陳金國 徐國興 白 月 徐 巍 郭 健
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞向視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞誘導(dǎo)分化探討
陳金國 徐國興 白 月 徐 巍 郭 健
福建醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院,福建省眼科研究所
目的:探討體外培養(yǎng)的大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(rat mesenchymal stem cells,rMSCs)誘導(dǎo)分化成視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞的能力。方法:用貼壁篩選法分離、培養(yǎng)SD大鼠骨髓MSC細(xì)胞,經(jīng)流式細(xì)胞儀鑒定后,利用光感受器細(xì)胞培養(yǎng)上清液誘導(dǎo)MSC細(xì)胞14 d。用免疫細(xì)胞化學(xué)染色和Rt-PCR觀察誘導(dǎo)后的細(xì)胞是否表達(dá)視紫紅質(zhì)(Rhodopsin)、神經(jīng)元特異性烯醇化酶(NSE),膠質(zhì)纖維酸性蛋白(GFAP)。結(jié)果:誘導(dǎo)細(xì)胞14d后即可見有神經(jīng)元樣細(xì)胞出現(xiàn),實驗組MSC的Rhodopsin表達(dá)率為35.1%±6.2 %,而對照組中無Rhodopsin陽性的細(xì)胞, 實驗組MSC的NSE表達(dá)率為33.6%±4.0 %,對照組為10.6%±5.0%, 實驗組MSC的GFAP表達(dá)率為9.6%±1.5 %,對照組為13.7%±3.0 %。RT-PCR鑒定結(jié)果分析示實驗組MSC的GFAP、NSE、Rhodopsin mRNA均有表達(dá),而對照組的只表達(dá)GFAP和NSE,未見Rhodopsin條帶。結(jié)論:體外培養(yǎng)的rMSC,經(jīng)過視網(wǎng)膜光感受器細(xì)胞培養(yǎng)上清液導(dǎo),可以分化為視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞。
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞 光感受器細(xì)胞 誘導(dǎo)分化
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cell,MSC),是一群具有多向分化潛能的均質(zhì)性成體干細(xì)胞,它具有兩項干細(xì)胞最顯著的生物學(xué)特性:自我更新 (self-renewa1)能力及多向分化潛能。1968年, Friedenstein[1]等學(xué)者首先報告骨髓中存在一種細(xì)胞具有高度的自我更新能力和多向分化潛能,他們認(rèn)為這種細(xì)胞可能是間充質(zhì)細(xì)胞的前體。隨著研究的發(fā)現(xiàn),MSC具有向中內(nèi)外胚層組織細(xì)胞分化的能力 ,可以在體外被誘導(dǎo)分化為肌肉細(xì)胞、成骨細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、肝細(xì)胞、上皮細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞等[2, 3]。近年來,BMSCs向神經(jīng)元細(xì)胞的分化的研究成為了研究的熱點??衫每寡趸瘎⑸L因子、維甲酸、共培養(yǎng)等將骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞誘導(dǎo)成神經(jīng)樣細(xì)胞[4-6]。本文探索了利用視網(wǎng)膜光感受器培養(yǎng)上清液體外誘導(dǎo)BMSCs分化為視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞的可行性。
清潔級健康Sprague-Dawley(SD)大鼠20只40眼,重量100~125g,購于上海斯萊克實驗動物有限責(zé)任公司; DMEM培養(yǎng)基(美國Hyclone公司) ,Neurobasal培養(yǎng)基(美國Invitrogen公司),B27(美國Invitrogen公司) ,胎牛血清(美國Hyclone公司),0.25%胰蛋白酶(美國Hyclone公司),木瓜蛋白酶(美國sigma公司),多聚賴酸(美國sigma公司),小鼠抗大鼠單CD34-FITC、CD44-PE和CD90-PE,以及相應(yīng)同型對照單抗小鼠IgG1-FITC, IgG1-PE和IgG2a –PE(Beckman-Coulter公司),神經(jīng)元特異性標(biāo)志小鼠抗大鼠醇化酶(美國 Fisher Scientific公司),光感受器特異性標(biāo)志小鼠抗大鼠單克隆抗體視紫質(zhì)(Rhodopsin)(RET-P1,美國Millipore公司),星形膠質(zhì)細(xì)胞特異性標(biāo)志小鼠抗大鼠單克隆抗體神經(jīng)膠質(zhì)酸性蛋白(GFAP)(美國 Fisher Scientific公司),DAB顯色試劑盒(北京中杉金橋公司),總抽提試劑盒(上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司),THERMO FORMA 3111 CO2培養(yǎng)箱(美國),OLYMPUS 1×70熒光倒置式相差顯微鏡(日本),OLYMPUS BH-2型光學(xué)顯微鏡(日本),Beckman-Coulter Epics XL 流式細(xì)胞儀(美國),臺式高速冷凍離心機(上海),Gene Amp 9700型PCR 擴增儀(美國),Bio-Rad凝膠成像分析系統(tǒng)(Gel DOC2000)(美國),AIR-TECH BCM-1000A型生物潔凈工作臺(蘇州)。
1.2.1骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離培養(yǎng)和鑒定
取清潔級SD大鼠,4mL/kg水合氯醛 (100g/L)進(jìn)行腹腔麻醉。碘伏消毒,無菌條件下取出大鼠的雙側(cè)脛骨和股骨,分別剪斷股骨干和脛骨中間及兩端的干骺剪斷,用含有肝素的培養(yǎng)液10mL進(jìn)行反復(fù)沖洗骨髓腔,沖洗液經(jīng)200目不銹鋼標(biāo)準(zhǔn)篩網(wǎng)過濾組織塊以及已凝血塊后,進(jìn)行離心后用20%FBS的DMEM培養(yǎng)基制成單細(xì)胞懸液接種于25cm2培養(yǎng)瓶中,24h后首次換液去除未貼壁細(xì)胞,以后每2d換液一次,換液前PBS洗去部分未貼壁細(xì)胞,當(dāng)70%~80%細(xì)胞達(dá)到融合時用0.25%胰蛋自酶消化傳代,進(jìn)行擴增培養(yǎng)。用流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞表面抗原CD34、CD44和CD90的表達(dá)[7]。
1.2.2視網(wǎng)膜光感受器細(xì)胞的分離培養(yǎng)和鑒定
在暗環(huán)境下無菌取下清潔級SD大鼠的眼球,游離出完整的視網(wǎng)膜神經(jīng)上皮層。利用木瓜蛋白酶進(jìn)行消化分離出光感受器細(xì)胞,用Neurobasal培養(yǎng)基A 1mL(加入1:50的B27和0.5mM L-glutamine)進(jìn)行避光培養(yǎng),兩天換液一次,將視網(wǎng)膜光感受器細(xì)胞培養(yǎng)換液的上清液收集于干凈玻璃瓶中,通過0.22um過濾篩過濾后按2:3比例與DMEM培養(yǎng)液混合后備用。分別把消化前和消化后的視網(wǎng)膜片進(jìn)行HE染色,在顯微鏡下觀察,同時對分離的光感受器細(xì)胞進(jìn)行免疫細(xì)胞化學(xué)鑒定。
1.2.3對大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞進(jìn)行誘導(dǎo)以及鑒定
將3代的rMSCs接種在6孔板中。分為2個對照組,4個實驗組。實驗組加入光感受器細(xì)胞上清液與10%FBS的DMEM培養(yǎng)基(2:3)進(jìn)行誘導(dǎo),對照組用Neurobasal培養(yǎng)基A與10%FBS的DMEM培養(yǎng)基(2:3)進(jìn)行培養(yǎng),在倒置相差顯微鏡下觀察細(xì)胞的生長及分化情況,誘導(dǎo)后14天,行免疫細(xì)胞化學(xué)和Rt-PCR鑒定,免疫細(xì)胞化學(xué):PBS洗滌3次,多聚甲醛固定,0.2%Triton-X作用10 min,過氧化酶阻斷,非免疫動物血清孵育 10 min,加Rhodopsin(1:100), NSE(1:200) ,GFAP(1:100)抗體,4℃過夜,加入生物素標(biāo)記的第二抗體,鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化物酶溶液,DAB溶液顯色,蘇木素復(fù)染,中性樹膠封固,在顯微鏡下觀察。RT—PCR法檢測實驗組和對照當(dāng)中的GFAP,NSE, Rhodopsin的表達(dá)。Rhodopsin引物上游引物ATGTTCGTGGTCCACTTCA3’,下游引物5’ CGTTGTCCTCAGCCGATG 3’,擴增長度為107bp;NSE引物上游引物:5’ CTGTGGTGGAGCAGGAGA 3’,下游引物5’ GGGAGATAGCGGTGTAAC 3’,擴增長度為156bp;GFAP引物上游引物:5’TAGGAGTGGTAGGGCAGACTTG3’,下游引物5’GCAACCAGGAATAGACCTTCACAA 3’,擴增長度為482bp;內(nèi)參Rat GAPDH 為5’CAGTGCCAGCCTCGTCTC 3’,BC050110為5’ AGGGGCCATCCACAGTCTTC 3’,擴增長度為595bp。參照TRIZOL試劑說明書對誘導(dǎo)的MSC分別提取總RNA,進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄、PCR擴增,將 PCR產(chǎn)物電泳后進(jìn)行圖像分析儀采集圖像。
統(tǒng)計學(xué)處理:采用SPSS13.0統(tǒng)計軟件包(statistical package for the social science)分析,采用t檢驗。
培養(yǎng)的大鼠的BMSCs接種后24小時開始貼壁,前3天細(xì)胞增殖慢,數(shù)量比較少,第3開始細(xì)胞的增長速度明顯增加,7天后就達(dá)到融合狀態(tài),呈現(xiàn)漩渦狀、菊花狀。第三代時,細(xì)胞仍呈梭形,生長旺盛。BMSCs標(biāo)志鑒定結(jié)果表明,培養(yǎng)的第三代BMSCs干細(xì)胞表面標(biāo)志CD90陽性(CD90+/CD34-:92%),基質(zhì)細(xì)胞表面標(biāo)志CD44陽性(CD44+/CD34-:93%)(見圖1)。
圖1 大鼠MSC流式細(xì)胞儀檢測結(jié)果(A: CD90+/CD34-:92%;B: CD44+/CD34-:93%)
取下來的視網(wǎng)膜在消化前后分別進(jìn)行HE染色,消化前可以很清楚地觀察到九層細(xì)胞,說明取下來的是完整的視網(wǎng)膜神經(jīng)上皮層,不含有色素上皮,消化后的視網(wǎng)膜片,光感受器層的細(xì)胞變少,其它層細(xì)胞完整,光感受器細(xì)胞的免疫細(xì)胞化學(xué)示,光感受器細(xì)胞的特異標(biāo)志物視紫紅質(zhì)的表達(dá)率達(dá)95%以上。
實驗組BMSCs誘導(dǎo)后的第4天細(xì)胞形態(tài)開始變化,可見小的突起。隨后細(xì)胞便圓,突起增長,出現(xiàn)少量神經(jīng)樣細(xì)胞的形態(tài),到14天最為明顯,出現(xiàn)一、二級分支,相互之間連接呈網(wǎng)狀。對照組也有少量的細(xì)胞呈神經(jīng)樣的形態(tài)。誘導(dǎo)后的神經(jīng)元樣細(xì)胞GFAP,NSE,Rhodopsin呈強陽性。非神經(jīng)元樣細(xì)胞呈多邊形或梭形,上述抗體染色呈弱陽性。陰性對照未見染色。
免疫細(xì)胞化學(xué)鑒定,共培養(yǎng)2周后,陽性細(xì)胞計數(shù)結(jié)果顯示: rMSC的Rhodopsin表達(dá)率實驗組為35.1%±6.2 %(圖2A),而對照組中無Rhodopsin陽性的細(xì)胞(圖2B), rMSC的NSE表達(dá)率實驗組為33.6%±4.0 %(圖3A),對照組為10.6%±5.0%(圖3B), rMSC的GFAP實驗組的表達(dá)率為9.6%±1.5 %(圖4A),對照組為:13.7%±3.0 %(圖4B);對照組與實驗組進(jìn)行兩樣本的t檢驗NSE:F =0.09,方差齊,P < 0.001,有統(tǒng)計學(xué)意義,GFAP:F =1.726,方差齊,P >0.05,無統(tǒng)計學(xué)意義。
A:實驗組大量表達(dá)Rhodopsin(×100);B:對照組未表達(dá)Rhodopsin(×100)
A:實驗組大量表達(dá)NSE(×100);B:對照組少量表達(dá)NSE(×100)
A:實驗組表達(dá)有GFAP(×100);B:對照組表達(dá)有GFAP(×100)
RT-PCR鑒定結(jié)果分析顯示,實驗組MSC的GFAP、NSE、Rhodopsin均有表達(dá),其中GFAP表達(dá)比較弱;而對照組的只表達(dá)GFAP和NSE,且均較弱,未見Rhodopsin條帶(圖5)。
A:為實驗組,GFAP、NSE、Rhodopsin均有表達(dá);B:為對照組,只表達(dá)GFAP和NSE。
本實驗?zāi)M視網(wǎng)膜體內(nèi)發(fā)育的微環(huán)境誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成為視網(wǎng)膜細(xì)胞,利視網(wǎng)膜光感受器細(xì)胞培養(yǎng)上清液對骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞進(jìn)行向視網(wǎng)膜樣細(xì)胞誘導(dǎo)。本實驗關(guān)于視紫紅質(zhì)的檢測,實驗組表達(dá)率高達(dá)35.1 %±6.2 %,對照組沒有表達(dá),說明其光感受器條件培養(yǎng)基能使MSC向光感受器細(xì)胞方向轉(zhuǎn)化。從而驗證了大鼠MSC確實可以在體外被誘導(dǎo)為表達(dá)視紫紅質(zhì)的光感受器樣細(xì)胞,Tomita M[8]研究表明不管是利用BDNF, NGF, and bFGF或與視網(wǎng)膜片共培養(yǎng),均未發(fā)現(xiàn)表達(dá)Rhodopsin的證據(jù)。Anthony等[5]對BMSCs向視網(wǎng)膜光感受器細(xì)胞誘導(dǎo)分化進(jìn)行了體內(nèi)外實驗。利用維甲酸、?;撬岷虴GF體外將小鼠 BMSCs成功誘導(dǎo)為視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞,誘導(dǎo)后的細(xì)胞可以表達(dá)視網(wǎng)膜光感受器細(xì)胞特異性標(biāo)志物:視紫紅質(zhì)、視蛋白和恢復(fù)蛋白,最近國內(nèi)學(xué)者單純用EGF也可以誘導(dǎo)rMSC表達(dá)Rhodopsin[9]。本實驗當(dāng)中NSE表達(dá)率也明顯高于對照組,而GFAP,兩組表達(dá)并無差異,說明,光感受器條件培養(yǎng)基促進(jìn)rMSC向神經(jīng)元細(xì)胞方向分化,而對于膠質(zhì)細(xì)胞方向分化并無誘導(dǎo)作用。本實驗的對照并未加誘劑的rMSC也能表達(dá)神經(jīng)元特異性標(biāo)志,Tomita M[8]研究說明沒有生長因子誘導(dǎo)的MSC沒有向神經(jīng)方向分的證據(jù),強調(diào)生長因子在神經(jīng)分化中的重要地位,但是也有許多學(xué)者提出了在未誘的條件下仍發(fā)現(xiàn)神經(jīng)特異性標(biāo)志物的表達(dá),Tondreau T等[10]發(fā)現(xiàn)未誘的的MSC也可以表達(dá)神經(jīng)特異標(biāo)記物,如Nestin和β微管蛋白Ⅲ,酪氨酸羥化酶等。Deng J[11]研究中也證實,體外培養(yǎng)大鼠的MSC具有自發(fā)表達(dá)早期的神經(jīng)標(biāo)記物(如Nestin和β微管蛋白Ⅲ),也有細(xì)胞表達(dá)成熟神經(jīng)細(xì)胞的標(biāo)記物,如神經(jīng)微絲M(FNM),這些跟本實驗對照組仍能誘導(dǎo)的MSC能表達(dá)NSE相一致。
我們的實驗利用光感受器細(xì)胞上清液模擬視網(wǎng)膜體內(nèi)發(fā)育的微環(huán)境誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成為視網(wǎng)膜光感受器樣細(xì)胞,視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞培養(yǎng)上清液可能在骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的存活與分化方面起重要作用。盡管BMSC向神經(jīng)細(xì)胞分化的研究已獲得了一些令人鼓舞的結(jié)果,但是還面對了許多待進(jìn)一步解決的問題:(1)對于BMSC的鑒定一直都沒有一個統(tǒng)一的說法,對BMSC的細(xì)胞學(xué)特點和分化各階段細(xì)胞標(biāo)志物的進(jìn)一步研究;(2)光感受器細(xì)胞在體外的外節(jié)容易脫落變性,如何進(jìn)一步保持其完整性以及存活時間;(3)體外BMSC向視網(wǎng)膜樣細(xì)胞誘導(dǎo)分化模式和分子調(diào)控機制還不甚清楚,其誘導(dǎo)的微環(huán)境還比較復(fù)雜,有的學(xué)者直接采用雞尾酒式的加入好幾種生長因子進(jìn)行誘導(dǎo),對于其中各生長因子具體作用以及相互間的作用仍不清楚;(4)對于本實驗誘導(dǎo)出來表達(dá)視紫紅質(zhì)的MSC細(xì)胞的與真正的光感受器細(xì)胞之間不管是從形態(tài)上還是都有很大的差距,縮短這一差別,將MSC真正應(yīng)用于眼科臨床,還需進(jìn)一步深入的研究探索。
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中國衛(wèi)生部聯(lián)合攻關(guān)課題基金(No.WKJ2005-2-013);人事部留學(xué)回國人員優(yōu)秀課題基金(No.GR-2006-FJ-1)
徐國興,zjfmuxgx@pub5.fz.fj.cn。