施生玲 ,郭星晨 ,馬金璞 ,楊雪妍 ,宋禮,高丹丹
1.西北民族大學生命科學與工程學院(蘭州 730124);2.西北民族大學生物醫(yī)學研究中心,中國-馬來西亞國家聯(lián)合實驗室(蘭州 730030)
γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)又稱哌叮酸[1],是一種天然的非蛋白質氨基酸,具有改善糖尿病、降血壓、免疫調節(jié)、舒緩疲勞、改善睡眠和癲癇等[2-4]多種功能,被廣泛用于醫(yī)藥、食品等領域。GABA可通過微生物發(fā)酵法制備,該方法具有發(fā)酵產量的優(yōu)勢。有研究發(fā)現,乳酸菌具有產GABA的能力,主要包括短乳桿菌(Lactobacillus brevis)[5]、植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)[6]、布氏乳桿菌(Lactobacillus brucei)[7]、副干酪乳桿菌(Lactobacillus paracasei)[8]等。由于乳酸菌獨特的益生特性和安全性,采用乳酸菌生產GABA成為當前研究熱點,不僅具有極大的市場應用前景,還具有很高的學術研究價值。
試驗從甘肅本地牧民家中自制牦牛酸奶篩選出產GABA的乳酸菌,通過對比不同接種量、碳源、氮源、pH和發(fā)酵時間,探究乳酸菌產GABA的最佳條件,利用Box-Behnken響應面分析法優(yōu)化乳酸菌產GABA的發(fā)酵工藝條件,分析發(fā)酵產物的抗氧化活性,為產GABA乳酸菌功能性產品的開發(fā)提供一定基礎。
酸奶(甘肅省甘南藏族自治州牧民自制牦牛酸奶);DPPH、γ-氨基丁酸(色譜純,美國Sigma公司);L-谷氨酸鈉(L-Glu,BR,索萊寶化學試劑有限公司);其余試劑均為國產分析純試劑。
ZWYR-2401恒溫培養(yǎng)振蕩器(上海智城分析儀器制造有限公司);L3S可見分光光度計(上海元析儀器有限公司);SG2-FK便攜式pH計(上海梅特勒-托利多儀器有限公司);GNP-9050恒溫培養(yǎng)箱(湖南波儀爾科技有限公司)。
1.3.1 產GABA乳酸菌的篩選鑒定
1.3.1.1 乳酸菌菌株的篩選
將適量酸奶接種于MRS液體培養(yǎng)基,于37 ℃進行擴大培養(yǎng)24 h,將菌液進行10倍梯度稀釋至10-3~10-8,在MRS固體培養(yǎng)基上進行涂布法接種,接種量為100 μL,于37 ℃培養(yǎng)48 h。挑取有溶解圈的菌落,在固體培養(yǎng)基上進行劃線接種,直至產生單一菌落,將菌株于4 ℃條件儲存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.1.2 乳酸菌菌株的鑒定
將純化的1.3.1所述的菌落形態(tài)的產GABA的菌株按照革蘭染色試劑盒說明書進行染色,用光學顯微鏡觀察其細胞特征。
1.3.1.3 培養(yǎng)液產GABA的定性和定量的分析
采用紙層析法定性測定GABA。參考萬玉蓮[9]方法操作并加以修改,展開劑為正丁醇-冰醋酸-水4∶1∶3(V/V),其中加入0.4%的茚三酮[10]。采用Berthelot比色法定量分析GABA[11]。
1.3.2 產GABA乳酸菌發(fā)酵工藝優(yōu)化
1.3.2.1 單因素試驗設計
以MRS液體發(fā)酵培養(yǎng)基(含L-谷氨酸鈉)為基礎,以GABA產量為指標,考察不同接種量(1.5%,2.0%,2.5%,3.0%和3.5%)、不同碳源(可溶性淀粉,麥芽糖,乳糖,葡萄糖和蔗糖)、不同pH(4.5,5.0,5.5,6.0和6.5)、不同時間(24,36,48,60和72 h)對乳酸菌GABA產量的影響。每組試驗重復3次,最終結果取平均值。
1.3.2.2 響應面試驗設計
綜合單因素試驗結果,以GABA產量(Y)為響應值,pH(A)、接種量(B)和時間(C)為自變量,設計三因素三水平試驗,運用Box-Behnken進行響應面試驗設計。響應面試驗設計因素和水平見表1。
表1 響應面設計因素水平表
表2 4株菌株菌落形態(tài)描述
1.3.3 GABA抗氧化活性的測定
1.3.3.1 羥自由基清除率測定
參考陳嘉佳等[12]的方法操作并加以修改,羥自由基的清除率按式(1)計算。
式中:P為羥自由基清除率,%;A0為空白組吸光度;A1為試驗組吸光度;A2為對照組吸光度。
1.3.3.2 DPPH自由基清除率的測定
參考陳明[13]的方法操作并加以修改。DPPH自由基清除率按式(1)計算。
1.3.3.3 超氧陰離子自由基清除率測定
參考李丹丹[14]的方法測定超氧陰離子自由基的清除率,按式(2)計算。
式中:P為超氧陰離子自由基清除率,%;A0為空白組吸光度;A1為試驗組吸光度。
1.3.4 數據分析
采用Origin 9.0、Design-Expert 8.0軟件進行數據統(tǒng)計分析,每次試驗重復3次。
2.1.1 乳酸菌菌株的分離純化
將乳酸菌菌株接種在MRS固體培養(yǎng)基37 ℃培養(yǎng)48 h后,培養(yǎng)基中出現明顯的碳酸鈣溶解圈(圖1),挑選單一菌落進行培養(yǎng),菌落形態(tài)如圖1所示,乳酸菌菌落形態(tài)為菌落呈圓形,乳白色不透明,濕潤,邊緣整齊。
圖1 菌株形態(tài)圖
2.1.2 乳酸菌菌株的鑒定
對菌株XBMU436-1、XBMU436-2、XBMU436-3和XBMU436-4進行革蘭染色,革蘭染色結果呈現藍色,均為革蘭陽性菌,菌株呈短桿狀,如圖2所示。
圖2 革蘭染色結果圖
2.1.3 培養(yǎng)液產GABA的定性和定量分析
2.1.3.1 層析法定性測定GABA
從圖3可以看出:初篩出的4株菌株XBMU436-1、XBMU436-2、XBMU436-3和XBMU436-4都產有與標準品GABA相同的Rf值,說明4株菌株都產GABA,菌株XBMU436-2顏色最深,說明菌株XBMU436-2產生的GABA含量最高,因此,以菌株XBMU436-2為試驗菌株。
圖3 紙層析法試驗結果圖
2.1.3.2 Berthelot比色法定量分析GABA
試驗采用Berthelot比色法檢測GABA含量,試驗得到線性關系Y=0.742 4X+0.012 8(R2=0.999)。試驗菌株測定結果如圖4所示。菌株XBMU436-2的培養(yǎng)液產的GABA含量最高,其產量為1.80 g/L。
圖4 初篩菌GABA含量測定圖
2.2.1 單因素試驗結果
2.2.1.1 接種量、碳源、pH、發(fā)酵時間對乳酸菌GABA產量的影響
如圖5(a)所示,接種量1.5%~2.5%時,GABA含量呈上升趨勢,接種量2.5%時,GABA含量最高,為3.51 g/L,接種量大于3.0%時,GABA含量開始下降。因此,選用接種量2.5%為菌體生長中的最佳接種量。
圖5 接種量、碳源、pH和發(fā)酵時間對乳酸菌GABA含量的影響
如圖5(b)所示:菌株對不同碳源的利用程度具有一定差異性,測得以葡萄糖為唯一碳源時乳酸菌產GABA最多,為5.44 g/L,即菌株對葡萄糖的利用程度較好,其原因是可溶性淀粉、麥芽糖、乳糖和蔗糖為多糖,多糖為微生物提供能量則需要先分解,而葡萄糖是單糖,單糖與其他麥芽糖等多糖比起來,可直接為微生物提供營養(yǎng)物質。因此,選擇葡萄糖作為菌體生長中的最佳碳源。
如圖5(c)所示:在pH 5.0~6.0時,GABA含量呈上升趨勢,pH 6.0時,GABA含量最高,為3.14 g/L,但超過pH 6.0時,GABA含量開始減少,呈現直線下降趨勢。培養(yǎng)基pH對微生物的影響很大,pH的大小會引起細胞滲透性的變化和各種酶的活性,從而影響微生物的生長和對營養(yǎng)物質的利用程度,使得乳酸菌產GABA的產量不同。因此,選用pH 6.0為菌株生長的最佳pH。
如圖5(d)所示:培養(yǎng)時間為24~48 h時,GABA含量呈現上升趨勢,48 h時,GABA產量最高,為5.19 g/L,60 h以后GABA含量開始呈現下降趨勢,因此,選用48 h為菌體生長中的最佳培養(yǎng)時間。
2.2.2 響應面分析法優(yōu)化發(fā)酵工藝
2.2.2.1 回歸模型的建立和方差分析
在單因素試驗基礎上,選取pH、接種量和時間這3個因素,進行三因素三水平試驗設計,用響應面分析法優(yōu)化發(fā)酵工藝條件,根據中心Box-Behnken組合原理設計17組試驗,其中,5組為重復試驗,結果如表3所示。
表3 Box-Behnken試驗設計與結果
利用軟件Design-Expert 8.0,對表3結果進行一系列回歸分析,對pH、接種量和時間3個單因素進行回歸擬合,得到以GABA產量(A)為響應值的回歸方程:Y=3.91-0.16A+0.38B+0.31C-0.12AB-0.19AC+0.063BC-0.55A2-0.59B2-0.67C2。
回歸方差分析如表4所示。
表4 回歸方差分析和結果
試驗結果如表4所示,顯著性檢驗表明該回歸模型的擬合極顯著(P<0.01),失擬項(P>0.05)不顯著。模型與實際擬合較好(R2=0.968 6,Radj2=0.927 2),表明模型擬合度可靠性強,觀察值與預測值之間的相關性良好,該模型可用于優(yōu)化GABA發(fā)酵培養(yǎng)基。
2.2.2.2 響應面分析及優(yōu)化
圖6是單因素pH、接種量和時間交互作用3D響應面和等高線圖,2個因變量相互作用對GABA產量的影響在3D響應面圖中均表現為光滑的彎曲面,彎曲度越大,證明兩變量之間相互作用越強。如圖6(a)所示,在pH一定時,隨著接種量的增加,培養(yǎng)液中GABA產量先增加后減少,響應曲面彎曲度較小;如圖6(b)所示,pH一定時,隨著培養(yǎng)時間的增加,培養(yǎng)液中GABA產量先增加后減少,響應面曲面彎曲度較?。蝗鐖D6(c)所示,接種量一定時,隨著培養(yǎng)時間的增加,培養(yǎng)液中GABA產量先增加后減少,響應面曲面彎曲度較小。
圖6 pH、時間和接種量交互作用對GABA含量的影響及等高線圖
2.3.1 羥自由基、DPPH自由基、超氧陰離子自由基清除率的測定
如圖7所示:發(fā)酵液質量濃度分別為0.1,0.2,0.3,0.4和0.5 mg/mL時,發(fā)酵液對羥自由基、DPPH、超氧陰離子自由基的清除率逐漸增大,三種自由基的清除率在發(fā)酵液質量濃度為0.5 mg/mL時最大。圖7(a)顯示,菌液對羥自由基清除率為80.64%±0.39%,IC50=0.12 mg/mL,同等條件下,VC的清除率為92.85%±0.30%,IC50=0.03 mg/mL;圖7(b)顯示,菌液對DPPH自由基清除率為57.55%±0.54%,IC50=0.52 mg/mL,同等條件下,VC對超氧陰離子清除率為85.44%±0.34%,IC50=0.10 mg/mL;圖7(c)顯示,菌液對超氧陰離子自由基清除率為83.83%±0.20%,IC50=0.20 mg/mL,同等條件下,VC對自由基的清除率為88.59%±0.15%,IC50=0.14 mg/mL。以VC為標準,GABA對羥自由基、DPPH自由基和超氧陰離子自由基有一定清除能力。
圖7 羥自由基、DPPH自由基、超氧陰離子自由基清除率的測定結果
試驗從牦牛酸奶中篩選出4株產GABA乳酸菌,菌株XBMU436-2產GABA最多,在單因素試驗的基礎上,采用響應面分析法優(yōu)化其工藝發(fā)酵條件,最終確定發(fā)酵培養(yǎng)基培養(yǎng)條件:以葡萄糖為唯一碳源、pH 6.0、接種量2.5%、時間36 h,經過優(yōu)化后GABA產量達4.11 g/L,相比于優(yōu)化前有很大提升,證明響應面分析法可有效優(yōu)化乳酸菌產GABA的工藝條件。通過對培養(yǎng)液抗氧化活性的研究,其培養(yǎng)液對羥自由基、DPPH自由基和超氧陰離子的IC50分別為0.12,0.52和0.20 mg/mL,同等條件下,VC對羥自由基、DPPH自由基、超氧陰離子的IC50為0.03,0.52和0.14 mg/mL,證明培養(yǎng)液具有一定的抗氧化能力。試驗結果為產GABA乳酸菌功能性產品開發(fā)提供一定基礎。