萬 紅,趙 釗,梁花蕾,崔海容,劉虎威
(武昌理工學(xué)院 生命科學(xué)學(xué)院,湖北 武漢 430223)
表面等離子體共振(Surface plasma resonance,SPR)是一種光學(xué)生物傳感技術(shù)[1],當(dāng)光從光密介質(zhì)進(jìn)入光疏介質(zhì)時,會發(fā)生反射與折射,而SPR共振角度會隨著反射光折射率的變化而改變。當(dāng)偶聯(lián)在傳感芯片表面的生物分子與其它分子發(fā)生相互作用時,會引起反射光折射率的改變,通過實時監(jiān)測SPR共振角的變化,即可記錄樣品與固定在SPR芯片上的生物識別分子之間的特異性結(jié)合情況[2]。SPR具有無需標(biāo)記樣品,樣品前處理簡單,樣品用量少,檢測靈敏度高,能實時檢測生物分子間的相互作用,并獲得分子間結(jié)合與解離的信息等優(yōu)點[3-4],因而被廣泛應(yīng)用于藥物篩選[5-6]、生物檢測[7]和食品分析[8]等領(lǐng)域。
構(gòu)建合適的SPR生物傳感界面是提高檢測靈敏度和選擇性的重要途徑。構(gòu)筑SPR芯片需要考慮如下因素[9-12]:(1)根據(jù)生物分子的特性和目標(biāo)分析物的性質(zhì)以及二者間的相互作用機理,功能化修飾SPR芯片表面,以固定生物識別分子;(2)功能化的芯片表面須具有生物相容性,以保持固定分子的生物活性;(3)提高生物識別分子的負(fù)載量,以增加其與目標(biāo)分子特異性反應(yīng)的量;(4)防止芯片表面的非特異性結(jié)合,減少其它分子的干擾。
構(gòu)筑SPR芯片的主要步驟是首先將芯片表面的金功能化修飾,然后通過吸附或化學(xué)偶聯(lián)的方法在金表面固定生物識別分子。生物識別分子與目標(biāo)分子的相互作用是利用分子中特定的點位或片段與目標(biāo)分子進(jìn)行特異性結(jié)合。根據(jù)生物識別分子的分布和空間取向,生物識別分子的固定方法分為非定向固定和定向固定兩種。生物識別分子的非定向固定是指通過化學(xué)偶聯(lián)方法固定在SPR芯片表面的生物識別分子處于隨機分布狀態(tài),且分子識別片段的取向也是隨機的;生物識別分子的定向固定是指通過一定的化學(xué)或生物化學(xué)反應(yīng),使生物識別分子均勻地固定在SPR芯片表面,且分子識別片段的取向一致。
自組裝單層膜法(Self-assembled monolayer,SAM)是利用雙官能團分子的一端巰基與金的共價鍵作用,在芯片表面形成有序單分子組裝體的方法。雙官能團分子的另一端通常為羧基官能團,經(jīng)碳二亞胺活化后,可偶聯(lián)生物識別分子[13]。
自組裝單層膜法能在金表面形成高度有序且致密的單分子膜,通過調(diào)節(jié)雙官能團分子碳鏈的長度,可以調(diào)控生物識別分子與目標(biāo)分析物之間相互作用的效果[14]。自組裝單層膜的厚度較薄,其優(yōu)點是對金表面SPR影響較小,但缺點是生物識別分子的負(fù)載量較小,檢測靈敏度受影響。為克服這一問題,Melaine和Kim等人分別利用單鏈/雙鏈DNA[15]、抗原/抗體形成的三明治結(jié)構(gòu)[16],負(fù)載納米金粒子,從而增強SPR信號。
自組裝單層膜也可使用巰基化的聚乙二醇(Polyethylene glycol,PEG)作為自組裝分子。巰基化的聚乙二醇由于具有巰基烷烴的柔性和有序特性,且羥基(—OH)具有親水性,因此能夠有效地固定生物識別分子,被用于構(gòu)筑SPR芯片的有線性PEG6[17](圖1)、二巰基化PEG(DSPEG2)[18]和羧基功能化的二巰基PEG(S2PEGCOOH)[19]等。
圖1 自組裝膜法固定生物識別分子示意圖[17]Fig.1 Schematic diagram of immobilizing bioreceptor by SAM[17]
為增加表面生物識別分子的負(fù)載量,可使用兩種或多種自組裝分子形成自組裝混合膜,以調(diào)節(jié)膜端基的官能團密度,更多地錨定分子量較大的生物識別分子,從而提高檢測的靈敏度[20-21]。
如前所述,SPR芯片表面的自組裝單層膜有序可控,但生物識別分子的負(fù)載量較小。因此,可通過在SPR芯片表面修飾多維聚合物膜來提高生物識別分子的負(fù)載量。一些高分子聚合物由于含有多個活性官能團,這些官能團既能在芯片表面形成穩(wěn)定的薄膜,同時活化后又能偶聯(lián)生物識別分子,因此在SPR芯片制備中得到廣泛的應(yīng)用。
羧甲基化葡聚糖(Carboxymethyl dextran,CMD)常被用于SPR芯片表面形成多維聚合物膜。CMD分子的終端有許多羧基官能團,活化后可以化學(xué)偶聯(lián)生物識別分子。其負(fù)載量比自組裝單層膜高,主要原因是CMD分子的羧基官能團與芯片表面的結(jié)合位點大大增加[22]。He等[23]用羧甲基葡聚糖在芯片表面制備了多維聚合物。經(jīng)EDC/NHS(1-(3-Dimethylaminopropyl)-3-ethylcarbodiimide hydrochloride/NHydroxysuccinimide)活化后,固定蛋白偶合物(卵清蛋白)與抗原。由此制備的SPR傳感芯片可用于檢測生物標(biāo)志物3-硝基酪氨酸,檢測結(jié)果表明SPR生物傳感器的分析性能比酶聯(lián)免疫方法更好。Xia等[24]用CMD聚合物修飾的芯片易于同時共價固定2種生物識別分子,且能高效再生;研究表明采用EDC/NHS活化后固定2種抗體,可同時檢測牛奶和血清中的慶大霉素與三聚氰胺。
由于SPR的感應(yīng)范圍有限,平均穿透深度小于200 nm,靈敏度隨著芯片表面膜厚度的增加呈指數(shù)級下降,聚合物的使用可能會使芯片表面的基質(zhì)層厚度達(dá)200 nm,從而極大地影響了SPR的分析性能[25]。Wang等[26]比較了SAM和CMD功能化芯片的SPR分析性能,發(fā)現(xiàn)SAM功能化芯片具有更高的靈敏度,主要原因是SAM膜更薄,金表面的SPR響應(yīng)信號更強。
聚多巴胺(PDA)薄膜也廣泛應(yīng)用于制備SPR生物傳感器。在弱堿性的水溶液中,多巴胺發(fā)生自發(fā)聚合反應(yīng),能在各種有機和無機基底表面形成穩(wěn)定的聚多巴胺薄膜。聚多巴胺中的醌基能與生物分子中的胺基或巰基通過邁克爾加成或Schiff堿反應(yīng)形成共價鍵,從而固定生物識別分子。Lee等[27]的研究表明,只需將多巴胺溶液滴加在金表面,多巴胺便可實時聚合,聚多巴胺層的厚度可通過改變沉積時間進(jìn)行控制。此外,端基為胺基的DNA可直接偶聯(lián)到聚多巴胺膜表面,無需添加額外試劑[28]。Toma等[29]在溫和反應(yīng)條件下,在金芯片表面制備了聚多巴胺薄膜,結(jié)果表明在不使用任何偶聯(lián)試劑的條件下,聚多巴胺薄膜表面可共價偶聯(lián)抗體,且抗體偶聯(lián)反應(yīng)速率較快,并可實時調(diào)控(圖2)。
圖2 聚多巴胺固定生物識別分子示意圖[29]Fig.2 Schematic diagram of the PDA immobilization of bioreceptors[29]
與傳統(tǒng)SAM耦合方法相比,將抗體固定到聚多巴胺薄膜可增大生物識別分子的負(fù)載量,原因是薄膜表面結(jié)合位點增加,空間位阻減小,且抑制了EDC/NHS的水解問題[30]。
基于自組裝單層膜法和多維聚合物膜法實現(xiàn)功能化的芯片均可偶聯(lián)DNA、抗體、生物素和蛋白質(zhì)等生物識別分子,但固定的生物識別分子的取向是隨機的,不利于與目標(biāo)分析分子的有效結(jié)合。生物識別分子的定向固定,是使識別分子的取向適合與目標(biāo)分子結(jié)合,從而充分利用芯片表面固定的生物識別分子,提高SPR傳感的靈敏度。此外,影響SPR檢測選擇性的主要因素是檢測樣品中物質(zhì)在芯片表面的非特異性吸附。在定向固定法中,芯片表面往往形成的是單分子層膜,且分子取向一致,增加了特異性反應(yīng),降低了非特異性吸附,從而提高檢測的選擇性;非定向固定法中,芯片表面往往形成的是多層膜,且分子取向隨機,導(dǎo)致非特異性吸附較強,但檢測的選擇性較低。因此,生物識別分子的定向固定成為研究熱點,也是提高分析靈敏度和選擇性的重要途徑。
巰基化的單鏈DNA可在SPR芯片的金表面形成自組裝膜,然后與生物分子(如抗體、生物素)標(biāo)記的DNA通過堿基配對互補關(guān)系雜交形成雙鏈DNA,從而固定目標(biāo)生物分子。Ladd等[31]首先在金芯片上用標(biāo)記生物素巰基烷烴形成自組裝膜,然后用親和素偶聯(lián)單鏈DNA,再通過雜交將DNA標(biāo)記的人絨毛膜促性腺激素抗體固定在SPR表面(如圖3A),由此制備的SPR芯片對人絨毛膜促性腺激素的檢出限為0.5 ng/mL。Bombera等[32]設(shè)計并構(gòu)建了一種用于細(xì)胞實時分選的DNA-DNA-抗體SPR生物芯片,研究了定向化的分子和細(xì)胞之間的相互作用。Leroy等[33]采用DNA定向偶聯(lián)抗CD19和抗CD90IgG,分別捕獲B淋巴細(xì)胞和T淋巴細(xì)胞,使用限制性內(nèi)切酶切割DNA-蛋白偶聯(lián)物,監(jiān)測細(xì)胞的釋放(如圖3B)。
DNA與低分子量抗原偶合物也可用于構(gòu)建SPR生物傳感器,Tort等[34]將類固醇半抗原-DNA偶合物,通過基因雜交偶聯(lián)至SPR芯片表面,實驗結(jié)果表明其對抗血清(As147、As170和As138)有較好的識別作用(如圖3C)。
DNA折紙是指通過長的單鏈DNA支架,與數(shù)百條與之互補配對的短鏈DNA相互配對后,折疊成一定形狀,具有很好的生物相容性的DNA微觀結(jié)構(gòu)。這種DNA微觀結(jié)構(gòu)不僅能定向固定生物識別分子,而且可以形成生物識別分子陣列,大大提高芯片表面的負(fù)載量。利用DNA折紙技術(shù)[35],將結(jié)合凝血酶的核酸適配體定向固定至DNA微觀結(jié)構(gòu)中,檢測凝血酶的量可低至6.1 nmol(如圖3D)。
圖3 DNA定向構(gòu)建SPR芯片F(xiàn)ig.3 SPR chips constructed by DNA-directed immobilization
蛋白A(Protein A)來源于金黃色葡萄球菌的一個株系,含有多個可與免疫球蛋白(IgG)分子的Fc段特異性結(jié)合的結(jié)構(gòu)域。蛋白G(Protein G)是從G類鏈球菌中分離出的胞壁蛋白,不僅可結(jié)合IgG的Fc段,還能結(jié)合IgG的Fab段,對于大多數(shù)哺乳動物的IgG有著更高的親和力。在芯片表面先用巰基羧酸自組裝膜,再用EDC/NHS試劑活化羧基,然后通過偶聯(lián)的方法將免疫球蛋白固定在芯片表面,得到的免疫球蛋白的特異位點是隨機分布的。如果活化羧基后,先偶聯(lián)蛋白G[36],再固定人體生長激素免疫球蛋白,便可實現(xiàn)免疫球蛋白的定向固定,使芯片表面固定的人體生長激素抗體增加2.6倍。為了有效地克服芯片在洗滌過程中抗原/抗體的離解,使用化學(xué)交聯(lián)劑交聯(lián)抗原/抗體后,可使人體生長激素抗體的檢測靈敏度增加3.5倍。Paiva等[37]用二硫化碳作為交聯(lián)劑與蛋白A的胺基相聯(lián),通過硫元素與金表面形成共價鍵固定蛋白A。另外加入納米金,可以負(fù)載更多的蛋白A。用蛋白A固定IgG能夠使IgG的結(jié)合位點取向一致,二硫化碳還起到防止IgG非特異性吸附的作用(如圖4),可使檢測抗體的量增加2.6倍。
圖4 二硫化碳功能化蛋白A定向固定受體示意圖[37]Fig.4 Schematic diagram of functionalization of protein A with carbon disulfide and direct immobilization of the receptor[37]
值得注意的是,由于蛋白A和蛋白G作用于免疫球蛋白分子特異性結(jié)合的結(jié)構(gòu)域,將會影響抗原、抗體的相互作用,從而影響檢測的靈敏度。
“點擊化學(xué)”(Click chemistry)的代表反應(yīng)是由疊氮化物和炔烴作用形成共價鍵。該反應(yīng)條件溫和,特異性高,穩(wěn)定性好,甚至能在活細(xì)胞中進(jìn)行,且能保持生物分子的生物活性。Van't Veer等[38]研究發(fā)現(xiàn),將疊氮基團引入重鏈抗體分子中,然后在芯片表面引入環(huán)辛炔,通過銅(Ⅰ)催化疊氮化物-炔烴環(huán)發(fā)生加成反應(yīng)后,再將重鏈抗體定向固定在芯片表面,制備的SPR芯片檢測靈敏度可提高10倍以上(見圖5)。為消除催化劑銅(Ⅰ)鹽對生物分子的毒性,避免生物分子因結(jié)構(gòu)改變而失活,可在無銅條件下實現(xiàn)點擊化學(xué)。Trilling等[39]用含疊氮基團的青霉素結(jié)合蛋白質(zhì)(Penicillin-binding proteins,PBPs),通過疊氮化物-炔烴環(huán)加成反應(yīng),將PBPs均勻地固定在二芐基環(huán)辛炔涂層表面,結(jié)果顯示,定向固定的PBPs仍保持生物活性,與特異性蛋白結(jié)合后SPR信號顯著增強。
圖5 疊氮修飾重鏈抗體分子固定示意圖[38]Fig.5 Schematic diagram of orientation of immobilized VHHs with tailor-made modifications[38]
氨基三乙酸(Nitrilotriacetic acid,NTA)可用于蛋白質(zhì)定向固定化,其原理是NTA分子和金屬離子(如Ni2+、Co2+、Zn2+、Cu2+)之間形成4配位的螯合物,螯合物中金屬離子的另2個游離態(tài)結(jié)合位點與六組氨酸(Hexa-histidine,His6)標(biāo)記蛋白質(zhì)的2個連續(xù)的組氨酸形成配位鍵。His6是融合重組蛋白純化和檢測的常用標(biāo)簽,可重組到蛋白質(zhì)中的特定位置,因此可在SPR芯片表面均勻地定向固定His6標(biāo)記蛋白,用于分子識別。Wasserberg等[40]重組了帶有His6標(biāo)簽的紅色熒光蛋白(TagRFP),用(His6)-Ni2+∶NTA方法在芯片表面固定TagRFP(圖6)。結(jié)果表明,固定在芯片表面的TagRFP穩(wěn)定性增加了1個數(shù)量級,且所有TagRFP生物活性位點的取向一致。由于蛋白質(zhì)的3D空間結(jié)構(gòu)較為復(fù)雜,帶有1種His6標(biāo)簽的蛋白質(zhì)可能因NTA螯合物錨點較少而不夠穩(wěn)定,無法確保蛋白質(zhì)在表面定向固定。因此,可在蛋白質(zhì)分子中引入多個His6標(biāo)簽,但要注意引入的幾個His6標(biāo)簽必須結(jié)合在特定位置,因此對于蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的設(shè)計要求更高。
圖6 NTA定向固定生物受體示意圖[40]Fig.6 Schematic diagram of NTA strategy for oriented immobilization of bioreceptors[40]
為增加蛋白質(zhì)配位復(fù)合物的穩(wěn)定性,His6標(biāo)記蛋白質(zhì)可附著在羧甲基化葡聚糖膜上,并使用交聯(lián)劑固定,使用此方法可獲得穩(wěn)定的高密度定向生物識別分子的SPR芯片。用固定His6標(biāo)記的人碳酸酐酶檢測藥物4-羧基苯磺酰胺,檢出限為14 nmol/L,具有較高靈敏度[41]。
為提高在SPR生物傳感芯片上固定His6標(biāo)記蛋白質(zhì)的均勻性和負(fù)載量,可使用其他NTA復(fù)合物。如將三氨五乙酸硫醇(DPTA)或甲苯二吡咯硫醇(DPM)與形成銅(Ⅱ)的配合物自組裝至SPR金芯片表面,可實現(xiàn)His6標(biāo)記的Janus激酶2(GST-His6-JAK2)的定向固定[42]。實驗結(jié)果表明,與用DPTACu(Ⅱ)定向固定蛋白相比,用DPM-Cu(Ⅱ)配合物定向固定的GST-His6-JAK2蛋白的動力學(xué)和熱力學(xué)參數(shù)均有較好的提升,主要原因是DPM的空間位阻更小。
利用表面化學(xué)原理和納米技術(shù)設(shè)計與制備功能化的芯片,定向固定生物識別分子,是提高SPR生物傳感器檢測靈敏度和選擇性的有效途徑。將來應(yīng)努力開發(fā)通用的定向固定方法,以廣泛應(yīng)用于不同的SPR傳感器。
(1)將氧化石墨烯等2D納米材料應(yīng)用于SPR生物傳感器的研究取得了一些進(jìn)展[43-44],但局限于增加芯片表面立方體空間,需引入納米金粒子,以增強SPR響應(yīng)。要進(jìn)一步開發(fā)各種2D納米材料,修飾芯片表面,以增加定向固定化生物識別分子的負(fù)載量,提高檢測的靈敏度。
(2)利用蛋白本身的結(jié)構(gòu)特性,開發(fā)出針對特定類別的蛋白固定技術(shù)。如針對常見的帶有組氨酸殘基的蛋白,捕獲鎳離子常用的配體是三齒配體氨基三乙酸[45-46],有關(guān)二齒配體亞氨基二乙酸的報道并未應(yīng)用于SPR技術(shù)中,而一般認(rèn)為由于二齒配體相對于三齒配體的空間位阻較小,在蛋白固定中可能會表現(xiàn)出獨特的優(yōu)勢。
(3)利用生物技術(shù),如定點突變、從頭設(shè)計、蛋白質(zhì)融合等重組蛋白[47-48],在生物識別分子表面引入固定化基團,達(dá)到一步定向固定生物識別分子的目的。
總之,SPR技術(shù)的發(fā)展不僅使人們能高效快速地篩選藥物,研究生物分子的相互作用,而且有可能提供更靈敏的環(huán)境污染物監(jiān)測、癌癥標(biāo)志物監(jiān)測和食品安全分析方法。在SPR傳感芯片上有效固定生物分子是一個重要的研究領(lǐng)域。我們相信,隨著各種固定化技術(shù)的完善及新技術(shù)的出現(xiàn),SPR技術(shù)必將得到更快的發(fā)展,為科學(xué)研究和社會經(jīng)濟發(fā)展提供更強大的分析手段。