韓瑩 曲有樂(lè)
1(山西藥科職業(yè)學(xué)院,山西太原 030000)
2(浙江海洋大學(xué),浙江舟山 316000)
將紫貽貝粗多糖以不同劑量濃度給小鼠灌胃,以環(huán)磷酰胺模型組和正常組小鼠為對(duì)照,比較不同組間小鼠的免疫器官重量、小鼠血常規(guī)、IL-2、IL-4、IL-10、TNF-α 的差別,分析紫貽貝多糖對(duì)不同免疫因子的影響。
Balb/c 小鼠,體重在18 g~22 g,雄性,購(gòu)于浙江省醫(yī)學(xué)科學(xué)院。飼養(yǎng)條件:25 ℃左右,每12 h晝夜間斷性照明。
紫貽貝粗多糖,由本課題組提取,除去蛋白總糖含量為62.8%。
環(huán)磷酰胺、白細(xì)胞介素2(IL-2)ELISA 試劑盒、白細(xì)胞介素4(IL-4)ELISA 試劑盒、白細(xì)胞介素10(IL-10)ELISA 試劑盒、腫瘤壞死因子(TNF-α)ELISA 試劑盒,北京四正柏生物科技有限公司。
BT125D 電子天平,塞利多斯科學(xué)儀器有限公司;THERMO酶標(biāo)儀,上海輔澤商貿(mào)有限公司。
2.1.1 小鼠分組
將Balb/c 小鼠在清潔安靜溫度適宜的動(dòng)物房適應(yīng)性飼養(yǎng)3 天后取50 只,雄性,體重在18 g~22 g,隨機(jī)分成5 組,每組10 只,即為空白對(duì)照組、紫貽貝粗多糖低劑量、紫貽貝粗多糖中劑量、紫貽貝粗多糖高劑量和環(huán)磷酰胺模型。
2.1.2 給藥方法
用左手抓緊小鼠背部和頭部的皮毛,使其固定,并使其頭部后仰,與身體成水平直線,將針頭自口腔右側(cè)沿上顎垂直緩慢下行,灌藥0.2 mL,觀察小鼠呼吸正常與否。
2.1.3 造模
空白組小鼠每只每天注射0.2 mL 0.9%的生理鹽水,模型組小鼠前11 天每天每只注射0.2 mL 0.9%生理鹽水。低劑量多糖組每天注射125 mg/kg紫貽貝粗多糖溶液,中劑量組多糖組每天注射250 mg/kg紫貽貝粗多糖溶液,高劑量多糖組每天注射500 mg/kg紫貽貝粗多糖溶液。第12 天,采用皮下注射方式,給多糖組和模型組每只小鼠每天注射0.1 mL 50 mg/kg的環(huán)磷酰胺,連續(xù)注射3天。
2.2.1 采血
采血前12 h 禁食,采血1 h 前禁水,每組任意選3 只小鼠采血,選用眼球摘除采血法采血。摘除小鼠眼球后,小鼠血液應(yīng)立即放入抗凝管中,混勻后,4 h內(nèi)完成檢測(cè)。
2.2.2 血樣檢測(cè)
選用血液自動(dòng)分析儀對(duì)小鼠血液樣本進(jìn)行檢測(cè)。每組任意選3只小鼠的血液樣本做重復(fù)性試驗(yàn)。
2.3.1 采血
在解剖前一晚斷糧,不斷水。第2 天,稱重,活體摘除眼球取血,每只取1 mL,在4 ℃冰箱低溫保存,靜置24 h,4 000 r/min 離心10 min,收集血清。放于-20 ℃冰箱備用。
2.3.2 小鼠血清的IL-2、IL-4、IL-10 和TNF-α 檢測(cè)方法
試驗(yàn)前將小鼠血清和試劑盒取出解凍,溫度恢復(fù)至室溫。加入1 mL 標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液至凍干標(biāo)準(zhǔn)品中,待完成溶解后,靜置15 min 混勻,之后按1 000μL、500μL、250μL、125μL、62.5μL、31.25μL、15.625μL 進(jìn)行稀釋。根據(jù)待測(cè)樣品數(shù)量和標(biāo)準(zhǔn)品數(shù)量決定所需的板條數(shù),并增加1 孔作為空白對(duì)照孔。將標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)應(yīng)放入孔中,用封板膠紙封住反應(yīng)孔,37 ℃烘箱孵育90 h。加入相應(yīng)試劑,于450 nm處測(cè)吸光度值。
用SPSS17.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,結(jié)果用()x±s表示。當(dāng)P<0.05,統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著,當(dāng)P<0.01,統(tǒng)計(jì)學(xué)極顯著;P>0.05,組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
通過(guò)血液檢測(cè),對(duì)正常組、低劑量粗多糖組、中劑量粗多糖組、高劑量粗多糖組和環(huán)磷酰胺模型組小鼠血液中血紅蛋白數(shù)進(jìn)行分析比較,測(cè)定結(jié)果如圖1所示。
圖1 紫貽貝粗多糖對(duì)免疫抑制小鼠白細(xì)胞數(shù)量的影響
免疫抑制造模后,環(huán)磷酰胺模型組白細(xì)胞數(shù)量顯著小于正常組。低劑量組與中劑量組小鼠白細(xì)胞數(shù)量比環(huán)磷酰胺模型組多,但均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。與模型組相比,高劑量組可大大促進(jìn)小鼠白細(xì)胞的產(chǎn)生;與正常組相比,高劑量組小鼠白細(xì)胞雖比正常組多,但無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。低劑量組極其顯著低于中劑量組和高劑量組,有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
結(jié)果表明,紫貽貝粗多糖可刺激小鼠血液中白細(xì)胞的產(chǎn)生,對(duì)小鼠的免疫調(diào)節(jié)作用明顯。紫貽貝粗多糖含量越高,免疫調(diào)節(jié)作用越好,但低劑量、中劑量多糖對(duì)免疫調(diào)節(jié)的作用有限。
3.2.1 給藥14天小鼠血清IL-2的水平變化
3.2.1.1 IL-2標(biāo)準(zhǔn)曲線的制定
標(biāo)準(zhǔn)品按原液1∶2∶4∶8∶16∶32 比例用50μL、100μL 微量加樣器加入標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液,空白孔加入50μL原始濃度空白對(duì)照液,以IL-2標(biāo)準(zhǔn)溶液質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖略)。得出線性方程為y=0.004x+0.018,R2=0.993 4。
3.2.1.2 小鼠血清IL-2的水平變化
采用白細(xì)胞介素2(IL-2)ELISA 試劑盒對(duì)正常組、低劑量粗多糖組、中劑量粗多糖組、高劑量粗多糖組和環(huán)磷酰胺模型組小鼠血清中IL-2含量進(jìn)行分析比較,測(cè)定結(jié)果見(jiàn)圖2。
圖2 紫貽貝多糖對(duì)小鼠血清IL-2水平的影響
免疫抑制造模后,環(huán)磷酰胺模型組血清IL-2含量顯著低于正常組。低劑量組比模型組高,但無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。中劑量和高劑量組與模型組相比,均可大大增加小鼠血清中IL-2含量。高劑量組與正常組相比,含量大于正常組。低劑量組極其顯著低于中劑量組和高劑量組,有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。由圖2 可以看出,小鼠血清IL-2水平隨著粗多糖含量的增高而增高,且中劑量和高劑量組小鼠血清IL-2水平高于正常組。而只注射環(huán)磷酰胺的模型組明顯低于正常組和多糖組。
結(jié)果表明,低劑量粗多糖對(duì)免疫調(diào)節(jié)的作用有限。紫貽貝粗多糖在250 mg/kg 和500 mg/kg 可明顯提高小鼠血清IL-2含量,提高小鼠免疫力,且紫貽貝粗多糖調(diào)節(jié)作用與多糖含量成正比。
3.2.2 給藥14天小鼠血清IL-4的水平變化
3.2.2.1 IL-4標(biāo)準(zhǔn)曲線的制定
IL-4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制定同3.2.1.1,根據(jù)測(cè)定結(jié)果得出標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性方程為y=0.002x+0.078 6,R2=0.999 4。
3.2.2.2 小鼠血清IL-4的水平變化
采用白細(xì)胞介素4(IL-4)ELISA 試劑盒對(duì)正常組、低劑量粗多糖組、中劑量粗多糖組、高劑量粗多糖組和環(huán)磷酰胺模型組小鼠血清中IL-4 含量進(jìn)行分析比較,測(cè)定結(jié)果見(jiàn)圖3。
圖3 紫貽貝多糖對(duì)小鼠血清IL-4水平的影響
免疫抑制造模后,環(huán)磷酰胺模型組血清IL-4含量顯著低于正常組。低劑量組小鼠血清IL-4比模型組高,但無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。與模型組相比,中劑量和高劑量紫貽貝粗多糖可大大增加小鼠血清IL-4 含量。高劑量組與模型組和正常組相比,小鼠血清IL-4 含量大于正常組和模型組。低劑量組與中劑量組和高劑量組相比含量極其顯著低,有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。由圖3 可以看出,小鼠血清IL-4 水平隨著粗多糖含量的增高而增高,且中劑量和高劑量組小鼠血清IL-4水平高于正常組,而只注射環(huán)磷酰胺的模型組明顯低于正常組和粗多糖組。
結(jié)果表明,低劑量粗多糖對(duì)免疫調(diào)節(jié)的作用有限。紫貽貝粗多糖為250 mg/kg 和500 mg/kg 時(shí)可明顯提高小鼠血清IL-4含量,具有提高小鼠免疫力的作用,且調(diào)節(jié)作用與粗多糖含量成正比。
3.2.3 給藥14天小鼠血清IL-10的水平變化
3.2.3.1 IL-10標(biāo)準(zhǔn)曲線的制定
IL-10標(biāo)準(zhǔn)線曲線的制定同3.2.1.1,根據(jù)測(cè)定結(jié)果得出標(biāo)準(zhǔn)曲線線性方程為y=0.003 4x+0.039 4,R2=0.999 4。
3.2.3.2 小鼠血清IL-10的水平變化
采用白細(xì)胞介素10(IL-10)ELISA 試劑盒對(duì)正常組、低劑量粗多糖組、中劑量粗多糖組、高劑量粗多糖組和環(huán)磷酰胺模型組小鼠血清中IL-10 含量進(jìn)行分析比較,測(cè)定結(jié)果如圖4所示。
免疫抑制造模后,環(huán)磷酰胺模型組血清IL-10含量顯著低于正常組和粗多糖組。低劑量組小鼠血清IL-10 含量顯著比模型組高。中劑量組和高劑量組與模型組相比,均可大大增加小鼠血清IL-10 的含量。高劑量多糖組小鼠血清IL-10 含量大于正常組。低劑量組極其顯著低于中劑量組和高劑量組,有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。由圖4 可以看出,小鼠血清IL-10水平隨著粗多糖含量的增高而增高,而只注射環(huán)磷酰胺的模型組,小鼠血清IL-10 水平明顯低于正常組和粗多糖組。
圖4 紫貽貝多糖對(duì)小鼠血清IL-10水平的影響
結(jié)果表明,低劑量多糖對(duì)免疫調(diào)節(jié)的作用有限。紫貽貝粗多糖在250 mg/kg 和500 mg/kg 濃度下可明顯提高小鼠血清IL-10 含量,具有提高小鼠免疫力的作用,且調(diào)節(jié)作用與粗多糖含量成正比。
3.2.4 給藥14天小鼠血清TNF-α的水平變化
3.2.4.1 TNF-α標(biāo)準(zhǔn)曲線的制定
TNF-α 標(biāo)準(zhǔn)線曲線的制定同3.2.1.1,根據(jù)測(cè)定結(jié)果得出標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性方程為y=0.004x+0.018,R2=0.993 4。
3.2.4.2 小鼠血清TNF-α的水平變化
采用腫瘤壞死因子(TNF-α)ELISA 試劑盒對(duì)正常組、低劑量粗多糖組、中劑量粗多糖組、高劑量粗多糖組和環(huán)磷酰胺模型組小鼠血清中TNF-α含量進(jìn)行分析比較,測(cè)定結(jié)果如圖5所示。
免疫抑制造模后,模型組血清TNF-α 含量顯著低于正常組。低劑量組小鼠血清TNF-α 含量顯著比模型組高。與模型組相比,中劑量和高劑量組可大大增加小鼠血清TNF-α 含量。高劑量組與正常組相比,高劑量粗多糖組小鼠血清TNF-α 含量高于正常組。低劑量組極其顯著低于中劑量組和高劑量組,有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
由圖5 可以看出,小鼠血清TNF-α 水平隨著粗多糖含量的增高而增高,而只注射環(huán)磷酰胺的模型組,小鼠血清TNF-α 水平明顯低于正常組和粗多糖組。
圖5 紫貽貝多糖對(duì)小鼠血清TNF-α水平的影響
結(jié)果表明,低劑量多糖對(duì)免疫調(diào)節(jié)的作用有限。紫貽貝粗多糖在250 mg/kg 和500 mg/kg 時(shí)可明顯提高小鼠免疫力的作用,紫貽貝粗多糖調(diào)節(jié)作用與粗多糖含量成正比。
白細(xì)胞是具有防御和免疫功能的無(wú)色有核球形細(xì)胞,免疫低下造模對(duì)小鼠血液中的白細(xì)胞影響顯著,也會(huì)影響小鼠自身的防御和免疫功能。IL-2 最重要的作用是誘導(dǎo)T 淋細(xì)胞的分化,從而達(dá)到免疫調(diào)節(jié)作用。IL-4 可增強(qiáng)B 細(xì)胞抗原提呈能力,使免疫系統(tǒng)對(duì)小量抗原刺激發(fā)生免疫應(yīng)答。IL-10 可促進(jìn)肥大細(xì)胞和胸腺細(xì)胞增殖,IL-10 也是淋巴結(jié)、脾臟細(xì)胞生長(zhǎng)的復(fù)合因子,從而提高發(fā)揮免疫抑制或免疫刺激作用。TNF-α 可以增強(qiáng)IL-2 依賴的胸腺細(xì)胞、T細(xì)胞增殖能力,從而起到免疫抑制作用。由試驗(yàn)結(jié)果可知,中高劑量粗多糖可增加免疫抑制小鼠血清中的IL-2、IL-4、IL-10、TNF-α 含量。紫貽貝多糖對(duì)小鼠的具有免疫調(diào)節(jié)作用,且紫貽貝粗多糖的免疫調(diào)節(jié)力隨著粗多糖含量的增加而增加。綜上所述,紫貽貝粗多糖對(duì)免疫抑制小鼠具有免疫調(diào)節(jié)作用,粗多糖含量越高,免疫調(diào)節(jié)作用越好。