国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

胚胎干細(xì)胞向內(nèi)耳細(xì)胞誘導(dǎo)分化的研究進展*

2010-03-20 14:34李利趙立東綜述邢光前楊仕明審校
聽力學(xué)及言語疾病雜志 2010年3期
關(guān)鍵詞:毛細(xì)胞內(nèi)耳耳蝸

李利 趙立東 綜述 邢光前 楊仕明 審校

胚胎干細(xì)胞(embryonic stem cells, ESCs)可在體外無限增殖,且保持其未分化狀態(tài),但在特定環(huán)境下可以被誘導(dǎo)分化為各種組織細(xì)胞。近年來,國內(nèi)外眾多學(xué)者致力于將ESCs誘導(dǎo)分化為內(nèi)耳細(xì)胞并進一步治療耳聾的研究。本文就目前ESCs特性、分化途徑、方法以及相關(guān)的研究成果做一綜述。

1 胚胎干細(xì)胞

ESCs是一個具有自我更新和多分化潛能的特定細(xì)胞群。在胚胎發(fā)育的早期(受精后5~7天)即囊胚期階段,出現(xiàn)了兩種不同的細(xì)胞類型:包繞在外形成囊腔壁的外胚滋養(yǎng)層細(xì)胞,將來發(fā)育形成胎盤;位于囊腔內(nèi)的內(nèi)細(xì)胞團,將來發(fā)育形成胚胎。內(nèi)細(xì)胞團經(jīng)體外培養(yǎng)就成為ESCs。1981年,Evans等從鼠的囊胚中分離出內(nèi)細(xì)胞團,成功地建立了體外培養(yǎng)哺乳類ESCs的方法。ESCs的基本特征是:①分化潛能多,具有分化為機體任何組織細(xì)胞、器官的能力;②無限擴增的能力, 即理論上在體外條件適宜的情況下,通過有絲分裂無限擴增,長久和穩(wěn)定地自我復(fù)制;③可以長期保持未分化狀態(tài)。除此之外,ESCs還具有集落生成能力、正常的染色體核型等特征。ESCs的這些特征,使其成為人體器官功能喪失(特別是由于毛細(xì)胞缺失造成的耳聾)后替代治療的理想選擇。目前, ESCs已被用于帕金森[1,2]、脊髓損傷[3]、糖尿病[4]動物模型的治療,另外還發(fā)現(xiàn)其可以分化為有功能的小鼠精子,與卵子結(jié)合后孵育出存活的子代小鼠[5]。

2 胚胎干細(xì)胞的分化

2.1ESCs的誘導(dǎo)分化 ESCs的多分化潛能使之可以在特定條件下被誘導(dǎo)分化為多種細(xì)胞。經(jīng)典的誘導(dǎo)分化方法是模擬體內(nèi)胚胎發(fā)育的過程,該方法必須先在體外將ESCs誘導(dǎo)成擬胚體(emryoid body, EB),經(jīng)懸浮培養(yǎng)和添加因子或基因促使其定向分化。1985年,Doetschman等通過在培養(yǎng)基中加入白血病抑制因子(LIF),抑制ESCs分化,然后再去掉LIF,經(jīng)懸浮培養(yǎng)使ESCs變成EB。EB是大球形的懸浮團,由內(nèi)、中、外三個胚層組成。ESCs分化始于外胚層,在基因調(diào)控、蛋白表達(dá)方面與體內(nèi)早期分化有許多相似之處,但是分化的精確時間存在差異[6]。目前,ESCs已經(jīng)在體外被誘導(dǎo)分化為多種細(xì)胞,如造血細(xì)胞、多巴胺能神經(jīng)元、心肌細(xì)胞、生殖細(xì)胞、肝細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞、胰島細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞和成骨細(xì)胞等。

Rolletschek等[7]用促生長因子IL-1B、腦源性神經(jīng)生長因子(GDNF)、轉(zhuǎn)化生長因子B3(TGF-B3)等作用,使ESCs分化成了TH陽性的多巴胺能神經(jīng)元。Li等[8]將小鼠ESCs來源的EB轉(zhuǎn)移到含ES終止液的組織培養(yǎng)皿中,經(jīng)過貼壁,加入因子EGF、IGF-1、bFGF來進一步分化,最終得到表達(dá)毛細(xì)胞特異性標(biāo)記物的細(xì)胞。上述研究中,雖然ESCs向不同細(xì)胞誘導(dǎo)時所加的因子不同,但是各種促分化因子都是在EB形成以后加入,各種促分化因子可能只能在胚體發(fā)育到一定階段才能發(fā)揮作用。Yuasa等[9]通過在EB形成前加入信號拮抗因子(Noggin)預(yù)作用3天,結(jié)果EB形成后中胚層細(xì)胞增加,由ESCs分化形成的心肌細(xì)胞數(shù)目增加了100倍。也有實驗證明,ESCs可以不經(jīng)歷EB階段,而是以單克隆方式增殖分化,這種不經(jīng)歷EB階段的培養(yǎng)方式,被認(rèn)為僅僅適用在成分明確的培養(yǎng)基中,培養(yǎng)特定的細(xì)胞系,可以解決細(xì)胞純化問題[10]。如果不加因子誘導(dǎo),也不加LIF抑制分化過程,ESCs將會向什么方向發(fā)展呢?Hubner等[11]將小鼠ESCs培養(yǎng)在生殖細(xì)胞專用的無飼養(yǎng)層的培養(yǎng)基上,沒有經(jīng)過任何處理獲得了卵子,提示ESCs向卵子的分化可能是自然發(fā)生的過程。

2.2ESCs分化的基因調(diào)節(jié) ESCs分化的本質(zhì)是基因表達(dá)發(fā)生了變化,當(dāng)它向不同的組織細(xì)胞分化時會有不同基因組合的表達(dá)變化。所有ESCs都表達(dá)Oct4、Nanog和Sox2轉(zhuǎn)錄因子[12],它們在維持ESCs自我復(fù)制和亞全能型中發(fā)揮重要作用。Oct4基因在ESCs中有豐富表達(dá),ESCs分化一旦啟動,其表達(dá)立刻下調(diào)。Sox2基因在未分化的ESCs中表達(dá),而隨著細(xì)胞分化而表達(dá)下調(diào),也是內(nèi)耳毛細(xì)胞形成的上游調(diào)節(jié)基因[13,14]。Nanog基因在未分化的ESCs中大量表達(dá),而在分化的細(xì)胞中未發(fā)現(xiàn)。有實驗證明,在維持ESCs自我更新的過程中,Nanog是與Oct4平行的另一條分子途徑[15]。從Nanog基因持續(xù)表達(dá)的ESCs培養(yǎng)體系中撤除LIF后,ESCs形態(tài)無明顯變化,Oct4基因表達(dá)水平維持正常。有關(guān)基因調(diào)控的細(xì)節(jié)問題及發(fā)揮作用的精確時間序列仍待進一步探索。

ESCs向不同組織細(xì)胞分化時也需要不同基因的參與。如Kim等[16]發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)錄因子Nurr1的作用可促進ESCs分化為有功能的多巴胺神經(jīng)元,分化率達(dá)50%。Pitx3為調(diào)節(jié)中腦多巴胺能神經(jīng)元生成和維持的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子,Zhao等[17]報道將Pitx3和綠熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)轉(zhuǎn)染入小鼠ESCs中,并與PA6細(xì)胞共培養(yǎng),產(chǎn)生了更多的多巴胺能神經(jīng)元(91%)。Ying等[18]將綠色熒光蛋白敲進ESCs的Sox1區(qū)并用維甲酸促進其分化,結(jié)果ESCs分化為帶綠色的神經(jīng)祖細(xì)胞,同時表達(dá)Sox1。在利用cDNA陣點技術(shù)分析細(xì)胞分化基因的調(diào)控機制研究中,人們發(fā)現(xiàn)大約有1 000個基因參與到ESCs向神經(jīng)前體細(xì)胞的分化過程??梢韵胂螅绻棉D(zhuǎn)染或其他方法向干細(xì)胞中引入轉(zhuǎn)錄因子或引發(fā)干細(xì)胞定向分化的活性基因,有望實現(xiàn)ESCs的定向分化,高效率、高純度地獲得目的細(xì)胞。

3 ESCs向內(nèi)耳細(xì)胞分化的體外研究

3.1ESCs向毛細(xì)胞分化的體外研究 傳統(tǒng)觀念認(rèn)為,哺乳動物內(nèi)耳發(fā)育成熟后毛細(xì)胞不可以再生。但是,近年來有關(guān)內(nèi)耳毛細(xì)胞再生的研究取得了很大進展。Li等[8]通過體外適時加入表皮生長因子(epidermal growth factor,EGF)、腺島素樣生長因子(insulin-like growth factor type I,IGF-1)等生長因子,從鼠ESCs逐步誘導(dǎo)分化為內(nèi)耳祖細(xì)胞,最終獲得表達(dá)毛細(xì)胞特異標(biāo)記物的細(xì)胞——類毛細(xì)胞。徐運等[19]也用類似方法將小鼠ESCs在體外經(jīng)過15~20天的誘導(dǎo)分化,發(fā)現(xiàn)分化的細(xì)胞約半數(shù)表達(dá)毛細(xì)胞特異性分子標(biāo)記物。上述研究提示,鼠ESCs是有可能向內(nèi)耳細(xì)胞誘導(dǎo)分化的。但是,這些細(xì)胞還只是結(jié)構(gòu)上類似毛細(xì)胞,目前尚未證明其具有內(nèi)耳感覺毛細(xì)胞的功能。

除生長因子外,ESCs向毛細(xì)胞的分化還需要特定基因的參與。Bermingham等[20]首次發(fā)現(xiàn)Math1基因在所有內(nèi)耳感覺毛細(xì)胞中表達(dá),其在上皮細(xì)胞向毛細(xì)胞分化和成熟中起重要作用,Math1基因缺陷小鼠胚胎不能產(chǎn)生內(nèi)耳毛細(xì)胞。Zheng等[21]報道,過表達(dá)Math1的大鼠內(nèi)耳組織經(jīng)體外培養(yǎng)后,能使耳蝸柱狀上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)槊?xì)胞,以及促進橢圓囊支持細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)榍巴ッ?xì)胞,說明Math1能使出生后哺乳動物內(nèi)耳保留產(chǎn)生新生毛細(xì)胞的能力。Gubbles等[22]將Atoh1基因(Math1同源基因)植入孕齡11天的胎鼠聽囊,出生后的小鼠較正常小鼠多產(chǎn)生一排有功能的耳蝸毛細(xì)胞,提示Atoh1基因胚胎期的錯誤表達(dá)會使生后小鼠的耳蝸產(chǎn)生有功能的感覺細(xì)胞。Pou4f3即Brn3.1和Brn3c,在聽毛細(xì)胞和前庭毛細(xì)胞中表達(dá),對于耳蝸毛細(xì)胞和前庭毛細(xì)胞的產(chǎn)生和維持起著重要作用[23],該基因變異可引起聽毛細(xì)胞完全喪失及感覺神經(jīng)元繼發(fā)性損害,導(dǎo)致耳聾和平衡失調(diào)[24]??梢姡琍ou4f3對毛細(xì)胞的分化和存活是必須的[25]。Gfi1(growth factor independence 1)是Pou4f3下游的靶基因,其表達(dá)限于內(nèi)耳感覺毛細(xì)胞和神經(jīng)元,但目前尚不知Gfi1是否能被Pou4f3調(diào)節(jié)[26]。Gfi1變異可致動物行為異常、出生后耳蝸毛細(xì)胞缺如及對聲音無反應(yīng)[25]。Gfi1基因缺陷鼠毛細(xì)胞排列紊亂,外毛細(xì)胞無神經(jīng)支配,表達(dá)一些非正常神經(jīng)元標(biāo)志物。Barh1基因在耳蝸和前庭毛細(xì)胞均有表達(dá)[27],該基因變異導(dǎo)致內(nèi)、外毛細(xì)胞變性和退化[28],提示其參與毛細(xì)胞存活的維持。另有研究表明,Barh1基因在內(nèi)耳的表達(dá)需要Math1基因的存在[29]。Math1、Pou4f3、Gfi1、Barh1基因均能促使內(nèi)耳非感覺細(xì)胞轉(zhuǎn)化成毛細(xì)胞,至于他們與毛細(xì)胞發(fā)育、功能維持之間的定量關(guān)系,目前知之甚少。內(nèi)耳毛細(xì)胞發(fā)育相關(guān)基因的發(fā)現(xiàn)從不同的層面揭示聽覺功能的分子奧秘[30]。

3.2ESCs向螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞(SGNs)分化的體外研究 SGNs為聽覺傳入神經(jīng)元,在哺乳動物,內(nèi)耳毛細(xì)胞的損失可導(dǎo)致SGNs形態(tài)和功能改變,從而加重感音神經(jīng)性聾。因此許多學(xué)者致力于研究能否用ESCs替代損傷的SGNs,從而恢復(fù)聽覺或提高人工耳蝸植入后聽力恢復(fù)效果。Coleman等[31]將小鼠ESCs與生后5天的大鼠耳蝸毛細(xì)胞和螺旋神經(jīng)節(jié)在體外共培養(yǎng),結(jié)果ESCs被分化為雙極神經(jīng)元細(xì)胞。2005年,Kim等[32]將小鼠ESCs誘導(dǎo)分化為神經(jīng)祖細(xì)胞,并與新生小鼠前庭感覺上皮共培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)這些神經(jīng)細(xì)胞向前庭毛細(xì)胞突觸部位伸出突起,并有突觸素(synaptophysin,一種38 kD的膜糖蛋白)表達(dá),提示ESCs來源的神經(jīng)祖細(xì)胞可以恢復(fù)外周前庭系統(tǒng)的神經(jīng)連接。Matsumoto等[33]將小鼠ESCs體外誘導(dǎo)為神經(jīng)細(xì)胞后,與出生后3天小鼠耳蝸基底膜共培養(yǎng),7天后發(fā)現(xiàn)胚胎干細(xì)胞來源的神經(jīng)細(xì)胞向毛細(xì)胞方向伸出突起,并表達(dá)神經(jīng)突觸標(biāo)記物。最近Matsumoto等[33,34]又針對ESCs來源的神經(jīng)細(xì)胞與耳蝸內(nèi)毛細(xì)胞間形成突觸情況進行了體外實驗研究,他們將該ESCs與小鼠耳蝸感覺上皮共培養(yǎng),7天后ESCs來源的神經(jīng)細(xì)胞突起向內(nèi)毛細(xì)胞方向生長,免疫組織化學(xué)方法分析該突觸末端與內(nèi)毛細(xì)胞相鄰的部位表達(dá)synapsin1和synaptophysin。上述研究表明,ESCs不但可在特定環(huán)境下被誘導(dǎo)分化為SGNs,而且后者能與內(nèi)外毛細(xì)胞形成突觸連接。但是,這種連接是否具有信號傳導(dǎo)功能尚需進一步探討。

Glavaski-Joksimovic等[35,36]將胚胎干細(xì)胞胚體與包含有耳蝸核的腦干切片共培養(yǎng),結(jié)果擬懸浮的擬胚體向耳蝸核方向貼壁生長,并分化為神經(jīng)元、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞,而且表達(dá)神經(jīng)突觸小泡標(biāo)志物。說明胚胎干細(xì)胞與腦干組織共培養(yǎng),可以分化為神經(jīng)細(xì)胞,并與腦干耳蝸核形成突觸連接。

4 ESCs向內(nèi)耳細(xì)胞分化的體內(nèi)研究

4.1ESCs向毛細(xì)胞分化的體內(nèi)研究 ESCs定向分化是內(nèi)因和外因共同作用的結(jié)果,其中外因起著重要作用。有學(xué)者認(rèn)為,哺乳動物內(nèi)耳毛細(xì)胞損傷后無法再生的原因是成熟內(nèi)耳的前體細(xì)胞數(shù)量較少[37]。為此,Li等[8]先將ESCs在體外經(jīng)EGF、IGF-1、N2誘導(dǎo)分化為內(nèi)耳前體細(xì)胞,再將前體細(xì)胞植入雞胚聽囊上皮,結(jié)果在耳蝸毛細(xì)胞層發(fā)育為表達(dá)毛細(xì)胞標(biāo)記物MyosinⅦ的類毛細(xì)胞。該研究雖然并非在哺乳動物體內(nèi)完成,但是為ESCs內(nèi)耳植入治療開辟了新的思路。Coleman等[38]將帶有EGFP的小鼠來源ESCs通過圓窗直接注入鼓階,檢測部分分化的ESCs,發(fā)現(xiàn)帶有EGFP熒光的ESCs可在鼓階中存活4周時間,其中2周時數(shù)量最多。但是,國內(nèi)外文獻(xiàn)中至今尚無將ESCs導(dǎo)入哺乳動物內(nèi)耳后分化為耳蝸感覺毛細(xì)胞的相關(guān)報道。

4.2ESCs向SGNs分化的體內(nèi)研究 Lang等[39]將ESCs體外培養(yǎng)至能表達(dá)神經(jīng)祖細(xì)胞標(biāo)記物nestin后,再分別導(dǎo)入內(nèi)、外淋巴和蝸螺旋管,發(fā)現(xiàn),導(dǎo)入外淋巴和蝸螺旋管中的ESCs最易存活,尤以造模早期階段(造模后1~3天)導(dǎo)入存活率最高,其中導(dǎo)入外淋巴中的ESCs 50%分化成神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞,導(dǎo)入螺旋管者20%分化成神經(jīng)膠質(zhì)樣細(xì)胞,僅4.5%分化為神經(jīng)元細(xì)胞;相比之下,導(dǎo)入內(nèi)淋巴的ESCs則存活極少,這可能與導(dǎo)入過程本身易引起內(nèi)外淋巴液的混合和離子失衡有關(guān)。上述結(jié)果表明,ESCs內(nèi)耳植入后的存活情況取決于內(nèi)耳微環(huán)境,植入ESCs的存活、分化及潛在功能的發(fā)揮主要限于損傷早期階段。

Corrales等[40]將攜帶EGFP的ESCs來源的神經(jīng)祖細(xì)胞導(dǎo)入經(jīng)oubain預(yù)處理后沙鼠(SGN被選擇性損傷,而毛細(xì)胞完整)的耳蝸神經(jīng)干,觀察發(fā)現(xiàn),導(dǎo)入3天后的細(xì)胞仍表達(dá)EGFP,并能被神經(jīng)元特異性標(biāo)記物tubulin(微管素,微管蛋白)標(biāo)記;導(dǎo)入后12天,可見分化的神經(jīng)元向Corti器生長;導(dǎo)入后64~98天,神經(jīng)元胞體發(fā)出大量神經(jīng)突起(表達(dá)β-III tubulin),后者從蝸管發(fā)出,成簇地經(jīng)骨螺旋板到達(dá)Corti器,并與失SGN支配的毛細(xì)胞建立突觸連接。與未導(dǎo)入ESCs的模型動物比較,實驗組動物在靠近感覺上皮區(qū)細(xì)胞分化明顯,說明ESCs來源的神經(jīng)元有向模型動物神經(jīng)退化特定部位分化生長的特點。

縱觀文獻(xiàn)資料,現(xiàn)有的ESCs體內(nèi)導(dǎo)入的作用靶點主要是變性的神經(jīng)元,僅少數(shù)針對受損的耳蝸毛細(xì)胞[8];導(dǎo)入方法與基因及其他細(xì)胞導(dǎo)入[41~43]基本一致,具體方法包括:經(jīng)鼓階打孔注射[44]、經(jīng)圓窗膜注射[39]、中階導(dǎo)入法[45]、經(jīng)蝸軸注入耳蝸神經(jīng)干[46]等;導(dǎo)入后細(xì)胞的存活時間大致在1~9周不等[44,46~48]。至于ESCs分化到什么階段導(dǎo)入活體耳蝸最為合適,目前尚無一致意見,如:Coleman等[38]將ESCs經(jīng)體外誘導(dǎo)分化至神經(jīng)前體階段,導(dǎo)入耳蝸鼓階;Corrales等[40]將ESCs通過 F12等因子作用,分化成祖細(xì)胞階段再導(dǎo)入耳蝸神經(jīng)干;而Lang等[39]將ESCs體外培養(yǎng)至表達(dá)nestin階段,分別通過圓窗膜導(dǎo)入鼓階外淋巴、經(jīng)耳蝸骨板導(dǎo)入蝸螺旋管(Rosenthal’s canal,RC)和經(jīng)圓窗膜入鼓階后再經(jīng)基底膜導(dǎo)入中階內(nèi)淋巴中。但無論采取何種導(dǎo)入方法,都應(yīng)盡力避免引起內(nèi)、外淋巴液的混合,否則,可能會導(dǎo)致聽力下降甚至全聾,導(dǎo)入的細(xì)胞也無法存活[39,40]。

5 結(jié)語

體內(nèi)、外實驗研究結(jié)果初步表明,ESCs內(nèi)耳導(dǎo)入后具有被誘導(dǎo)分化為感覺毛細(xì)胞和神經(jīng)元的潛能,但該方法最終是否可以用于感音神經(jīng)性聾的臨床治療尚難以定論,許多問題有待進一步研究闡明,如: ESCs體外誘導(dǎo)至何種程度開始導(dǎo)入內(nèi)耳最為合適?ESCs導(dǎo)入耳蝸后能否定位在Corti器的適當(dāng)位置?ESCs導(dǎo)入后能否進一步分化為所需要的內(nèi)耳細(xì)胞?能否有傳入和傳出神經(jīng)的支配并恢復(fù)感知聲信號的功能?如何解決ESCs來源問題引起的排斥反應(yīng)、安全性問題以及所涉及的倫理問題?對這些問題的解答有賴于更多科學(xué)資料的積累。

6 參考文獻(xiàn)

1 Kim JH, Auerbach JM, Rodríguez-Gómez JA, et al. Dopamine neurons derived from embryonic stem cells function in an animal model of Parkinson's disease[J]. Nature, 2002, 418: 50.

2 Bjorklund LM, Sánchez-Pernaute R, Chung S ,et al. Embryonic stem cells develop into functional dopaminergic neurons after transplantation in a Parkinson rat model[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2002, 99: 2 344.

3 Wichterle H, Lieberam I, Porter JA, et al. Directed differentiation of embryonic stem cells into motor neurons[J]. Cell, 2002, 110: 385.

4 Lumelsky N, Blondel O, Laeng P, et al. Differentiation of embryonic stem cells to insulin-secreting structures similar to pancreatic islets[J]. Science, 2001, 292: 1 389.

5 Nayernia K,Nalte J, Hans W,et al.In vitro-differentiated embryonic stem cells give rise to male gametes that can generate offspring mice[J]. Developmental Cell, 2006, 11: 125.

6 O'Shea KS. Directed differentiation of embryonic stem cells: Genetic and epigenetic methods[J]. Wound Repair Regen, 2001, 9: 443.

7 Rolletschek A, Chang H, Guan K, et al. Diferentiation of embryonic stem cell-derived dopaminergie neurons is enhanced by survival-promoting factors.[J] Mechanisms Develop, 2001, 105: 93.

8 Li H, Robin G, Liu H, et al. Generation of hair cells by stepwise differentiation of embryonic stem cells[J]. PNAS, 2003, 100: 13 495.

9 Yuasa S, Habashi Y, Koshimizu U, et al. Transient inhibition of BM P signaling by Noggin induces cardiomyocyte differentiation of mouse embryonic stem cells[J]. Nat Biotechnol, 2005, 23: 607.

10 Karp JM, Ferreira LS, Khademhosseini A, et al. Cultivation of human embryonic stem cells without the embryoid body step enhances osteogenesis in vitro[J]. Stem Cells, 2006, 24: 835.

11 Hubner K, Fuhrmann G, ChristensonL K, et al. Derivation of oocytes from embryonic stem cells[J]. Science, 2003, 300:1251.

12 Boyer LA, Lee TI, Cole MF, et al. Core transcriptional regulatory circuitry in human embryonic stem cells[J]. Cell, 2005, 122: 947.

13 Fritzsch B, Beisel KW, Hansen LA . The molecular basis of neurosensory cell formation in ear development:A blueprint for hair cell and sensory neuron regeneration[J]? Bioessays, 2006, 28:1 181.

14 Kiernan AE, Pelling AL, Leung KK, et al. Sox2 is required for sensory organ development in the mammalian inner ear[J]. Nature, 2005, 434: 1 031.

15 Hart AH, Hartley L, Ibrahin M, et al. Identification, cloning and expression analysis of the pluripetency promotingnanog genes in mouse and human[J]. Dev Dyn, 2004, 230: 187.

16 Kim JH, Auerbach JM, Rodriguez-Gomea JA, et al. Dopamine neurons derived from embryonic stem cells function in an animal' mode1 of Parkinson's disease[J]. Nature, 2002, 418: 50.

17 Zhao S, Maxwell S, Jimenez-Beristain A, et a1. Generation of embryonic stem cells and transgenic mice expressing green fluorescence protein in midbrain dopaminergie neurons[J]. Eur J Neurosci, 2004, 19: 1 133.

18 Ying QL, Stavridis M, Griffiths D, et al. Conversion of embryonic stem cells into neuroectodermal precursors in adherent monoculture[J]. Nat Biotechnol, 2003, 21: 183.

19 徐運, 劉衛(wèi)彬, 王中原, 等. 體外誘導(dǎo)胚胎干細(xì)胞分化為毛細(xì)胞的實驗研究[J]. 中國神經(jīng)精神疾病雜志, 2004, 30: 454.

20 Bermingham NA, Hassan BA, Price SD, et al. Math1: An essential gene for the generation of inner ear hair cells[J]. Science, 1999, 284: 1 837.

21 Zheng JL, Gao WQ. Overexpression of Math1 induces robust production of extra hair cells in postnatal rat inner ear[J]. Nat Neurosci, 2000, 3: 580.

22 Gubbels SP,Woessner DW,Mitchell JC,et al. Functional auditory hair cells produced in the mammalian cochlea by in utero gene transfer[J]. Nature, 2008, 455:537.

23 Xiang M, Maklad A, Pirvola U, et al. Brn3c null mutant mice show longterm, incomplete retention of some afferent inner ear innervation[J]. BMC Neurosci, 2003, 4: 2.

24 Erkman L, McEvilly RJ, Luo L, et al. Role of transcription factors Brn-3.1 and Brn-3.2 in auditory and visual system development[J]. Nature, 1996, 381: 603.

25 Hertzano R, Montcouquiol M, Rashi-Elkeles S, et al. Transcription profiling of inner ears from Pou4f3 (ddl/ddl) identifies Gfi1 as a target of the Pou4f3 deafness gene[J]. Hum Mol Genet, 2004, 13: 2 143.

26 Wallis D, Hamblen M, Zhou Y, et al. The zinc finger transcription factor Gfi1, implicated in lymphomagenesis, is required for inner ear hair cell differentiation and survival[J]. Development, 2003, 130: 221.

27 Bulfone A., Menguzzato E, Broccoli V, et al. Barhl1, a gene belonging to a new subfamily of mammalian homeobox genes, is expressed in migrating neurons of the CNS[J]. Hum Mol Genet, 2000, 9: 1 443.

28 Li S, Price SM, Cahill H, et al. Hearing loss caused by progressive degeneration of cochlear hair cells in mice deficient for the Barhl1 homeobox gene[J]. Development, 2002, 129: 3 523.

29 Chellappa R, Li S, Pauley S, et al. Barhl1 regulatory sequences required for cell-specific gene expression and autoregulation in the inner ear and central nervous system[J]. Mol Cell Biol, 2008, 6: 1 905.

30 楊仕明,楊偉炎,韓東一,等. 聾病基因研究新策略——基因敲除鼠聽功能和內(nèi)耳形態(tài)的系統(tǒng)研究[J]. 中華耳科學(xué)雜志,2006,4:161.

31 Coleman B, Fallon JB, Gillespie LN, et al. Auditory hair cell explant co-cultures promote the differentiation of stem cells into bipolar neurons[J]. Exp Cell Res, 2007, 313: 232.

32 Kim TS, Matsumoto M, Ito J, et al. Neural connections between embryonic stem cell-derived neurons and vestibular hair cells in vitro[J]. Brain Res, 2005 ,1 057:127.

33 Matsumoto M,Nakagawa T,Higashi T,et al. Innervation of stem cell-derived neurons into auditory epithelia of mice[J]. Neuroreport,2005,16:787.

34 Matsumoto M, Nakagawa T, Ito J, et al. Potential of embryonic stem cell-derived neurons for synapse formation with auditory hair cells[J]. J Neurosci Res, 2008, 86:3 075.

35 Glavaski-Joksimovic A ,Thonabulsombat C,Wendt M,et al. Survival, migration, and differentiation of Sox1-GFP embryonic stem cells in coculture with an auditory brainstem slice preparation[J]. Cloning Stem Cells.,2008,10:75.

36 Glavaski-Joksimovic A, Thonabulsombat C.Morphological differentiation of tau-GFP embryonic stem cells into neurons after co-culture with auditory brain stem slices[J].Neuroscience,2009,162:472

37 Raphael Y.Cochlear pathology,sensory cell death and regeneration[J].Br Med Bull,2002,63:25.

38 Coleman B, Hardman J, Coco A, et al. Fate of embryonic stem cells transplanted into the deafened mammalian cochlea[J].Cell Transplant, 2006, 15: 369.

39 Lang H, Sohult BA,Godderd JC, et al. Transplantation of mouse embryonic stem cells into the cochlea of an auditory-neuropathy animal model: effects of timing after injury[J]. JARO, 2008, 9: 225.

40 Corrales CE, Pan L, Li H, et al. Engraftment and differentiation of embryonic stem cell-derived neural progenitor cells in the cochlear nerve trunk:Growth of processes into the organ of Corti[J]. J Neurobiol, 2006, 66: 1 489.

41 Breuskin I, Bodson M, Thelen N,et al. Strategies to regenerate hair cells:Identification of progenitors and critical genes[J]. Hear Res,2008,236:1.

42 Hu Z, Andang M, Ni D, et al. Neural cograft stimulates the survival and differentiation of embryonic stem cells in the adult mammalian auditory system[J]. Brain Res, 2005,1 051: 137.

43 陳偉,楊仕明,郭維,等. 腺病毒攜帶EGFP基因經(jīng)完整圓窗膜轉(zhuǎn)導(dǎo)豚鼠耳蝸的實驗研究[J]. 中華耳科學(xué)雜志,2007,5:231.

44 郭維, 楊仕明,翟所強. bFGF/Math1基因表達(dá)載體的構(gòu)建及在大鼠耳蝸中的表達(dá)[J]. 聽力學(xué)及言語疾病雜志,2005,13:7.

45 Hildebrand MS, Dahl H-HM, Hardman J, et al. Survival of partially differentiated mouse embryonic stem cells in the scala media of the guinea pig cochlea[J]. JARO, 2005, 6: 341.

46 Regala C, Duan M, Zou J, et al. Xenografted fetal dorsal root ganglion, embryonic stem cell and adult neural stem cell survival following implantation into the adult vestibulocochlear nerve. Exp Neurol, 2005, 193: 326.

47 Hu Z, Ulfendahl M, Olivius NP. Central migration of neuronal tissue and embryonic stem cells following transplantation along the adult auditory nerve[J]. Brain Res, 2004, 1 026: 68.

48 Sekiya T, Kojima K, Matsumoto M, et al. Cell transplantation to the auditory nerve and cochlear duct[J]. Exp Neurol, 2005, 198: 12.

猜你喜歡
毛細(xì)胞內(nèi)耳耳蝸
耳蝸微音器電位臨床操作要點
恐龍內(nèi)耳的秘密
讓永久性耳聾患者有望恢復(fù)聽力的蛋白質(zhì)
鳥綱類生物雞用于耳蝸毛細(xì)胞再生領(lǐng)域研究進展
如何認(rèn)識耳蝸內(nèi)、外毛細(xì)胞之間的關(guān)系
基于Otsu法的內(nèi)耳MRI圖像三維快速分割的研究
LDV在耳科學(xué)研究中的應(yīng)用
DR內(nèi)聽道像及多層螺旋CT三維重建對人工耳蝸的效果評估
豚鼠耳蝸Hensen細(xì)胞脂滴的性質(zhì)與分布
小鼠耳蝸內(nèi)外毛細(xì)胞胞吞功能的實驗研究
贵南县| 上思县| 繁峙县| 洞头县| 二连浩特市| 新野县| 昆山市| 宝坻区| 措美县| 政和县| 华池县| 四子王旗| 盐源县| 明光市| 陆丰市| 富平县| 龙里县| 岫岩| 定襄县| 万荣县| 常德市| 广昌县| 开化县| 东丰县| 蒲城县| 临澧县| 扎赉特旗| 历史| 都兰县| 宁明县| 库伦旗| 百色市| 乌苏市| 宁波市| 沁阳市| 龙陵县| 高尔夫| 河北区| 北京市| 库车县| 疏勒县|