楊子瀅,葛新宇,閆欣,楊永新,于春娣,楊慶利,呂良濤
(青島農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東 青島 266109)
食物過敏已成為全球范圍內(nèi)重要的食品安全問題。牛乳是可能導(dǎo)致人類食物過敏的食品之一,嚴(yán)重影響了部分人群特別是嬰幼兒的身體健康,輕度癥狀表現(xiàn)為腹瀉、蕁麻疹等,重度或引發(fā)休克反應(yīng)甚至死亡[1]。隨著牛乳及其制品的消費(fèi)量逐年增加,牛乳過敏的人群也在逐漸增加[2],聯(lián)合國糧食及農(nóng)業(yè)組織(Food and Agriculture Organization of the United Nations,F(xiàn)AO)認(rèn)定牛乳及其制品為“八大”致敏性食物之一[3]。牛乳β-乳球蛋白(β-lactoglobulin,β-LG)是牛乳中的主要蛋白質(zhì)成分,在牛乳乳清中占蛋白總量的50%,分子量為16~18 kDa[4],具有多方面的營養(yǎng)作用。β-LG 是一種具有良好功能特性的優(yōu)質(zhì)蛋白質(zhì),常用其作為功能性配料在食品加工中廣泛應(yīng)用[5]。
天然存在于牛乳中的β-LG 被認(rèn)為是牛乳的主要過敏原[6]。由于β-LG 高度結(jié)構(gòu)化與耐水解特性,在人體腸道內(nèi)消化后仍存在部分肽段分子,從而引起過敏癥狀[7]。近年來,有研究學(xué)者探究不同加工技術(shù)對(duì)牛乳β-LG 致敏性的影響。Jia 等[8]發(fā)現(xiàn)利用高壓脈沖電場技術(shù)可導(dǎo)致β-LG 致敏性降低。Yang 等[9]研究表明利用低頻超聲可促進(jìn)β-LG 的消化,使其致敏性降低。王明禮等[10]利用輻照技術(shù)對(duì)β-LG 進(jìn)行處理,結(jié)果表明β-LG經(jīng)過輻照加工后,其構(gòu)象表位破壞,導(dǎo)致其致敏性降低。Fei 等[11]利用靜態(tài)高壓技術(shù)使β-LG 的致敏性降低。這些研究在食品產(chǎn)業(yè)鏈中為控制過敏原風(fēng)險(xiǎn)提供技術(shù)支持,但由于加工過程中化學(xué)反應(yīng)眾多,影響因素復(fù)雜,尚不足以闡明牛乳過敏原的變化規(guī)律。牛乳在加工過程中影響蛋白質(zhì)的化學(xué)反應(yīng)多樣,其中氧化是非常普遍且重要的化學(xué)反應(yīng)之一[12]。目前,有關(guān)活性氧氧化對(duì)牛乳β-LG 致敏性影響的研究鮮見。本研究旨在分析活性氧氧化對(duì)牛乳β-LG 結(jié)構(gòu)、功能特性和致敏性的影響。通過聚十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)、圓二色譜、表面疏水性、內(nèi)源熒光等方法分析牛乳β-LG 氧化前后結(jié)構(gòu)的變化;乳化性、起泡性等方法分析牛乳β-LG 的功能特性變化;采用酶聯(lián)免疫試驗(yàn)(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA),大鼠嗜堿性細(xì)胞白血病細(xì)胞(rat basophilic leukemia cells,RBL-2H3)試驗(yàn)等方法分析牛乳β-LG 的致敏性變化。通過上述研究,有助于更好地了解加工過程中氧化對(duì)牛乳功能特性和致敏性的影響。
H2O2水溶液(3%):商丘圣邦生物科技有限公司;牛乳β-LG(純度≥90%)、標(biāo)準(zhǔn)蛋白marker、三羥甲基氨基甲烷、磷酸鹽緩沖液、磷酸鹽吐溫緩沖液、三羥甲基氨基甲烷鹽酸鹽、十二烷基硫酸鈉(均為分析純):北京Solarbio 公司;過氧化物酶標(biāo)記的羊抗人免疫球蛋白E(Immunoglobulin E,IgE)抗體:北京中杉金橋生物科技公司;三硝基苯磺酸、四甲基聯(lián)苯胺、8-苯胺-1-萘磺酸(8-Anilino-1-naphthalenesulfonic acid,ANS)、牛血清蛋白、考馬斯亮藍(lán)G250、EMEM 培養(yǎng)基(含厄爾平衡鹽、L-谷氨酰胺、D-纈氨酸):美國Sigma 公司;牛乳過敏血清(特異性IgE 水平>0.5 kU/L):青島大學(xué)附屬醫(yī)院;ELISA 試劑盒:美國Minneapolis 公司。
熒光分光光度計(jì)(F2700):日本日立公司;分光光度計(jì)(Characin V100):英國應(yīng)用物理攝影有限公司;DYY-12 電泳儀:北京六一儀器廠;Tanon 4100 凝膠成像儀:上海天能公司;CD 偏光光譜儀(J-815):日本分光株式會(huì)社;原子力顯微鏡(SPM-9700HT):日本島津公司。
1.3.1 樣品處理
利用超純水將牛乳β-LG 溶液調(diào)整為2 mg/mL,采用芬頓氧化體系[13](100 μL FeCl3分別與0、25、50、100 μL H2O2混合后加入5 mL 蒸餾水)對(duì)等體積2 mg/mL 牛乳β-LG 進(jìn)行氧化處理,最終H2O2濃度分別為0、2.5、5、10 mmol/L 4 組濃度梯度,在37 ℃避光環(huán)境下反應(yīng)12 h。
1.3.2 聚丙烯酰胺凝膠電泳分析
參考Sharman 等[14]的方法對(duì)氧化后的牛乳β-LG進(jìn)行電泳試驗(yàn)。按照4 ∶1 的體積比將樣品和上樣緩沖液混合,混合后的樣品沸水浴7 min 后3 000 r/min 離心50 s。將樣品按順序裝入12%預(yù)制膠孔中,在120 V電壓下進(jìn)行SDS-PAGE 試驗(yàn),待藍(lán)線即將拋出時(shí)停止電泳。將凝膠取出后,在染色盒中加入考馬斯亮藍(lán)R-250 染色液沒過凝膠,搖床上50 r/min 輕搖染色2 h,倒盡染色液后用超純水漂洗,倒入脫色液,直至凝膠上條帶清晰。最后用雙蒸水漂洗后,采用Tanon 4100 凝膠成像儀拍照。
1.3.3 圓二色譜分析
利用CD 偏光光譜儀檢測氧化前后牛乳β-LG 二級(jí)結(jié)構(gòu)的變化[15]。以超純水為空白,將氧化前后的牛乳β-LG 樣品用超純水稀釋至0.6 mg/mL。測定參數(shù)設(shè)置為掃描波長190~260 nm,時(shí)間間隔0.25 s,掃描速率100 nm/min。數(shù)據(jù)以平均摩爾橢圓率表示,利用JASCO 軟件分析試驗(yàn)結(jié)果。
1.3.4 內(nèi)源熒光強(qiáng)度檢測
根據(jù)Ju 等[16]的研究方法稍有改動(dòng),將氧化的牛乳β-LG 樣品溶解于超純水中,使得上清液中蛋白濃度調(diào)整到0.5 mg/mL。以超純水為空白,每個(gè)樣品取1 mL到熒光比色皿中,利用熒光分光光度計(jì)檢測樣品的內(nèi)源熒光強(qiáng)度。設(shè)置參數(shù)為激發(fā)波長295 nm,發(fā)射波長300~400 nm,掃描速度1 200 nm/min,狹縫寬度2.5 nm。
1.3.5 表面疏水性測定
采用Rodriguez 等[17]的方法略作修改,用超純水稀釋氧化前后的牛乳β-LG 樣品,使樣品濃度為0.05~0.5 mg/mL。取不同濃度的樣品1.5 mL,加入15 μL ANS 溶液,振蕩后靜置3 min,設(shè)置熒光分光光度計(jì)激發(fā)波長與發(fā)射波長分別為370 nm 與490 nm(狹縫校正均為5 nm),以熒光強(qiáng)度對(duì)蛋白質(zhì)濃度作圖并外推至蛋白濃度為0,曲線初始階段斜率即為樣品表面疏水性指數(shù)。
1.3.6 微觀結(jié)構(gòu)觀察
根據(jù)Hu 等[18]的方法分析氧化前后β-LG 的微觀結(jié)構(gòu)變化。各組樣品按體積比1 ∶1 000 稀釋,將蛋白懸浮液(10 μL,1 μg/mL)沉積到新鮮裂解的云母上,并在加熱燈下干燥。使用Bioscope(BS3-02)ScanAsyst 模式通過原子力顯微鏡(atomic force microscope,AFM)在多個(gè)點(diǎn)進(jìn)行成像。掃描尺寸和掃描頻率分別為10.0 μm×10.0 μm,0.997 Hz。分析每個(gè)樣品3×512 nm 視場下的原子力顯微鏡(AFM)圖像。
1.3.7 功能特性測定
1.3.7.1 乳化性與乳化穩(wěn)定性測定
根據(jù)梁肖娜[19]的方法測定乳化性和乳化穩(wěn)定性。用超純水配制質(zhì)量濃度1 mg/mL 的β-LG 溶液,向溶液中加入體積比為1 ∶4 的大豆油,15 000 r/min 勻漿1 min后立即倒入試管中。分別于靜置0、10 min 時(shí),在距離試管底0.5 cm 處用移液槍吸取50 μL 的乳液于5 mL 0.1%的SDS 溶液中,充分混勻后于500 nm 波長處測定吸光值。計(jì)算β-LG 的乳化活性指數(shù)(emulsification activity index,EAI) 和乳化穩(wěn)定性指數(shù)(emulsification stability index,ESI)。
式中:E 為乳化活性指數(shù),m2/g;S 為乳化穩(wěn)定性指數(shù),%;ρ 為β-LG 質(zhì)量濃度,g/mL;φ 為油相所占體積分?jǐn)?shù);A500nm為波長500 nm 處的吸光值;A10為靜置10 min時(shí)乳液的吸光值;A0為靜置0 min 時(shí)乳液的吸光值。
1.3.7.2 起泡能力與起泡穩(wěn)定性測定
同樣采取1.3.7.1 中梁肖娜[19]的方法,取10 mL 的β-LG(1 mg/mL)溶液在10 000 r/min 條件下均質(zhì)勻質(zhì)2 min,迅速倒入50 mL 量筒,讀取泡沫體積V0,靜置30 min 后讀取泡沫體積V。計(jì)算β-LG 的起泡能力(foaming capacity,F(xiàn)C)與起泡穩(wěn)定性(Foaming stability,F(xiàn)S)。
式中:C 為起泡能力,%;F 為起泡穩(wěn)定性,%。
1.3.8 酶聯(lián)免疫試驗(yàn)
參照Liu 等[20]的方法,利用間接ELISA 檢測活性氧氧化對(duì)牛乳β-LG 的IgE 結(jié)合能力。將各組樣品在50 mmol/L 碳酸鹽緩沖液中稀釋至10 μg/mL,嚴(yán)格按照ELISA 試劑盒提供的方案進(jìn)行相關(guān)指標(biāo)測定。
1.3.9 RBL-2H3 細(xì)胞試驗(yàn)
RBL-2H3 細(xì)胞試驗(yàn)根據(jù)Yang 等[21]的方法稍作修改。大鼠肥大細(xì)胞RBL-2H3 接種于EMEM 培養(yǎng)基中,培養(yǎng)基中加入10%胎牛血清,100 U/mL 青霉素與100 g/mL 鏈霉素,在37 ℃下置于5% CO2/95%空氣環(huán)境中培養(yǎng)。當(dāng)細(xì)胞達(dá)到2×106個(gè)/mL 的密度時(shí),接種于96 孔培養(yǎng)板中,將細(xì)胞用來自牛乳過敏患者的血清(1 ∶10 稀釋)致敏24 h,用臺(tái)氏液洗滌3 次,在培養(yǎng)基中加入100 ng/mL β-LG 進(jìn)行激發(fā)。參考Kuehn 等[22]的方法測定β-己糖苷酶的釋放率。將所有樣品1 000 r/min離心15 min 后收集上清液,采用ELISA 試劑盒測定β-己糖苷酶、組胺、半胱氨酰白三烯、前列腺素D2、白介素-4 與白介素-13 的釋放量。
本研究中所有試驗(yàn)平行操作3 次,數(shù)據(jù)用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,并采用Prism 軟件作圖。SPSS 19.0 軟件用于試驗(yàn)中各組數(shù)據(jù)的單因素方差分析。
活性氧氧化β-LG 產(chǎn)物的聚丙烯酰胺凝膠電泳結(jié)果如圖1 所示。
圖1 β-乳球蛋白與不同濃度過氧化氫反應(yīng)后產(chǎn)物電泳圖Fig.1 Electrophoresis of the products of β-LG after reaction with different concentrations of hydrogen peroxide
由圖1 可知,所用蛋白標(biāo)準(zhǔn)分子量為11~180 kDa,活性氧氧化的β-LG 經(jīng)電泳分析后,結(jié)果顯示隨著氧化反應(yīng)濃度的增加,β-LG 條帶向上發(fā)生輕微遷移。未經(jīng)氧化的β-LG 在16 kDa 處有一條蛋白條帶,當(dāng)芬頓氧化體系中H2O2濃度為10 mmol/L 時(shí),在更高分子量的位置形成了聚合物,即在17 kDa 左右處形成新的條帶。
活性氧氧化牛乳β-LG 構(gòu)象結(jié)構(gòu)的變化如圖2 所示。
圖2 活性氧氧化對(duì)牛乳β-LG 構(gòu)象結(jié)構(gòu)的影響Fig.2 Effect of reactive oxygen species oxidation on conformational structure of bovinemilk β-LG
由圖2A 可知,0 mmol/L 組的牛乳β-LG 在195 nm附近顯示2 個(gè)正峰,208 nm 處有一個(gè)明顯的負(fù)峰。195 nm 處的正峰和208 nm 處的負(fù)峰表示牛乳β-LG中存在β-螺旋結(jié)構(gòu)。隨著H2O2濃度增加,活性氧氧化引起牛乳β-LG 二級(jí)結(jié)構(gòu)改變,主要表現(xiàn)在α-螺旋含量減少。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn)丙烯醛氧化乳球蛋白后,α-螺旋結(jié)構(gòu)也下降[23]。
利用內(nèi)源熒光光譜評(píng)估蛋白質(zhì)的構(gòu)象變化,對(duì)活性氧氧化牛乳β-LG 的熒光強(qiáng)度進(jìn)行分析。由圖2B 可知,牛乳β-LG 的熒光強(qiáng)度的峰值λmax 在346 nm處,隨著芬頓氧化體系濃度的增加,氧化修飾的牛乳β-LG熒光強(qiáng)度有持續(xù)下降趨勢。當(dāng)芬頓氧化體系濃度達(dá)到10 mmol/L 時(shí),牛乳β-LG 的熒光強(qiáng)度的峰值相較于氧化體系濃度0 mmol/L 組降低了48%,λmax 從346 nm藍(lán)移到342 nm。氧化后牛乳β-LG 引起λmax 藍(lán)移,推測可能是牛乳β-LG 分子外部處于極性環(huán)境中,色氨酸和酪氨酸殘基被轉(zhuǎn)移到內(nèi)部非極性環(huán)境中[24],這是由于活性氧氧化牛乳β-LG 發(fā)生聚集變化引起的。
蛋白質(zhì)的表面疏水性也是評(píng)估其構(gòu)象變化的特征指標(biāo)之一。氧化前后牛乳β-LG 的表面疏水性結(jié)果如圖3 所示。
圖3 活性氧氧化對(duì)牛乳β-LG 表面疏水性的影響Fig.3 Effect of reactive oxygen species oxidation on surface hydrophobicity of bovine milk β-LG
由圖3 可知,隨著H2O2濃度的增加,牛乳β-LG的表面疏水性逐漸增加。當(dāng)H2O2濃度達(dá)到10 mmol/L時(shí),牛乳β-LG 的表面疏水性是H2O2濃度為0 mmol/L時(shí)的2.4 倍。根據(jù)以上的結(jié)果推測芬頓體系氧化修飾的牛乳β-LG 產(chǎn)生聚集可能是由于蛋白質(zhì)通過折疊使疏水基團(tuán)暴露,暴露的疏水基團(tuán)可以通過疏水相互作用形成聚集體[25]。進(jìn)一步說明,蛋白質(zhì)表面疏水性與疏水側(cè)鏈氧化程度的強(qiáng)弱、蛋白質(zhì)去折疊以及蛋白質(zhì)聚集程度有關(guān)。
使用原子力顯微鏡確定氧化前后牛乳β-LG 顆粒的聚集和表面形貌。用芬頓氧化體系處理牛乳β-LG的AFM 高度圖像如圖4 所示。
圖4 牛乳βLG 的AFM 高度圖像Fig.4 AFM height image of bovine milk βLG
由圖4 可知,未經(jīng)氧化處理的牛乳β-LG 在形狀周圍顯示并堆疊形成較厚的蛋白質(zhì)層,其頂部幾乎沒有蛋白質(zhì)聚集體。然而,當(dāng)芬頓氧化體系濃度增加到2.5 mmol/L 時(shí),觀察到少量的βLG 聚集體,這表明低過氧化氫氧化劑濃度誘導(dǎo)βLG 的分段聚集。隨著芬頓氧化體系濃度的逐漸增加,蛋白質(zhì)聚集程度增加??赡苁且?yàn)榈鞍踪|(zhì)表面存在靜電作用,由于正負(fù)電荷排斥放大其暴露的疏水表面,疏水表面形成聚集傾向區(qū)域,從而促進(jìn)了蛋白質(zhì)顆粒的聚集[18]。
活性氧氧化對(duì)牛乳β-LG 功能特性的影響如圖5所示。
圖5 活性氧氧化對(duì)牛乳β-LG 功能特性的影響Fig.5 Effect of reactive oxygen species oxidation on functional characteristics of bovine milk β-LG
由圖5A 可知,與對(duì)照組相比,添加2.5 mmol/L 過氧化氫后,牛乳β-LG 的EAI 從26.12 m2/g 降至23.36 m2/g,ESI 升高至10.11%。隨著芬頓氧化體系濃度升高至10 mmol/L,EAI 降低至19.02 m2/g,而ESI 升高至12.52%。乳化活性隨著芬頓氧化體系濃度的增加而降低,而乳化穩(wěn)定性卻升高??赡苁且?yàn)檫^氧化氫導(dǎo)致β-LG 表面疏水性升高,親水能力下降,吸附在油-水界面蛋白質(zhì)含量減少,這是影響β-LG 乳化活性的關(guān)鍵因素,故導(dǎo)致EAI 下降[26]。乳化穩(wěn)定性提高可能歸因于靜置后蛋白質(zhì)在分層處重排乳化形成一層高彈性膜,阻止油滴聚集上浮,從而提高乳化穩(wěn)定性[27]。
由圖5B 可知,隨著過氧化氫濃度增加,牛乳β-LG 的FC 及FS 都有不同程度增高,過氧化氫濃度從0 mmol/L增加到10 mmol/L 時(shí),F(xiàn)C 由21.47%升高至25.38%,F(xiàn)S 由21.31%升高至23.46%??赡苁且?yàn)榛钚匝跹趸古H棣?LG 的疏水基暴露在蛋白表面,同時(shí)增強(qiáng)其分子間相互作用,從而增強(qiáng)表面張力與表面彈性,F(xiàn)C 與FS 得到提高[28]。
為進(jìn)一步評(píng)估芬頓氧化體系對(duì)牛乳β-LG IgE 結(jié)合能力的影響,通過間接ELISA 來測定與牛乳過敏患者血清的結(jié)合能力,結(jié)果如圖6 所示。
圖6 活性氧氧化對(duì)牛乳β-LG 致敏性的影響Fig.6 Effect of reactive oxygen species oxidation on sensitization of bovine milk β-LG
由圖6 可知,相比于純化的牛乳β-LG,芬頓氧化體系氧化的牛乳β-LG 的IgE 結(jié)合能力降低。當(dāng)芬頓氧化體系濃度為10 mmol/L 時(shí),牛乳β-LG 的IgE 結(jié)合能力相較于氧化體系濃度為0 mmol/L 下降了50%。有研究表明,在氧化過程中,氨基酸側(cè)鏈被修飾導(dǎo)致某些表位的破壞,或者修飾后產(chǎn)生的蛋白質(zhì)發(fā)生交聯(lián),導(dǎo)致牛乳β-LG 過敏原IgE 結(jié)合能力降低[29]。因此,原因可能是隨著芬頓氧化體系濃度的增加,牛乳β-LG 氨基酸側(cè)鏈發(fā)生改變,引起蛋白質(zhì)交聯(lián)產(chǎn)生聚集體,破壞了其相應(yīng)的過敏表位,從而引起其IgE 結(jié)合能力下降。由于過敏原能夠和IgE 高效結(jié)合,這其中肥大細(xì)胞在IgE 介導(dǎo)的過敏中起到了關(guān)鍵的作用,是過敏反應(yīng)過程中重要的效應(yīng)細(xì)胞。因此,過敏反應(yīng)在體外研究中常常運(yùn)用大鼠嗜堿性細(xì)胞白血病細(xì)胞(RBL-2H3)作為肥大細(xì)胞模型[30]。采用RBL-2H3 測定芬頓體系氧化的牛乳β-LG 致敏性的變化,結(jié)果如圖7 所示。
圖7 RBL-2H3 細(xì)胞模型中各過敏介質(zhì)對(duì)應(yīng)釋放率與釋放量變化Fig.7 Changes in cytokine release rate and content in RBL-2H3 cell model
由圖7 可知,未添加過氧化氫的對(duì)照組RBL-2H3的β-己糖苷酶釋放率為64.46%,組胺釋放量為166.23 ng/mL,半胱氨酰白三烯釋放量為538.01 pg/mL,前列腺素D2 釋放量為124.55 pg/mL,白介素-4 釋放量為109.56 pg/mL,白介素-13 釋放量為71.83 pg/mL,隨著過氧化氫濃度升高,各細(xì)胞因子釋放率或釋放量逐步下降。在β-己糖苷酶釋放率的測定中,當(dāng)過氧化氫濃度為10 mmol/L 時(shí),β - 己糖苷酶釋放率降低至23.36%(圖7A),結(jié)果說明芬頓體系氧化的牛乳β-LG能夠有效地抑制RBL-2H3 釋放β-己糖苷酶。在組胺釋放量測定中,10 mmol/L 芬頓體系氧化的牛乳β-LG刺激細(xì)胞組胺釋放量下降了57.2 ng/mL(圖7B)。在半胱氨酰白三烯釋放量的測定中,10 mmol/L 芬頓體系氧化的牛乳β-LG 刺激細(xì)胞后半胱氨酰白三烯釋放量下降到386.73 pg/mL(圖7C),抑制率為28.12%。在前列腺素D2 釋放量的測定中,芬頓體系氧化修飾的牛乳β-LG 刺激細(xì)胞后前列腺素D2 釋放量下降,尤以10 mmol/L 組最為顯著,其釋放量降低至63.89 pg/mL(圖7D),抑制率達(dá)為48.70%。白介素-4 釋放量與白介素-13 釋放量相較于未添加過氧化氫組均表現(xiàn)出顯著抑制,抑制率分別為46.54%與32.72%(圖7E、圖7F)。
上述試驗(yàn)結(jié)果表明芬頓體系氧化的牛乳β-LG 能夠有效的抑制RBL-2H3 釋放活性介質(zhì)和細(xì)胞因子。
通過活性氧氧化牛乳β-乳球蛋白,探究其對(duì)牛乳β-乳球蛋白結(jié)構(gòu)、功能特性和致敏性的影響。結(jié)果表明,加工過程中適當(dāng)氧化可以改變牛乳β-LG 構(gòu)象結(jié)構(gòu),從而影響其功能特性和致敏性。β-LG 的二級(jí)結(jié)構(gòu)發(fā)生顯著變化,當(dāng)過氧化氫濃度達(dá)到10 mmol/L 時(shí),表面疏水性升高至原來的2.4 倍,內(nèi)源熒光強(qiáng)度降低了48%,起泡能力由21.47%升高至25.38%,起泡穩(wěn)定性由21.31%升高至23.46%,乳化活性由26.12 m2/g降低至19.02 m2/g,但乳化穩(wěn)定性由21.31%升高至23.46%。β-LG 的IgE 結(jié)合能力升高,RBL-2H3 中各過敏介質(zhì)釋放率及釋放量發(fā)生顯著變化。本研究為探究食品加工過程中牛乳β-LG 功能特性及致敏性的變化規(guī)律提供參考。