(dá)一致,提示可能是核蛋白污染所致。β-actin在細(xì)胞質(zhì)中高表達(dá),在核成分中低表達(dá),lamin B在胞核成分中高表達(dá),在胞質(zhì)中低表達(dá),說(shuō)明本實(shí)驗(yàn)室此次分離抽提的核質(zhì)蛋白較成功。
本研究室自建的方法中,首先使用僅含有非離子表面活性劑Nonidet P-40的RLN裂解液,在不破碎核的前提下,通過(guò)破壞細(xì)胞膜釋放質(zhì)蛋白,然后使用含有陰離子表面活性劑SDS和脫氧膽酸鈉以及非離子型Triton X-100的強(qiáng)RIPA裂解液,配合超聲破碎核膜并粉碎DNA長(zhǎng)片段。為避免兩組分污染,吸取含胞質(zhì)成分的上清時(shí)不能劇烈過(guò)度抽吸,底部最好保留一些上清,然后把殘余的上清液輕輕抽取后棄掉并用RLN裂解液洗滌。此外,我們還可以通過(guò)RIPA裂解液的高離子強(qiáng)度和滲透壓來(lái)加速核膜破裂,提高核蛋白的提取率[2,3]。值得注意的是裂解液應(yīng)于4℃保存,使用時(shí)置于冰上并加入蛋白酶抑制劑。應(yīng)用超聲波處理時(shí)應(yīng)注意避免溶液中氣泡的存在,提取超聲波敏感的蛋白質(zhì)酶時(shí)宜慎重。
內(nèi)參蛋白一般指由管家基因編碼表達(dá)的蛋白,它們?cè)诟鹘M織和細(xì)胞中的表達(dá)相對(duì)恒定,選擇的內(nèi)參一般與檢測(cè)目的蛋白的分子量相差5 kDa以上。Western blot實(shí)驗(yàn)中內(nèi)參檢測(cè)不但可校正蛋白質(zhì)定量和上樣過(guò)程中的實(shí)驗(yàn)誤差,也可檢測(cè)Western blot操作系統(tǒng)是否正常。常用的細(xì)胞質(zhì)蛋白內(nèi)參有:細(xì)胞骨架蛋白β-actin、β-tubulin和甘油醛-3-磷酸脫氫酶 (glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH);常用的核蛋白內(nèi)參有:組蛋白H(histone H)、核纖層蛋白(nuclear lamina protein)、K70、K80、Lamin A和B等[4,5]。本研究中選擇β-actin作為胞質(zhì)蛋白定量?jī)?nèi)參,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的標(biāo)志性蛋白GRP78和β-actin作為細(xì)胞質(zhì)蛋白污染內(nèi)參[6],Lamin B作為胞核蛋白定量和污染內(nèi)參。本研究結(jié)果顯示,利用Thermo試劑盒抽提的核蛋白中有內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的標(biāo)志性蛋白GRP78出現(xiàn),說(shuō)明有輕微的質(zhì)蛋白污染;利用Ambion試劑盒抽提的核蛋白中用胞質(zhì)蛋白的內(nèi)參β-actin的抗體檢測(cè),β-actin的表達(dá)極低,說(shuō)明此次核質(zhì)蛋白分離的較成功,核蛋白中質(zhì)蛋白污染少;而分別在利用本研究室自建的方法抽提的細(xì)胞核蛋白和質(zhì)蛋白中使用胞質(zhì)蛋白內(nèi)參β-actin和胞核蛋白內(nèi)參Lamin B的抗體進(jìn)行檢測(cè),胞質(zhì)蛋白中β-actin豐富表達(dá),Lamin B微弱表達(dá),胞核蛋白中Lamin B高表達(dá),β-actin微弱表達(dá)。因此,可用胞核蛋白內(nèi)參檢測(cè)胞質(zhì)蛋白中是否混入細(xì)胞核組分,可用質(zhì)蛋白內(nèi)參檢測(cè)胞核蛋白中是否污染。
本研究室自建的方法與試劑盒相比,操作方法簡(jiǎn)單,僅需自行配置RLN和RIPA兩種裂解液,各成分均為實(shí)驗(yàn)室常規(guī)使用的試劑,而且價(jià)格僅是試劑盒價(jià)格的百分之一,裂解液配制后冷藏存放,可隨取隨用,為實(shí)驗(yàn)節(jié)省大量開(kāi)支,具有在實(shí)驗(yàn)室中推廣使用的價(jià)值。
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中國(guó)醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)2010年10期