吳丹,楊苗苗,杜小平,祁蒙,楊水云
(1.陜西學(xué)前師范學(xué)院 生命科學(xué)與食品工程學(xué)院,西安 710100;2.安康市富硒產(chǎn)品研發(fā)中心,陜西 安康 725000;3.西安交通大學(xué) 生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,西安 710049)
納豆激酶(NK)是納豆中最具開發(fā)價(jià)值的成分,該酶為枯草蛋白酶類第一個(gè)具有纖溶作用的酶,可以應(yīng)用于臨床的溶栓治療過程中[1]。納豆激酶是一種由納豆芽孢桿菌發(fā)酵產(chǎn)生的堿性胞外絲氨酸蛋白酶,具有良好的溶栓作用[2],可有效預(yù)防或治療心腦血管疾病[3-4]。該酶與目前溶栓藥物如尿激酶(urokinase,UK)和鏈激酶(streptokinase,SK)相比,具有pH廣[5]、溫度耐受性強(qiáng)及溶栓特異性等優(yōu)點(diǎn)[6—7]。
Chandrasekaran等[8]發(fā)酵生產(chǎn)的NK可溶解94%的人工血栓;Janh等[9]研究表明NK在小鼠體內(nèi)有一定的溶栓效果;Hsia等[10]和Yuko等[11]研究證實(shí)口服NK后,NK在體內(nèi)有良好的溶栓效果。NK的優(yōu)勢(shì)在于其對(duì)纖維蛋白,尤其是對(duì)交聯(lián)的纖維蛋白特別敏感,可直接作用于血栓中的纖維蛋白,將其溶解為小肽和氨基酸[12—13]。這一特性使得NK更偏好溶解血栓中的纖維蛋白而不易溶解血漿纖維蛋白原,因而不會(huì)破壞正常凝血機(jī)制而引發(fā)出血,且目前臨床現(xiàn)用的溶栓劑無此特點(diǎn),但目前NK產(chǎn)品純度較低,因此,提高NK純度意義重大。
工業(yè)上生產(chǎn)NK都是從納豆桿菌的發(fā)酵液中提取純化的。報(bào)道的NK純化方案,常集多種手段聯(lián)合使用。但在總結(jié)前人純化結(jié)果后發(fā)現(xiàn)[14—19],使用柱層析法,NK的酶活回收率普遍不高,不僅如此,柱層析法也具有成本高、方法繁瑣、步驟較多、耗時(shí)且難以規(guī)?;a(chǎn)的缺點(diǎn)[20]。超濾法可以有效地去除料液中相對(duì)分子質(zhì)量較大和較小的組分,避免了鹽析方法中高滲作用所造成的酶活性降低,但純化倍數(shù)很低。利用親和吸附法對(duì)NK純化,例如用大豆顆粒對(duì)NK進(jìn)行特異性吸附,吸附的配體結(jié)構(gòu)不清楚[21],操作較為復(fù)雜,不適合工業(yè)化生產(chǎn)。
在納豆桿菌發(fā)酵豆類制作的納豆表面,可以看見很長(zhǎng)的拉絲狀黏液。在納豆桿菌發(fā)酵黃豆粉產(chǎn)生NK的液體發(fā)酵中,也總是伴隨著大量黏液的產(chǎn)生,其產(chǎn)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于NK,現(xiàn)已研究清楚,該黏液的主要成分為γ-聚谷氨酸(γ-polyglutamic acid,γ-pGA)[22—25],分子量為100~1 000 kDa,等電點(diǎn)為2.5,屬于典型的酸性高聚物,而NK的分子量?jī)H為27.7 kDa,等電點(diǎn)為8.7。在pH 7.0~7.5的發(fā)酵液中,NK帶正電而γ-pGA帶負(fù)電,二者通過靜電力以“偶聯(lián)狀態(tài)”結(jié)合,形成以大分子量的γ-pGA為載體的多分子納豆激酶聯(lián)合物,從而大大降低了NK的表觀活性[26]。目前,基于以上工藝的NK產(chǎn)品無法實(shí)現(xiàn)微劑量服用目標(biāo),更不能滿足注射針劑的要求,因此要獲得高純度的NK,需要將大量γ-pGA從粗產(chǎn)品中去除。
本研究在建立可行的液體發(fā)酵法生產(chǎn)NK工藝的基礎(chǔ)上,提出了從發(fā)酵液純化NK的下游方案,該方案大幅度提高了NK的純度。
1.1.1 菌株和供試樣品
納豆芽孢桿菌N5:西安交通大學(xué)生命學(xué)院基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)室分離純化所得;供試樣品為市售的脫脂豆粕及黃豆。
1.1.2 試劑及培養(yǎng)基
試劑:纖維蛋白原、凝血酶、尿激酶和γ-聚谷氨酸,購(gòu)自上海源葉生物科技有限公司;瓊脂糖,購(gòu)自Amresco公司;十六烷基三甲基溴化銨,購(gòu)自Alfa Aesar公司;BCA蛋白定量試劑盒,購(gòu)自碧云天生物技術(shù)。其余化學(xué)試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
LB培養(yǎng)基:用于菌種的活化及種子液的配制。1%胰蛋白胨,0.5%酵母提取物,1% NaCl。
天然發(fā)酵培養(yǎng)基:用于納豆激酶的發(fā)酵。3%脫脂豆粕勻漿攪拌,用1 mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)培養(yǎng)基pH為7.4左右,121 ℃高壓滅菌20 min。
1.1.3 主要儀器設(shè)備
THA-3560C立式滅菌鍋 Tsao Hsin公司;酶標(biāo)儀 Molecular Devices公司;BSA124S 電子天平 德國(guó)Sartorius公司;PYX-DHS-40X50電熱恒溫培養(yǎng)箱 廣州滬瑞明儀器有限公司;LYZ-Z00B恒溫?fù)u床 上海龍躍儀器設(shè)備有限公司;Centrifuge 5810R離心機(jī) Eppendorf公司;SW-CJ-1FD潔凈工作臺(tái) 蘇凈安泰公司;冷凍干燥機(jī) 北京博醫(yī)康實(shí)驗(yàn)儀器公司。
1.2.1 納豆芽孢桿菌N5的培養(yǎng)及發(fā)酵方法
將納豆芽孢桿菌N5接種于LB液體培養(yǎng)基中,在37 ℃條件下,在轉(zhuǎn)速200 r/min的恒溫?fù)u床中振蕩培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期測(cè)定其吸光度,計(jì)算接種量。
3%的脫脂豆粕勻漿攪拌,用1 mol/L NaOH溶液調(diào)節(jié)培養(yǎng)基pH為7.4左右,121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min。冷卻至室溫后接種。納豆芽孢桿菌種子液的接種量為0.05 OD/mL,恒溫37 ℃,搖床轉(zhuǎn)速200 r/min,發(fā)酵時(shí)間36 h。發(fā)酵完成后,發(fā)酵液于2 000 g條件下離心10 min,上清液為液體發(fā)酵的納豆激酶溶液,利用纖維蛋白原平板法測(cè)定NK產(chǎn)量(Fu/g豆粕)。
1.2.2 納豆激酶活力的測(cè)定
納豆激酶的活力采用纖維蛋白原平板法[27]。根據(jù)樣品的數(shù)量,用直徑為2 mm的打孔器進(jìn)行打孔。
1.2.3γ-聚谷氨酸的定量檢測(cè)方法
在已有檢測(cè)方法[28]的基礎(chǔ)上進(jìn)行如下改良:在350 nm的波長(zhǎng)條件下,采用CTAB的NaOH溶液(10 g/L)檢測(cè)γ-pGA。
1.2.4 納豆激酶發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化
1.2.4.1 單因素條件優(yōu)化
根據(jù)前期預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,在確定發(fā)酵培養(yǎng)基中碳源為1%的甘油的基礎(chǔ)上,以納豆激酶的活力為指標(biāo),采用單因素實(shí)驗(yàn)研究豆粕、谷氨酸鈉及無機(jī)鹽含量對(duì)發(fā)酵結(jié)果的影響。發(fā)酵培養(yǎng)基的豆粕含量為1%、3%、5%、7%、9%;谷氨酸鈉的質(zhì)量濃度為0.5%、1%、1.5%、2%、3%;MgSO4·7H2O的質(zhì)量濃度為0.1%、0.3%、0.5%、0.7%。以天然發(fā)酵培養(yǎng)基為對(duì)照。按0.05 OD/mL接種納豆桿菌種子液,在37 ℃、200 r/min的條件下發(fā)酵36 h,測(cè)定纖溶圈直徑,選取適宜的單因素條件。
1.2.4.2 多因素正交優(yōu)化
在以上描述的各個(gè)單因素優(yōu)化的基礎(chǔ)上,根據(jù)正交表設(shè)計(jì)正交實(shí)驗(yàn),優(yōu)化最優(yōu)碳氮源質(zhì)量濃度、谷氨酸鈉及硫酸鎂含量等。測(cè)定并比較培養(yǎng)基優(yōu)化前后的NK產(chǎn)量(Fu/mL)。
1.2.5 納豆激酶與γ-聚谷氨酸解離及收集
在培養(yǎng)基中接種0.05 OD/mL的納豆芽孢桿菌N5,37 ℃下200 r/min發(fā)酵36 h。用pH 10、10倍的Gly-NaOH緩沖液調(diào)節(jié)發(fā)酵液的pH至10,使得NK和γ-pGA均帶負(fù)電,不再緊密結(jié)合。充分振蕩混勻后,在2 000 g條件下離心10 min,收集上清液,沉淀用pH為10的Gly-NaOH緩沖液洗滌1次,2 000 g條件下再離心10 min,合并上清液待用。
1.2.6 不同pH值下NK產(chǎn)量的測(cè)定
發(fā)酵完成后,取原始發(fā)酵液1 mL,用pH為10的Gly-NaOH緩沖液調(diào)節(jié)pH至10,稀釋至 2 mL,在渦旋儀上激烈振蕩后,2 000 g條件下離心10 min后取上清液,采用纖維蛋白原平板法測(cè)定上清液的NK產(chǎn)量;以原始發(fā)酵液稀釋1倍作對(duì)照。
1.2.7 十六烷基三甲基溴化銨沉淀γ-聚谷氨酸條件優(yōu)化
將不同濃度的CTAB水溶液與“1.2.1”中得到的NK溶液等比例混合,用力搖勻后在1 000 g下離心10 min。收集含有NK的上清液,并分別測(cè)定上清液中殘留的γ-pGA含量和NK的效價(jià),得到去除γ-pGA的方案。
1.2.8 三相法濃縮提取納豆激酶
采用三相法濃縮含有NK的上清液,具體參考張慶慶等[28-31]的方法進(jìn)行。
1.2.9 納豆激酶凍干粉效價(jià)測(cè)定
磁力攪拌條件下,在pH 8.7、0.05 mol/L的Tris-HCl緩沖液中,對(duì)三相法收集的中間NK相進(jìn)行透析,每隔2 h換液,2~3次后,于4 ℃進(jìn)行透析過夜。透析液置入培養(yǎng)皿中,厚度在1 cm左右,放入-80 ℃冰箱中預(yù)凍,取出后放入冷凍干燥機(jī)中干燥24 h,即為高純NK凍干粉。取NK凍干品5 mg,溶于0.5 mL 0.05 mol/L的Gly-NaOH緩沖液中(pH 10)(NK的最適pH為9~10),充分振蕩混勻后,采用纖維蛋白原平板法測(cè)定對(duì)應(yīng)產(chǎn)品的效價(jià)。
1.2.10 計(jì)算公式
NK回收率的計(jì)算方法:回收率(%)=(離心后單位體積酶活×離心后酶溶液體積)/(離心前單位體積酶活×離心前酶溶液體積)。
NK比活力的計(jì)算方法:比活力(Fu/mg)=總活力/總蛋白。
NK純化倍數(shù)的計(jì)算方法:純化倍數(shù)=離心后的比活力/離心前的比活力。
采用已知的不同效價(jià)標(biāo)準(zhǔn)尿激酶溶液,測(cè)定其在人工血栓平板上形成的纖溶圈直徑,纖溶酶可以使乳白色的纖維蛋白原降解為無色透明的片段和小肽,從而形成透明圈??筛鶕?jù)圖1中纖維蛋白原平板上透明纖溶圈的大小和圖2中標(biāo)準(zhǔn)曲線來表征尿激酶的纖溶活性。由圖2可知,在尿激酶酶活為200~1 000 U/mL的區(qū)間內(nèi)R2=0.996 6,酶活和直徑的平方值有很強(qiáng)的線性相關(guān)性。因此,可以利用此標(biāo)準(zhǔn)曲線標(biāo)定NK的酶活。
圖1 標(biāo)準(zhǔn)尿激酶纖溶圈
圖2 尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線
在天然培養(yǎng)基中,豆粕的含量決定了納豆芽孢桿菌生長(zhǎng)的營(yíng)養(yǎng)條件。在5種豆粕粉濃度下,發(fā)酵36 h后于2 000 g條件下離心10 min,取上清液,利用纖維蛋白原平板法測(cè)定上清液NK產(chǎn)量,結(jié)果見圖3。
圖3 豆粕含量對(duì)NK產(chǎn)量的影響Fig.3 Effect of soybean meal content on NK yield
由圖3可知,豆粕含量為1%時(shí),NK產(chǎn)量為808 Fu/mL,豆粕含量為3%時(shí),NK產(chǎn)量為1 009 Fu/mL,豆粕含量大于5%時(shí),NK產(chǎn)量緩慢降低。可見當(dāng)豆粕含量較低時(shí),NK產(chǎn)量也低,原因是可供納豆芽孢桿菌生長(zhǎng)發(fā)酵的營(yíng)養(yǎng)不足;當(dāng)豆粕含量升高時(shí),營(yíng)養(yǎng)充足,NK產(chǎn)量緩慢降低,原因可能是豆粕濃度較大,導(dǎo)致溶氧量較低,不利于納豆桿菌的生長(zhǎng)及發(fā)酵。后續(xù)實(shí)驗(yàn)中選擇的豆粕含量為3%。
研究報(bào)道發(fā)現(xiàn)添加谷氨酸鈉可以提高NK的分泌[32],本研究對(duì)谷氨酸鈉含量進(jìn)行了優(yōu)化,結(jié)果見圖4。
圖4 谷氨酸鈉含量對(duì)NK產(chǎn)量的影響
由圖4可知,谷氨酸鈉的添加可以提升NK的產(chǎn)量,當(dāng)發(fā)酵培養(yǎng)基中谷氨酸鈉從0.5%增加到2%時(shí),NK的產(chǎn)量逐漸上升到1 309 Fu/mL;當(dāng)谷氨酸鈉含量超過2%時(shí),NK的產(chǎn)量會(huì)降低,所以選擇谷氨酸鈉的最佳含量為2%。
在實(shí)驗(yàn)中我們還發(fā)現(xiàn),隨著谷氨酸鈉含量的升高,發(fā)酵液會(huì)更黏稠,說明谷氨酸鈉濃度越高,納豆桿菌分泌的γ-pGA就越多,這是因?yàn)楣劝彼徕c是γ-pGA分泌的前體物質(zhì)[33]。由于γ-pGA和NK等電點(diǎn)的巨大差異,在發(fā)酵液中二者會(huì)結(jié)合在一起。NK一旦被γ-pGA結(jié)合,就變成束縛型的NK,使其表觀活性下降,不利于其作用于大豆蛋白供給菌體以充足氮源。此時(shí)γ-pGA就相當(dāng)于NK的“代償陷阱”[34],致使菌體以代償方式不斷合成NK,最終提高了NK的產(chǎn)量?;谝陨戏治?,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表現(xiàn)為NK的產(chǎn)量與γ-pGA的含量呈正相關(guān)。所以通過添加谷氨酸鈉,可提升NK產(chǎn)量。但當(dāng)谷氨酸鈉添加過量時(shí),溶液過于黏稠,導(dǎo)致發(fā)酵液溶氧降低,影響了納豆桿菌的好氧生長(zhǎng),生長(zhǎng)量下降,需要的氮源下降,因而NK產(chǎn)量也隨之降低。
Mg2+在蛋白質(zhì)包括NK的合成中起著非常重要的作用,因而實(shí)驗(yàn)對(duì)發(fā)酵體系中Mg2+的濃度進(jìn)行了優(yōu)化。Mg2+對(duì)NK產(chǎn)量的影響的實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖5。
圖5 MgSO4·7H2O含量對(duì)NK產(chǎn)量的影響
由圖5可知,NK產(chǎn)量隨著MgSO4·7H2O含量的升高出現(xiàn)先升高后下降的趨勢(shì),當(dāng)MgSO4·7H2O含量為0.3%時(shí),NK產(chǎn)量最高。
根據(jù)以上單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,研究通過多因素正交實(shí)驗(yàn)法優(yōu)化天然培養(yǎng)基中甘油、谷氨酸鈉和硫酸鎂的含量,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表1。
表1 不同添加物正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果及分析Table 1 Results and analysis of orthogonal experiment of different additives
由表1中R值可知,在目前設(shè)計(jì)的實(shí)驗(yàn)條件下,谷氨酸鈉對(duì)NK產(chǎn)量的影響最大,因此我們需進(jìn)一步優(yōu)化谷氨酸鈉的濃度。由k值可知,降低谷氨酸鈉濃度更合理。
分析各k值可知,在本實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)條件下,最適培養(yǎng)基添加物為甘油0.5%、谷氨酸鈉1%、MgSO4·7H2O 0.5%。在此培養(yǎng)基條件下重復(fù)進(jìn)行NK發(fā)酵和產(chǎn)量測(cè)定,結(jié)果見圖6。
圖6 培養(yǎng)基優(yōu)化前后NK產(chǎn)量對(duì)比Fig.6 Comparison of NK yield before and after the optimization of medium
由圖6可知,當(dāng)培養(yǎng)基的組成為豆粕3%、甘油0.5%、谷氨酸鈉1%、MgSO4·7H2O 0.5%時(shí),NK產(chǎn)量為1 486.6 Fu/mL,比優(yōu)化前提高了48%。在此培養(yǎng)基條件下重復(fù)進(jìn)行NK發(fā)酵和產(chǎn)量測(cè)定,結(jié)果穩(wěn)定,重復(fù)性良好。
原始發(fā)酵液(pH為7)和調(diào)節(jié)pH為10后的發(fā)酵液NK的效價(jià)測(cè)定結(jié)果見圖7。
圖7 pH對(duì)NK產(chǎn)量的影響
由圖7可知,pH為7的條件下所獲粗酶液中NK效價(jià)為1 526 Fu/g,調(diào)節(jié)發(fā)酵液pH為10,即大于NK的等電點(diǎn)時(shí),所獲NK效價(jià)為2 123 Fu/mL,提高了39%。pH為7的條件下獲得的NK凍干粉效價(jià)為1.88×104Fu/g,調(diào)節(jié)pH為10后,所獲NK凍干粉效價(jià)為2.55×104Fu/g,比堿法解離前提高了41%。
十六烷基三甲基溴化胺(CTAB)在水溶液中以聚陰離子形式存在,CTAB的氮原子可與γ-pGA中的羧基氧原子配對(duì)形成不溶于水的γ-pGA-CTAB絡(luò)合物,反應(yīng)后溶液變渾濁[28],離心沉淀可去除γ-pGA。優(yōu)化CTAB的濃度,使γ-pGA的沉降量最大,且最大程度地保持NK活性穩(wěn)定。CTAB濃度對(duì)γ-pGA含量的影響見圖8,CTAB濃度對(duì)NK活性的影響見圖9。
圖8 CTAB濃度對(duì)殘留γ-pGA含量的影響Fig.8 Effect of CTAB concentration on residual γ-pGA content
圖9 CTAB濃度對(duì)NK活力的影響Fig.9 Effect of CTAB concentration on NK activity
對(duì)NK活性以及殘留γ-pGA含量進(jìn)行綜合分析,逐漸提高CTAB濃度,上清液中γ-pGA的殘留量變化不大,但是NK的纖溶活性逐步降低。結(jié)合實(shí)驗(yàn)結(jié)果及成本考慮,選擇最佳沉降的CTAB濃度為0.2 mol/L。
固定叔丁醇 ∶料液(體積比)為1∶1,且保證叔丁醇的高度大于0.5 cm,通過改變?nèi)萜髦睆絹砀淖兿嘟缑婷娣e,可發(fā)現(xiàn)相面積越大,越有利于傳質(zhì),因而提取率和回收率隨之增大,當(dāng)硫酸銨終飽和度為50%時(shí),結(jié)果見圖10。
圖10 不同大小接觸面積下的NK純化效果Fig.10 Purification effect of NK under different contact areas
實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),叔丁醇相與水相的相界面越大,NK回收率越高,純化倍數(shù)基本不變。這意味著當(dāng)相界面面積不足時(shí),夾層中NK分子達(dá)到飽和造成分子擁堆,難以將水相中的NK一次性全部提取到夾層。因此在實(shí)際應(yīng)用中,可以通過增加提取次數(shù)來減少NK的損失。
三相法中,若只進(jìn)行一次提取,水相中的蛋白質(zhì)不能完全分布到中間相,水相中的大部分NK很有可能并不能完全分布到夾層。在首次吸取夾層后,對(duì)剩余水相再次進(jìn)行提取,如此反復(fù)使水相中的NK基本全部被萃取完全。在硫酸銨終飽和度為50%、接觸面積直徑為7.1 cm時(shí),對(duì)NK進(jìn)行多次提取,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖11。
圖11 不同提取次數(shù)下的NK純化效果Fig.11 Purification effect of NK under different extraction times
實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),隨著提取次數(shù)的增加,NK的活力回收率和純化倍數(shù)逐漸增加,提取3次時(shí),NK活力回收率為87%,純化倍數(shù)為35.3,提取4次時(shí),NK活力回收率為91%,純化倍數(shù)為35.7,基本不再增加,說明提取4次可基本把水相中的NK提取到中間沉淀相。因此在利用三相法濃縮純化NK時(shí),選擇提取4次。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,蛋白的回收率隨著體系中料液與叔丁醇接觸面積的增大而升高,在叔丁醇與料液的體積比為1的條件下,若可保證叔丁醇在上相中的高度不小于0.5 cm,則接觸面積越大越好。在本實(shí)驗(yàn)的體系中,提取4次可基本把水相的NK提取完,若體系不同,還需對(duì)提取次數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,理論上提取次數(shù)越多,NK提取越完全。
利用沉淀劑CTAB對(duì)粗酶液中的γ-pGA進(jìn)行沉降,對(duì)沉降后的上清液采用三相法進(jìn)行濃縮,回收效果好。NK活力回收率為91%,純化倍數(shù)為35.7。
通過沉淀法及三相夾心法獲得的NK凍干粉,其效價(jià)高達(dá)(7.88±0.76)×105Fu/g,獲得的高純NK凍干粉形態(tài)見圖12。
圖12 高純NK凍干粉形態(tài)Fig.12 Morphology of high-purity NK lyophilized powder
由圖12中A可知,獲得的高純NK凍干粉蓬松細(xì)膩,呈乳白色。由圖12中B可知,高純NK品相好,滿足商品要求。若作為口服制劑,可制備成微膠囊(2.5~7.6 mg裝量),大大減少消費(fèi)者的口服劑量,還為注射針劑的進(jìn)一步研發(fā)打下良好基礎(chǔ)。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果說明,當(dāng)pH為10時(shí),NK與γ-pGA均帶負(fù)電,相互排斥,解離結(jié)合,與γ-pGA偶聯(lián)的NK會(huì)游離至上清液中,從而提高了NK效價(jià)或產(chǎn)量。高pH有利于NK從γ-pGA上解離,提高NK回收率??紤]到過高pH對(duì)NK酶活的影響,后續(xù)純化工藝中采用pH為10的條件。
堿法解離后在2 000 g條件下離心去除大分子的γ-pGA,經(jīng)凍干,檢測(cè)初純NK效價(jià)為2.55×104Fu/g,與現(xiàn)有產(chǎn)品相比,其效價(jià)屬于中等偏上水平,可作為保健品原料,但還是無法滿足微劑量服用的要求。若利用CTAB對(duì)粗酶液中剩余的γ-pGA進(jìn)行沉淀,再對(duì)沉淀后的上清液采用三相法進(jìn)行濃縮純化,可大幅度提高納豆激酶的效價(jià),獲得的高純NK效價(jià)為(7.88±0.76)×105Fu/g,超過了目前所能了解到的所有產(chǎn)品的純度,使?jié)饪s型微量NK口服制劑的制備成為可能,也為注射針劑的研發(fā)打下良好基礎(chǔ)。