李 奕
(中國(guó)戲曲學(xué)院體育部,北京 100073)
襄荷(Zingiber mioga(Thunb.)Rosc)為姜科屬多年生草本植物,具有活血調(diào)經(jīng)、消腫解毒的功效,是保健食品的主要成分[1-2],富含多糖、黃酮、氨基酸、維生素等化學(xué)物質(zhì)[3-4]。目前國(guó)內(nèi)外對(duì)于襄荷的研究多集中于栽培繁殖、提取分離等方面,其中許遠(yuǎn)和張思頡等[5-6]曾利用乙醇超聲提取襄荷總黃酮,并發(fā)現(xiàn)其在體外對(duì)多數(shù)活性氧自由基具有較好的清除作用,但未深入探究其體內(nèi)活性?!斑\(yùn)動(dòng)性疲勞”主要源于劇烈運(yùn)動(dòng)時(shí)體內(nèi)生成的大量活性氧或自由基導(dǎo)致肌肉組織的損傷和收縮能力的下降,進(jìn)而影響身體的持續(xù)運(yùn)動(dòng)[7-8]。目前某些天然化合物已被發(fā)現(xiàn)其體、內(nèi)外抗氧化活性高度相關(guān)[9],本研究利用大孔樹脂具有機(jī)械篩分與吸附分離雜質(zhì)的特性[10-11],采用其純化襄荷黃酮提取物,并考察純化產(chǎn)物對(duì)小鼠運(yùn)動(dòng)性疲勞的影響,從而為有關(guān)襄荷運(yùn)動(dòng)食品的開發(fā)提供參考。
1.1.1 材料與試劑
新鮮襄荷采自湖北恩施市;西洋參:昆明邦宇制藥有限公司生產(chǎn);蘆丁對(duì)照品:中國(guó)藥品生物制品檢定研究院;乳酸(LA)、尿素氮(BUN)和乳酸脫氫酶(LDH)活力檢測(cè)試劑盒:泉州九邦生物科技有限公司;試驗(yàn)用水為去離子水;其余試劑均為分析純;試驗(yàn)動(dòng)物:雄性小鼠100只,體重18~25 g,喂養(yǎng)環(huán)境溫度:20~25℃、相對(duì)濕度:50%~70%,由北京實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。
1.1.2 儀器與設(shè)備
UV-8000型紫外-可見分光光度計(jì):上海元析儀器有限公司;DT-J300型制樣粉碎機(jī):湖南頂特科技有限公司;BSA124S型電子天平:賽多利斯公司;TL-ST250型超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)、FD-1A-50型冷凍干燥箱:江蘇天翎儀器有限公司;RE-201D型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海岐耀儀器設(shè)備有限公司;KH20R-II型高速離心機(jī):湖南凱達(dá)科學(xué)儀器有限公司;THD-200型恒溫振蕩器:北京亞泰科隆儀器有限公司;AB-8、H-103、D-101型大孔樹脂:天津波鴻樹脂科技有限公司;HPD 400、NKA-9型大孔樹脂:北京索萊寶科技有限公司。
1.2.1 黃酮提取液的制備
依照文獻(xiàn)[5]的方法制備襄荷黃酮提取液,最小提取量的具體操作如下:將襄荷根、葉、花苞洗凈后烘干、粉碎,取10.0 g過80目篩后樣品,加入至200 mL 80%乙醇溶液超聲提?。囟?0℃,功率100 W)。濾渣經(jīng)3次重復(fù)提取后,合并濾液,蒸發(fā)濃縮移至100mL容量瓶?jī)?nèi),加入60%乙醇溶液定容、搖勻,即得黃酮提取液。
1.2.2 黃酮含量測(cè)定
采用亞硝酸鈉-硝酸鋁法,平行6次測(cè)定不同濃度標(biāo)準(zhǔn)品溶液中總黃酮含量[12],繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線方程:y=1.043x+0.011 7(r=0.993 6),其中橫坐標(biāo)為質(zhì)量濃度,縱坐標(biāo)為吸光度值。隨后,不同洗脫液樣品通過標(biāo)準(zhǔn)曲線方程確定總黃酮含量,減壓蒸發(fā),濃縮干燥后稱重,進(jìn)而得到產(chǎn)物的黃酮純度。
1.2.3 樹脂型號(hào)選擇
分別稱取5.0g預(yù)處理后的H-103、D-101、AB-8、HPD-400、NKA-9樹脂[13],放入裝有6 mg/mL 60 mL黃酮提取液的錐形瓶?jī)?nèi),在室溫下靜態(tài)吸附12 h后過濾。飽和吸附后的樹脂經(jīng)一定量水洗至無提取液殘留后,置于錐形瓶?jī)?nèi),加入60%乙醇100 mL,室溫靜置12 h后過濾,按照下列公式計(jì)算不同類型樹脂的飽和吸附量、飽和吸附率、洗脫率及回收率[14]。
式中:me為吸附平衡后總黃酮質(zhì)量,mg;m0為樣液初始總黃酮質(zhì)量,mg;m為樹脂干重,g;md為洗脫液中總黃酮質(zhì)量,mg;τe為飽和吸附量,mg/g;Qe為飽和吸附率,%;Dd為洗脫率,%;R為回收率,%。
1.2.4 等溫吸附試驗(yàn)
向裝有5.0 g AB-8大孔樹脂的錐形瓶?jī)?nèi)分別加入濃度為2、4、6、8、10 mg/mL的黃酮提取液60 mL,于25、35、45℃振蕩吸附,測(cè)得樹脂的飽和吸附量,繪制等溫吸附線,并利用Langmuir與Freundlich模型擬合[15]。
式中:Qm為黃酮飽和吸附量,mg/g;Qe為黃酮吸附量,mg/g;Kb為L(zhǎng)angmuir方程常數(shù);Ce為濾液黃酮濃度,mg/mL;Kf為Freundlich方程常數(shù)。
1.2.5 靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線
向裝有6 mg/mL襄荷黃酮提取液60 mL的錐形瓶?jī)?nèi)加入5.0 g AB-8大孔樹脂,于25℃振蕩吸附,在不同時(shí)間取樣檢測(cè)上清液中黃酮含量,繪制靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線[16]。
1.2.6 動(dòng)態(tài)吸附與洗脫條件考察
固定上樣濃度6 mg/mL、上樣液pH為6、上樣流速3 mL/min和上樣液體積60 mL,考察不同上樣濃度(2、4、6、8、10 mg/mL)、不同上樣液pH(3、4、5、6、7)對(duì)樹脂的吸附率影響,繪制不同上樣流速(1、3、5 mL/min)時(shí)樹脂泄漏曲線;固定洗脫液乙醇濃度60%、洗脫液體積150 mL、洗脫流速2 mL/min,考察不同洗脫液濃度(50%、60%、70%、80%、90%)對(duì)黃酮化合物洗脫率的影響及1、2、3 mL/min洗脫流速下的洗脫曲線。
1.2.7 抗運(yùn)動(dòng)性疲勞實(shí)驗(yàn)
1.2.7.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)
所有小鼠經(jīng)適應(yīng)性喂養(yǎng)7 d后,隨機(jī)平均分為空白對(duì)照組、陽(yáng)性對(duì)照組和低、中、高劑量組,根據(jù)《保健食品功能評(píng)價(jià)》要求,低、中、高劑量組分別灌胃純化后的黃酮化合物0.10、0.20、0.30 mg/(g·d),陽(yáng)性對(duì)照組給予西洋參灌胃0.10 mg/(g·d),空白對(duì)照組則采用生理鹽水灌胃,全部動(dòng)物每天灌胃1次,連續(xù)灌胃30 d,灌胃期間可自由喂食與飲水[17-18]。
1.2.7.2 負(fù)重游泳試驗(yàn)
最后一次灌胃結(jié)束后,各組隨機(jī)抽取10只小鼠,并在鼠尾綁定5%體重重物,放入泳池游泳,記錄其入水到沉入水底超過10 s的時(shí)間[19]。
1.2.7.3 體內(nèi)生化指標(biāo)檢測(cè)
剩余小鼠游泳運(yùn)動(dòng)60 min后,放入鼠籠休息10 min,處死采取血清,按照相關(guān)試劑盒使用說明,檢測(cè)各組小鼠運(yùn)動(dòng)后體內(nèi)LA、BUN濃度和LDH活力[20]。
1.2.8 數(shù)據(jù)處理
相關(guān)試驗(yàn)數(shù)據(jù)通過SPSS19.0軟件進(jìn)行方差分析,比較組間差異,當(dāng)P<0.05表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著。
表1為不同型號(hào)樹脂對(duì)襄荷黃酮的吸附與解吸性能,從表1可見,各類樹脂對(duì)襄荷黃酮的吸附率與洗脫率差異明顯,究其原因在于各類樹脂的比表面積與極性不同。AB-8大孔樹脂對(duì)襄荷黃酮的吸附率最高,達(dá)到89.2%,且回收率超過80%,其他樹脂對(duì)其回收率從高到底依次為:HPD-400>H-103>D-101>NKA-9,這可能源于黃酮化合物的結(jié)構(gòu)中存在較多羥基衍生物,具有一定極性,因此與弱極性樹脂的相互作用較好[21],因而確定采用AB-8樹脂進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
表1 不同樹脂的吸附率、洗脫率及回收率比較Table 1 Comparison of adsorption rate,elution rate and recovery rate of different resins(n=6)
圖1為AB-8大孔樹脂于不同溫度對(duì)襄荷黃酮的等溫吸附曲線,隨著提取液濃度的增大,樹脂的飽和吸附量逐漸增大,然而隨著溫度升高,其飽和吸附量卻不斷減小,分別利用Langmuir和Freundlich吸附模型對(duì)其等溫吸附線擬合,見表2。從表2可知,在不同溫度下,AB-8大孔樹脂的吸附曲線符合Langmuir模型特征,各方程的相關(guān)系數(shù)均大于0.95。
表2 等溫吸附線擬合方程Table 2 The fitting equations of adsorption isotherms
圖1 等溫吸附曲線Fig.1 Adsorption isothermsin different temperatures
從圖2可知,在0~3 h內(nèi),樹脂對(duì)黃酮的吸附率迅速升高,隨后緩慢于6 h達(dá)到平衡,表明AB-8大孔樹脂對(duì)襄荷黃酮的吸附速率較快,具有實(shí)際應(yīng)用前景。
圖2 AB-8大孔樹脂對(duì)襄荷黃酮的靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線Fig.2 The static adsorption kinetics curve of Zingiber mioga(Thunb.)Rosc flavonoid by AB-8 macroporousresin
2.4.1 上樣濃度對(duì)吸附率的影響
圖3為不同上樣濃度對(duì)AB-8樹脂吸附襄荷黃酮的影響,當(dāng)上樣濃度為6 mg/mL時(shí),吸附率達(dá)到最高為87.8%,上樣濃度過高時(shí),黃酮溶解度下降,容易導(dǎo)致樹脂的堵塞或泄露,同時(shí)競(jìng)爭(zhēng)吸附的雜質(zhì)也越來越多,致使黃酮吸附率進(jìn)一步降低,因此襄荷黃酮最適宜上樣濃度為6 mg/mL。
圖3 上樣濃度對(duì)吸附率的影響Fig.3 Effect of sampleconcentration on the adsorption rate
2.4.2 上樣液pH對(duì)吸附率的影響
圖4為不同上樣液pH對(duì)AB-8樹脂吸附襄荷黃酮的影響,從圖4可見,吸附率隨pH的升高出現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì)。當(dāng)pH為6時(shí),吸附率達(dá)到最高,為88.4%,這可能源于黃酮化合物的化學(xué)結(jié)構(gòu)含有1-氧原子,存在未共用電子對(duì),表現(xiàn)出堿性,因而在強(qiáng)酸下易形成“徉鹽”,不利于樹脂的吸附,這與黃酮純化相關(guān)研究結(jié)果一致[22-23],因此考慮最適宜上樣液pH為6。
圖4 上樣液pH對(duì)吸附率的影響Fig.4 Effect of sample pH on the adsorption rate
2.4.3 不同上樣流速下樹脂泄漏曲線
圖5為不同上樣流速下樹脂的泄露曲線,從圖中可知,隨著上樣液體積的增加,泄露液中黃酮化合物的濃度逐漸增大至完全等于上樣液初始濃度,這歸因于若上樣液體積過多且流速過快時(shí),黃酮化合物不能與樹脂充分接觸發(fā)生吸附作用,且樹脂易于過載。通常認(rèn)為泄漏液中黃酮濃度約為10%上樣濃度時(shí),樹脂開始泄漏,考慮實(shí)際吸附效率,選擇最適宜上樣流速為3 mL/min,上樣液體積60 mL。
圖5 不同上樣流速下樹脂的泄漏曲線Fig.5 The leakagecurve of resin at different loading flow rates
2.5.1 洗脫液濃度對(duì)洗脫率的影響
圖6為不同濃度洗脫液對(duì)樹脂洗脫率的影響,當(dāng)洗脫液乙醇濃度超過60%時(shí),樹脂的洗脫率開始逐漸降低,這是由于洗脫液濃度越大,其極性愈低,易于洗脫黃酮,但濃度過高時(shí),其與黃酮化合物的極性差異明顯,洗脫難度變大,因此洗脫液乙醇的最適宜濃度為60%。
圖6 洗脫液濃度對(duì)洗脫率的影響Fig.6 Effect of eluent concentration on theelution rate
2.5.2 不同洗脫流速的解吸曲線
若洗脫流速過快,洗脫劑與樹脂內(nèi)吸附的黃酮作用力變?nèi)?,為此考察不同洗脫流速下的解吸曲線,結(jié)果見圖7。隨著洗脫流速增大,完全洗脫吸附在樹脂內(nèi)的襄荷黃酮所消耗的洗脫劑用量越來越多,當(dāng)以2 mL/min流速洗脫吸附樹脂時(shí),洗脫曲線單一、對(duì)稱、尖銳且無明顯拖尾,因此選擇最宜洗脫流速為2 mL/min,洗脫液體積150 mL。
圖7 三種洗脫流速下的解吸曲線Fig.7 Thedesorption curveat three eluent flow rate
綜上所述,確定大孔樹脂純化襄荷黃酮提取物的最佳純化工藝為:60 mL上樣濃度為6 mg/mL襄荷黃酮(pH 6.0),上樣流速3 mL/min,洗脫流速為2 mL/min,洗脫液乙醇濃度60%,洗脫液體積為150 mL,飽和吸附率與洗脫率分別達(dá)到87.5%和90.3%,產(chǎn)物的總黃酮純度由11.25%±0.46%提高至47.52%±1.37%,約為4.2倍,表明通過AB-8大孔樹脂純化后,襄荷黃酮提取物中的蛋白、色素等雜質(zhì)被有效去除,因此該樹脂適于襄荷黃酮提取物的純化。
2.7.1 襄荷黃酮對(duì)小鼠負(fù)重游泳時(shí)間的影響
負(fù)重游泳時(shí)間可真實(shí)反映動(dòng)物的運(yùn)動(dòng)耐力。從表3可知,在設(shè)定的劑量范圍內(nèi),隨著純化產(chǎn)物劑量的增大,動(dòng)物負(fù)重游泳時(shí)間呈現(xiàn)出一定的劑量依賴性。與空白對(duì)照組相比,中、高劑量組動(dòng)物的負(fù)重時(shí)間均有延長(zhǎng),具有極顯著性差異(P<0.01),表明中、高劑量的襄荷黃酮有助于提高機(jī)體的運(yùn)動(dòng)耐力,延長(zhǎng)運(yùn)動(dòng)時(shí)間,而低劑量組雖有延長(zhǎng),但差異不顯著,這可能與劑量選擇或小鼠的個(gè)體差異有關(guān),但陽(yáng)性對(duì)照組小鼠的游泳時(shí)間較高劑量組延長(zhǎng)1.79 min,差異具有極顯著性(P<0.01)。
表3 襄荷黃酮對(duì)小鼠負(fù)重游泳時(shí)間的影響Table 3 Effect of Zingiber mioga(Thunb.)Rosc flavonesonexhaustive swimming time of mice
2.7.2 襄荷黃酮對(duì)乳酸相關(guān)指標(biāo)的影響
機(jī)體過度運(yùn)動(dòng),易造成細(xì)胞缺氧,使得部分血糖轉(zhuǎn)化成乳酸,從而影響肌肉張力,而乳酸脫氫酶有利于催化乳酸脫氫,加快其代謝排出[24]。運(yùn)動(dòng)后不同組別小鼠體內(nèi)的乳酸濃度與乳酸脫氫酶活力結(jié)果見表4。從表4可知,與空白對(duì)照組相較,襄荷黃酮低、中、高劑量組小鼠的體內(nèi)乳酸濃度均明顯偏低,且乳酸脫氫酶活力均有一定幅度的增強(qiáng),表明襄荷黃酮有助于改善運(yùn)動(dòng)后小鼠體內(nèi)的乳酸與乳酸脫氫酶水平,高劑量小鼠的乳酸濃度較陽(yáng)性對(duì)照組高1.08 mmol/L,乳酸脫氫酶活力較陽(yáng)性對(duì)照組低413 U/L,具有極顯著差異(P<0.01)。
表4 襄荷黃酮對(duì)小鼠BLA濃度和LDH活力的影響Table 4 Effect of Zingiber mioga(Thunb.)Rosc flavoneson BLA concentration and LDH activity in mice
2.7.3 襄荷黃酮對(duì)尿素氮濃度的影響
機(jī)體劇烈運(yùn)動(dòng),導(dǎo)致血糖供應(yīng)不足,容易造成體內(nèi)蛋白質(zhì)或氨基酸的分解利用,致使代謝產(chǎn)物尿素氮濃度增大[25]。表5為運(yùn)動(dòng)后不同組別動(dòng)物體內(nèi)尿素氮濃度,從表5可知,空白對(duì)照組的尿素氮濃度與低劑量組相較無顯著性差異,而中、高劑量組小鼠的尿素氮濃度均明顯低于空白對(duì)照組,表明機(jī)體在劇烈運(yùn)動(dòng)時(shí),中、高劑量的襄荷黃酮有利于減少體內(nèi)蛋白質(zhì)分解,高劑量組與陽(yáng)性對(duì)照組均與空白對(duì)照組有極顯著差異(P<0.01)。
表5 襄荷黃酮對(duì)小鼠BUN濃度的影響Table5 Effect of Zingiber mioga(Thunb.)Rosc flavoneson BUN concentration in mice
本研究探討了大孔樹脂純化襄荷黃酮的最佳工藝條件,并分析純化產(chǎn)物對(duì)小鼠運(yùn)動(dòng)性疲勞的影響。通過單因素試驗(yàn)得到最佳純化工藝條件為:60 mL上樣濃度為6 mg/mL襄荷黃酮(pH 6.0),上樣流速3 mL/min,洗脫流速為2 mL/min,洗脫液乙醇濃度60%,洗脫液體積為150 mL,產(chǎn)物的總黃酮純度由11.25%提高至47.52%,約為4.2倍。從動(dòng)物實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知,襄荷黃酮可明顯延長(zhǎng)小鼠的負(fù)重游泳時(shí)間,增強(qiáng)乳酸脫氫酶的活性,降低了機(jī)體的尿素氮含量,從而減小運(yùn)動(dòng)過程中乳酸的生成及蛋白質(zhì)或氨基酸的分解,因此該研究可為襄荷黃酮的抗疲勞功能性食品的開發(fā)提供參考,有利于促進(jìn)該資源的開發(fā)利用。