白世踐 戶金鴿 趙榮華 陳光 古麗加汗·克然木 蔡軍社

摘要：【目的】探討不同顏色果袋引起的光環(huán)境差異對(duì)新郁葡萄著色及品質(zhì)的影響?！痉椒ā恳? 年生新郁葡萄為試驗(yàn)材料，采用5 種顏色果袋（白袋、紅袋、黃袋、藍(lán)袋、綠袋）進(jìn)行果實(shí)套袋處理，以不套袋為對(duì)照，測(cè)定不同果袋內(nèi)的透射光譜和采收期葡萄品質(zhì)指標(biāo)及果皮花色苷組分?！窘Y(jié)果】與對(duì)照相比，不同顏色果袋均不同程度降低了果際總輻射和果實(shí)可溶性固形物及果皮花色苷含量，綠袋提高了可滴定酸含量，降低了果粒質(zhì)量；白袋降低了3-羥基取代類花色苷比例，提高了3，5-羥基取代類花色苷比例，而紅袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋則效果相反；白袋、紅袋和黃袋提高了總修飾類花色苷比例，而綠袋則降低了總修飾類花色苷比例。紅袋的葡萄果皮花色苷含量為1 418.67 mg·kg-1，葡萄果實(shí)色澤指數(shù)（color index of grape，CIRG）為4.80，顏色為紅色，著色最好。相關(guān)分析表明，橙光和紅光輻射強(qiáng)度與3-羥基取代類花色苷含量呈極顯著正相關(guān)?！窘Y(jié)論】西北干旱區(qū)采用紅色果袋套袋能夠改善新郁葡萄著色，提高綜合品質(zhì)。

關(guān)鍵詞：新郁葡萄；套袋；光質(zhì)；果實(shí)品質(zhì)；花色苷

中圖分類號(hào)：S663.1 文獻(xiàn)標(biāo)志碼：A 文章編號(hào)：1009-9980（2023）05-0932-14

葡萄是世界上栽培最早、分布最廣的果樹之一，因其富含花青素、類黃酮和維生素等成分，深受消費(fèi)者喜愛(ài)。中國(guó)是世界葡萄生產(chǎn)大國(guó)，新郁葡萄是中國(guó)自主培育的優(yōu)良鮮食葡萄品種，親本為紅地球自然雜交后代E42-6×里扎馬特，該品種穗形美觀，果粒大，鮮紅-紫紅色，肉脆味甜，貯運(yùn)性能較好，栽培適應(yīng)性強(qiáng)[1]，因此栽培經(jīng)濟(jì)效益好，栽培面積不斷擴(kuò)大。在西北干旱區(qū)種植的新郁葡萄因生育期光照輻射強(qiáng)，常導(dǎo)致著色過(guò)深，降低了外觀品質(zhì)及商品性，急需通過(guò)栽培措施優(yōu)化生育期果際光環(huán)境，改善果實(shí)色澤，提高品質(zhì)。

套袋是優(yōu)質(zhì)葡萄生產(chǎn)過(guò)程中的重要環(huán)節(jié)，套袋可以防止鳥類、昆蟲對(duì)果實(shí)的危害，同時(shí)阻礙病菌、灰塵和農(nóng)藥的侵染，保持果面的清潔和果粉的完整，使葡萄著色更均勻，也使葡萄更綠色、安全、優(yōu)質(zhì)[2-3]。套袋通過(guò)改變果實(shí)生長(zhǎng)發(fā)育的微環(huán)境對(duì)品質(zhì)產(chǎn)生影響[4]。光照條件改變是套袋引起果實(shí)品質(zhì)變化的重要因素。光可作為一種重要的信號(hào)激發(fā)植物體內(nèi)的光受體，調(diào)節(jié)植物的形態(tài)建成、光周期反應(yīng)與生理節(jié)律，并與植物體內(nèi)的脫落酸（abscisic acid，ABA）、乙烯等其他信號(hào)分子相互協(xié)作，共同調(diào)控[5-6]。不同光質(zhì)通過(guò)與特定的色素互作來(lái)影響植物次生代謝物的合成，如光敏色素吸收紅光、遠(yuǎn)紅光，而隱花青素和向光素吸收紫外光和藍(lán)光[7-8]。大量研究證實(shí)，果實(shí)品質(zhì)中的糖、酸及花色苷含量均受到光條件的影響，如葡萄套袋后造成的弱光脅迫會(huì)降低可溶性固形物含量，導(dǎo)致葡萄著色不完全，延遲成熟，而去袋后果實(shí)色澤和可溶性固形物含量可迅速恢復(fù)正常[9]。Zhang 等[10]研究認(rèn)為藍(lán)光能夠顯著增加赤霞珠葡萄錦葵色素-3-O-葡萄糖苷和芍藥花素-3-O-葡萄糖苷、醇類和酚類揮發(fā)性物質(zhì)及可溶性糖中的葡萄糖、果糖含量，降低檸檬酸和蘋果酸含量。

光能夠通過(guò)調(diào)控花色苷合成相關(guān)結(jié)構(gòu)基因和調(diào)控基因的表達(dá)來(lái)調(diào)控花色苷的積累[11-13]，如太陽(yáng)紫外光照射能夠誘導(dǎo)Tempranillo 葡萄花色苷合成途徑中的PAL、CHS、C4H、FLS1、VvGT5、VvGT6、VvMYB24、VvMYBF1 等多個(gè)基因上調(diào)表達(dá)[14]。不同顏色果袋通過(guò)影響光信號(hào)轉(zhuǎn)錄因子VvHY5 的表達(dá)，調(diào)控花青苷合成調(diào)控基因VvMYBA1 和結(jié)構(gòu)基因VvCHS、VvLDOX、VvUFGT等的表達(dá)，進(jìn)而影響葡萄果皮花色苷的合成[15]。

西北干旱區(qū)葡萄園光照輻射強(qiáng)，容易造成新郁葡萄著色過(guò)深，關(guān)于不同顏色果袋對(duì)西北干旱區(qū)新郁葡萄果實(shí)品質(zhì)及著色的調(diào)控研究未見報(bào)道。筆者在本研究中擬采用不同顏色果袋（白袋、紅袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋）對(duì)新郁葡萄進(jìn)行套袋，以不套袋為對(duì)照，分析不同顏色果袋引起的光環(huán)境差異對(duì)新郁葡萄果實(shí)品質(zhì)及著色的影響，旨在為生產(chǎn)優(yōu)質(zhì)新郁葡萄果袋的選擇提供依據(jù)。

1 材料和方法

1.1 試驗(yàn)材料

試驗(yàn)于2021 年在新疆維吾爾自治區(qū)葡萄瓜果研究所葡萄栽培示范基地（90°30′ E，42°91′ N）進(jìn)行。試驗(yàn)地海拔419 m，年降雨量25.3 mm，年蒸發(fā)量2 751.0 mm，全年日照時(shí)數(shù)3 122.8 h，10 ℃以上有效積溫4525 ℃以上，無(wú)霜期192 d，屬于典型的大陸性暖溫帶荒漠氣候，為極端干旱區(qū)氣候類型。土壤質(zhì)地為礫石砂壤土。供試材料為長(zhǎng)勢(shì)一致的7 年生歐亞種（Vitis vinifera L.）新郁葡萄，采用順行龍干+（V+水平）葉幕模式栽培，東西行向，株行距2.0 m×3.5 m，新梢間距15 cm，單株果穗數(shù)20～24 穗，豆果期疏去穗尖和副穗，疏果至單穗果粒80 粒左右。田間水肥和病蟲害防治按照常規(guī)管理。

1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)及樣品采集

花后30 d（2021 年6 月20 日）進(jìn)行套袋處理。連續(xù)4 株為1 個(gè)小區(qū)，共設(shè)3 個(gè)小區(qū)，統(tǒng)一選取南面大小一致的果穗進(jìn)行不同顏色果袋（紅色、黃色、藍(lán)色、綠色和白色）套袋，以不套袋為對(duì)照，果袋下端開口以保證各顏色果袋內(nèi)溫、濕度與環(huán)境基本一致。每種顏色果袋每小區(qū)隨機(jī)套6 穗，3 次重復(fù)，共18 個(gè)果穗。果實(shí)采收期（2021 年8 月12 日）統(tǒng)一帶袋采收，從每小區(qū)果穗的上、中、下部位隨機(jī)取樣，每穗取15粒，共90粒，混勻平均分成3份，2份用于常規(guī)理化指標(biāo)測(cè)定，另外1 份用手術(shù)刀片剝?nèi)」ぃ旱賰龊蟠嬗?80 ℃冰箱中，供花色苷單體測(cè)定。3 次重復(fù)。

1.3 測(cè)定指標(biāo)及方法

1.3.1 果袋內(nèi)光譜測(cè)定 使用UniSpec-SC 單通道便攜式光譜測(cè)定儀（PP SYSTEMS，USA）測(cè)定不同顏色果袋內(nèi)的透射光譜，測(cè)定時(shí)間為上午11：30。

1.3.2 果實(shí)品質(zhì)指標(biāo)測(cè)定 果穗質(zhì)量、果粒質(zhì)量采用百分之一的電子天平稱量；果粒縱徑、橫徑及果柄粗度、果刷長(zhǎng)度采用游標(biāo)卡尺測(cè)量；果實(shí)耐壓力采用GY-4 型數(shù)顯果實(shí)硬度計(jì)（托普儀器，中國(guó)浙江）測(cè)定；果柄耐拉力采用NK-50 型數(shù)顯推拉力計(jì)（Algol儀器，中國(guó)臺(tái)灣）測(cè)定；用CR-400 手持色差計(jì)（KonicaMinolta，日本）測(cè)定每個(gè)果實(shí)赤道部位的色澤指標(biāo)L*（亮度）、a*（紅綠色差）、b*（黃藍(lán)色差）。計(jì)算出色澤飽和度（chroma，C*）、色調(diào)角（hue angle，h°）和葡萄果實(shí)色澤指數(shù)（color index of red grape，CIRG），其中C* =[a*2 + b*2]1/2，h° =arctangent（b*/a*），CIRG=（180–h°）（/ L*+C*），果實(shí)外觀色澤的標(biāo)準(zhǔn)為CIRG＜2 為黃綠，2≤CIRG＜4 為粉紅，4≤CIRG＜5 為紅色，5≤CIRG＜6 為深紅，CIRG≥6 為藍(lán)黑色[16]。以上果粒相關(guān)指標(biāo)均讀取30 個(gè)數(shù)據(jù)。

新鮮葡萄榨汁，采用PAL-1 型手持?jǐn)?shù)顯折射儀（Atago，Tokyo，Japan）測(cè)定可溶性固形物（total solublesolid，TSS）含量；可滴定酸（titratable acidity，TA）含量采用0.05 mol·L-1 NaOH滴定法[17]測(cè)定；維生素C含量采用鉬藍(lán)比色法[18]測(cè)定。以上指標(biāo)每個(gè)樣品平行測(cè)定3 次。固酸比（TSS/TA）為可溶性固形物與可滴定酸含量的比值。

1.3.3 花色苷單體測(cè)定 樣品前處理。果皮液氮速凍后真空冷凍干燥，利用球磨儀研磨（30 Hz，1.5 min）至粉末狀，稱取50 mg的粉末溶解于500 μL 提取液[50%（φ，后同）的甲醇水溶液，含0.1%鹽酸]中，渦旋10 min，超聲10 min，離心（轉(zhuǎn)速12 000 r · min-1，30 min），吸取上清液，重復(fù)操作1 次，合并2 次上清液，用微孔濾膜（0.22 μm pore size）過(guò)濾樣品，并保存于進(jìn)樣瓶中，用于超高效液相色譜（ultra performanceliqiud chromatography，UPLC）和串聯(lián)質(zhì)譜（tandem mass spectrometry，MS/MS）分析。

色譜條件。色譜柱：ACQUITYBEH C18 1.7 μm，2.1 mm×100 mm；流動(dòng)相：A相為超純水（加入0.1%甲酸），B 相為甲醇（加入0.1%甲酸）；洗脫梯度：0.00 min B 相比例為5% ，6.00 min 增至50% ，12.00 min 增至95%，保持2.00 min，14.00 min 降至5%，并平衡2 min；流速0.35 mL· min-1；柱溫40 ℃；進(jìn)樣量2 μL。

質(zhì)譜條件。電噴霧離子源（electospray Ionization，ESI）溫度550 ℃ ，正離子模式下質(zhì)譜電壓5500 V，氣簾氣（curtain gas，CUR）35 psi。在QTrap6500+中，每個(gè)離子對(duì)是根據(jù)優(yōu)化的去簇電壓（declustering potential，DP）和碰撞能（collision energy，CE）進(jìn)行掃描檢測(cè)。

數(shù)據(jù)分析?；跇?biāo)準(zhǔn)品構(gòu)建MWDB（metwaredatabase）數(shù)據(jù)庫(kù)，對(duì)質(zhì)譜檢測(cè)的數(shù)據(jù)進(jìn)行定性分析；利用三重四級(jí)桿質(zhì)譜的多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式（multiplereaction monitoring，MRM）完成定量分析；利用軟件Analyst 1.6.3 處理質(zhì)譜數(shù)據(jù)。

1.4 數(shù)據(jù)處理

用Microsoft Excel 2007 軟件整理數(shù)據(jù)及繪制光譜分布特征圖，用Origin 8.0 軟件繪制相關(guān)性熱圖；用SPSS 25.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析，單因素方差分析（ANOVA）采用Duncans 法，差異顯著性定義為p＜0.05。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同顏色果袋內(nèi)光譜特征

不同顏色果袋內(nèi)及對(duì)照光譜分布存在明顯差異，果袋均不同程度降低了各波段輻射強(qiáng)度。相比對(duì)照，果袋對(duì)700～930 nm 波段輻射強(qiáng)度降幅最大，白袋、紅袋和黃袋主、次峰值波長(zhǎng)與對(duì)照基本一致，藍(lán)袋和綠袋次峰不明顯，綠袋主峰值波長(zhǎng)出現(xiàn)明顯偏移，主峰值（輻射強(qiáng)度）大小順序?yàn)閷?duì)照＞白袋＞紅袋＞黃袋＞藍(lán)袋＞綠袋（圖1）。

不同顏色果袋內(nèi)總輻射及透光率相比對(duì)照均明顯降低，大小順序均為對(duì)照＞白袋＞紅袋＞黃袋＞藍(lán)袋＞綠袋，且不同顏色果袋內(nèi)各波段光輻射強(qiáng)度較對(duì)照均降低，紅光、紅外光降幅最大，降幅均在50%以上。各顏色果袋紫外光輻射強(qiáng)度差異不大，藍(lán)袋和白袋紫光、藍(lán)光輻射強(qiáng)度大于其他果袋，黃袋和白袋綠光輻射強(qiáng)度大于其他果袋，藍(lán)袋和綠袋橙光、紅光輻射強(qiáng)度小于其他果袋，綠袋紅外光輻射強(qiáng)度最小。5 種顏色果袋均增大了紫外光、紫光、藍(lán)光和橙光的比例，其中綠袋和藍(lán)袋紫外光、紫光、藍(lán)光增幅均較大，綠袋橙光增幅最大；紅袋降低了綠光比例，綠袋則增大了綠光比例；藍(lán)袋和綠袋大幅降低了紅光比例，僅為19.75%和13.99%，提高了紅外光的比例。不同顏色果袋均降低了藍(lán)光/紫外光值、紅光/藍(lán)光值和紅光/紅外光值，藍(lán)袋和白袋藍(lán)光/紫外光值較大，藍(lán)袋和綠袋紅光/藍(lán)光值和紅光/紅外光值較小（表1～表2）?？梢?，不同顏色果袋內(nèi)光照度和光質(zhì)分布有較大差異，果袋均不同程度降低了袋內(nèi)總輻射，藍(lán)袋和綠袋對(duì)橙光、紅光和紅外光透過(guò)性較差，大幅降低了紅光的比例。

2.2 不同顏色果袋對(duì)新郁葡萄果實(shí)品質(zhì)的影響

2.2.1 果穗、果粒性狀 綠袋果粒質(zhì)量及縱、橫徑最小，顯著小于其他顏色果袋及對(duì)照，其果粒質(zhì)量比對(duì)照（13.92 g）減小15.59%，且果穗質(zhì)量顯著小于紅袋和藍(lán)袋；黃袋果粒縱徑顯著小于對(duì)照，降幅3.61%；果形指數(shù)以黃袋和綠袋最小，顯著小于其他顏色果袋及對(duì)照。不同顏色果袋及對(duì)照的葡萄果柄直徑無(wú)明顯差異，綠袋果刷長(zhǎng)度顯著大于白袋（表3）。可見，綠袋減小新郁果粒質(zhì)量及果形指數(shù)，略增大了果刷長(zhǎng)度，黃袋減小了果形指數(shù)，白袋略減小了果刷長(zhǎng)度。

2.2.2 果實(shí)理化指標(biāo) 白袋相比對(duì)照果柄耐拉力顯著減小，降幅22.37%，黃袋、紅袋和白袋相比對(duì)照果實(shí)耐壓力顯著減小，降幅分別為21.07%、9.92%和9.92%。不同顏色果袋果實(shí)可溶性固形物含量較對(duì)照均顯著減少，以藍(lán)袋和綠袋最少，較對(duì)照分別減少19.25%和19.06%；黃袋、紅袋和白袋較對(duì)照分別減少13.80%、11.53%和9.79%。綠袋可滴定酸含量相比對(duì)照顯著升高，升幅13.95%，其他顏色果袋與對(duì)照差異均不顯著。白袋固酸比與對(duì)照差異不顯著，其他顏色果袋固酸比均顯著小于對(duì)照，以綠袋和藍(lán)袋最小，相比對(duì)照降幅29.55%和23.54%，紅袋和黃袋降幅16.21%和13.79%。綠袋相比對(duì)照維生素C含量顯著升高，而紅袋則顯著降低，其他顏色果袋與對(duì)照差異均不顯著（表4）。可見，白袋對(duì)新郁葡萄理化指標(biāo)的影響最小，其次是紅袋和黃袋，藍(lán)袋和綠袋對(duì)新郁葡萄內(nèi)在品質(zhì)產(chǎn)生了較大的負(fù)面影響。

2.2.3 果實(shí)色澤 L*代表色澤的亮度，不同顏色果袋均顯著增大了新郁葡萄L*值，增大了葡萄亮度，其中綠袋最大，其次是藍(lán)袋，白袋與對(duì)照L*值差異最小，亮度最接近。a*值代表紅綠色差，5 種顏色果袋的a*值顯著大于對(duì)照，且紅袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋的a*值顯著大于白袋和對(duì)照，說(shuō)明這4 種果袋的葡萄紅色調(diào)較深，而白袋和對(duì)照紅色較淺。b*值代表黃藍(lán)色差，b*為負(fù)值時(shí)表示藍(lán)色，數(shù)值越小表示藍(lán)色越深，表明葡萄著色越深，白袋和對(duì)照b*值最小，顯著小于其他果袋，表明二者著色最深，綠袋和藍(lán)袋b*為正值，表明二者著色最淺。C*代表色澤飽和度（彩度），對(duì)照C*值最小，飽和度最小，其次是白袋，其他顏色果袋葡萄具有較高的飽和度，說(shuō)明套袋后的果實(shí)更加鮮艷。對(duì)照CIRG值顯著大于不同顏色果袋，葡萄著色過(guò)深，白袋CIRG＞6，葡萄也存在著色過(guò)深現(xiàn)象，綠袋葡萄為粉紅色，藍(lán)袋、紅袋和黃袋葡萄為紅色，但紅袋和黃袋CIRG值顯著大于藍(lán)袋，著色最好（表5）。可見，白袋存在著色過(guò)深的問(wèn)題，而藍(lán)袋和綠袋著色不良，從色澤指標(biāo)上看，紅袋和黃袋著色最好。

2.3 不同顏色果袋對(duì)新郁葡萄果皮花色苷組成的影響

2.3.1 果皮花色苷組分及含量 白袋和對(duì)照樣品均檢測(cè)到27 種花色苷，紅袋檢測(cè)到25 種花色苷（未檢測(cè)到花翠素-3-O-鼠李糖苷和甲基花翠素-3-O-阿拉伯糖苷），黃袋檢測(cè)到25 種花色苷（未檢測(cè)到二甲花翠素-3-O-（6”-乙?；咸烟擒眨?5-葡萄糖苷和甲基花翠素-3-O-阿拉伯糖苷），藍(lán)袋檢測(cè)到24 種花色苷[未檢測(cè)到花翠素-3-O-鼠李糖苷、二甲花翠素-3-O-（6”-乙?；咸烟擒眨?5-葡萄糖苷和甲基花翠素-3-O-阿拉伯糖苷]，綠袋檢測(cè)到23 種花色苷[未檢測(cè)到花翠素-3-O-鼠李糖苷、二甲花翠素-3-O-（6”-乙?；咸烟擒眨?5-葡萄糖苷、二甲花翠素-3-O-（6-O-丙二酰- β-D-葡萄糖苷）和甲基花翠素-3-O-阿拉伯糖苷]。不同顏色果袋及對(duì)照新郁葡萄果皮含量較大的花色苷均為二甲花翠素-3-O-葡萄糖苷、甲基花青素-3-O-葡萄糖苷、花青素-3-O-葡萄糖苷、花翠素-3-O-葡萄糖苷、花青素-3-（6-O-p-對(duì)香豆酰）-葡萄糖苷、甲基花青素-3-（6-O-p-對(duì)香豆酰）-葡萄糖苷、甲基花翠素-3-O-葡萄糖苷等7 種。其中，含量最大的二甲花翠素-3-O-葡萄糖苷以對(duì)照和白袋最大，顯著大于其他顏色果袋，且二者無(wú)顯著差異，紅袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋相比對(duì)照分別降低56.03%、73.07%、75.46%和89.22%；含量較大的甲基花青素-3-O-葡萄糖苷以對(duì)照最大，其次是紅袋，白袋次之，紅袋、白袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋較對(duì)照分別降低15.74%、21.14%、40.74%、48.46%和55.78%；其他5 種含量較大的花色苷基本呈對(duì)照＞白袋＞紅袋＞黃袋＞藍(lán)袋＞綠袋的趨勢(shì)；總花色苷含量大小順序?yàn)閷?duì)照＞白袋＞紅袋＞黃袋=藍(lán)袋＞綠袋，白袋、紅袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋總花色苷含量較對(duì)照分別降低16.49%、46.96%、64.27%、68.59%和79.05%（表6）?？梢?，套袋均不同程度降低了新郁葡萄果皮中總花色苷及各主要花色苷單體含量，同時(shí)也減少了花色苷單體種類。白袋影響相對(duì)較小，綠袋影響最大，而黃袋和藍(lán)袋的影響效果較一致。

2.3.2 各類花色苷組成比例 成熟新郁葡萄果皮中主要包括二甲基花翠素類、甲基花青素類、花青素類、花翠素類和甲基花翠素類花色苷，花葵素類花色苷含量極少。除白袋與對(duì)照二甲基花翠素類花色苷含量無(wú)顯著差異外，套袋均不同程度降低了各類型花色苷含量，不同果袋各類型花色苷含量大小順序整體呈對(duì)照＞白袋＞紅袋＞黃袋＞藍(lán)袋＞綠袋的趨勢(shì)。紅袋、黃袋和藍(lán)袋間花青素類花色苷和花翠素類花色苷含量差異均較小，未表現(xiàn)出明顯差異；黃袋和藍(lán)袋間甲基花翠素類花色苷、二甲基花翠素類花色苷和花葵素類花色苷含量差異均較小，未表現(xiàn)出明顯差異；藍(lán)袋和綠袋間花青素類花色苷、花翠素類花色苷及花葵素類花色苷差異均較小，未表現(xiàn)出明顯差異，說(shuō)明不同顏色果袋對(duì)某些類型花色苷含量的影響結(jié)果一致。白袋、紅袋、黃袋和藍(lán)袋相比對(duì)照均降低了花青素類花色苷的比例，以白袋和紅袋降幅最大，分別降低5.10%和4.66%，而綠袋花青素類花色苷比例則提高了3.39%；白袋相比對(duì)照甲基花青素類花色苷比例降低2.40%，其他顏色果袋則提高12.80%～26.01%；不同顏色果袋相比對(duì)照花翠素類花色苷比例降低了0.37%～3.88%；白袋相比對(duì)照甲基花翠素類花色苷比例提高0.05%，其他顏色果袋則降低0.86%～2.75%；白袋相比對(duì)照二甲基花翠素類花色苷比例提高7.83%，其他顏色果袋則降低5.56%～23.36%；白袋比相比對(duì)照花葵素類花色苷比例降低0.02%，其他顏色果袋則提高0.05%～0.11%（表7）。除白袋3， 5-羥基取代類花色苷含量與對(duì)照未表現(xiàn)出明顯差異外，套袋相比對(duì)照均顯著降低了3-羥基取代類和3， 5-羥基取代類花色苷含量，藍(lán)袋和綠袋的3-羥基取代類花色苷含量之間無(wú)顯著差異，黃袋與藍(lán)袋的3， 5-羥基取代類花色苷含量之間無(wú)顯著差異，說(shuō)明不同顏色果袋對(duì)某些類型花色苷含量的影響結(jié)果一致。白袋相比對(duì)照3-羥基取代類花色苷比例降低了7.49%，而3， 5-羥基取代類花色苷比例提高7.25%；紅袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋3-羥基取代類花色苷比例分別提高8.15%、14.13%、12.99%和29.41%，而3， 5-羥基取代類花色苷比例分別降低8.25% 、14.17% 、13.03% 和29.47%。可見，套袋不僅改變了新郁葡萄果皮中各類型花色苷含量，還會(huì)改變各類型花色苷比例。白袋能夠提高花翠素類（3， 5-羥基取代）花色苷比例，降低花青素類（3-羥基取代）及花葵素類花色苷比例；其他顏色果袋則會(huì)提高花青素類（3-羥基取代）及花葵素類花色苷比例，降低花翠素類（3， 5-羥基取代）花色苷比例。白袋及對(duì)照總花色苷含量高及花翠素類（3， 5-羥基取代）花色苷比例大是引起新郁葡萄著色過(guò)深的主要原因。

如表8 所示，白袋?；揎椈ㄉ蘸颗c對(duì)照未表現(xiàn)出明顯差異，紅袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋均顯著降低?；揎楊愋突ㄉ蘸?，且4 種顏色果袋間差異均未達(dá)顯著水平，紅袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋?；揎楊惢ㄉ毡壤啾葘?duì)照分別降低3.88%、1.66%、2.64%和1.64%；套袋相比對(duì)照顯著降低甲基化修飾類型花色苷含量，大小順序?yàn)閷?duì)照＞白袋＞紅袋＞黃袋=藍(lán)袋＞綠袋，白袋、紅袋、黃袋和藍(lán)袋甲基化修飾花色苷比例相比對(duì)照提高5.47%、6.31%、2.57%和3.06%，綠袋則與對(duì)照差異不大；白袋與對(duì)照總修飾類花色苷含量無(wú)顯著差異，其他果袋均顯著降低總修飾類花色苷含量，整體呈紅袋＞黃袋＞藍(lán)袋＞綠袋的趨勢(shì)，藍(lán)袋與對(duì)照總修飾類花色苷比例差異不大，綠袋則降低1.71%，白袋、紅袋和黃袋則分別提高5.17%、2.44%和0.92%?？梢?，白袋對(duì)新郁葡萄果皮中酰化、總修飾類花色苷含量無(wú)明顯影響，但會(huì)降低甲基化修飾類花色苷含量，而紅袋、黃袋、藍(lán)袋和綠袋均會(huì)顯著降低酰化及甲基化花色苷含量。5 種顏色果袋均降低了?；揎楊惢ㄉ毡壤?，白袋、紅袋、黃袋和藍(lán)袋提高了甲基化修飾花色苷比例；綠袋降低了總修飾類花色苷比例，白袋、紅袋和黃袋則提高了總修飾類花色苷比例。

2.4 基于光環(huán)境指標(biāo)和色澤指標(biāo)的相關(guān)性分析

光環(huán)境指標(biāo)與果實(shí)色澤指標(biāo)L*、a*、b*、C*值之間基本呈負(fù)相關(guān)，而與果實(shí)色澤指標(biāo)CIRG值、果皮各類型花色苷含量、總花色苷含量之間呈正相關(guān)。L*值與紅光/藍(lán)光值、紅光/紅外光值呈極顯著負(fù)相關(guān)，a*值與綠光輻射強(qiáng)度呈極顯著負(fù)相關(guān)，b*值與紅光/紅外光值呈極顯著負(fù)相關(guān)，C*值與綠光、橙光、紅光輻射強(qiáng)度及總輻射呈極顯著負(fù)相關(guān)。CIRG值與橙光、紅光、紅外光輻射強(qiáng)度及總輻射呈極顯著正相關(guān)；花青素類花色苷含量與綠光輻射強(qiáng)度和總輻射呈極其顯著正相關(guān)，與紫外光、紫光、藍(lán)光、橙光、紅光、紅外光輻射強(qiáng)度及藍(lán)光/紫外光值呈極顯著正相關(guān)；甲基花青素類花色苷含量與橙光、紅光輻射強(qiáng)度及紅光/藍(lán)光值呈極顯著正相關(guān)；花葵素類花色苷含量與橙光呈極顯著正相關(guān)；3-羥基取代類花色苷含量與橙光、紅光輻射強(qiáng)度呈極其顯著正相關(guān)，與綠光、紅外光輻射強(qiáng)度及總輻射呈極顯著正相關(guān)（圖2）。可見，隨著總輻射及各波段光輻射強(qiáng)度的增強(qiáng)，果實(shí)色澤指標(biāo)L*、a*、b*、C*值均減小，而色澤指標(biāo)CIRG值及各類型花色苷含量均增高，果實(shí)著色加深；綠光輻射強(qiáng)度和總輻射的增大會(huì)使花青素類花色苷含量極其顯著增高，橙光和紅光輻射強(qiáng)度的增大會(huì)導(dǎo)致3-羥基取代類花色苷含量的極其顯著增高，3-羥基取代類花色苷含量的增加有利于葡萄著色向紅色發(fā)展。

3 討論

3.1 光環(huán)境對(duì)新郁葡萄果實(shí)發(fā)育及品質(zhì)的影響

光照是影響植物生長(zhǎng)和果實(shí)品質(zhì)形成的重要因子之一。不同的光照度、光質(zhì)量和光周期均會(huì)影響植物的生長(zhǎng)和生理代謝[19]。研究表明，較短波長(zhǎng)的藍(lán)光（420～490 nm）、UV- A（315～400 nm）、UV- B（280～315 nm）和UV-C（200～280 nm）可以通過(guò)上調(diào)類黃酮途徑基因的表達(dá)來(lái)促進(jìn)果實(shí)中類黃酮積累[20-21]，而更長(zhǎng)波長(zhǎng)的紅光（600～700 nm）和遠(yuǎn)紅光（700～800 nm）則會(huì)提高水果中可溶性固形物含量[22]。不同顏色果袋改變了果實(shí)生長(zhǎng)發(fā)育的光環(huán)境（光照度和光質(zhì)），進(jìn)而影響果實(shí)品質(zhì)。Pisciotta 等[23]研究認(rèn)為套袋能夠增大皇家秋天（Autumn Royal）和帝王無(wú)核（Regal Seedless）葡萄果穗和果粒質(zhì)量，但對(duì)意大利（Italia）葡萄果粒質(zhì)量無(wú)顯著影響，套袋后無(wú)核葡萄果實(shí)硬度增大，有核葡萄果實(shí)硬度減小且成熟延遲。Zha 等[9]研究認(rèn)為套袋能夠降低成熟期申華和申豐葡萄葡萄糖及果糖的積累，造成果實(shí)成熟延遲。本研究中，綠袋果粒質(zhì)量相比對(duì)照顯著減小，這可能與綠袋透光率較低，受到較強(qiáng)的弱光脅迫導(dǎo)致向果實(shí)運(yùn)輸養(yǎng)分減少，果實(shí)碳同化物積累減少有關(guān)[24-25]。Zhang 等[10]研究認(rèn)為紅光能夠通過(guò)上調(diào)光合作用、固碳等途徑基因，促進(jìn)葡萄果實(shí)可溶性固形物含量的增加。程建徽等[26]認(rèn)為藍(lán)色濾光膜套袋可以增加藍(lán)紫光的比例，調(diào)控葡萄光合產(chǎn)物分配，誘導(dǎo)苯丙氨酸解氨酶活性，促進(jìn)歐亞種紅地球葡萄果實(shí)糖的積累和著色。本研究中，不同顏色果袋均不同程度降低了袋內(nèi)總輻射及透光率，且葡萄可溶性固形物含量隨總輻射及透光率的降低而減少，藍(lán)袋相比其他果袋藍(lán)紫光的增幅遠(yuǎn)小于紅光的降幅，所以總輻射和紅光強(qiáng)度的降低是造成藍(lán)袋和綠袋可溶性固形物含量降低的主要原因，這與前人在蘋果[27]、葡萄[9，15，28]上的研究認(rèn)為套袋造成的弱光或光抑制會(huì)延遲果實(shí)成熟的結(jié)論相一致。

3.2 新郁葡萄果皮花色苷組成

果皮顏色是葡萄重要的經(jīng)濟(jì)性狀，由果皮花色苷的組成和濃度決定[29]。一般認(rèn)為歐亞種葡萄花色苷主要為花青素類、甲基花青素類、花翠素類、甲基花翠素類、二甲基花翠素類等5 大類，一般不含花葵素類花色苷[30]，且歐亞種葡萄中由于5GT基因發(fā)生了2 個(gè)位點(diǎn)的突變，導(dǎo)致其不能合成雙糖苷化的花色苷[31]。但近年研究發(fā)現(xiàn)，歐亞種葡萄赤霞珠、黑比諾和煙73 能夠檢測(cè)到痕量的花葵素類花色苷[32]；美樂(lè)、西拉、桑嬌維塞、黑比諾、赤霞珠和品麗珠等歐亞種葡萄均能檢測(cè)到二甲花翠素-3，5-O-二葡萄糖苷[33]。Xing 等[34]通過(guò)質(zhì)譜和酶學(xué)手段進(jìn)一步證實(shí)了歐亞種葡萄赤霞珠中花青素3，5-O-二葡萄糖苷的存在，并推測(cè)一種新的基因Vv5GT3 可能對(duì)花青素和黃酮醇的3-O和5-O位置進(jìn)行了糖基化形成雙糖苷的花色苷。筆者本研究的歐亞種新郁葡萄果皮中共檢測(cè)到了27 種花色苷，主要包括花青素類、甲基花青素類、花翠素類、甲基花翠素類、二甲基花翠素類等5 大類花色苷，還包括低含量的2 種花葵素類花色苷及3 種雙糖苷花色苷，這與上述研究結(jié)果[32- 34]一致。其中，含量較高的為二甲基花翠素類花色苷和甲基花青素類花色苷，這與Liang 等[35]認(rèn)為甲基花青素及其衍生物和二甲基花翠素-3-O-葡萄糖苷是歐亞種葡萄主要花色苷的研究結(jié)論一致。

3.3 光環(huán)境對(duì)新郁葡萄花色苷的影響

光可以調(diào)節(jié)與花青素合成相關(guān)的結(jié)構(gòu)基因和調(diào)節(jié)基因的表達(dá)，從而調(diào)控花色苷的積累[11，36-37]。多項(xiàng)研究證實(shí)，光照可以增加葡萄果皮花色苷濃度，弱光或者光抑制可以顯著減少葡萄漿果中花色苷的積累[27，38-39]；光照度的改變還可以引起葡萄花色苷組分的改變，如遮陰后的黑比諾葡萄甲基花青素類花色苷比例會(huì)顯著增高，而花翠素、甲基花翠素及二甲基花翠素類花色苷比例則顯著降低[40]；佳美（Gamay）和福優(yōu)佳美（Gamay Freáux）葡萄在進(jìn)行光抑制處理后二羥基化和三羥基化花青素的比例增大[12]；在絕對(duì)的遮光條件下馬瑟蘭葡萄不能合成光誘導(dǎo)型花色苷Malvidin-3-O-coumaroylglucoside（trans）[41]。本研究中套袋造成的光抑制均不同程度降低了新郁葡萄果皮中大部分類型花色苷及總花色苷的含量，且紅、黃、藍(lán)、綠4 種顏色果袋提高了花青素類（3-羥基取代）花色苷比例，降低了花翠素類（3， 5-羥基取代）花色苷比例，這與前人研究結(jié)論基本一致。

不同類型光質(zhì)也會(huì)引起葡萄花色苷含量及組分的變化，多項(xiàng)研究表明，紫外光、藍(lán)光和紅光均會(huì)增加葡萄花色苷含量[42- 43]，且藍(lán)光效果比紅光更有效[44]。Kondo 等[36]研究認(rèn)為夜間LED藍(lán)光補(bǔ)光能夠促進(jìn)巨峰葡萄二甲基花翠素類花色苷含量的增加，且補(bǔ)藍(lán)光和紅光均能提高二甲基花翠素花色苷比例，降低甲基花青素類花色苷比例。本研究中5 種顏色果袋均提高了紫外光、紫光和藍(lán)光比例，降低了紅光比例，且以綠袋和藍(lán)袋變化最大，紅光/藍(lán)光值最小。紅、黃、藍(lán)和綠袋紫外光、藍(lán)光比例增大，促進(jìn)二甲基花翠素類花色苷比例增大，但紅光輻射強(qiáng)度及比例的大幅度降低則會(huì)導(dǎo)致二甲基花翠素類花色苷含量及比例大幅度減小，最終導(dǎo)致花翠素類（3，5-羥基取代）花色苷比例降低，花青素類（3-羥基取代）花色苷比例提高；白袋紫外光、藍(lán)光比例的提高促進(jìn)了二甲基花翠素類花色苷比例的提高，而紅光比例變化不大，導(dǎo)致花翠素類（3， 5-羥基取代）花色苷比例提高，花青素類（3-羥基取代）花色苷比例降低?？梢姡咸压せㄉ战M成受光照度及光質(zhì)組成等多因素調(diào)控。

相關(guān)性分析還發(fā)現(xiàn)橙光和紅光輻射強(qiáng)度與花青素類（3-羥基取代）花色苷含量呈極顯著正相關(guān)，可能原因是橙光和紅光可以通過(guò)影響光響應(yīng)因子VvHY5 和VvCOP1 來(lái)促進(jìn)葡萄中F3H基因上調(diào)表達(dá)，進(jìn)而合成更多的花青素類（3-羥基取代）花色苷[45-46]，具體影響機(jī)制還有待從分子水平進(jìn)行深入研究。Tarara等[47]研究認(rèn)為，直接暴露在太陽(yáng)輻射下的美樂(lè)葡萄酰化花色苷濃度和比例會(huì)降低，在高溫條件下花色苷會(huì)轉(zhuǎn)向?；詰?yīng)對(duì)高溫脅迫，導(dǎo)致?；ㄉ毡壤?。Zhang 等[10]研究認(rèn)為采用LED進(jìn)行補(bǔ)光，藍(lán)光、紅光和綠光相比白光乙酰化花色苷種類減少。此外，花色苷乙?；⒓谆揭矔?huì)隨著UV-B輻射的增加而增加[48-49]。本研究中黃、藍(lán)和綠袋乙?；ㄉ辗N類相比對(duì)照減少，且5 種顏色果袋均降低了?；ㄉ毡壤梢?，吐魯番地區(qū)高溫氣候條件下高光照輻射可積累更多酰化花色苷。

研究中白、紅、黃和藍(lán)袋提高了甲基化修飾花色苷比例，綠袋降低了總修飾類花色苷比例，這一結(jié)果與光照度和光質(zhì)（紅光比例減小、紫外光比例增大）的改變有關(guān)，花色苷的修飾受到溫度、光照、水分、糖含量和內(nèi)源ABA 含量等內(nèi)外因素復(fù)雜的相互作用控制[50]。二羥基化花青素呈鮮紅色，而三羥基化花青素則呈深藍(lán)色和紫色[51]；甲基化程度的增加，紅色色調(diào)會(huì)得到增強(qiáng)[52]；花色苷酰化程度的增加，顏色的穩(wěn)定性會(huì)得到提高，且顏色逐漸呈現(xiàn)藍(lán)色[53]。采用紅袋套袋的新郁葡萄果皮甲基化、花青素類（3-羥基取代）花色苷比例增高，?；揎楊惢ㄉ毡壤翱偦ㄉ蘸拷档停行Ы鉀Q了產(chǎn)區(qū)新郁葡萄著色過(guò)深問(wèn)題，果實(shí)色澤鮮紅。

4 結(jié)論

新疆吐魯番地區(qū)高溫強(qiáng)光照條件下，不同顏色果袋套袋的新郁葡萄果際光環(huán)境和果實(shí)品質(zhì)及果皮花色苷組分存在明顯差異，果袋均不同程度降低了果際總輻射和果實(shí)中可溶性固形物含量及果皮中總花色苷含量。采用紅袋套袋的新郁葡萄果皮具有適度的總花色苷含量，有效解決了新郁葡萄著色過(guò)深問(wèn)題，果皮色澤鮮紅，內(nèi)在品質(zhì)較優(yōu)。綜合而言，西北干旱區(qū)新郁葡萄宜采用紅色果袋進(jìn)行套袋。

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