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哈茨木霉和葡萄座腔菌對(duì)亞甲基藍(lán)染料的脫色試驗(yàn)初報(bào)

2022-05-21 01:35:24魏鴻錦吳林應(yīng)尚曉靜
南方農(nóng)業(yè) 2022年7期
關(guān)鍵詞:過氧化物脫色氮源

魏鴻錦,吳林應(yīng),尚曉靜,侯 瑞

(貴州大學(xué),貴州貴陽(yáng) 550025)

亞甲基藍(lán)(Methylene blue)是一種噻嗪類染料,已被廣泛應(yīng)用于紡織品和紙張的染色。其污水已被證實(shí)可引發(fā)多種疾病,如休克、黃疸、組織壞死、嘔吐、眼灼傷、惡心、頭暈等[1]。因此,如何高效處理染料廢水,已成為全世界關(guān)注的主要問題之一[2]。目前處理染料廢水的方法主要分為物理法、化學(xué)法和生物法3類[3]。其中生物法運(yùn)行成本低,綠色環(huán)保,具有較大的研究?jī)r(jià)值?,F(xiàn)有研究顯示,具有脫色染料功能的生物有細(xì)菌、真菌和藻類等[4]。楊春霖研究發(fā)現(xiàn)黃絲衣霉菌(Byssochlamys Fulva)對(duì)亞甲基藍(lán)染料廢水具有良好的脫色效果[5];張桐等人研究的一栓孔菌ZT-197(Trametes versicolor)對(duì)亞甲基藍(lán)染液的脫色率高達(dá)98%[6]。

木質(zhì)素降解酶作用是生物脫色的主要機(jī)制,木質(zhì)素降解酶包括:漆酶(laccase,Lac)、木質(zhì)素過氧化物酶(lignin peroxidase,LiP)和錳過氧化物酶(manganese peroxidase,MnP)[7]。漆酶具有較強(qiáng)的氧化還原能力,可對(duì)多種染料進(jìn)行脫色[8],木質(zhì)素過氧化物酶和錳過氧化物酶是兩種常見的過氧化物酶,能夠有效分解木質(zhì)素和多種有機(jī)物[9]。木霉菌是目前產(chǎn)纖維素酶量最高的菌株,能夠有效降解纖維素[10-11]。有效利用纖維素酶,將纖維素轉(zhuǎn)化成人類可利用的能源十分重要[12]。

本試驗(yàn)從女貞樹樹干上分離得到菌株B7,從楊樹樹干上分離得到菌株N38,并對(duì)其進(jìn)行固體脫色篩選。菌株B7、N38 對(duì)孔雀石綠、亞甲基藍(lán)的脫色效果均為明顯。在進(jìn)行固體培養(yǎng)基脫色篩選時(shí),兩株菌株在添加孔雀石綠染料的培養(yǎng)基里生長(zhǎng)速度明顯慢于其他染料培養(yǎng)基,因此選擇對(duì)亞甲基藍(lán)進(jìn)行脫色優(yōu)化試驗(yàn)。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

1.1.1 菌株

N38、B7菌株均來源于貴州大學(xué)校園內(nèi)楊樹、女貞樹枝干,通過真菌分離法獲得,于4 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

1.1.2 培養(yǎng)基

PD 培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,蒸餾水1 000 mL;PDA 培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、瓊脂18 g、一次蒸餾水1 000 mL;PDB 培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、蒸餾水1 000 mL;碳源篩選培養(yǎng)基:添加可溶性淀粉、麥芽糖、葡萄糖、麥芽糖、果糖作為碳源,分別添加20 g·L-1至PD 培養(yǎng)基中,pH 未調(diào)節(jié);氮源篩選培養(yǎng)基:添加硝酸鈉、氯化銨、硫酸銨、蛋白胨、尿素作為氮源,分別添加1.0 g·L-1至PDB 培養(yǎng)基中,pH 未調(diào)節(jié);金屬源篩選培養(yǎng)基:添加硫酸鋅、硫酸鉀、硫酸鐵、硫酸鎂、硫酸錳作為金屬源,分別添加1.0 g·L-1至PDB培養(yǎng)基中,pH未調(diào)節(jié)。

1.1.3 染料與試劑

活性染料:活性黑、活性紅;堿性染料:孔雀石綠、亞甲基藍(lán)、剛果紅、結(jié)晶紫;酸性染料:鉻黑T。次氯酸鈉溶液、無水乙醇、75%酒精、蒸餾水。

1.2 方法

1.2.1 菌株形態(tài)學(xué)鑒定

在超凈工作臺(tái)中,用9 mm 的無菌打孔器截取已活化的菌株B7、N38 的菌柄至新的PDA 固體培養(yǎng)基上,在28 ℃恒溫箱中避光培養(yǎng),記錄菌落的生長(zhǎng)情況(形態(tài)、直徑)[13]。培養(yǎng)6 d 后,用光學(xué)顯微鏡進(jìn)行形態(tài)學(xué)觀察、鑒定,參照《真菌鑒定手冊(cè)》[14]。

1.2.2 菌株分子生物學(xué)鑒定

提取菌株的DNA 時(shí)使用Plant Direct PCR Kit(Finnzymes,F(xiàn)inland)真菌DNA 提取試劑盒,通過PCR擴(kuò)增得到引物ITS1 和ITS4[15]。并送至重慶擎科興業(yè)生物技術(shù)有限公司進(jìn)行測(cè)序。同時(shí)從NCBI 獲得相關(guān)可靠的結(jié)果進(jìn)行比對(duì),利用MEGA7.0對(duì)上述分子序列進(jìn)行多序列比對(duì),采用MEGA7.0 中鄰接法(Neighbor joining,NJ)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,并結(jié)合菌株的形態(tài)特征證實(shí)該菌株的物種種類[16]。

1.2.3 菌株B7、N38 漆酶、木質(zhì)素過氧化物酶和錳過氧化物酶活性測(cè)定

將70 mL PDB 分別裝入250 mL 的三角瓶中,高溫下用低壓的熱蒸汽在每個(gè)滅菌鍋121 ℃下,滅菌30 min 后在每個(gè)新的三角瓶?jī)?nèi)分別重新接入4 片菌柄(d=9 mm)后并置于每一個(gè)新的三角瓶中,置于28 ℃下的恒溫中心后進(jìn)行一次避光滅菌培養(yǎng),將第2 d、4 d、6 d、8 d 和10 d 的發(fā)酵液吸取1.0 mL,再將其進(jìn)行5 min 轉(zhuǎn)速為7 000 r·min-1的離心,然后用紫外分光光度計(jì)測(cè)定其酶活性。

Lac 活性測(cè)定[17-18]:將PH 值為5 的1.95 mL 羥基檸檬酸-羥基磷酸氫二鈉緩沖液、1.0 mmol·L-12,2′-聯(lián)氮-雙-3-乙基苯并噻唑-6-磺酸[2,2′-azinobis-(3-ethylbenzthiazoline-6-sulphonate),ABTS]和0.05 mL 的上清發(fā)酵液置于30℃的電熱水浴中3 min 后,測(cè)定它在3 min 內(nèi)420 nm 處的強(qiáng)度吸光劑在照射下的強(qiáng)度及其值的變化改變,每個(gè)測(cè)定過程及其中的吸光處理均需要重復(fù)3 次。一個(gè)氧化酶的生物活力學(xué)計(jì)量單位(U)被定義為每分鐘可以通過酶催化底物氧化1.0 μmol ABTS 底物時(shí)所需酶的總數(shù)量(ABTS:ε420=3.6×104L·mol-1·cm-1)。

MnP 活性測(cè)定光劑[18-19]:0.84 mL 上清濃度為0.05 mol·L-1的羥基丙二酸鈉鹽水溶液、0.05 mL 上清濃度為0.01 mol·L-1的硫酸錳溶液、0.05 mL 上清濃度為0.01 mol·L-1的2,6-二甲氧基乙酰苯酚(2,6-dimethoxyphenol,2,6-dmp)、0.05 mL 上清濃度發(fā)酵液和0.01 mL 上清濃度按照比例測(cè)量為0.01 mol·L-1的雙氧水裝入一個(gè)吸光比色皿中,測(cè)定1 min 內(nèi)468 nm內(nèi)皿處的各種吸光劑在照射下的強(qiáng)度和數(shù)值的活性變化,每個(gè)比色皿中的強(qiáng)度處理均勻后可以同時(shí)重復(fù)3 次。一個(gè)氧化酶的整體活力學(xué)計(jì)量單位(U)被定義為每分鐘可以通過催化底物氧化1.0 μmol 2,6-dmp底物的整體所需氧化酶量(2,6-DMP:ε468=4.68×104L·mol-1·cm-1)。

LiP 活性測(cè)定[6,18]:將混合后的溶液1.7 mL 濃度相差為0.25mol·L-1的四水合酒石酸鉀鈉溶液和0.05 mL濃度相差為0.1 mol·L-1的藜蘆醇(veratryl alcohol,VA溶液置于30 ℃的水浴中進(jìn)行預(yù)熱后,依次在鍋中加入0.05 mL 上清發(fā)酵液和濃度為0.1mol·L-1的0.05 mL 雙氧水,測(cè)定其在3 min內(nèi)310 nm 處吸光光度值的變化,每個(gè)處理均重復(fù)3 次。一個(gè)酶的活力學(xué)單位(U)被定義為每分鐘可以通過催化氧化1.0 μmol VA 物所需酶量(VA:ε310=9.3×103L·mol-1·cm-1)。

1.2.4 固體培養(yǎng)基脫色篩選

添加50.0 mg·L-1活性紅、活性黑、孔雀石綠、剛果紅、亞甲基藍(lán)、鉻黑T、結(jié)晶紫至PDA 培養(yǎng)基中,121 ℃下高溫高壓蒸汽滅菌30 min。在超凈工作臺(tái)中將加入不同染料的PDA(20 mL)倒入直徑90 mm 的培養(yǎng)皿中,用9 mm 的無菌打孔器截取已活化菌株B7、N38 的菌柄至不同染料的PDA 固體培養(yǎng)基上,上述操作重復(fù)3 次。再做一組不接菌的空白對(duì)照,每個(gè)染料作一組空白對(duì)照(7組)。在28 ℃恒溫培養(yǎng)箱避光培養(yǎng)10 d,根據(jù)接菌組的脫色圈大小及顏色變化與對(duì)照組相比較,計(jì)算菌株B7、N38 對(duì)不同染料的脫色率,RD為染料脫色率,A1為脫色圈直徑,A0為對(duì)照組染料區(qū)域直徑,計(jì)算公式為:RD(%)=A1/A0×100[20]。

1.2.5 碳源種類對(duì)菌株B7、N38脫色亞甲基藍(lán)的影響

添加麥芽糖、葡萄糖、蔗糖、可溶性淀粉、果糖作為碳源,分別添加20 g·L-1的碳源至染料終質(zhì)量濃度50.0 mg·L-1的PD 培養(yǎng)基作為碳源篩選培養(yǎng)基,在100 mL 三角瓶中裝入50 mL 碳源篩選培養(yǎng)基。以同樣濃度的PD染料培養(yǎng)基作為對(duì)照組。

1.2.6 氮源種類對(duì)菌株B7、N38脫色亞甲基藍(lán)的影響

添加硝酸鈉、氯化銨、硫酸銨、蛋白胨、尿素作為氮源,分別添加1.0 g·L-1的氮源至染料終質(zhì)量濃度50.0 mg·L-1的PDB 培養(yǎng)基作為氮源篩選培養(yǎng)基,將50 mL 氮源篩選培養(yǎng)基裝入100 mL 三角瓶中。以同樣濃度的PDB染料培養(yǎng)基作為對(duì)照組。

1.2.7 金屬源種類對(duì)菌株B7、N38脫色亞甲基藍(lán)的影響

添加硫酸鋅、硫酸鉀、硫酸鐵、硫酸鎂、硫酸錳作為金屬源,分別添加1.0 g·L-1的金屬源至染料終質(zhì)量濃度50.0 mg·L-1的PDB 培養(yǎng)基作為金屬源篩選培養(yǎng)基,將50 mL 金屬源篩選培養(yǎng)基裝入100 mL 三角瓶中。將同樣濃度的PDB染料培養(yǎng)基作為對(duì)照組。

1.2.8 裝液量對(duì)菌株B7、N38脫色亞甲基藍(lán)的影響

將濃度為50.0 mg·L-1PDB 染料培養(yǎng)基分裝90.0 mL、70 mL、50 mL、30 mL、10 mL 于100 mL 三角瓶瓶中。

1.2.9 pH值對(duì)菌株B7、N38脫色亞甲基藍(lán)的影響

將PDB培養(yǎng)基染料濃度調(diào)至50.0 mg·L-1,分別倒入100 mL三角瓶中,高溫高壓蒸汽滅菌30 min。在超凈工作臺(tái)中用已滅菌的過濾器過濾NaOH、HCL,用NaOH、HCL將培養(yǎng)基調(diào)整為pH3、pH5、pH7、pH9、pH11。

1.2.10 染料吸光值的測(cè)定、脫色率的計(jì)算及數(shù)據(jù)分析

分別取4 片菌柄(d=6 mm)于上述三角瓶中,重復(fù)3次。28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中避光培養(yǎng)10 d,每2 d在超凈工作臺(tái)中取1.8 mL 染料發(fā)酵液,經(jīng)1 2000 r·min-1離心2 min,取1.0 mL 上清液于紫外分光光度計(jì)波長(zhǎng)為662 nm 測(cè)量其OD 值。液體染料脫色公式為RD=(C0-C1)/C0×100%[17]。C0為未接菌PDB 染料培養(yǎng)基的光度值,C1為已接菌的染料發(fā)酵液,RD為液體染料脫色率。

2 結(jié)果與分析

2.1 菌株N38和B7形態(tài)學(xué)觀察、DNA的提取及ITS系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建

菌株N38 和B7 于恒溫培養(yǎng)箱中,4 d 即可長(zhǎng)滿培養(yǎng)皿(見圖1)。提取菌株B7、N38 的DNA 后,進(jìn)行引物擴(kuò)增得到PCR 產(chǎn)物送其測(cè)序,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(見圖2)。獲得測(cè)序結(jié)果后登錄網(wǎng)站GenBank,得到菌株N38 的登錄號(hào)MZ461912.1,菌株B7 的登錄號(hào)OK021633.1。

圖1 菌株N38、B7的菌落形態(tài)學(xué)觀察

圖2 基于ITS序列的系統(tǒng)發(fā)育樹

2.2 漆酶、木質(zhì)素過氧化物酶和錳過氧化物酶的活性變化

培養(yǎng)第2 d 開始監(jiān)測(cè)菌株N38 產(chǎn)酶活性,其酶活性隨時(shí)間的增長(zhǎng)呈現(xiàn)先增長(zhǎng)再降低的趨勢(shì)。Lac 活性在第8 d 時(shí)達(dá)到峰值,其酶活力為9.27 U·L-1;MnP 活性也在第8 d 達(dá)到最大值,為16.53U·L-1;而LiP 活性在第6 d達(dá)到最大值,為7.66U·L-1(見圖3a)。

培養(yǎng)第2 d 開始監(jiān)測(cè)菌株B7 產(chǎn)酶活性,其酶活性隨時(shí)間的增長(zhǎng)呈現(xiàn)先增長(zhǎng)再降低的趨勢(shì)。Lac 活性與MnP 活性均在第6 d 達(dá)到峰值,其酶活力分別為13.31 U·L-1、11.29 U·L-1;LiP 活性在第8 d達(dá)到峰值,為5.24 U·L-1(見圖3b)。

圖3 漆酶、木質(zhì)素過氧化物酶、錳過氧化物酶的活性變化

2.3 菌株B7、N38對(duì)7種分屬不同類別染料脫色篩選

將菌株接種在添加孔雀石綠、剛果紅、鉻黑T、活性黑、活性紅、結(jié)晶紫、亞甲基藍(lán)的固體染料培養(yǎng)基上。觀察后發(fā)現(xiàn),菌株B7對(duì)孔雀石綠和亞甲基藍(lán)脫色都很明顯,脫色率分別為92.78%、92.22%,對(duì)剩余染料的脫色率由高到低依次為:結(jié)晶紫(79.22%)、鉻 黑T (64.44%)、活 性 紅(50.00%)、剛 果 紅(44.44%)、活性黑(41.11%)(見圖4a);菌株N38 對(duì)亞甲基藍(lán)的脫色效果最佳,脫色率為92.78%,對(duì)活性紅、結(jié)晶紫、剛果紅三種染料脫色率相同,均為88.89%,對(duì)剩余染料的脫色率由高到低依次為:孔雀石綠(82.22%)、活性黑(5.00%)、鉻黑T(3.33%)(見圖4b)。

圖4 菌株對(duì)7種染料的脫色率

2.4 菌株N38、B7脫色亞甲基藍(lán)受碳源種類的影響

脫色第10 d,添加葡萄糖作為碳源時(shí)的脫色效果最好,脫色率達(dá)84.92%;其次果糖與麥芽糖效果較為接近,脫色率分別為73.38%、70.43%;蔗糖和淀粉脫色率略低,依次是68.64%、48.13%。依結(jié)果可見淀粉作為碳源對(duì)N38 脫色效果并不佳,與其他碳源差距明顯(見圖5a)。

脫色第10 d,添加葡萄糖作為碳源時(shí)的脫色效果最好,脫色率達(dá)83.01%;果糖、蔗糖與淀粉效果較為接近,脫色率分別為77.99%、70.74%、69.57%;麥芽糖脫色率最低,僅54.66%。結(jié)果顯示麥芽糖作為碳源對(duì)N38 脫色效果不佳,與其他碳源差距明顯(見圖5b)。

圖5 碳源對(duì)菌株脫色亞甲基藍(lán)的影響

2.5 菌株N38、B7脫色亞甲基藍(lán)受氮源種類的影響

五種氮源中,以氯化銨為氮源的脫色效果最佳,脫色率為93.21%;添加蛋白胨與尿素脫色效果次之,脫色率依次為74.28%、76.12%;添加硫酸銨的脫色率為65.09%;而硝酸鈉添加后脫色效果最差,脫色率為54.34%。綜上所述,添加氯化銨作為氮源對(duì)菌株N38脫色亞甲基藍(lán)效果明顯(見圖6a)。

五種氮源中,以硝酸鈉為氮源的脫色效果明顯,脫色率為80.31%;添加蛋白胨,脫色效果次之,脫色率為75.44%;添加尿素、氯化銨和硫酸銨的脫色效果明顯降低,脫色率依次為:27.17%、25.38%、15.29%。綜上所述,添加硝酸鈉作為氮源對(duì)菌株B7脫色亞甲基藍(lán)效果明顯(見圖6b)。

圖6 氮源對(duì)菌株脫色亞甲基藍(lán)的影響

2.6 菌株N38、B7脫色亞甲基藍(lán)受金屬離子種類的影響

鎂離子的添加對(duì)菌株N38脫色亞甲基藍(lán)效果最佳,脫色率為88.80%;其余四種金屬離子脫色效果都較為接近,添加鋅離子、鐵離子、錳離子、鉀離子為金屬源對(duì)菌株N38 脫色亞甲基藍(lán)效果十分接近,脫色率分別為78.47%、76.60%、76.21%、71.42%(見圖7a)。

鋅離子的添加對(duì)菌株B7脫色亞甲基藍(lán)效果最佳,脫色率為91.18%;鉀離子、鎂離子脫色效果都較為接近,其脫色率依次是:85.73%、82.78%;添加錳、鐵離子作為金屬源的脫色率較低,依次為69.93%、59.62%(見圖7b)。

圖7 金屬離子對(duì)菌株脫色亞甲基藍(lán)的影響

2.7 菌株N38、B7脫色亞甲基藍(lán)受裝液量的影響

裝液量為30 mL 時(shí),脫色效果最佳,脫色率為99.11%;裝液量為10 mL 時(shí)脫色效果也同樣很好,脫色率為95.75%;其余3 種裝液量脫色效果隨著裝液量增加,脫色率下降,裝液量為50 mL、70 mL、90 mL時(shí),脫色率依次為85.01%、65.41%、50.56%。當(dāng)裝液量達(dá)到90 mL 時(shí)脫色率明顯低于其余4 種裝液量(見圖8a)。

裝液量為10 mL 時(shí),脫色效果最佳,脫色率為90.56%;裝液量為30 mL 時(shí)脫色效果略低于10 mL 時(shí),脫色率為86.86%;隨著裝液量增加脫色率不斷下降,裝液量為50 mL、70 mL 和90 mL 時(shí),脫色率依次為68.59%、67.07%、31.95%。當(dāng)裝液量達(dá)到90 mL 時(shí),脫色率明顯低于其余4種裝液量(見圖8b)。

圖8 裝液量對(duì)菌株N38脫色亞甲基藍(lán)的影響

2.8 菌株N38、B7脫色亞甲基藍(lán)受pH值的影響

培養(yǎng)基pH 值不同,菌株的脫色能力也差異顯著。當(dāng)pH 值由3.0 增加至5.0 時(shí),脫色效果明顯增加,脫色率由15.88%增加為73.05%;當(dāng)pH 值為7 時(shí)脫色效果最佳,脫色率為77.99%;隨著pH 值繼續(xù)增大時(shí),脫色率下降趨勢(shì)明顯,pH 值為9 時(shí)脫色率為14.19%;pH 值為11 時(shí)脫色率為10.22%。綜上所述,菌株N38在極酸極堿的條件下脫色能力差(見圖9a)。

受pH 值的影響,菌株的脫色能力也差異顯著。當(dāng)pH 值為3.0 時(shí),脫色效果最佳,脫色率為97.30%;而pH 值為5 時(shí)脫色率為73.99%;當(dāng)pH 值為7 時(shí)脫色率也,脫色率為93.93%;但隨著pH 值繼續(xù)增大時(shí),脫色率下降趨勢(shì)明顯,pH 值為9 時(shí)脫色率為13.54%;pH 值為11 時(shí)脫色率為13.03%。綜上所述,菌株N38在極堿的條件下脫色能力差,培養(yǎng)基pH 值位于3 時(shí),菌株B7脫色亞甲基藍(lán)能力最強(qiáng)(見圖9b)。

圖9 pH值對(duì)菌株脫色亞甲基藍(lán)的影響

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本試驗(yàn)從貴州大學(xué)校園內(nèi)的女貞樹枝干上分離、純化得到菌株B7,從楊樹樹干上分離、純化得到菌株N38。根據(jù)菌株的形態(tài)學(xué)特征、ITS序列相似性比對(duì)以及進(jìn)化樹分析,鑒定B7 為哈茨木霉菌Trichoderma harzianum;N38 為葡萄座腔菌Botryosphaeria dothidea。哈茨木霉為半知菌亞門絲孢綱叢梗孢目科木霉屬,廣泛分布于森林生態(tài)系統(tǒng)中,其適應(yīng)性極強(qiáng),對(duì)多種病原真菌和細(xì)菌都有拮抗作用[21],是一類重要的生防真菌,廣泛存在于空氣、土壤以及植物體表面等生境中,具有強(qiáng)適應(yīng)力、存在范圍廣和廣譜、高效等優(yōu)點(diǎn)[22]。葡萄座腔菌是一種重要的植物內(nèi)生菌[23]。通過木質(zhì)素過氧化物酶的測(cè)定,可知兩菌株具有一定的脫色能力。B7、N38 的漆酶、木質(zhì)素過氧化物酶、錳過氧化物酶的酶活峰值出現(xiàn)在6~8 d,與喬喬研究的木質(zhì)素過氧化物酶的酶活峰值為第6~8 d 結(jié)果相同[24]。為了研究?jī)删暝诓煌瑮l件下對(duì)亞甲基藍(lán)脫色能力,本試驗(yàn)測(cè)定了不同碳源、氮源、金屬離子、pH值和裝液量條件下對(duì)菌株脫色亞甲基藍(lán)的影響。結(jié)果顯示添加葡萄糖作為碳源,菌株N38、B7 脫色亞甲基藍(lán)效果最佳,推測(cè)菌株N38、B7 在添加葡萄糖時(shí),可促進(jìn)其對(duì)亞甲基藍(lán)脫色。徐紅云在一色齒毛菌的脫色試驗(yàn)中,添加葡萄糖作碳源的脫色效果也最佳[25];添加氯化銨作為氮源,菌株N38脫色效果最佳。菌株B7在添加硝酸鈉作為氮源時(shí),脫色效果最佳。而一色齒毛菌脫色剛果紅時(shí),添加硝酸銨作氮源效果最佳[26],考慮是菌株不同,對(duì)氮源的需求也不同;添加硫酸鎂作為金屬源,菌株N38脫色亞甲基藍(lán)效果最佳。菌株B7在加入鋅離子作為金屬源時(shí),脫色率高達(dá)91.18%。由此可見,金屬離子是微生物生長(zhǎng)中不可或缺的一部分,少量的金屬離子可以促進(jìn)菌株的生長(zhǎng)[27];培養(yǎng)基pH值為7 時(shí),菌株N38 脫色亞甲基藍(lán)效果最佳。菌株B7在pH 值為5的條件下,脫色效果明顯。與周菲結(jié)論相對(duì)應(yīng),其研究的哈茨木霉脫色活性艷藍(lán)KN-R 的最適培養(yǎng)條件為pH 值為5.5[28],推測(cè)pH 值為5 左右時(shí),最適合哈茨木霉生長(zhǎng);當(dāng)裝液量為10 mL 時(shí),菌株N38、B7脫色亞甲基藍(lán)脫色率均達(dá)到90%以上。隨著裝液量的升高,脫色率逐漸降低,印證了姚英等的結(jié)論:當(dāng)裝液量為10 mL 時(shí),脫色效果最佳,但是在染液量超過菌株自身承載范圍時(shí),脫色效果大大降低[26]。推測(cè)菌株對(duì)染料脫色有一定的能力范圍,因此當(dāng)接菌量一定時(shí),裝液量越少脫色效果越明顯。葡萄座腔菌在脫色優(yōu)化方面暫無報(bào)道,在生態(tài)發(fā)展的時(shí)代,微生物降解染料廢液備受關(guān)注。綜合本研究結(jié)果,菌株N38、B7可脫色染料亞甲基藍(lán),這對(duì)染料廢水的治理具有一定借鑒和指導(dǎo)價(jià)值。

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