何晨晨,劉俐君,魯曉燕
(石河子大學(xué)農(nóng)學(xué)院/特色果蔬栽培生理與種質(zhì)資源利用兵團(tuán)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆石河子 832000)
【研究意義】鹽脅迫是植物生長發(fā)育過程中的重要限制因子,MicroRNA(miRNA)在植物應(yīng)答非生物脅迫的過程中具有重要的調(diào)控作用。miRNA是位于基因組非編碼區(qū)的內(nèi)源性的小分子單鏈RNA,長度多為20~24 bp[1],可特異識(shí)別靶mRNA并與之結(jié)合,降解靶mRNA、抑制翻譯、甲基化,負(fù)向調(diào)控基因表達(dá)[2],miRNA可以在轉(zhuǎn)錄水平、轉(zhuǎn)錄后水平和翻譯水平參與植物體內(nèi)的不同生物學(xué)過程[3],植物的生長發(fā)育、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)以及對(duì)脅迫的應(yīng)答等[4]。在植物抵御鹽脅迫過程中,miRNA在調(diào)控植物種子萌發(fā)、花芽分化、形態(tài)建成等發(fā)揮重要作用[5]。新疆野蘋果(Malussieversii(Ledeb.)Rome.)屬薔薇科(Rosaceae),蘋果屬(MalusMill.)植物[6],新疆野蘋果主要分布在中亞地區(qū)的天山山脈,以及我國新疆西部伊犁和塔城地區(qū),具有很強(qiáng)的生態(tài)適應(yīng)性[7];新疆野蘋果作為我國西部地區(qū)的蘋果生產(chǎn)的一個(gè)重要砧木,能耐極端最低溫-30℃左右,對(duì)溫度上限不敏感,耐旱力較強(qiáng),耐瘠薄以及抗病蟲害等多種優(yōu)良的抗逆性狀[8]。尹蓉[9]研究表明,對(duì)15種主要蘋果屬植物的抗逆性相關(guān)生長指標(biāo)及抗逆系數(shù)分析表明,新疆野蘋果屬耐鹽性中等蘋果屬植物資源。于瑋瑋等[10]研究表明,新疆野蘋果幼苗在NaCl脅迫下可通過積累脯氨酸和可溶性糖,提高SOD和POD的活性,以減緩NaCl脅迫對(duì)幼苗造成的傷害且具有一定的耐鹽性?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】Xu等[11]利用Illumina測序法對(duì)紅肉甜橙研究顯示,51個(gè)已知的miRNAs在突變型(MT)和野生型(WT)之間有顯著的表達(dá)差異。Pantaleo等[12]在葡萄中鑒定出24個(gè)保守的miRNA家族,26個(gè)已知但不保守的miRNA。王永江等[13]對(duì)甜橙miRNAs進(jìn)行了鑒定,預(yù)測并篩選出其調(diào)控的靶基因與植物與病原物互作相關(guān)。Niu等[14]研究發(fā)現(xiàn),梨樹與休眠相關(guān)的MADS-box基因和miRNAs共同控制著梨花芽休眠的轉(zhuǎn)變。Sun等[15]研究表明,柑橘miRNAs及其靶基因與植物的發(fā)育、轉(zhuǎn)錄、蛋白質(zhì)降解等多種細(xì)胞過程有關(guān)?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】呂新民等[16]預(yù)測miRNA及其靶基因與酸棗生長發(fā)育、轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)等相關(guān),其中一些基因可能參與酸棗響應(yīng)NaCl脅迫過程。研究借助先進(jìn)的Illumina測序平臺(tái)對(duì)新疆野蘋果NaCl脅迫應(yīng)答的Small RNA進(jìn)行測序,快速、高效地讀取高質(zhì)量的測序數(shù)據(jù)?!緮M解決的關(guān)鍵問題】對(duì)150 mmol/L NaCl處理6和48 h時(shí)的新疆野蘋果幼苗葉片進(jìn)行small RNA測序。篩選差異表達(dá)的miRNA及其靶基因,為分析新疆野蘋果的耐鹽機(jī)制提供參考。
供試材料為新疆野蘋果種子,購買于新疆伊犁哈薩克自治州霍城縣61團(tuán)。
新疆野蘋果種子經(jīng)4℃低溫層積處理90 d左右。發(fā)芽后播于進(jìn)口泥炭∶蛭石=3∶1混勻的基質(zhì)中,放置于人工氣候箱(RXZ智能型,寧波江南儀器廠)中培養(yǎng),培養(yǎng)條件為:溫度(25±1)℃,相對(duì)濕度65%~80%,光照強(qiáng)度12 000 lx,發(fā)芽期黑暗狀態(tài),出苗期光照白天16 h,黑夜8 h。等種子發(fā)芽長出6~8片真葉時(shí)選取生長健壯的幼苗作為試材,剪取約2~3 cm的莖端幼嫩組織接入培養(yǎng)基中進(jìn)行誘導(dǎo)分化培養(yǎng),誘導(dǎo)培養(yǎng)基為:MS培養(yǎng)基+0.5 mg/L IBA+2 mg/L 6-BA;繼代增殖培養(yǎng)基為:MS培養(yǎng)基+0.5 mg/L IBA+2 mg/L 6-BA,每30 d繼代1次;連續(xù)幾代增殖培養(yǎng)后選取生長健壯的莖段,接入生根培養(yǎng)基中培養(yǎng),生根培養(yǎng)基為:1/2MS培養(yǎng)基+0.5 mg/L IBA;所有培養(yǎng)基中均加蔗糖30 g/L、瓊脂粉7 g/L,用1 mol/L的NaOH調(diào)節(jié)pH值到5.8~6.0。組培苗生根后挑選根系生長較好,長勢健壯且整齊一致的幼苗轉(zhuǎn)入有1/2日本園式營養(yǎng)液水培盒中,培養(yǎng)1周后轉(zhuǎn)入完全營養(yǎng)液中。將水培盒放入人工氣候箱內(nèi)進(jìn)行培養(yǎng),在培養(yǎng)箱外的一側(cè)放置供氧泵,持續(xù)通氧。
1.2.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)
水培苗第6~8片葉完全展開時(shí),處理:(1)對(duì)照(CK),日本園式營養(yǎng)液;(2)NaCl處理,日本園式營養(yǎng)液加150 mmol/L NaCl。NaCl濃度以每天50 mmol/L的梯度逐步遞增,全部處理于同1 d達(dá)到目標(biāo)濃度,設(shè)此時(shí)為NaCl處理0 h。分別于處理6和48 h取新疆野蘋果幼苗葉片,樣品用清水沖洗表面雜物,再用去離子水沖洗干凈,用吸水紙吸干表面水分,稱取0.1 g,裝入1.5~2 mL的凍存管中,對(duì)照的葉記作LCK6h、LCK48h;NaCl處理的葉記作LNa6h、LNa48h,迅速投入液氮中冷凍,于-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩C總€(gè)處理重復(fù)3次。
1.2.2 新疆野蘋果sRNA文庫構(gòu)建
提取樣品的總RNA,small RNA測序由南京派森諾基因科技有限公司完成,質(zhì)檢合格后進(jìn)行文庫構(gòu)建。將TotalRNA使用PAGE電泳切膠分離成18~30 nt的RNA,利用Blast將去接頭、去低質(zhì)量、去污染的Clean Reads與Rfam13數(shù)據(jù)庫比對(duì),統(tǒng)計(jì)分析數(shù)據(jù)庫中小RNA的種類、數(shù)量和類型,并對(duì)其注釋。
1.2.3 NaCl脅迫下miRNAs差異表達(dá)及靶基因GO和KEGG顯著性富集
對(duì)新疆野蘋果葉片差異表達(dá)的靶基因按照分子功能(MolecularFunction)、生物過程(Biological Process)和細(xì)胞組分(CellularComponent)進(jìn)行GO分類,挑選每個(gè)GO分類中挑選p-value最小即富集最顯著的前10個(gè)GOterm條目進(jìn)行展示。
采用DESeq(version1.18.0,Anders S和Huber W,2010)分析4個(gè)處理中表達(dá)差異miRNA,按照表達(dá)量倍數(shù)差異|foldchange|>2和表達(dá)差異顯著性p-value<0.05篩選出差異的保守miRNA。miRNA主要通過互補(bǔ)配對(duì)結(jié)合到靶位點(diǎn)。以該物種的mRNA的3‘UTR’序列為目標(biāo)序列,對(duì)差異表達(dá)的miRNA序列,使用psRobot_tar進(jìn)行靶基因預(yù)測,并對(duì)靶基因進(jìn)行GO和KEGG顯著性富集分析。
1.2.4 NaCl脅迫下新疆野蘋果葉片差異miRNA與mRNA的反轉(zhuǎn)錄和實(shí)時(shí)熒光定量PCR
miRNA反轉(zhuǎn)錄采用miRcute Plus miRNA First-Strand cDNA kit試劑盒(TIANGE,北京)合成cDNA,qRT-PCR使用miRcute Plus miRNA qPCR Kit試劑盒(TIANGE,北京),采用20 μL反應(yīng)體系:cDNA模板2 μL,2×miRcute Plus miRNA PreMix 10 μL,上下游引物(10-M)各0.4l,超純水7.2l。qRT-PCR在CFX96 Real-Time PCR儀(Bio-Rad,美國)上進(jìn)行,反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性15 min,94℃ 20 s,60℃ 34 s,45個(gè)循環(huán)。
mRNA反轉(zhuǎn)錄采用5X All-In-One RT MasterMix試劑盒(abm,加拿大)合成cDNA,qRT-PCR使用Green Real time PCR Master MIX試劑盒(TOYOBO,日本),采用20 μL反應(yīng)體系:cDNA模板2 μL,2×SYBR Green Mix 10 μL,上下游引物(10 μM)各0.5 μL,超純水7 μL。qRT-PCR在CFX96 Real-Time PCR儀(Bio-Rad,美國)上進(jìn)行,反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性1 min,95℃ 10 s,55℃ 30 s,72℃ 30 s,40個(gè)循環(huán)。利用Primer 6軟件設(shè)計(jì)qRT-PCR引物,設(shè)計(jì)好的引物由生物工程(上海)股份有限公司合成。miRNA內(nèi)參基因?yàn)?srRNA[17],mRNA內(nèi)參基因?yàn)閁BQ[18]?;虻谋磉_(dá)量采用相對(duì)定量的方法,即2-△△CT法[19]。表1
表1 qRT-PCR引物序列Table 1 The sequences of the primers for qRT-PCR
研究表明,每個(gè)樣品的RNA完整值(RNA integrity number,RIN)均大于7.5,OD260/280均大于2.0,OD260/230均大于1.6,28S/18S均大于1.5,符合建庫標(biāo)準(zhǔn)。表2
表2 不同處理RNA質(zhì)量檢測Table 2 Quality detection of RNA in different treatments
研究表明,測序分別從LCK6h、LCK48h、LNa6h、LNa48h 4個(gè)文庫中獲得35 350 971、34 458 835、43 963 615、35 699 217條Raw Reads,去除污染序列,去除沒有插入片段的reads,去掉包含polyA的序列和小于18 nt的小片段,分別得到29 610 812、28 904 431、41 122 379、33 401 117條Clean Reads,主要包含rRNA、tRNA、snRNA、snoRNA、known miRNA、novelmiRNA、以及unknown片段等。新疆野蘋果葉片LCK6h、LCK48h、LNa6h、LNa48h 4個(gè)處理中Unique Known miRNA數(shù)量分別為6 331、5 561、5 825、6 074,Unique Novel miRNA數(shù)量分別為35、35、37、42。表3
表3 新疆野蘋果數(shù)據(jù)過濾及small RNA分類注釋Table 3 Data filtering and small RNA classification annotation statistics of Malus sieversii
研究表明,在LCK6h、LCK48h、LNa6h、LNa48h 4個(gè)處理中Total Reads的長度主要分布在20~24 nt,長度為24 nt的序列所占比例最多,其次是長度為21和20 nt的序列。Unique Reads的長度分布最多的均為24 nt。圖1
研究表明,在新疆野蘋果已知的miRNA中,與對(duì)照相比,NaCl處理6 h時(shí)的差異miRNA數(shù)量為3個(gè),其中上調(diào)表達(dá)的為2個(gè),下調(diào)表達(dá)的為1個(gè),靶基因數(shù)目為64個(gè)。NaCl處理48 h時(shí)的差異miRNA數(shù)量最多為13個(gè),其中上調(diào)表達(dá)的為4個(gè),下調(diào)表達(dá)的為9個(gè),靶基因數(shù)目為108個(gè)。與NaCl處理6 h相比,NaCl處理48 h時(shí)差異miRNA數(shù)量為5個(gè),其中上調(diào)表達(dá)的為3個(gè),下調(diào)表達(dá)的為2個(gè),靶基因數(shù)目為39個(gè)。NaCl處理6 h和48 h共有的差異miRNA有2個(gè)。表4
研究表明,NaCl處理6 h時(shí),GO主要富集的分子功能MF主要包括:肌醇磷酸2激酶活性、寡糖基轉(zhuǎn)移酶活性、寡糖基轉(zhuǎn)移酶活性等。細(xì)胞組分CC主要包括:網(wǎng)格蛋白復(fù)合物、網(wǎng)格蛋白包被的坑等。生物過程BP主要包括:蛋白絲氨酸/蘇氨酸磷酸酶抑制劑活性、木聚糖代謝過程等。NaCl處理48 h時(shí),GO主要富集的分子功能MF主要包括:氧氧化還原酶活性、DNA結(jié)合等。細(xì)胞組分CC主要包括:質(zhì)外體、胞外區(qū)等。生物過程BP主要包括:木質(zhì)素代謝過程、苯丙烷分解代謝過程、次生代謝過程等。圖2
注:橫軸為不同的序列長度,縱軸為對(duì)應(yīng)長度的序列豐度(*10 000)。大圖為去重前不同長度的Total Reads分布,右上角小圖為去重后不同長度的Unique Reads分布Note:The horizontal axis is different sequence length,and the vertical axis is the sequence abundance of corresponding length(*10,000).Large image shows total reads of different lengths before deweighting Distribution:The small figure in the upper right corner shows the distribution of Unique Reads with different lengths after deduplication圖1 新疆野蘋果miRNA 長度分布Fig.1 Distribution of miRNA length in Malus sieversii
表4 NaCl脅迫下新疆野蘋果差異表達(dá)miRNA及靶基因Table 4 differential expression of miRNA and target genes in Malus sieversii under NaCl stress
圖2 新疆野蘋果葉片miRNA的差異靶基因Go功能分類Fig.2 Go functional classification of differential target genes of miRNA in Malus sieversii
研究表明,NaCl處理6 h時(shí),主要富集在N-glycan生物合成、N-磷脂酰肌醇信號(hào)系統(tǒng)、色氨酸代謝、苯丙氨酸代謝、光合生物中的碳固定等。NaCl處理48 h時(shí),主要富集在N-glycan生物合成、其他聚糖降解、煙酸酯和煙酰胺代謝、丙酸酯代謝、真核生物的核糖體生物發(fā)生等通路。NaCl處理6和48 h時(shí)共同富集的是N-glycan生物合成通路。圖3
圖3 新疆野蘋果葉片miRNA的靶基因KEGG通路注釋Fig.3 KEGG pathway annotation of miRNA target gene in Malus sieversii
研究表明,在新疆野蘋果葉片差異顯著的miRNA中選取6個(gè)miRNA和3個(gè)mRNA,mdm-miR168b、mdm-miR159c、mdm-miR827、mdm-miR390f及其靶基因HF10976、mdm-miR171i及其靶基因HF33844、mdm-miR399j及其靶基因HF11095。利用qRT-PCR檢測基因的表達(dá)量,與測序數(shù)據(jù)趨勢基本一致,且miRNA與其靶基因mRNA的表達(dá)量呈負(fù)相關(guān)。圖4
圖 4 qRT-PCR驗(yàn)證結(jié)果Fig.4 qRT-PCR validation data
miRNA最早于發(fā)現(xiàn)線蟲中[20],大量miRNA在擬南芥[21],玉米[22],番茄[23],水稻[24]等植物中也相繼被研究發(fā)現(xiàn)。并且各類果樹作物miRNA的研究也日趨成熟,已在蘋果[25-26]、柑橘[27-28]、草莓[29]、葡萄[30-31]、桃[32]等果樹中發(fā)現(xiàn)上百種不同的miRNA。Phillips研究表明,植物miRNA廣泛參與生物脅迫和非生物脅迫等各類逆境脅迫的響應(yīng)[33],逆境脅迫會(huì)使得植物改變某些 miRNA 的表達(dá)模式,發(fā)生上調(diào)或下調(diào)表達(dá),完成對(duì)其靶基因表達(dá)模式的調(diào)控[34]。
葉片中對(duì)照和NaCl處理的Clean reads長度主要分布在20~24 nt,長度為24 nt的序列所占比例最多,這與擬南芥[35]、番茄[36]、藏紅花[37]等研究結(jié)果一樣。對(duì)差異靶基因進(jìn)行分類注釋,NaCl處理6和48 h時(shí),KEGG共同富集的通路有N-glycan生物合成,天冬酰胺連接的糖鏈(N-linked glycan,N-glycan)是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)蛋白質(zhì)量控制系統(tǒng)中一個(gè)重要的調(diào)節(jié)信號(hào),劉傳發(fā)[38]對(duì)擬南芥的分析發(fā)現(xiàn),高爾基體糖原剪切酶突變體MNS1/2催化的N-glycan剪切的缺失調(diào)控了底物蛋白N-糖基化蛋白R(shí)SW2的豐度從而影響了纖維素的合成,產(chǎn)生了鹽敏感的表型,MNS1/2介導(dǎo)的N-glycan的剪切可能調(diào)節(jié)底物蛋白對(duì)鹽脅迫的響應(yīng)。
馮克偉[39]對(duì)耐鹽性野生二粒小麥研究表明,在150 mM鹽脅迫下,7個(gè)miRNAs在3和6 h時(shí)表達(dá)量降低,12和24 h表達(dá)量顯著上升,而在250 mM鹽處理下miRNA在多個(gè)時(shí)間點(diǎn)均受鹽脅迫抑制了表達(dá)。鹽脅迫下山楊(Populustremula)miR398在3~4 h內(nèi)其表達(dá)受到誘導(dǎo),在48 h后開始下降,至72 h又開始積累[40],Chen等[41]研究發(fā)現(xiàn)鹽脅迫下擬南芥中miR159、miR171等表達(dá)上調(diào),而miR398的表達(dá)下調(diào)。Liu等[42]在擬南芥中鑒定到在鹽脅迫下miR396、mi R168和miR169等表達(dá)量升高,過表達(dá)miR397的擬南芥植株抗鹽性提高。Patade等[43]發(fā)現(xiàn)甘蔗受到短暫的鹽脅迫后miR159含量顯著提高,miR159在甘蔗抗鹽脅迫過程中發(fā)揮重要作用。Ding等[44]發(fā)現(xiàn),玉米鹽處理后mi R159大量增加。Wu等[45]發(fā)現(xiàn)鹽脅迫下桑樹(Morusalba)與對(duì)照相比miR827和miR2111的表達(dá)則顯著下降。Sun等[46]研究大豆根尖分生組織發(fā)現(xiàn)miR390e、miR399a、參與了大豆根系耐鹽性的調(diào)控。miR171是最早發(fā)現(xiàn)的 miRNAs 家族成員之一。Fan等[47]研究表明,水稻miR171通過剪切GRAS家族基因OsHAM促進(jìn)營養(yǎng)生長向生殖生長過渡以及根尖分生組織穩(wěn)態(tài)形成;擬南芥miR171通過靶向GRAS家族基因Scarecrow-Like(SCL)調(diào)控?cái)M南芥的葉綠素生物合成[48]。Curaba等[49]發(fā)現(xiàn)大麥過表達(dá)的miR171能夠激活miR156對(duì)其下游靶基因表達(dá)抑制,導(dǎo)致植物營養(yǎng)生長向生殖生長轉(zhuǎn)變。實(shí)驗(yàn)通過microRNA測序及qRT-PCR驗(yàn)證發(fā)現(xiàn),mdm-miR168b、mdm-miR159c、mdm-miR827、mdm-miR390f、mdm-miR171i、mdm-miR399j基因在NaCl處理6和48 h時(shí)表達(dá)量存在差異,其中mdm-miR390f及其靶基因HF10976、mdm-miR171i及其靶基因HF33844、mdm-miR399j及其靶基因HF11095表達(dá)量呈負(fù)相關(guān),這3個(gè)miRNA參與了新疆野蘋果對(duì)NaCl脅迫的響應(yīng)過程,但是新疆野蘋果不同時(shí)間點(diǎn)miRNA差異表達(dá)的調(diào)控原因及miRNA響應(yīng)NaCl脅迫作用方式還需要進(jìn)一步的試驗(yàn)驗(yàn)證。
NaCl處理6 h時(shí)3個(gè)miRNA差異表達(dá),其中2個(gè)上調(diào)表達(dá),1個(gè)下調(diào)表達(dá),miRNA對(duì)應(yīng)的靶基因數(shù)目為64個(gè)。NaCl處理48 h時(shí)13個(gè)miRNA差異表達(dá),其中4個(gè)上調(diào)表達(dá),9個(gè)下調(diào)表達(dá),miRNA對(duì)應(yīng)的靶基因數(shù)目為108個(gè)。mdm-miR390f及其靶基因HF10976、mdm-miR171i及其靶基因HF33844、mdm-miR399j及其靶基因HF11095表達(dá)量呈負(fù)相關(guān),3個(gè)miRNA參與了新疆野蘋果對(duì)NaCl脅迫的響應(yīng)過程。