王宏宇，武云龍，趙棟皓，孫曉亮，李木子，曹旭敏，宋翠平，趙思俊，李 存

（1.天津農(nóng)學(xué)院動(dòng)物科學(xué)與動(dòng)物醫(yī)學(xué)院，天津 300384；2.中國(guó)動(dòng)物衛(wèi)生與流行病學(xué)中心，山東青島 266032；3.山西農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院，山西晉中 030801）

磺胺類(lèi)藥物（sulfonamides，SAs）是一類(lèi)具有對(duì)氨基苯磺酰胺結(jié)構(gòu)的藥物總稱(chēng)，具有抗菌譜廣、高效、低毒、價(jià)格低廉等特點(diǎn)，在獸醫(yī)臨床應(yīng)用十分廣泛。藥物濫用、誤用及不遵守休藥期規(guī)定，會(huì)造成動(dòng)物源食品中藥物殘留超標(biāo)，既危害人類(lèi)健康，還會(huì)誘導(dǎo)細(xì)菌產(chǎn)生耐藥性。我國(guó)和歐盟均已制訂了動(dòng)物產(chǎn)品中的多種SAs 最高殘留限量（MRL），其中我國(guó)規(guī)定SAs 總量不得超過(guò)0.1 mg/kg，奶中磺胺二甲基嘧啶不得超過(guò)0.025 mg/kg[1]。因此，對(duì)SAs 殘留進(jìn)行準(zhǔn)確快速檢測(cè)有著重要的食品安全意義[2]。

隨著藥物殘留檢測(cè)技術(shù)的不斷發(fā)展，SAs 的前處理和檢測(cè)方法越來(lái)越多。其中：前處理方法除了傳統(tǒng)的液液萃取外，近年來(lái)還出現(xiàn)了許多新方法，如固相萃?。⊿PE）法、超聲輔助分散液液微萃取法、磁性多壁碳納米管法、基質(zhì)固相分散法、QuEChERS 法等[3]；檢測(cè)方法主要有高效液相色譜二極管陣列檢測(cè)法（HPLC-PDA）、液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法（HPLC-MS/MS）、酶聯(lián)免疫法等[2，4]。目前，我國(guó)已建立了多個(gè)檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)用于豬肉中SAs 殘留檢測(cè)?！缎笄萑庵惺N磺胺類(lèi)藥物殘留量的測(cè)定液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法》（GB/T 20759—2006）中標(biāo)定了牛肉、羊肉、豬肉、雞肉和兔肉中16 種SAs 殘留量的液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜測(cè)定方法，《水產(chǎn)品中17 種磺胺類(lèi)及15 種喹諾酮類(lèi)藥物殘留量的測(cè)定 液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法》（農(nóng)業(yè)部1077 號(hào)公告-1-2008）規(guī)定了17 種SAs 殘留量的液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法。但這些方法一次檢測(cè)的藥物種類(lèi)較少，成本相對(duì)較高，且基質(zhì)效應(yīng)的存在會(huì)影響檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確度和靈敏度[5]。本研究擬采用固相萃取-超高效液相色譜法（SPE-UPLC-PDA），建立豬肉中22 種SAs 的一次性殘留檢測(cè)方法。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 主要儀器設(shè)備 AcquityTMUPLC-PDA 超高效液相色譜儀-二極管陣列檢測(cè)器，美國(guó)Waters公司；氮吹儀，美國(guó)Organomation 公司；漩渦混合儀，美國(guó)Talboys 公司；Milli-Q 純水儀，德國(guó)Millipore 公司；5804R 高速冷凍離心機(jī)，德國(guó)Eppendorf 公司；固相萃取裝置、MCX 固相萃取柱（60 mg、3 mL），德國(guó)CNW 公司。

1.1.2 主要藥品試劑 磺胺甲惡唑（sulfamethoxazole，純 度＞94%）、磺胺胍（sulfaguanidine，純度＞98%）、磺胺醋酰（sulfacetamide，純度＞97%）、磺胺吡啶（sulfapyridine，純度＞98%）、磺胺嘧啶（sulfadiazine，純度＞99%）、磺胺二甲異嘧啶（sulfisomidine，純度＞98%）、磺胺二甲惡唑（sulfamoxole，純度＞98.5%）、磺胺二甲異惡唑（sulfisoxazole，純度＞98%）、磺胺曲沙唑（sulfatroxazole，純度＞99%）、磺胺對(duì)甲氧嘧啶（sulfameter，純度＞95%）、磺胺間甲氧嘧啶（sulfamonomethoxine，純度＞96%）、磺胺甲氧吡嗪（sulfalen，純度＞97%）磺胺間二甲氧嘧啶（sulfamethazine，純度＞99%）、磺胺苯（sulfabenz，純度＞96%）、磺胺苯吡唑（sulfaphenazole，純度＞98%）、磺胺苯酰（sulfabenzamide，純度＞97%），均購(gòu)自德國(guó)Dr.Ehrenstorfer GmbH 公司?；前罚╯ulfonamide，純度＞99%）、磺胺喹噁啉（sulfaquinoxaline，純度＞99%）、磺胺鄰二甲氧嘧啶（sulfadoxine，純度＞98%）、磺胺氯噠嗪（sulfachloropyridazine，純度＞97%），均購(gòu)自Toronto Research Chemicals INC（加拿大）?；前范奏奏ぃ╯ulfamethazine，純度＞98%）、磺胺噻唑（sulfathiazole，純度＞99%）、磺胺氯吡嗪（sulfachloropyrazine，純度＞98%），均購(gòu)自WITEGA Laboratorien BerlinAdlershof GmbH（加拿大）。甲醇、乙腈均為色譜純，德國(guó)Merck 公司；甲酸、甲酸銨均為色譜純，德國(guó)CNW 公司；乙酸、氨水均為分析純，國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；試驗(yàn)用水為超純水，由Milli-Q 純水儀制得。

1.2 方法

1.2.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液配置 分別準(zhǔn)確稱(chēng)取22 種SAs標(biāo)準(zhǔn)品于10 mL 容量瓶中，用甲醇溶解并定容至刻度，配制質(zhì)量濃度為100 mg/L 的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液，于-20 ℃避光保存；分別移取適量標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液，配制1 mg/L 的22 種SAs 混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液；分別移取適量的混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液，根據(jù)需要用甲醇逐級(jí)稀釋為適當(dāng)濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液，現(xiàn)用現(xiàn)配。

1.2.2 樣品前處理 準(zhǔn)確量取2 g 豬肉于50 mL具塞離心管中，加入8 mL 3%乙酸乙腈以及5 g 均質(zhì)子，渦旋混勻，8 000 r/min 離心7 min，將上清移至新離心管，重復(fù)提取1 次，合并2 次上清，待凈化。上清液通過(guò)經(jīng)3 mL 甲醇、3 mL 水以及3 mL 3%乙酸乙腈活化的MCX 柱，分別用3 mL 水和3 mL 甲醇淋洗，用真空泵抽干后，以3 mL 5%氨化甲醇洗脫，45 ℃水浴條件下N2吹至近干，用1 mL 0.1%甲酸-乙腈（9:1，V/V）溶液復(fù)溶，渦動(dòng)30 s 后，經(jīng)0.22 μm 針孔式濾膜過(guò)濾，UPLCPDA 檢測(cè)。

1.2.3 色譜條件 色譜柱：UPLC CSH Fluorophenyl（1.7 μm，2.1 mm×100 mm）；流動(dòng)相A（簡(jiǎn)稱(chēng)A）：含有10 mmol/L 甲酸銨的0.1%甲酸水；流動(dòng)相B（簡(jiǎn)稱(chēng)B）：乙腈。流速0.3 mL/min，柱溫35 ℃，二極管陣列檢測(cè)器波長(zhǎng)270 nm，進(jìn)樣量10 μL。梯度洗脫程序：0～2.0 min，13%B；＞2.0～3.5 min，13%～15%B；＞3.5～4.5 min，15%B；＞4.5～6.5 min，15%～35%B；＞6.5～8.8 min，35%B；＞8.8～9.0 min，35%～95%B；＞9.0～10.0 min，95%B；＞10.0～10.2 min，95%～13%B；＞10.2～12.0 min，13%B。

1.3 方法評(píng)價(jià)

1.3.1 試劑標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)繪制 配制質(zhì)量濃度分別為2.5、5.0、10.0、20.0、50.0、100.0、200.0、250.0 μg/L的試劑標(biāo)準(zhǔn)溶液。經(jīng)UPLC-PDA 進(jìn)樣分析，以質(zhì)量濃度（μg/L）為橫坐標(biāo)（X），峰面積（Y）為縱坐標(biāo)，繪制試劑標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。

1.3.2 檢測(cè)限和定量限測(cè)定 準(zhǔn)確量取2 g 空白樣品，向其中添加不同質(zhì)量濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液，按照1.2.2前處理方法對(duì)樣品進(jìn)行處理后上機(jī)檢測(cè)。以10 倍信噪比（S/N=10）對(duì)應(yīng)的樣品濃度作為方法的定量限（limit of quantification，LOQ），以3倍信噪比（S/N=3）對(duì)應(yīng)的樣品濃度作為方法的檢測(cè)限（limit of detection，LOD）。

1.3.3 添加回收率和精密度測(cè)定 準(zhǔn)確量取2 g空白樣品，進(jìn)行3 個(gè)水平（1、5、10 倍LOQ）的加標(biāo)回收試驗(yàn)；按照1.2.2 前處理方法對(duì)樣品進(jìn)行處理后上機(jī)檢測(cè)。每個(gè)水平做6 個(gè)平行，進(jìn)行3 次批間重復(fù)；使用標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)進(jìn)行校正，測(cè)定目標(biāo)藥物濃度，計(jì)算回收率、批內(nèi)相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差和批間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差。

1.3.4 實(shí)際樣品檢測(cè) 采用本試驗(yàn)建立的方法，對(duì)從山東省采集的18 份豬肉樣品進(jìn)行檢測(cè)。18份樣本經(jīng)過(guò)3%乙酸乙腈提取、MCX 柱凈化、UPLC-PDA 檢測(cè)。

2 結(jié)果與討論

2.1 色譜條件選擇

由于同分異構(gòu)體藥物分離受限，故在流動(dòng)相中加入一定量甲酸銨，使其能全部分離所有藥物[6]。

磺胺類(lèi)藥物屬于兩性化合物，因此采用酸性流動(dòng)相可使分離效果最佳。試驗(yàn)采用甲酸銨-甲酸水溶液-乙腈體系作為流動(dòng)相，用0.1%甲酸-乙腈作為流動(dòng)相。雖色譜峰尖銳、對(duì)稱(chēng)，但不能分離所有藥物，故在甲酸溶液中加入適量甲酸銨進(jìn)行考察。結(jié)果顯示，使用含有10 mmol/L 甲酸銨的0.1%甲酸水-乙腈作為流動(dòng)相，能分離出所有藥物且峰形較好。為了將本試驗(yàn)中的藥物在盡可能短的時(shí)間內(nèi)有效分離，本研究采用UPLC CSH Fluoro-phenyl 色譜柱分離所有藥物，采用PDA 波長(zhǎng)270 nm，可使SAs 檢測(cè)獲得較高的靈敏度[7]。SAs 標(biāo)準(zhǔn)溶液色譜圖、空白樣品色譜圖和實(shí)際樣品加標(biāo)色譜圖分別見(jiàn)圖1-A、圖1-B、圖1-C。

圖1 標(biāo)準(zhǔn)溶液、空白樣品和實(shí)際樣品加標(biāo)色譜圖

2.2 提取液優(yōu)化

提取動(dòng)物產(chǎn)品中的SAs 通常采用乙腈、乙酸乙酯等有機(jī)溶劑或磷酸鹽水溶液進(jìn)行[8-9]。為了獲得滿(mǎn)意的回收率和較好的選擇性，本試驗(yàn)選擇有機(jī)溶劑和水溶液作為提取液進(jìn)行優(yōu)化比較。

2.2.1 有機(jī)溶劑 樣品基質(zhì)中的蛋白質(zhì)等大分子雜質(zhì)會(huì)因共萃取效應(yīng)而被提取出來(lái)。由于蛋白質(zhì)的最佳吸收波長(zhǎng)為280 nm，與SAs 的檢測(cè)波長(zhǎng)較為相近，因此在紫外檢測(cè)時(shí)容易影響SAs 檢測(cè)的靈敏度和選擇性。相關(guān)研究表明：乙腈可以沉淀牛奶等樣品中的蛋白質(zhì)，使蛋白質(zhì)達(dá)到等電點(diǎn)沉淀[10]；而采用乙酸乙酯和甲醇進(jìn)行提取，對(duì)組織樣本中目標(biāo)化合物回收具有良好效果[11]。為此，本研究分別采用乙酸乙酯、甲醇和乙腈提取樣品，經(jīng)MCX柱凈化后，使用UPLC 檢測(cè)，統(tǒng)計(jì)目標(biāo)藥物回收率。結(jié)果顯示：乙酸乙酯和甲醇不能完全從樣品中提取藥物，受基質(zhì)中的內(nèi)源物質(zhì)干擾較大，分離不佳，且由于溶劑性質(zhì)原因[12]，大量脂溶性雜質(zhì)溶于提取液中；而使用乙腈作為提取液時(shí)，除磺胺、磺胺醋酰外，回收率均高于80%。此外，還對(duì)乙腈的酸度進(jìn)行優(yōu)化分析，通過(guò)向提取液中加入乙酸或氨水等調(diào)節(jié)溶液pH。以乙腈、氨化（1%、3%、5%）乙腈、乙酸（1%、3%、5%）乙腈分別提取樣本，比較不同提取液的提取效果。結(jié)果顯示：使用3%乙酸乙腈，可有效提取豬肉組織中的SAs，可獲得較好的回收率；增加乙酸使用量（5%），雖不影響藥物回收率，但會(huì)增加萃取中雜質(zhì)的干擾；而減少乙酸使用量（0、1%）時(shí)，可使SAs 回收率降低（＜80%）。

2.2.2 水溶液 本試驗(yàn)對(duì)PBS 溶液的提取效果進(jìn)行了優(yōu)化，分別對(duì)PBS 溶液的pH、濃度進(jìn)行優(yōu)化分析。首先優(yōu)化PBS 提取液pH，分別使用pH3～6的PBS 溶液進(jìn)行提取。結(jié)果顯示：使用PBS 溶液（pH5）時(shí)，可提取豬肉組織中的SAs，并獲得了較好的回收率。增加溶液pH（pH6）時(shí)，磺胺醋酰、磺胺鄰二甲氧嘧啶、磺胺間二甲氧嘧啶、磺胺二甲惡唑回收率降低（＜80%）；而降低溶液pH（pH3、pH4），雖不影響藥物回收率，但會(huì)增加萃取中雜質(zhì)的干擾，故選擇pH5 的PBS 溶液。此外，還對(duì)PBS 溶液濃度進(jìn)行優(yōu)化分析，分別使用0.1、0.3、0.5、0.7、1.0 mol/L 的PBS 溶液（pH5）提取樣本。結(jié)果顯示：使用0.5 mol/L PBS（pH5）溶液，可提取豬肉組織中的SAs，并獲得了較好回收率；當(dāng)PBS 溶液濃度過(guò)低時(shí)，磺胺、磺胺鄰二甲氧嘧啶、磺胺苯、磺胺對(duì)甲氧嘧啶的回收率小于80%；而提高PBS 溶液濃度，對(duì)目標(biāo)藥物回收率沒(méi)有明顯影響。故選擇0.5 mol/L PBS（pH5）溶液作為最佳水溶液提取液。

2.2.3 兩種提取液對(duì)比 對(duì)最優(yōu)的有機(jī)溶劑提取液（3%乙酸乙腈）以及水溶液提取液（0.5 mol/L PBS，pH5）進(jìn)行比較。分別使用兩種提取液提取樣本，經(jīng)MCX 柱凈化后，使用UPLC-PDA 檢測(cè)。結(jié)果顯示：以PBS 溶液、酸化乙腈作為提取液時(shí)，目標(biāo)藥物回收率均較高。但在試驗(yàn)過(guò)程中發(fā)現(xiàn)，以PBS 溶液作為提取液，在提取完成的待上樣液中，含有大量白色絮狀物，會(huì)堵塞SPE 柱，從而引起流速不穩(wěn)甚至出現(xiàn)流不動(dòng)的現(xiàn)象，導(dǎo)致試驗(yàn)結(jié)果平行性較差[13]。因此，本研究選擇3%乙酸乙腈作為豬肉樣品提取液。

2.3 凈化條件優(yōu)化

2.3.1 SPE 固相萃取柱選擇 本研究選取1#（CNW-HLB 柱）、2#（Oasis HLB 柱）、3#（CNW-MCX 柱）、4#（PCX 柱）進(jìn)行比較。標(biāo)準(zhǔn)添加量為50 μg/kg，經(jīng)甲醇、水和上樣液活化的SPE 柱富集，用甲醇或5%氨化甲醇洗脫，比較各SPE 柱對(duì)目標(biāo)藥物的富集效果。結(jié)果顯示，1～4#的富集比例分別為90%、85%、90%和83%。結(jié)果表明，4 種SPE 柱均可富集SAs，且CNW 公司生產(chǎn)的HLB 柱（1#）以及MCX 柱（3#），對(duì)目標(biāo)藥物的富集效果較好?？紤]到在試驗(yàn)過(guò)程中，由于提取液為乙腈，只有在過(guò)HLB 柱前氮吹至近干，再使用復(fù)溶液復(fù)溶后，才可繼續(xù)進(jìn)行凈化步驟，因而容易導(dǎo)致目標(biāo)藥物損失[14]，且會(huì)浪費(fèi)大量時(shí)間；而MCX 柱，由于其為陽(yáng)離子交換柱，對(duì)pH 較為敏感，以3%乙酸乙腈作為提取液時(shí)，可以直接上樣。故選擇3#作為SPE 固相萃取柱。

2.3.2 洗脫液優(yōu)化 按參考文獻(xiàn)[15-16]，選擇4種洗脫液，1%氨化甲醇、3%氨化甲醇、5%氨化甲醇、7%氨化甲醇，各取3 mL 洗脫液過(guò)已富集的MCX 固相萃取柱，比較洗脫效果。結(jié)果顯示：5%和7%的氨化甲醇洗脫能力無(wú)明顯差異（＞95%），可完全將藥物從柱床中洗脫下來(lái)，1%氨化甲醇僅可洗脫下20%～40%，而3%氨化甲醇可洗脫下60%～80%，故選擇5%氨化甲醇作為洗脫溶液。

2.4 方法學(xué)考察

2.4.1 線(xiàn)性范圍、相關(guān)系數(shù)、檢出限和定量限以不同濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行測(cè)定，以質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo)（X），峰面積為縱坐標(biāo)（Y），繪制試劑標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。結(jié)果（表1）顯示：各藥物線(xiàn)性關(guān)系良好，相關(guān)系數(shù)R2＞0.999。LOQ 為2.5～10.0 μg/kg，LOD為1.0～4.0 μg/kg。

表1 22 種獸藥的保留時(shí)間、線(xiàn)性方程、相關(guān)系數(shù)和LOQ、LOD

2.4.2 準(zhǔn)確度和精密度 22 種目標(biāo)藥物回收率及批內(nèi)、批間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差見(jiàn)表2。結(jié)果顯示，回收率為80.4%～96.6%，批內(nèi)相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.1%～4.6%，批間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為2.5%～13.4%，可滿(mǎn)足國(guó)際上對(duì)獸藥殘留的檢測(cè)需求。

表2 22 種獸藥的加標(biāo)回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差

2.5 相對(duì)于UPLC-MS/MS 的優(yōu)勢(shì)

在使用UPLC-MS/MS 法時(shí)，基質(zhì)效應(yīng)（matrix effects，ME）的存在會(huì)影響檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確度和靈敏度[17]。經(jīng)前處理樣品中加入目標(biāo)藥物，進(jìn)行UPLC-MS/MS 檢測(cè)，繪制基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)，通過(guò)計(jì)算各藥物樣本溶液與濃度相同的標(biāo)準(zhǔn)溶液之比的平均值，計(jì)算目標(biāo)藥物的基質(zhì)效應(yīng)[18]。結(jié)果顯示：目標(biāo)藥物中有部分基質(zhì)效應(yīng)較強(qiáng)（ME ＜60%），包括磺胺對(duì)甲氧嘧啶、磺胺二甲基異嘧啶、磺胺甲基嘧啶、磺胺二甲基嘧啶；部分基質(zhì)效應(yīng)很強(qiáng)（ME ＜40%），包括磺胺鄰二甲氧嘧啶、磺胺間甲氧嘧啶、磺胺苯?；|(zhì)效應(yīng)嚴(yán)重影響結(jié)果的準(zhǔn)確度和靈敏度，且UPLC-MS/MS 成本較高，操作復(fù)雜。而本研究的UPLC-PDA 法不存在基質(zhì)效應(yīng)影響，在經(jīng)前處理后雜質(zhì)較少，且成本較低、操作簡(jiǎn)便，結(jié)果準(zhǔn)確性較高，重復(fù)性良好。

2.6 實(shí)際樣品檢測(cè)

利用本研究建立的方法對(duì)從山東省采集的18份豬肉樣品進(jìn)行測(cè)定，結(jié)果未有SAs 檢出。

3 小結(jié)

本研究建立的豬肉中22 種SAs 的SPE-UPLCPDA 檢測(cè)方法靈敏度高、重復(fù)性好、成本低廉，且操作簡(jiǎn)單、快速，可以用于檢測(cè)豬肉樣品中的SAs 殘留檢測(cè)。