趙瀚微,陳文閣
(黑龍江中醫(yī)藥大學附屬第一醫(yī)院,黑龍江 哈爾濱 150000)
糖尿病腎臟?。╠iabetic nephropathy,DN)是糖尿病導致的微血管并發(fā)癥,也是一種高糖引發(fā)的炎性疾病,可累及腎小管、腎小球、腎間質、血管等多種腎臟結構,造成腎小球萎縮硬化、腎間質病變等腎組織損傷,最終可演化為腎衰竭,是糖尿病患者死亡的主要原因之一[1-2]。高血糖可通過引起氧化應激和炎癥反應導致腎毒性[3-4]。整合素連接激酶(Integrinlinked kinase,ILK)是連接細胞外基質與細胞內(nèi)信號的一種支架蛋白,參與介導腎損傷過程。敲除ILK基因可減輕腎組織損傷,延緩腎臟疾病進展[5]。絲裂原活化蛋白激酶(mitogenactivated protein kinase,MAPK)是ILK下游調控因子,可被ILK正向調控而顯著降低自身磷酸化水平,進而有效抑制高血糖引發(fā)的腎臟炎癥,改善DN小鼠腎功能[6-7]。因而,ILK/MAPK有望成為DN的潛在治療靶點。大黃素是中藥大黃含有的一種天然蒽醌衍生物,有較強的抗炎活性,可顯著抑制炎癥相關因子產(chǎn)生,減輕DN大鼠蛋白尿排泄、腎小管間質損傷等腎損傷癥狀[8-9],但ILK/MAPK是否是其藥理機制之一,目前尚不清楚。本研究擬通過建立DN大鼠模型,對此進行探究。
1.1 實驗動物和細胞 6周齡SPF級雄性SD大鼠76只,體質量180~230 g,購自上海靈暢生物科技有限公司,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(滬)2018-0003。分籠飼養(yǎng)在本院動物中心動物房內(nèi),通風良好,相對濕度:50%~55%,溫度:22~26 ℃,照明:12 h/12 h明暗交替,噪聲≤80 dB。本實驗經(jīng)黑龍江中醫(yī)藥大學附屬第一醫(yī)院醫(yī)學實驗動物倫理管理委員會批準。
人腎小管上皮細胞HK-2(貨號:MJ-1324)購自上海名勁生物科技有限公司。
1.2 藥物與試劑 鹽酸二甲雙胍片(國藥準字H20023371,批號:20200110)購自中美上海施貴寶制藥有限公司;大黃素(純度≥98%,批號:20190721)、Opti-MEM培養(yǎng)基(批號:1438121)、HE染色試劑盒(批號:136612)、大鼠白細胞介素-17(interleukin-17,IL-17)ELISA試劑盒(批號:14623)、脂質體2000(批號:17832)均購自北京索萊寶科技有限公司;大鼠誘導型一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS)ELISA試劑盒(批號:173290)購自上海木欒科技有限公司;ILK過表達質粒、ILK空載質粒購自上海吉瑪基因有限公司;鏈脲佐菌素(批號:20219823)購自上海明萱生物科技有限公司;兔源ILK抗體(批號:163921-28)、兔源β-actin抗體(批號:165271-84)、兔源p38 MAPK抗體(批號:182538-29)、兔源p-p38 MAPK抗體(批號:182792-93)均購自美國Abcam公司;無水D-葡萄糖(批號:1273927)、DMEM培養(yǎng)基(批號:1281622)、BCA蛋白質定量檢測試劑盒(批號:1735239)、特級胎牛血清(批號:1736283)、CCK-8試劑盒(批號:1827253)、RIPA裂解液(批號:12712588)均購自生工生物工程(上海)股份有限公司。
1.3 主要儀器 BIOSEN C_Line型血糖儀(北京德??悼瀑Q(mào)有限公司);酶標儀(珀金埃爾默企業(yè)管理有限公司);BS-280型全自動生化分析儀(南京貝登醫(yī)療股份有限公司);DSX100型光學顯微鏡(日本奧林巴斯株式會社);CM1860 UV型冷凍切片機(德國Leica公司);Tanon 4600型全自動化學發(fā)光圖像分析系統(tǒng)(上海天能科技有限公司);VE 186型轉移電泳槽(上海天能科技有限公司);EPS300型電泳儀(上海天能科技有限公司);VE 180型微型垂直電泳槽(上海天能科技有限公司)。
1.4 動物實驗造模與分組 76只SD雄性大鼠中取64只按參照文獻[10]制備DN模型:以0.1 mmol/L檸檬酸緩沖液溶解鏈脲佐菌素,配成6 mg/mL的儲備液,以60 mg/kg的劑量于大鼠腹腔注射,72 h后測量大鼠空腹血糖。血糖>16.7 mmol/L時,提示模型建立成功,其中60只造模成功,造模成功率93.8%(60/64)。將造模成功的DN大鼠采用隨機數(shù)字表法分為模型組、二甲雙胍組、大黃素低劑量組、大黃素中劑量組、大黃素高劑量組,每組12只。另取12只大鼠腹腔注射等劑量生理鹽水,作為假手術組。
1.5 動物實驗給藥及標本采集 將鹽酸二甲雙胍片研碎,用生理鹽水配置成14 mg/mL的二甲雙胍溶液[11],大黃素用生理鹽水配置成1、2.5、5 mg/mL的大黃素溶液[12]。二甲雙胍組和大黃素低、中、高劑量組大鼠均以10 mL/kg的劑量灌胃給藥,模型組和假手術組灌胃給予等體積生理鹽水,1次/d,共給藥21 d。
末次給藥后,用代謝籠收集大鼠24 h尿液,麻醉處死后,解剖取出大鼠腎臟,以手術剪剪下約0.4 g腎組織,剪成小方塊后,加入RIPA裂解液勻漿,4 ℃離心后,將上清吸出,分組標記后保存在-80 ℃冰箱。
1.6 動物實驗觀察指標
1.6.1 24 h尿蛋白含量、血清肌酐(Serum creatinine,Scr)水平 在末次灌胃治療后,馬上用代謝籠收集大鼠24 h尿液,然后過量麻醉處死大鼠,自腹主動脈采血,4 ℃離心后吸出上清液,通過全自動生化分析儀測量出24 h尿蛋白定量及血清Scr水平。剩余血清分組標記后保存在-80 ℃冰箱。
1.6.2 大鼠腎組織病理形態(tài)改變 大鼠腎組織經(jīng)包埋后,放入液氮中凍成塊,用冷凍切片機對其做連續(xù)病理切片,復溫后浸沒入預冷的丙酮中固定,取出以試劑盒做HE染色、漂洗、脫水、透明后封片,使用光學顯微鏡觀察腎組織病理形態(tài)變化,并任意采集5個視野圖片。
1.6.3 大鼠血清IL-17、iNOS水平 取出保存于-80 ℃冰箱的大鼠血清,提前放入4 ℃冰箱中緩慢解凍,然后以用酶聯(lián)免疫吸附試劑盒檢測血清中IL-17、iNOS水平,具體步驟按照說明書進行操作。
1.6.4 大鼠腎組織ILK/MAPK通路相關蛋白表達 提前取出上述保存在-80 ℃冰箱的腎組織蛋白樣品液以冰水浴緩慢解凍,使用BCA試劑盒檢測蛋白濃度,將各組蛋白濃度調至相等,加入適量上樣緩沖液煮沸,5 min后蛋白變性,取出快速離心后混勻。各組取20 μL蛋白樣品加入SDS-PAGE濃縮凝膠樣品孔中,120 V恒壓電泳75 min,40 mA穩(wěn)流濕轉60 min,以5%脫脂牛奶封閉膜上蛋白非特異位點,裁下ILK、β-actin、p38 MAPK、p-p38 MAPK蛋白所在的膜,以相應兔源一抗(1∶1 000稀釋)4 ℃孵育過夜,洗膜后加入二抗(1∶2 000稀釋),常溫孵育2 h,洗膜,增強化學發(fā)光顯色,拍照,運用Image-J軟件定量蛋白條帶灰度,做統(tǒng)計分析后得到各組蛋白相對表達量。
1.7 細胞實驗造模與分組 快速復蘇人腎小管上皮細胞HK-2,以DMEM完全培養(yǎng)基(10%胎牛血清)混勻后,接種在培養(yǎng)瓶,無菌培養(yǎng)。傳代培養(yǎng)12 h后,隨機分為對照組、模型組、大黃素組、ILK過表達質粒組、ILK空載質粒組、大黃素+ILK過表達質粒組。
1.8 細胞實驗給藥 對照組不做處理,其余各組均以30 mmol/L的葡萄糖[13]誘導建立高糖損傷細胞模型,造模同時參照說明書,以脂質體2000分組轉染質粒,同時以10 μmol/L大黃素處理大黃素[14]組、大黃素+ILK過表達質粒組細胞,各組細胞均處理24 h。
1.9 細胞實驗觀察指標
1.9.1 測定細胞活力 將人腎小管上皮細胞HK-2傳代后接種在96孔板,細胞貼壁生長12 h后,隨機分為對照組、模型組、大黃素組、ILK過表達質粒組、ILK空載質粒組、大黃素+ILK過表達質粒組,每組6個孔,按“1.8”中方法分組處理人腎小管上皮細胞HK-2,另選6個孔不接種細胞,作為空白組,24 h后棄去培養(yǎng)基,加入含適量CCK-8試劑的新培養(yǎng)基,無菌培養(yǎng)1 h后,測出各孔吸光度,計算出各組細胞活力。細胞活力(%)=(實驗組吸光度-空白組吸光度)/(對照組吸光度-空白組吸光度)×100%。
1.9.2 細胞上清中IL-17、iNOS水平 傳代HK-2細胞接種在24孔板,貼壁生長12 h后,隨機分為對照組、模型組、大黃素組、ILK過表達質粒組、ILK空載質粒組、大黃素+ILK過表達質粒組,按照“1.8”中方法分組處理24 h后,收集各組細胞沉淀及細胞培養(yǎng)基,離心取上清液,然后用酶聯(lián)免疫吸附試劑盒檢測IL-17、iNOS水平,具體步驟按照說明書進行操作。
1.9.3 細胞ILK/MAPK通路相關蛋白表達 于上述收集的各組細胞中加入RIPA裂解液,提取出總蛋白,用BCA試劑盒檢測蛋白濃度,將各組蛋白濃度調至相等,加入適量上樣緩沖液煮沸,5 min后蛋白變性,取出快速離心后混勻,各組取20 μL蛋白樣品加入SDS-PAGE濃縮凝膠樣品孔中,電泳(120 V恒壓,75 min),濕轉(40 mA穩(wěn)流,60 min),以5%脫脂牛奶封閉膜上蛋白非特異位點,裁下ILK、β-actin、p38 MAPK、p-p38 MAPK蛋白所在的膜,以相應兔源一抗(1∶1 000稀釋)4 ℃孵育過夜,洗膜后加入二抗(1∶2 000),常溫孵育2 h,洗膜,增強化學發(fā)光顯色,拍照,運用Image-J軟件定量蛋白條帶灰度,做統(tǒng)計分析后得到各組蛋白相對表達量。
1.10 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 26.0軟件進行統(tǒng)計學分析,計量資料以“均數(shù)±標準差”()表示,多組間比較采用單因素方差分析,通過Bonferroni法進行組間兩兩比較,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 各組大鼠24 h尿蛋白定量和血清Scr水平比較 與假手術組比較,模型組大鼠24 h尿蛋白定量和血清Scr水平均明顯升高(P<0.05);與模型組比較,大黃素低、中、高劑量組和二甲雙胍組大鼠24 h尿蛋白定量和血清Scr水平均明顯降低(P<0.05),且大黃素各劑量組呈劑量依賴性。大黃素高劑量組大鼠24 h尿蛋白定量和血清Scr水平與二甲雙胍組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。(見表1)
表1 各組大鼠24 h 尿蛋白定量和血清Scr 水平比較()
表1 各組大鼠24 h 尿蛋白定量和血清Scr 水平比較()
注:與假手術組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與大黃素低劑量組比較,cP<0.05;與大黃素中劑量組比較,dP<0.05
2.2 各組大鼠腎組織病理改變情況 假手術組大鼠腎組織無病理損傷,形態(tài)完好;模型組大鼠腎組織呈現(xiàn)明顯病理損傷,具體表現(xiàn)為系膜增生,腎小球體積增大,間質水腫充血,有明顯炎癥淋巴細胞浸潤;與模型組比較,大黃素低、中、高劑量組大鼠腎組織病理損傷均有不同程度減輕,且大黃素劑量越高,病理損傷減輕程度越大;大黃素高劑量組與二甲雙胍組大鼠腎組織腎小球形態(tài)結構正常,腎皮質與腎髓質組織邊界清,未見明顯炎癥反應。(見圖1)
圖1 各組大鼠腎組織病理切片圖(HE,×400)
2.3 各組大鼠血清IL-17、iNOS水平比較 與假手術組比較,模型組大鼠血清IL-17、iNOS水平均明顯升高(P<0.05);與模型組比較,大黃素低、中、高劑量組和二甲雙胍組大鼠血清IL-17、iNOS水平均明顯降低(P<0.05),且大黃素各劑量組呈劑量依賴性;大黃素高劑量組大鼠血清IL-17、iNOS水平與二甲雙胍組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。(見表2)
表2 各組大鼠血清IL-17、iNOS 水平比較()
表2 各組大鼠血清IL-17、iNOS 水平比較()
注:與假手術組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與大黃素低劑量組比較,cP<0.05;與大黃素中劑量組比較,dP<0.05
2.4 各組大鼠腎組織ILK/MAPK通路相關蛋白相對表達量比較 與假手術組比較,模型組大鼠腎組織p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量均明顯升高(P<0.05);與模型組比較,大黃素低、中、高劑量組和二甲雙胍組大鼠腎組織p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量均明顯降低(P<0.05),且大黃素各劑量組呈劑量依賴性;大黃素高劑量組大鼠腎組織p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量與二甲雙胍組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。(見圖2、表3)
圖2 各組大鼠腎組織ILK/MAPK 通路相關蛋白表達免疫印跡圖
表3 各組大鼠腎組織ILK/MAPK 通路相關蛋白相對表達量比較()
表3 各組大鼠腎組織ILK/MAPK 通路相關蛋白相對表達量比較()
注:與假手術組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與大黃素低劑量組比較,cP<0.05;與大黃素中劑量組比較,dP<0.05
2.5 各組細胞活力比較 與對照組比較,模型組HK-2細胞活力明顯降低(P<0.05);與模型組比較,大黃素組HK-2細胞活力明顯升高(P<0.05),ILK過表達質粒組HK-2細胞活力明顯降低(P<0.05);與ILK空載質粒組比較,大黃素組HK-2細胞活力明顯升高(P<0.05),ILK過表達質粒組HK-2細胞活力明顯降低(P<0.05);與大黃素+ILK過表達質粒組比較,大黃素組HK-2細胞活力明顯升高(P<0.05),ILK過表達質粒組HK-2細胞活力明顯降低(P<0.05);大黃素+ILK過表達質粒組HK-2細胞活力與ILK空載質粒組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。(見表4)
表4 各組HK-2 細胞活力比較(,n=6)
表4 各組HK-2 細胞活力比較(,n=6)
注:與對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與大黃素+ILK過表達質粒組比較,cP<0.05;與ILK空載質粒組比較,dP<0.05
2.6 各組細胞IL-17、iNOS水平比較 與對照組比較,模型組HK-2細胞IL-17、iNOS水平均明顯升高(P<0.05);與模型組比較,大黃素組HK-2細胞IL-17、iNOS水平均明顯降低(P<0.05),ILK過表達質粒組HK-2細胞IL-17、iNOS水平均明顯升高(P<0.05);與ILK空載質粒組比較,大黃素組HK-2細胞IL-17、iNOS水平均明顯降低(P<0.05),ILK過表達質粒組HK-2細胞IL-17、iNOS水平均明顯升高(P<0.05);與大黃素+ILK過表達質粒組比較,大黃素組HK-2細胞IL-17、iNOS水平均明顯降低(P<0.05),ILK過表達質粒組HK-2細胞IL-17、iNOS水平均明顯升高(P<0.05);大黃素+ILK過表達質粒組HK-2細胞IL-17、iNOS水平與ILK空載質粒組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。(見表5)
表5 各組HK-2 細胞IL-17、iNOS 水平比較(,n=6)
表5 各組HK-2 細胞IL-17、iNOS 水平比較(,n=6)
注:與對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與大黃素+ILK過表達質粒組比較,cP<0.05;與ILK空載質粒組比較,dP<0.05
2.7 各組細胞ILK/MAPK通路相關蛋白相對表達量比較 與對照組比較,模型組HK-2細胞p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量明顯升高(P<0.05);與模型組比較,大黃素組HK-2細胞p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量均明顯降低(P<0.05),ILK過表達質粒組HK-2細胞p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量均明顯升高(P<0.05);與ILK空載質粒組比較,大黃素組HK-2細胞p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量均明顯降低(P<0.05),ILK過表達質粒組HK-2細胞p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量均明顯升高(P<0.05);與大黃素+ILK過表達質粒組比較,大黃素組HK-2細胞p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量均明顯降低(P<0.05),ILK過表達質粒組HK-2細胞p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量均明顯升高(P<0.05);大黃素+ILK過表達質粒組HK-2細胞p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量與ILK空載質粒組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。(見圖3、表6)
圖3 各組HK-2 細胞ILK/MAPK 通路相關蛋白表達免疫印跡圖
表6 各組HK-2 細胞ILK/MAPK 通路相關蛋白相對表達量比較(,n=6)
表6 各組HK-2 細胞ILK/MAPK 通路相關蛋白相對表達量比較(,n=6)
注:與對照組比較,aP<0.05;與模型組比較,bP<0.05;與大黃素+ILK過表達質粒組比較,cP<0.05;與ILK空載質粒組比較,dP<0.05
糖尿病是我國的第一大代謝性疾病,而DN作為其主要的并發(fā)癥之一,可引發(fā)患者進行性腎功能不全,隨病情進展會造成終末期腎病,導致患者死亡[15-17]。DN發(fā)病機制涉及多方面的病理生理過程,目前普遍認為,炎癥、氧化應激是其關鍵病理機制,其中,減輕炎癥在DN治療方法中具有良好前景[18-19]。本研究通過腹腔注射60 mg/kg的鏈脲佐菌素誘導構建DN大鼠模型,結果顯示大鼠在注射鏈脲佐菌素后,24 h尿蛋白定量、血清Scr、IL-17、iNOS水平均明顯升高,表明鏈脲佐菌素可誘導炎性介質大量表達,引發(fā)劇烈炎癥反應,造成其腎組織發(fā)生明顯的病理損傷改變,具體表現(xiàn)為系膜增生,腎小球體積增大,間質水腫充血,有明顯炎癥淋巴細胞浸潤,提示DN模型建立成功。
大黃素分離自蓼科植物虎杖和掌葉大黃的根莖,具有天然抗炎、抗氧化活性,可減輕高血糖導致的腎組織炎性損傷,改善DN小鼠蛋白尿癥狀,緩解腎組織病理損傷,起到腎功能保護作用[20-21]。本研究以低、中、高劑量大黃素治療DN大鼠,可減少血清Scr、IL-17、iNOS的產(chǎn)生,降低其尿蛋白排泄量,減輕腎組織病理損傷,進一步證實了大黃素對DN的治療作用。但其藥理機制目前尚未有明確闡釋。有研究發(fā)現(xiàn),ILK參與介導腎臟疾病的發(fā)生及進展過程,下調ILK基因表達可改善腎組織損傷[5]。另外,ILK通過促進p38 MAPK磷酸化而引起炎癥反應的發(fā)生發(fā)展[22],抑制其磷酸化可顯著改善DN小鼠腎臟炎癥產(chǎn)生及進展[7]。因而推測,ILK/MAPK可能是大黃素治療DN的藥理機制之一。本研究動物實驗結果顯示,DN大鼠腎組織p-p38 MAPK/p38 MAPK、ILK蛋白相對表達量明顯升高,大黃素可阻止上述變化,改善DN大鼠腎損傷癥狀。本研究細胞實驗結果顯示,大黃素可下調ILK蛋白表達,降低p38 MAPK磷酸化水平,減少高糖誘導的炎癥因子生成,抑制炎癥及腎小管上皮細胞HK-2凋亡,從細胞水平上證明了大黃素對DN的防治功效。另外,轉染ILK過表達質粒,上調HK-2細胞ILK表達,可減弱大黃素的上述功效,逆轉其對高糖誘導的HK-2細胞的保護作用,表明大黃素不僅可通過減輕炎癥而改善DN大鼠腎損傷,還可通過抑制ILK/MAPK信號,降低促炎因子表達水平,減輕炎癥,緩解高糖引發(fā)的腎小管上皮細胞凋亡損傷。
綜上所述,大黃素可下調ILK表達,減弱p38 MAPK磷酸化,減少炎性介質生成,阻礙炎癥發(fā)生及進展,減輕高糖引發(fā)的腎小管上皮細胞凋亡及腎組織損傷,修復腎功能。其中,抑制ILK/MAPK信號傳導可能是其發(fā)揮上述藥理功效的分子機制之一。本研究為大黃素的臨床推廣應用提供了新的參考,但本研究中關于其作用機制的研究還存在一定不足,后續(xù)會通過動物回歸實驗進行深入探討。