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RP-HPLC法分離測定發(fā)酵液中的交沙霉素

2010-01-18 02:20宋速快林開春
關鍵詞:發(fā)酵液緩沖液甲醇

胡 平,宋速快,林開春

(1.恩施職業(yè)技術學院 生物工程系,湖北 恩施 445000;2.華中農(nóng)業(yè)大學 植物科學與技術學院,湖北 武漢 430070;3.湖北省農(nóng)產(chǎn)品質量安全檢查中心,湖北 武漢 430070)

交沙霉素是由那波鏈霉菌交沙霉素變種(Streptomycesnarbonensisvar.Josamyceticus)發(fā)酵產(chǎn)生的大環(huán)內(nèi)酯類抗生素,它的抗菌譜與紅霉素相似,對G+菌及某些G-菌包括淋球菌、金黃色葡萄球菌、腦膜炎雙球菌、支原體等有效.日本抗生物質醫(yī)藥品基準及衛(wèi)生部標準中收載的含量測定方法為微生物檢定法.近幾年,國內(nèi)出現(xiàn)利用分光光度法測定交沙霉素含量的報道[1~3].也有采用高效液相色譜(High Performance Liquid Chromatography,HPLC)法[4~7]、液相色譜-質譜聯(lián)用技術(liquid chromatography-mass spectrometry,LC-MS)及液相色譜-電噴霧離子質譜聯(lián)用技術(liquid chromatography-electrospray ionization-mass spectrometry,LC-ESI-MS)檢測藥片中或血糖中交沙霉素含量的報道[8],方法準確、靈敏、簡便,但未曾有對發(fā)酵液中交沙霉素含量測定的研究.本文經(jīng)試驗建立了RP-HPLC測定發(fā)酵液中交沙霉素含量的方法,該方法色譜系統(tǒng)簡單,能將交沙霉素與發(fā)酵液中的雜質組分實現(xiàn)很好分離.

圖1 流動相pH與保留值的關系

表1方法的精密度測定結果(n=6)

Tab.1 The result of the accuracy of analytical measure(n=6)

編號測定值/μg·mL-1平均值/μg·mL-1RSD/%1392.72391.03392.2391.30.454388.35390.86393.1

1 材料與色譜條件

1.1 材料

1.1.1 供試菌株:交沙霉素產(chǎn)生菌那波鏈霉菌交沙霉素變種(Streptomycesnarbonensisvar.Josamyceticus),由武漢天惠生物工程有限公司研究所保藏并提供.

1.1.2 實驗儀器:美國Waters高效液相色譜儀.

1.1.3 培養(yǎng)基與試劑 交沙霉素對照品由武漢天惠生物工程有限公司提供.斜面培養(yǎng)基:土豆泥,10%;麥片,2.5%;精氨酸,0.02%;瓊脂 2.0%;消前pH7.2~7.4.種子培養(yǎng)基:葡萄糖,1.0%;淀粉,1.0%;黃豆餅粉,1.5%;硫酸鎂,0.05%;酵母粉,0.5%;碳酸鈣,0.3%;磷酸氫二鉀,0.5%;消前pH8.0.發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖,2.0%;棉籽餅粉,2.0%;豆油,1.0%;碳酸鈣,0.3%;玉米淀粉,4.0%;磷酸二氫鉀,0.03%;面筋粉,2.0%;硫酸鎂,0.05%;消前pH 8.0.

1.2 色譜條件

色譜柱:C18反向柱4.6 mm×250 mm ;填料:Hypersil ODS2 5 μm;流動相:甲醇-0.02mol/L KH2PO4溶液,用磷酸調(diào)節(jié)pH值;柱溫:室溫;進樣量:10 μL;檢測波長:232 nm;流速:1 mL/min.

2 方法與結果

2.1 色譜條件的優(yōu)化

2.1.1 流動相的優(yōu)化 按參考文獻[9]以甲醇與0.02 mol/L KH2PO4溶液二元系統(tǒng)作流動相,探索其中甲醇比例分別為60%,70%,80%,90%時對各成分保留時間及分離程度的影響.試驗發(fā)現(xiàn)隨著流動相中甲醇比例的增加,峰形逐漸改善,峰的保留時間也逐漸變短,但綜合較短的保留時間和與其他的雜質峰分離度,以甲醇比例為80%為最佳.在甲醇-0.02 mol/L KH2PO4溶液(80∶20)條件下,以1 mol/L磷酸溶液調(diào)節(jié)pH值,以選擇分離效果較佳保留時間t適中的緩沖液pH值,結果見圖1.由圖1可以看出,流動相緩沖液的pH越小,保留時間相應變小,考慮到緩沖液pH對色譜柱的損害,緩沖液的pH設置為3.

2.1.2 緩沖液濃度對色譜行為的影響 KH2PO4溶液濃度設置0.005,0.01,0.015,0.02 mol/L四個濃度,根據(jù)分離效果選擇合適的KH2PO4溶液濃度.緩沖液濃度對色譜行為影響相對較小,濃度變小時,保留時間也相應變長,濃度過大又對影響色譜柱的使用壽命,所以綜合考慮緩沖液濃度0.02 mol/L,用1 mol/L的磷酸調(diào)節(jié)pH值為3.

2.2 標準工作曲線、線性范圍

準確稱取交沙霉素標樣0.01 g,用適量甲醇溶解,超聲波處理,置于容量瓶中用甲醇定容至10 mL,并用流動相將其配置成31.25,62.5,125,250,400,500,800 μg/mL的標樣,在設定的色譜條件下進行定量分析,以濃度為橫坐標,以峰面積為縱坐標作標準曲線,得到分析方法的回歸方程為y=49267x+804795,相關系數(shù)r=0.996 6,結果表明,交沙霉素濃度在31.25~800 μg/mL之間用HPLC檢測具有很好的線性關系.

2.3 精密度試驗

同一樣品在相同色譜條件下進行6次平行測定,結果見表1.試驗測得其峰面積的RSD為0.45%,說明方法的精密度良好.

2.4 穩(wěn)定性試驗

取同一樣品,按上述方法配成樣品溶液進行含量測定.將樣品溶液分別在室溫下放置0,4,8,16,24,48 h后進樣測定,其峰面積的RSD為0.64%,表明該樣品溶液在48 h內(nèi)穩(wěn)定性良好.

表2 交沙霉素加樣回收試驗結果(n=6)

圖2 交沙霉素對照品的HPLC檢測圖譜

圖3 供試發(fā)酵液的HPLC檢測圖譜

2.5 回收率試驗

精密稱取已知含量的同一批樣品適量,加入標準品適量,用流動相溶解并制成每1 mL中約含1 mg的溶液,依上述方法測定,用標準曲線計算含量,并計算回收率,結果見表2.測得回收率在97.88%~100.07%之間,平均回收率在99.18%,RSD為0.79%,說明方法的準確度良好.

2.6 樣品的測定

將供試菌株在斜面培養(yǎng)基上活化,于28℃培養(yǎng)7~10 d,得到新鮮的斜面孢子.將斜面孢子接入種子培養(yǎng)基,于28℃ 180 r/min搖床培養(yǎng)30 h.以10%接種量轉入發(fā)酵培養(yǎng)基中,于28℃ 180 r/min搖床培養(yǎng)8 d后放瓶.移取交沙霉素發(fā)酵液5 mL加入4倍體積的甲醇,浸提24 h即得到具有生物活性的交沙霉素浸提液.在設定的色譜條件下,待儀器基線穩(wěn)定后,連續(xù)注入數(shù)針標樣溶液,計算各針峰面積的重復性,待相鄰兩針的峰面積變化<1.0%時,按照標樣溶液、試樣溶液、標樣溶液的順序進樣測定.標樣和供試發(fā)酵液的圖譜見圖2、3.

3 討論

在優(yōu)化HPLC法檢測交沙霉素的色譜條件時,通過調(diào)整流動相的比例、流動相的pH、緩沖液濃度大小的變化,確定了適宜的色譜條件[色譜柱為C18反向柱(填料Hypersil ODS 25 μm,4.6 mm×250 mm);柱溫為室溫;流動相為磷酸緩沖液(0.02 mol/L磷酸二氫鉀溶液,用1 mol/L的磷酸調(diào)節(jié)pH值為3)-甲醇(體積比為20∶80,pH3);流速為1.0 mL/min;紫外檢測波長為232 nm;進樣量為10 μL],能很好地改善峰形,保留時間可控制在6~7 min.有研究報道[10]使用乙腈和緩沖液作為流動相,但是考慮到乙腈的毒性,本試驗中暫未使用.

在研究中,交沙霉素濃度在31.25~800 μg/mL范圍內(nèi),其峰面積與濃度呈良好的線性關系(r=0.996 6),測得樣品的相對標準偏差為0.45% ,方法回收率的相對標準偏差為0.49%,本法可用于交沙霉素定量測定.發(fā)酵液中的雜質成分對交沙霉素出峰的干擾較大,但供試發(fā)酵液樣品的色譜圖顯示,本方法能使發(fā)酵液中交沙霉素主成分與其他雜質組分實現(xiàn)良好分離,能準確地測定交沙霉素的含量.

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