藺晨雨 陳文 馬錫慧 孔祥瑞 樊文梅 韓永 肖漓 石炳毅
急性腎損傷(acute kidney injury,AKI)是常見(jiàn)的由多種病因引起的腎功能急性下降綜合征[1-2]。文獻(xiàn)報(bào)道,外科手術(shù)引起的AKI是院內(nèi)病死率高的主要原因之一[3-5],特別在腎移植術(shù)后,缺血-再灌注AKI(ischemia-reperfusion AKI,IR-AKI)如果得不到及時(shí)干預(yù),會(huì)引起移植物功能延遲恢復(fù)或失功[6-7]。研究發(fā)現(xiàn),缺血-再灌注損傷(ischemia-reperfusion injury,IRI)是一種系統(tǒng)性炎癥性疾病,炎癥過(guò)程中細(xì)胞因子是促炎反應(yīng)和抑炎反應(yīng)動(dòng)態(tài)平衡的物質(zhì)基礎(chǔ),腎IRI的修復(fù)與促炎因子和抑炎因子的生成、釋放相關(guān),炎癥消退后腎組織得以修復(fù)[8]。其中白細(xì)胞介素(interleukin,IL)-10是一種具有多效性的細(xì)胞因子,由調(diào)節(jié)性T細(xì)胞、腎小管上皮細(xì)胞、B細(xì)胞、單核-巨噬細(xì)胞、角化細(xì)胞、腫瘤細(xì)胞和輔助性T細(xì)胞(helper T cell,Th)1等多種細(xì)胞分泌[9]。IL-10可減輕不同病理生理?xiàng)l件下的組織損傷,但內(nèi)源性IL-10在腎IRI修復(fù)中的作用報(bào)道少見(jiàn)[10]。腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor,TNF)-α屬于TNF超家族,是由單核細(xì)胞衍生的細(xì)胞因子,生物學(xué)活性復(fù)雜,參與對(duì)造血、免疫和炎癥的調(diào)節(jié),與腎臟缺血性疾病密切相關(guān)[11-12]。
近年來(lái),在器官移植和IRI領(lǐng)域,骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cell,BMSC)作為潛在的治療因子取得了積極的進(jìn)展。BMSC具有免疫調(diào)節(jié)、抗炎和組織修復(fù)等生物學(xué)作用,能夠靶向遷移至損傷部位,并通過(guò)旁分泌機(jī)制促進(jìn)損傷修復(fù)[13-15]。早期研究發(fā)現(xiàn)在腎IRI時(shí),BMSC能夠減輕缺血性損傷,加速損傷部位再生[16]。但BMSC的應(yīng)用仍然存在諸多問(wèn)題需要闡明。本研究擬觀察在小鼠腎IRI過(guò)程中,輸注BMSC對(duì)IL-10與TNF-α的影響,以進(jìn)一步補(bǔ)充研究IR-AKI的病理機(jī)制,并探討B(tài)MSC的修復(fù)作用和可能機(jī)制,為AKI的治療提供新的依據(jù)。
6~8周齡雄性C57BL/6小鼠購(gòu)于北京斯貝福生物技術(shù)有限公司,清潔等級(jí)為無(wú)特定病原體(specific pathogen free,SPF)級(jí)。小鼠隨機(jī)分為假手術(shù)組(對(duì)照組)、IRI組和BMSC治療組(BMSC組),每組6只。對(duì)照組小鼠用2%戊巴比妥(40 mg/kg)麻醉,于37 ℃恒溫板上固定,取腹部正中切口,逐層分離皮膚、皮下組織、腹膜,然后用生理鹽水浸濕的紗布覆蓋腹部30 min后縫合腹部;IRI組步驟同對(duì)照組,打開(kāi)腹腔后,進(jìn)入腹腔,先找到左側(cè)腎蒂,用無(wú)創(chuàng)性動(dòng)脈夾迅速夾閉腎蒂計(jì)時(shí),然后找到右側(cè)腎蒂夾閉計(jì)時(shí),分別到30 min后去掉各自動(dòng)脈夾,讓血流恢復(fù)灌注后縫合腹部;BMSC組用IRI組的方法建立IR-AKI模型后,經(jīng)尾靜脈輸注BMSC 0.1 mL(1×107/mL)。本實(shí)驗(yàn)經(jīng)中國(guó)人民解放軍總醫(yī)院第八醫(yī)學(xué)中心實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。
C57BL/6小鼠BMSC及其完全培養(yǎng)基購(gòu)于廣州賽業(yè)生物科技有限公司。傳代后的BMSC融合至50%左右時(shí)血清饑餓24 h,磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS)沖洗2次,在37 ℃礦物油中浸泡60 min,用大量PBS沖洗多次后,恢復(fù)完全培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h(IRI組)。將正常培養(yǎng)的BMSC作為對(duì)照組。提取細(xì)胞上清備用。
PBS購(gòu)于美國(guó)Hyclone公司;脫氧核糖核苷酸末端轉(zhuǎn)移酶介導(dǎo)的dUTP缺口末端標(biāo)記法(terminal deoxynucleotidyl transferase-mediated dUTP nickend labeling,TUNEL)試劑盒、礦物油購(gòu)于美國(guó)Sigma-Aldrich公司;含4',6-二脒基-2-苯基吲哚(4',6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)的封片劑購(gòu)于北京中杉金橋生物科技有限公司;酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzyme-linked immune absorbent assay,ELISA)試劑盒購(gòu)于深圳欣博盛生物科技有限公司。
1.4.1 小鼠BMSC的培養(yǎng)和輸注 小鼠BMSC用完全培養(yǎng)基復(fù)蘇于培養(yǎng)瓶中,在37 ℃、5% CO2、95%濕度條件下常規(guī)培養(yǎng)。復(fù)蘇24 h后換液,此后每隔2~3 d更換培養(yǎng)液。細(xì)胞長(zhǎng)到80%~90%融合時(shí)傳代,提取第3代細(xì)胞用PBS重懸,制成活細(xì)胞懸液(濃度為1×107/mL),經(jīng)尾靜脈注射入實(shí)驗(yàn)小鼠體內(nèi)。
1.4.2 樣本采集 小鼠IRI模型成功建立后,每隔24 h觀察各組小鼠狀態(tài),并于72 h后摘眼球取血并編號(hào),然后處死取雙側(cè)腎組織根據(jù)分組編號(hào)并固定于10%多聚甲醛溶液中。
1.4.3 小鼠腎功能檢測(cè) 小鼠血于室溫靜置30 min觀察到有明顯分層后,1 125×g離心5 min后吸取上層血清,全自動(dòng)生化分析儀測(cè)定血清肌酐(serum creatinine,Scr)和血尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)水平。
1.4.4 腎組織病理學(xué)檢查 石蠟包被固定腎組織,4 μm連續(xù)切片,常規(guī)行蘇木素-伊紅(hematoxylineosin,HE)染色,光學(xué)顯微鏡下觀察并拍照。染色的組織切片使用半定量標(biāo)尺進(jìn)行評(píng)分,采用雙盲法評(píng)估腎小管壞死的程度。腎組織損傷定義為腎小管壞死、腎小管擴(kuò)張和(或)萎縮、炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)或細(xì)胞水腫,評(píng)分為0~4分。分?jǐn)?shù)越高表示損傷越嚴(yán)重:0分為正常腎,1分為輕度壞死(皮質(zhì)或髓質(zhì)受累<5%),2分為輕中度壞死(皮質(zhì)或髓質(zhì)受累5%~25%),3分為中度壞死(皮質(zhì)或髓質(zhì)受累26%~75%),4分為重度壞死(皮質(zhì)或髓質(zhì)受累>75%)。
1.4.5 TUNEL染色檢測(cè)腎組織細(xì)胞凋亡 按照試劑盒中說(shuō)明書(shū)配置好TUNEL反應(yīng)混合物,置于冰盒上備用。石蠟切片常規(guī)脫蠟、復(fù)水后,將載玻片放入裝有檸檬酸鹽緩沖液中,微波輻射5 min,PBS沖洗2次,樣品周?chē)稍锖蠹?0 μ L TUNEL反應(yīng)混合物,加蓋子在恒溫培養(yǎng)箱37 ℃潮濕黑暗環(huán)境中孵育60 min。PBS沖洗3次,用含DAPI的封片劑封片,熒光顯微鏡下觀察并拍照。每組切片隨機(jī)選取1張,每張隨機(jī)選取10個(gè)視野,計(jì)數(shù)凋亡細(xì)胞個(gè)數(shù)。
1.4.6 ELISA檢測(cè)IL-10與TNF-α水平 ELISA檢測(cè)各組小鼠血清與兩組BMSC細(xì)胞上清中的IL-10與TNF-α水平,實(shí)驗(yàn)步驟按照試劑盒內(nèi)說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。
采用SPSS 23.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,多組間比較采用ANOVA單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),兩組間比較采用兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。方差不齊的計(jì)量資料、等級(jí)資料的比較采用Kruskal-WallisH檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
IRI 72 h后,對(duì)照組小鼠腎組織結(jié)構(gòu)正常;IRI組腎組織結(jié)構(gòu)損傷嚴(yán)重,表現(xiàn)為廣泛的急性腎小管壞死,大量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),腎小管擴(kuò)張,皮質(zhì)和外髓刷狀緣消失;BMSC組損傷較輕,炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)較少,細(xì)胞水腫較輕,邊緣較清晰(圖1A)。與對(duì)照組比較,IRI組和BMSC組腎組織損傷評(píng)分較高;與IRI組比較,BMSC組腎組織損傷評(píng)分較低(均為P<0.05,圖1B)。
IRI 72 h后,3組小鼠Scr和BUN水平比較見(jiàn)圖1C、D。與對(duì)照組比較,IRI組Scr水平升高;與IRI組比較,BMSC組Scr水平下降,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均為P<0.05);BMSC組與對(duì)照組比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.272)。與對(duì)照組比較,IRI組和BMSC組BUN水平升高;與IRI組比較,BMSC組BUN水平下降(均為P<0.05)。
圖1 各組小鼠腎組織病理學(xué)和腎功能變化Figure 1 Changes in renal histopathology and renal function of mice in each group
各組小鼠腎組織細(xì)胞凋亡情況見(jiàn)圖2。與對(duì)照組比較,IRI組和BMSC組凋亡細(xì)胞數(shù)量增多[(2.0±1.4)個(gè)比(18.4±3.7)、(9.4±3.1)個(gè),均為P<0.05];與IRI組比較,BMSC組凋亡細(xì)胞數(shù)量減少[(18.4±3.7)個(gè)比(9.4±3.1)個(gè),P<0.05]。
圖2 各組小鼠腎組織細(xì)胞凋亡情況(TUNEL,×400)Figure 2 Cell apoptosis of renal tissues of mice in each group
IRI 72 h后,各組小鼠外周血中IL-10和TNF-α的表達(dá)情況見(jiàn)圖3。與對(duì)照組比較,IRI組和BMSC組小鼠血清IL-10水平升高;與IRI組比較,BMSC組小鼠血清IL-10水平下降(均為P<0.05)。與對(duì)照組比較,IRI組小鼠血清TNF-α水平升高,BMSC組小鼠血清TNF-α水平下降;與IRI組比較,BMSC組小鼠血清TNF-α水平下降(均為P<0.05)。
圖3 各組小鼠外周血IL-10和TNF-α的表達(dá)情況Figure 3 The expression of IL-10 and TNF-α in peripheral blood of mice in each group
對(duì)照組和IRI組BMSC上清中IL-10水平分別為(51.3±2.0)pg/mL和(55.2±2.6)pg/mL,TNF-α水平分別為(52.5±2.2)pg/mL和(58.8±17.0)pg/mL,兩組比較差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=-1.944,P=0.080;t=-0.501,P=0.627)。
腎IRI與TNF-α釋放、IL-6誘導(dǎo)以及中性粒細(xì)胞介導(dǎo)的細(xì)胞毒性損傷等炎癥反應(yīng)密切相關(guān)[17]。TNF-α在正常腎臟中表達(dá)水平較低,在IRI后數(shù)分鐘到數(shù)小時(shí)內(nèi)上調(diào),誘導(dǎo)多種炎癥基因表達(dá),促進(jìn)炎癥反應(yīng),加重組織損傷[10]。Hou等[12]發(fā)現(xiàn)使用小干擾核糖核酸(small interfering ribonucleic acid,siRNA)下調(diào)TNF-α的表達(dá),可顯著減輕IRI所致的腎功能障礙。研究發(fā)現(xiàn),細(xì)胞因子是腎損傷修復(fù)的重要炎癥介質(zhì),其中抑炎因子IL-10可反向調(diào)節(jié)炎癥急性期反應(yīng)的多種炎癥因子[18-19]。Sakai等[20]對(duì)比了IL-10-/-小鼠與野生型小鼠在IRI后不同時(shí)間TNF-α表達(dá)水平的變化,發(fā)現(xiàn)野生型小鼠TNF-α的表達(dá)在IRI后5 h開(kāi)始升高,24 h到達(dá)峰值,而IL-10-/-小鼠IRI后5 h即可到達(dá)峰值。表明IL-10可通過(guò)抑制炎癥介質(zhì)減輕炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),改善腎IRI。
本研究結(jié)果顯示,BMSC組小鼠腎功能改善,外周血中TNF-α表達(dá)減少,提示BMSC修復(fù)小鼠IRAKI是通過(guò)降低TNF-α的表達(dá)水平對(duì)腎組織起保護(hù)作用,而IL-10的表達(dá)水平未升高,提示IL-10不直接參與BMSC的保護(hù)作用,其機(jī)制有待進(jìn)一步驗(yàn)證和討論。此外,我們還觀察到在體外模擬的IRI條件下,BMSC幾乎不分泌TNF-α和IL-10。
與我們的研究結(jié)果一致,已有研究報(bào)道BMSC可通過(guò)抑制體內(nèi)TNF-α的釋放改善IR-AKI[21-22]。BMSC具有向中胚層組織分化的能力,改善IRI后腎臟的結(jié)構(gòu)和功能,其機(jī)制包括減輕炎癥、減少凋亡、促進(jìn)自噬、改善組織纖維化以及加速腎間質(zhì)細(xì)胞增殖等[23-25]。
與其他報(bào)道有所不同,本研究中輸注BMSC后IL-10的表達(dá)水平降低。其他研究發(fā)現(xiàn)IRI后TNF-α和IL-10可同步升高,TNF-α的信使核糖核酸(messenger ribonucleic acid,mRNA)表達(dá)顯著增加,刺激單核細(xì)胞合成IL-10,從而抑制炎癥反應(yīng)以修復(fù)IRI[26]。而IL-10又可調(diào)節(jié)單核-巨噬細(xì)胞的表型和功能活性,從而下調(diào)單核細(xì)胞衍生細(xì)胞因子的產(chǎn)生,包括TNF-α、IL-1β、IL-6和 IL-8等[10,27]。TNF-α與IL-10相互調(diào)節(jié),是由于機(jī)體啟動(dòng)體內(nèi)調(diào)節(jié)性免疫細(xì)胞網(wǎng)絡(luò)發(fā)揮作用以維持IRI后的免疫穩(wěn)態(tài)[28-29],而B(niǎo)MSC輸注可影響負(fù)性調(diào)節(jié)功能的免疫細(xì)胞及其衍生的細(xì)胞因子[30]。
IRI時(shí),調(diào)節(jié)性免疫細(xì)胞與衍生細(xì)胞因子系統(tǒng)的交互作用,以及細(xì)胞因子產(chǎn)生并彼此影響的時(shí)間依賴(lài)性,可能是輸注BMSC修復(fù)IR-AKI后IL-10的表達(dá)水平降低的原因之一。此外,有研究證明IR-AKI與線粒體自噬受體B淋巴細(xì)胞瘤-2和腺病毒E1B 19 kD相互作用蛋白3(B cell lymphoma-2 and adenovirus E1B 19 kD-interacting protein 3,BNIP3)介導(dǎo)的線粒體自噬有關(guān)[30-31]。PTEN誘導(dǎo)假定激酶1(PTEN-induced putative kinase 1,PINK1)-帕金森病蛋白介導(dǎo)的線粒體自噬可促進(jìn)IR-AKI的損傷修復(fù)[32-33]。研究發(fā)現(xiàn),IL-10可以通過(guò)抑制哺乳動(dòng)物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)信號(hào)促進(jìn)線粒體自噬,保護(hù)線粒體結(jié)構(gòu)完整,減輕組織損傷[34]。
BMSC可修復(fù)IRI并保護(hù)線粒體完整性,減少活性氧簇(reactive oxygen species,ROS),但具體機(jī)制尚不完全清楚[23]。BMSC輸注后,可能直接促進(jìn)線粒體自噬,修復(fù)損傷組織,而IL-10的負(fù)性調(diào)節(jié)或不直接參與對(duì)線粒體自噬的促進(jìn)作用,可以解釋輸注BMSC修復(fù)IR-AKI后IL-10的表達(dá)水平降低。目前有較多的相關(guān)研究報(bào)道,由于疾病種類(lèi)、發(fā)生部位、動(dòng)物模型、干細(xì)胞種屬或來(lái)源以及細(xì)胞因子種類(lèi),特別是時(shí)相性、采用的技術(shù)方法的差異性,出現(xiàn)了趨勢(shì)一致、結(jié)果不統(tǒng)一或結(jié)論相悖。本研究結(jié)果提示BMSC可能通過(guò)促進(jìn)線粒體自噬等途徑直接修復(fù)損傷腎組織,而非上調(diào)IL-10減輕腎IRI,其機(jī)制亟待后續(xù)進(jìn)一步的研究證實(shí)。
本研究的初步探討,為臨床提供了新的實(shí)驗(yàn)依據(jù),但存在樣本量有限且尚在動(dòng)物模型實(shí)驗(yàn)階段,仍然需要更進(jìn)一步的驗(yàn)證。今后,進(jìn)一步精細(xì)化觀察炎癥因子的時(shí)間、濃度依賴(lài)性,有助于臨床對(duì)BMSC輸注時(shí)間和濃度的選擇,根據(jù)特定時(shí)間炎癥因子的水平進(jìn)行早期干預(yù),可能成為治療IR-AKI的有效手段。此外本研究提示了BMSC在IR-AKI修復(fù)中可能存在抗炎反應(yīng)之外的修復(fù)機(jī)制,需深入闡釋其中的機(jī)制后為臨床應(yīng)用提供嶄新的視角。