董曉倩,白春蓉,蘭 韜,田 旭,祁 娟,王 翠,丁 潔,劉松南,*
(1.北京食品科學(xué)研究院北京市茶葉質(zhì)量監(jiān)督檢驗站,北京 100162;2.國家茶葉產(chǎn)品質(zhì)量檢驗檢測中心(四川),四川 雅安 625300;3.中國標準化研究院,北京 100191)
茶葉是以茶樹鮮葉為原料采用特定工藝加工而成的產(chǎn)品,因原料和工藝特點茶葉本身含有一定的糖類成分。茶葉中的可溶性糖類成分主要有果糖、葡萄糖、蔗糖等,這些糖類成分是茶湯中主要的甜味來源,對茶湯的滋味及品質(zhì)起重要作用,有助于形成各品種各等級茶葉固有的感官品質(zhì)特征[1]。在茶葉加工過程中人為添加蔗糖等糖類成分能夠改善茶葉的口感、提升干茶的光澤度和緊結(jié)度,從而虛假提升茶葉的品質(zhì),還能增加茶葉的質(zhì)量。不法生產(chǎn)廠家正是抓住這些特點,在茶葉加工過程中通過加糖達到以次充好、增加質(zhì)量進而牟利的目的[2]。根據(jù)GB/T 30766—2014《茶葉分類》的規(guī)定,茶葉產(chǎn)品不得含有任何添加物[3]。人為加糖不僅擾亂了傳統(tǒng)茶葉市場,讓守法廠商處于被動境地。同時,由于蔗糖等糖類易吸潮、易變質(zhì)和易滋生細菌等特點,人為的加糖對茶葉質(zhì)量安全也有較大的隱患。因此,茶葉中的糖類含量分析是茶葉品質(zhì)管理的必要手段。
因果糖、葡萄糖、蔗糖等糖類成分不屬于食品添加劑[4],不在我國茶葉食品質(zhì)量和安全標準的控制范圍內(nèi),我國也沒有適用于茶葉中這些糖類成分的檢測方法,這導(dǎo)致茶葉中添加糖類成分的摻假行為長期不受行業(yè)監(jiān)管,不法加糖行為不被查處,合法廠商的正當權(quán)益長期受到侵犯,消費者的知情權(quán)和健康權(quán)利得不到保障。為確保茶葉中糖類成分含量在正常、合理范圍內(nèi),需要開發(fā)適用于茶葉中主要糖類成分的準確定量檢測方法,獲取茶葉中主要糖類成分的含量數(shù)據(jù)。
目前,糖類成分的檢測主要有薄層色譜法[5]、酶法、液相色譜-蒸發(fā)光散射法/示差折光檢測法/電霧式檢測法[6-8]、液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[9-10]、氣相色譜法[11-12]、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法[13]、毛細管電泳法[14-15]等。其中,薄層色譜法多用于定性及半定量分析,精密度和準確度較差;酶法能檢測的糖類有限,不能同時檢測多種糖成分;氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法和毛細管電泳法需要柱前衍生,操作復(fù)雜、重復(fù)性差[16];液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法操作簡便、選擇性好,但是設(shè)備昂貴,檢測成本高。液相色譜-示差折光檢測法操作簡便、適用范圍廣,但是檢測結(jié)果易受溫度、流速等影響,且對梯度洗脫適應(yīng)性較差。蒸發(fā)光散射檢測器是一種質(zhì)量型檢測器,用于無紫外吸收或者紫外末端吸收的大分子物質(zhì)的定性定量檢測,適合用于糖類成分的定量分析測定。
在對茶葉中糖類成分的檢測研究中,大多為用水提取后直接上機分析,對其凈化的研究較少[17-18]。GB 5009.8—2016《食品中果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、乳糖的測定》第一法(高效液相色譜法)中也沒有凈化步驟,其適用范圍也沒有茶葉這一食品類別[19]。而茶葉的水提物中含有大量的干擾物質(zhì),如果不進行凈化將會嚴重影響色譜柱壽命及儀器系統(tǒng),因此凈化步驟對于茶葉樣品前處理非常重要??焖贋V過型凈化(multi-plug filtration cleanup,m-PFC)技術(shù)是在QuEChERS凈化基礎(chǔ)之上進一步簡化形成的一種快速新型的凈化技術(shù),操作簡便、快速,便于機械化,前處理效率高,廣泛應(yīng)用于農(nóng)殘檢測的凈化[20-22],目前鮮見該方法應(yīng)用在糖類成分檢測過程中。
聚酰胺粉是由酰胺基單體聚合而成的高分子聚合物,具有比表面積大、吸附性良好等特點,目前已應(yīng)用于天然有機苷原、黃酮類、多酚類等成分的提取[23-25],但將聚酰胺粉作為糖類成分檢測的凈化材料尚鮮見文獻報道??紤]到茶葉中含有大量的茶多酚、黃酮等成分,在糖類檢測過程中這些成分會隨著提取溶劑進入提取液中干擾檢測,需要進行凈化。聚酰胺粉因具有吸附前述成分的功效,有作為凈化吸附劑的可能性。
本實驗擬結(jié)合m-PFC前處理手段,考察聚酰胺粉作為凈化吸附劑填料的可能性,建立液相色譜-蒸發(fā)光散射法同時檢測茶葉中5 種可溶性糖類成分的方法,以期為茶葉中糖類成分的準確定量檢測以及摻雜糖類現(xiàn)象的監(jiān)督監(jiān)管提供技術(shù)手段。
茶葉(綠茶、白茶、花茶、紅茶、烏龍茶、普洱茶各30 個),包括吳裕泰、正興德、京華、張一元、七彩云南、八馬、憶江南、福茗源、天福、中茶10 個品牌。
鼠李糖(純度98%)、果糖(純度99%)、葡萄糖(純度98%)、蔗糖(純度99%)、麥芽糖(純度98%)上海安譜實驗科技股份有限公司;乙腈(色譜純)西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;聚酰胺粉(100~200 目,經(jīng)改性處理)、N-丙基乙二胺(N-propylethylenediamine,PSA)(40~60 μm)、多壁碳納米管(multi-walled carbon nanotubes,MWCNTs)(10~20 nm)、石墨化碳黑(graphitized carbon black,GCB)(120~400 目)、m-PFC凈化柱管 北京科德諾思技術(shù)有限公司;實驗用水由Milli-Q純水機(0.22 μm過濾膜,美國Millipore公司)制得。
LC-20A液相色譜儀(配有蒸發(fā)光散射檢測器)、AEL200分析天平(感量0.1 mg)、UV-2600紫外-可見分光光度計 日本島津公司;JJ500電子天平(感量0.01 g)常熟雙杰測試儀器廠;KQ-250B型超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;H1650高速臺式離心機 長沙湘儀離心機儀器有限公司。
1.3.1 標準溶液的配制
標準貯備溶液:準確稱取鼠李糖、果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖1.000 0 g分別至10 mL容量瓶中,用10%乙腈溶液定容至刻度,混勻,配制成質(zhì)量濃度為100 mg/mL的標準貯備溶液,4 ℃冰箱冷藏保存,有效期為1 個月。
混合標準工作溶液:準確吸取5 種糖類成分標準貯備溶液各1.00 mL于10 mL容量瓶中,用水定容至刻度,混勻,配制成質(zhì)量濃度10.0 mg/mL的混合標準工作溶液,4 ℃冰箱冷藏保存,有效期為7 d。
1.3.2 提取
取茶葉樣品經(jīng)粉碎機粉碎,過80 目篩,裝袋密封保存,備用。
稱取上述茶葉粉末1 g(精確至0.001 g)于50 mL離心管中,準確加入20.0 mL水旋渦提取1 min,靜置提取10 min,期間振搖一次。向上述溶液中加入10 mL二氯甲烷,旋渦混勻1 min,靜置5 min后再次旋渦1 min,于3 500 r/min離心10 min,收集上層溶液,待凈化。
1.3.3 凈化
將m-PFC柱管下接0.22 μm有機微孔濾膜,吸取前述上層溶液1.00 mL移入m-PFC柱管內(nèi),安裝注射桿并緩慢推動,控制流出速率1 滴/s,同時直接收集凈化液于進樣瓶中,上機分析。
1.3.4 色譜條件
色譜柱:迪科瑪Polyamino HILIC 色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),配備相應(yīng)保護柱;柱溫:40 ℃;進樣體積10 μL;流動相:水和乙腈;梯度洗脫程序見表1。流速1.0 mL/min;漂移管溫度70 ℃;氮氣壓力350 kPa。
表1 梯度洗脫程序Table 1 Gradient elution program
1.3.5 提取液及凈化液中茶多酚、游離氨基酸、咖啡堿、黃酮含量的測定
提取液及凈化液中茶多酚、游離氨基酸、咖啡堿含量的測定分別按照GB/T 8313—2018《茶葉中茶多酚和兒茶素類含量的檢測方法》、GB/T 8314—2013《茶 游離氨基酸總量的測定》、GB/T 8312—2013《茶 咖啡堿測定》進行測定;黃酮含量參照何書美等[26]的方法進行測定。
圖譜采集及數(shù)據(jù)定量分析采用Lab Solution數(shù)據(jù)處理系統(tǒng)及Excel進行,圖像處理采用Origin 8.0進行。
GB 5009.8—2016第一法對糖類成分的分析采用乙腈-水(70∶30,V/V)等度洗脫的方式,本實驗首先采用該方法進行糖類成分的分析,結(jié)果表明5 種糖混合標準工作溶液能夠達到基線分離、分離效果較好,但是當采用該條件分析烏龍茶實際樣品時,在蔗糖峰附近存在1 個干擾峰(圖1a),影響其準確定量。當采用梯度洗脫時,干擾峰與蔗糖峰達到基線分離(圖1b),滿足分析要求,因此本實驗采用梯度洗脫的方式對糖類成分進行分析,梯度洗脫程序見表1,5 種糖類成分的色譜圖見圖1c。
圖1 標準溶液及烏龍茶樣品中糖類成分色譜圖Fig.1 Chromatograms of saccharides in standard solution and oolong tea samples
2.2.1 提取方式的選擇
實驗比較振蕩提取法、加熱提取法和超聲輔助提取法對5 種糖類成分的提取效率,結(jié)果表明采用3 種不同的方式提取時,回收率沒有顯著差異。采用振蕩提取方法簡便、易于操作,因此本實驗選取振蕩提取進行后續(xù)實驗。
2.2.2 提取溶劑的選擇
研究表明有機溶劑乙腈的存在會減少提取液中雜質(zhì)的含量[27],利于后續(xù)的凈化操作,但其對糖類成分提取效率的影響不得而知。本實驗以白茶為例,向其添加質(zhì)量分數(shù)為1%的5 種糖,通過回收率考察提取溶液中水/乙腈比例(0%、30%、50%、70%、100%)對糖類成分提取效果的影響。結(jié)果表明,隨著提取溶液中乙腈比例的減少,糖類成分的提取回收率不斷增加,當用純水提取時,5 種糖的回收率最高(圖2),表明乙腈的存在雖然會減少雜質(zhì)的溶出,但是會影響糖類成分的提取效率,因此本實驗選取用純水進行提取。
圖2 提取溶液中水/乙腈的比例對5 種糖分回收率的影響Fig.2 Effect of solvent composition,water/acetonitrile ratio on the recoveries of five saccharides
采用純水提取時,提取溶液中的雜質(zhì)較多,不利于后續(xù)的凈化,因此本實驗首先采用有機試劑反萃取的方式去除提取液中部分雜質(zhì)。本實驗比較了在水中溶解度較低的乙酸乙酯(8.3 g/100 mL、20 ℃)、二氯甲烷(1.3 g/100 mL、20 ℃)作為反萃溶劑的除雜效果。結(jié)果表明,乙酸乙酯和二氯甲烷都能夠明顯去除提取液中的色素成分,且不會影響待測糖類成分的回收率??紤]到乙酸乙酯在水中溶解度更大,影響提取溶液的體積,同時密度比水小,會在提取液的上層,不利于后續(xù)步驟中提取液的取出,因此本實驗選取二氯甲烷作為反萃溶劑進行凈化。
2.2.3 提取次數(shù)的選擇
按照1.3.2節(jié)的方法分別提取1、2、3 次,凈化后上機分析,考察提取次數(shù)對提取效率的影響。結(jié)果表明在提取第一次時5 種糖的回收率均在98%以上,滿足分析要求,因此本實驗選擇提取一次進行后續(xù)實驗。
茶葉提取液中主要的雜質(zhì)成分為茶多酚、色素、生物堿等,如不進行凈化處理會對色譜柱、檢測器等儀器系統(tǒng)造成很大的污染。因此本實驗首先考察聚酰胺粉和PSA的用量對茶葉提取液中雜質(zhì)的去除效果。
在凈化過程中,最常用的凈化劑有MWCNTs、GCB、C18、PSA等。本實驗室前期研究結(jié)果表明,C18對去除茶葉提取液中雜質(zhì)效果甚微[28],因此本實驗不再考察C18對雜質(zhì)的吸附效果。聚酰胺粉是一種由酰胺基單體聚合而成的高分子化合物,內(nèi)含的酰胺鍵能夠與醌類、酚類、硝基類化合物形成氫鍵而具有吸附作用[29],理論上而言對于茶葉提取液中雜質(zhì)成分具有吸附作用。本實驗考察MWCNTs、GCB、PSA、聚酰胺粉作為凈化劑使用的可能性。
2.3.1 凈化劑對5 種糖吸附效果評價
在考察凈化劑去除雜質(zhì)的效果前,首先考察不同吸附劑對目標物的吸附能力,以確保凈化劑在去除雜質(zhì)的同時,不會影響待測化合物的回收率。將質(zhì)量濃度為1.0 mg/mL的5 種糖混合標準工作溶液分別經(jīng)200 mg聚酰胺粉、GCB、MWCNTs、PSA直接凈化后上機檢測,考察4 種凈化劑對5 種糖的吸附效果。結(jié)果表明,聚酰胺粉和PSA對5 種糖吸附效果不明顯,MWCNTs和GCB對5 種糖呈現(xiàn)不同程度的吸附作用,尤其是對蔗糖和麥芽糖的吸附效果極為明顯(圖3a)。分別稱取不同質(zhì)量的MWCNTs和GCB凈化劑,制備成m-PFC凈化柱,按照前述操作進行凈化,考察不同質(zhì)量的兩種凈化劑對糖類成分的吸附能力,結(jié)果見圖3b、c。由圖3可知,當用量為15 mg時,MWCNTs和GCB已經(jīng)對單糖(鼠李糖、果糖、葡萄糖)產(chǎn)生了吸附作用,對于雙糖(蔗糖、麥芽糖)的吸附更為嚴重,不具備作為糖類成分檢測時凈化劑的能力,因此本實驗僅選取聚酰胺粉和PSA進行后續(xù)研究。
圖3 凈化劑對5 種糖類成分回收率的影響Fig.3 Effects of sorbents on the recoveries of five saccharides
2.3.2 凈化劑對雜質(zhì)去除效果評價
由圖4可知,除了游離氨基酸外,聚酰胺粉對茶多酚、咖啡因和黃酮的去除效果明顯優(yōu)于PSA。當采用200 mg聚酰胺粉進行凈化時,能夠去除80%以上的大分子多酚和黃酮類物質(zhì)。選取水提物顏色最深的普洱熟茶作為研究對象,考察不同用量的聚酰胺粉和PSA對色素去除的效果。由圖5可以發(fā)現(xiàn),PSA對于色素類物質(zhì)的去除幾乎沒有作用。而隨著聚酰胺粉用量的增加,凈化液的顏色逐漸變淺,且澄清透明,表明聚酰胺粉對于去除茶葉水提物中的色素具有很好的效果??紤]到PSA對于茶葉水提液的凈化效果較差,同時過多的凈化劑不利于凈化液的獲得,本研究最終僅選用聚酰胺粉一種凈化劑,用量200 mg進行后續(xù)的凈化實驗。將聚酰胺粉填裝至m-PFC柱管制成凈化柱后分別對6 類茶葉提取液進行凈化,結(jié)果表明僅有花茶、普洱茶凈化后仍有些許顏色外,其他茶葉提取液均無色澄清透明,凈化效果較好(圖6)。
圖4 聚酰胺粉和PSA對雜質(zhì)去除效果評價Fig.4 Evaluation of removal efficiency of polyamide powder and PSA on interfering components
圖5 聚酰胺粉及PSA用量對普洱茶色素去除效果Fig.5 Effect of different amounts of polyamide powder and PSA on pigment removal from Pu’er tea
圖6 6 種不同茶葉凈化前后比較Fig.6 Comparison of six different tea samples before and after purifciation
準確配制鼠李糖、果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖系列標準工作溶液,以質(zhì)量濃度的常用對數(shù)為橫坐標、峰面積的常用對數(shù)為縱坐標繪制標準曲線。當鼠李糖質(zhì)量濃度為10.00 mg/mL,果糖質(zhì)量濃度為2.00 mg/mL,葡萄糖、蔗糖、麥芽糖質(zhì)量濃度為5.00 mg/mL時,出現(xiàn)平頭色譜峰,蒸發(fā)光散射檢測器響應(yīng)值達到飽和,分別稀釋至9.50、1.50、4.50 mg/mL后得到良好色譜峰。以信噪比等于3時所對應(yīng)的糖質(zhì)量濃度為儀器的LOD,得出鼠李糖的LOD為0.05 mg/mL,果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖的LOD為0.02 mg/mL。綜上,鼠李糖、果糖、葡萄糖、蔗糖、麥芽糖的線性范圍分別為0.05~9.50、0.02~1.50、0.02~4.50、0.02~4.50、0.02~4.50 mg/mL。在其相應(yīng)的線性范圍內(nèi)繪制標準曲線,同時以信噪比3和10分別作為方法的LOD和LOQ,結(jié)果見表2。峰面積對數(shù)與其質(zhì)量濃度對數(shù)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)大于0.99,LOD為0.04~0.1 g/100 g,LOQ為0.10~0.20 g/100 g。
表2 5 種糖類成分的線性范圍、標準曲線、相關(guān)系數(shù)、LOD及LOQTable 2 Linear ranges,regression equations,correlation coefficients,LODs and LOQs of five saccharides
選取已準確測定各糖含量的綠茶樣品(其中蔗糖含量為1.0 g/100 g,鼠李糖含量小于0.10 g/100 g,果糖、葡萄糖、麥芽糖含量均小于0.04 g/100 g),然后按照蔗糖添加0.50、1.0、1.5 g/100 g(0.5、1、1.5 倍本底),其余4 種糖添加0.10、1.0、10 g/100 g三個水平進行加標回收實驗,進樣濃度超出線性范圍時進行適當稀釋,每個添加量做6 次平行,扣除本底含量后分別計算回收率。表3表明,5 種糖類成分在3 個水平的平均加標回收率范圍為91.0%~103%,相對標準偏差為1.0%~4.6%,滿足分析要求。
表3 5 種糖類成分的加標回收及精密度實驗Table 3 Recoveries and precision RSDs of five saccharides
參照國標方法不進行凈化直接上機分析,進樣100 針后,柱壓明顯升高(由6 MPa升至10 MPa),說明有較多雜質(zhì)殘留在柱頭上。而本方法凈化去除了大部分雜質(zhì),上機溶液澄清透明(圖6),進樣100 針后柱壓無明顯變化,說明本方法明顯延長了色譜柱的使用壽命。同時,本方法凈化步驟簡單、操作方便、易于通過批量化操作提高前處理效率。
隨機選取180 個茶葉樣品(綠茶、白茶、花茶、紅茶、烏龍茶、普洱茶各30 個),按照本實驗方法進行糖類成分的檢測,結(jié)果表明,不同茶葉中糖類成分各有不同,鼠李糖和麥芽糖的含量最低,所分析樣品中均未檢出,果糖、葡萄糖、蔗糖均有不同程度的檢出,其中果糖含量范圍為0.04~0.55 g/100 g,葡萄糖含量范圍為0.04~0.60 g/100 g,蔗糖含量范圍為0.04~6.14 g/100 g,說明果糖、葡萄糖和蔗糖在茶葉中普遍存在,含量差異較大。對于茶葉中是否添加蔗糖,需進行進一步研究。
本實驗結(jié)合m-PFC技術(shù)和液相色譜-蒸發(fā)光散射法,建立茶葉中鼠李糖等5 種糖類成分的檢測方法。相較于其他檢測方法,本方法創(chuàng)新使用了聚酰胺粉作為凈化材料,開發(fā)了適用于茶葉中5 種糖類成分檢測的m-PFC凈化小柱。相較于傳統(tǒng)的GCB、MWCNTs固相萃取柱,本小柱價格低廉、操作簡便快速、便于批量化實驗。凈化步驟減少了上機溶液中的雜質(zhì),較大限度地延長色譜柱使用壽命,保護液相色譜流路系統(tǒng)。方法的線性、回收率及精密度等符合理化檢驗要求[30],為茶葉中糖類成分的精確定量及是否添加了糖類成分預(yù)測提供了可靠技術(shù)手段。