吳麗娜 朱玉燕 宦 晨 徐啟航 李生娥 鄭小林

(1浙江工商大學(xué)食品與生物工程學(xué)院，浙江 杭州 310018；2德清秋水果汁有限公司，浙江 德清 313216)

果實(shí)在生長(zhǎng)發(fā)育階段實(shí)施套袋，能有效防治病蟲(chóng)和鳥(niǎo)的危害，也能防止日灼對(duì)果皮的傷害，避免風(fēng)、雨、枝梢等對(duì)果實(shí)造成的機(jī)械損傷，防止果面產(chǎn)生銹斑，提高果面光潔度，改善外觀品質(zhì)，提高好果率；此外，套袋還會(huì)影響果實(shí)采后的成熟衰老和貯藏性[1-2]。目前，果實(shí)套袋已成為現(xiàn)代果樹(shù)栽培的一項(xiàng)重要技術(shù)，在我國(guó)芒果、蘋(píng)果、葡萄等果樹(shù)栽培中得到了廣泛應(yīng)用。凱特芒果(Mangifera indicaL.cv. Keitt)是從美國(guó)佛羅里達(dá)州引進(jìn)的優(yōu)質(zhì)高產(chǎn)、大果型遲熟品種水果，已成為我國(guó)攀枝花等芒果產(chǎn)區(qū)的主栽品種。當(dāng)前，攀枝花地區(qū)凱特芒果栽培中果實(shí)套袋率已達(dá)99%以上，套袋材料主要為黃袋和白袋[3]。然而，近幾年的生產(chǎn)實(shí)踐發(fā)現(xiàn)，芒果套袋加劇了采后果實(shí)的生理病害——軟鼻病發(fā)病率，甚至?xí)?dǎo)致軟鼻病爆發(fā)，嚴(yán)重影響果實(shí)的品質(zhì)和商品率，而且套不同顏色紙袋使采后果實(shí)的軟鼻病發(fā)病率和貯藏性出現(xiàn)差異[4]。

果實(shí)的風(fēng)味受多種成分的協(xié)同作用，蔗糖、果糖和葡萄糖等可溶性糖和有機(jī)酸是決定口感的重要物質(zhì)基礎(chǔ)。采后果實(shí)的糖代謝主要受蔗糖代謝相關(guān)酶活性的調(diào)控，蔗糖代謝相關(guān)酶的協(xié)同作用很大程度上決定了果實(shí)可溶性糖的組成與積累[5]。近年來(lái)，有關(guān)果實(shí)采后糖代謝及其調(diào)控已有大量的研究報(bào)道[5-8]。在貯藏過(guò)程中，凱特芒果果實(shí)有機(jī)酸含量變化不大，其糖酸比主要受可溶性糖含量的影響[4]。鄭小林課題組前期研究發(fā)現(xiàn)采前套黃袋、采前除袋或除袋后噴施鈣素等處理對(duì)凱特芒果采后果實(shí)有機(jī)物質(zhì)的代謝轉(zhuǎn)化，尤其是對(duì)果實(shí)蔗糖代謝具有一定的影響[9]。Shivashankar[10]對(duì)芒果生理紊亂及生理病害進(jìn)行了文獻(xiàn)綜述，但關(guān)于采前套黃、白袋對(duì)芒果采后果實(shí)糖代謝和生理病害等方面的研究尚鮮見(jiàn)報(bào)道。因此，研究采前套袋對(duì)芒果采后果實(shí)糖代謝及相關(guān)酶變化的影響，并初步探究糖代謝與軟鼻病之間的聯(lián)系，對(duì)于提高芒果果實(shí)品質(zhì)及商品價(jià)值具有重要意義。為此，本試驗(yàn)以套黃、白袋凱特芒果果實(shí)為材料，通過(guò)測(cè)定果實(shí)(好果和軟鼻病發(fā)病果)可溶性總糖、葡萄糖、果糖、蔗糖及淀粉含量，淀粉酶、酸性轉(zhuǎn)化酶(acid invertase，AI)、中性轉(zhuǎn)化酶(neutral invertase，NI)、蔗糖磷酸合成酶(sucrose phosphate synthase，SPS) 和蔗糖合成酶(sucrose synthase，SS)活性，研究采前套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)軟鼻病發(fā)病率、果實(shí)硬度和糖代謝之間的關(guān)聯(lián)性。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

凱特芒果生長(zhǎng)于四川省攀枝花市仁和區(qū)金沙鎮(zhèn)農(nóng)業(yè)農(nóng)村部芒果綠色生產(chǎn)示范基地，在芒果謝花后約40～50 d，分別選用黃袋和白袋兩種類(lèi)型紙袋對(duì)果實(shí)套袋。其中，黃袋:內(nèi)黑外黃的復(fù)合紙，內(nèi)外層紙規(guī)格均為30.85 cm(長(zhǎng))×19.50 cm(寬)，內(nèi)外紙定量分別為30 和50 g·m-2，撕裂度分別為200 和240 kN·m-1；白袋:白色單層紙，規(guī)格為32.00 cm(長(zhǎng)) ×21.20 cm(寬)，定量為40 g·m-2，撕裂度為250 kN·m-1。當(dāng)套黃袋和白袋果實(shí)發(fā)育成熟達(dá)到7.5 成熟時(shí)，除去果袋，采摘大小基本一致的果實(shí)，當(dāng)天空運(yùn)(常溫運(yùn)輸，不加冰)到杭州實(shí)驗(yàn)室。在攀枝花地區(qū)，不套袋芒果灼傷率高，果實(shí)蠅寄生產(chǎn)卵十分嚴(yán)重，導(dǎo)致果實(shí)商品采收期的好果率往往低于10%；同時(shí)，不套袋芒果果實(shí)后熟軟化快，無(wú)參比性，所以本試驗(yàn)未選擇不套袋果實(shí)作為對(duì)照。

乙酸乙酯、無(wú)水乙醇、蒽酮、高氯酸(HClO4)、冰乙酸、氫氧化鈉(NaOH)、Triton X-100、濃硫酸(H2SO4)，均為分析純，上海國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；乙腈、果糖、蔗糖、麥芽糖(色譜純)、檸檬酸、葡萄糖(色譜純)、檸檬酸鈉、可溶性淀粉、3，5-二硝基水楊酸(3，5-Dinitrosalicylic acid，DNS)溶液、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid，EDTA)、 巰基乙醇、尿苷二磷酸葡萄糖(uridine diphosphate glucose，UDPG)、乙酸鈉、果糖-6-磷酸、葡萄糖-6-磷酸、氯化鎂(MgCl2)，杭州常盛科教器具廠；SPS 測(cè)試盒和合SS 測(cè)試盒，南京建成生物工程研究所。

1.2 儀器與設(shè)備

FHM-1 硬度計(jì)，日本竹村電機(jī)制作所；AF-10 制冰機(jī)，美國(guó)SCOTSMAN 公司；Milli-Q 超純水裝置，美國(guó)MILLIPORE 公司；AB135-S 電子天平，瑞士METTLER TOLED 公司；3-30K 高速離心機(jī)，德國(guó)SIGMA 公司；FE28 pH 計(jì)，上海梅特勒-托利多儀器有限公司；HH-S數(shù)顯恒溫水浴鍋，鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)公司；SHZ-D(Ⅲ)循環(huán)水真空泵，南京文科儀器科技有限公司；安捷倫1100 高效液相色譜儀，美國(guó)安捷倫公司；UV 1800 紫外分光光度計(jì)，日本島津公司。

1.3 試驗(yàn)方法

1.3.1 試驗(yàn)預(yù)處理 將運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室的芒果分別以8個(gè)果為一組放入框內(nèi)，框外套0.04 mm 厚的PE 薄膜袋，袋口自然合攏，置于溫度25±1℃，相對(duì)濕度65%～70%條件下貯藏。于貯藏0 d(采摘當(dāng)天)、3 d(果實(shí)開(kāi)始變軟時(shí)，根據(jù)以往研究，采后第3 天為芒果的呼吸躍變關(guān)鍵時(shí)間點(diǎn))、10 d(果實(shí)完全變軟時(shí))分別取套黃袋和套白袋的60 個(gè)成熟度一致、外表無(wú)機(jī)械損傷的果實(shí)，用清水逐個(gè)洗凈，自然風(fēng)干，然后將果實(shí)分別隨機(jī)分為3 組，每組20 個(gè)，沿縱軸將芒果逐個(gè)對(duì)半切開(kāi)，分別統(tǒng)計(jì)軟鼻病發(fā)病率。取樣時(shí)分別取好果和軟鼻病發(fā)病果赤道處果皮和果肉，分別將果皮、果肉切碎、混勻后用液氮速凍，然后保存于-80℃超低溫冰箱，用于測(cè)定各指標(biāo)，每個(gè)指標(biāo)平行測(cè)定3 次。

1.3.2 軟鼻病發(fā)病率統(tǒng)計(jì) 根據(jù)軟鼻病發(fā)病典型癥狀[9]判斷果實(shí)是否發(fā)病，記錄發(fā)病果實(shí)數(shù)量，并計(jì)算軟鼻病發(fā)病率:

1.3.3 硬度的測(cè)定 每次每組隨機(jī)挑選10 個(gè)果實(shí)，削去表皮，于赤道部位選取2 個(gè)點(diǎn)，用硬度計(jì)(量程5 kg)進(jìn)行測(cè)定，取平均值。重復(fù)3 次。

1.3.4 可溶性總糖含量的測(cè)定 參考曹建康等[11]的方法。稱(chēng)取0.3 g 芒果果肉置于研缽中勻漿后轉(zhuǎn)入刻度試管中，加入10 mL 蒸餾水，用塑料薄膜封口，于沸水浴中煮沸提取30 min，取出待冷卻后過(guò)濾，再向沉淀中加10 mL 蒸餾水煮沸提取10 min，將兩次濾液轉(zhuǎn)移至100 mL 容量瓶中，用蒸餾水反復(fù)漂洗試管及沉淀，過(guò)濾后全部轉(zhuǎn)入容量瓶中，并定容至刻度作為提取液備用。吸取0.5 mL 樣品提取液置于25 mL 刻度試管中，加1.5 mL 蒸餾水，然后向試管中先后加入0.5 mL蒽酮-乙酸乙酯和5.0 mL 濃硫酸，混勻，置于沸水浴中逐管保溫1 min，在630 nm 波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度值，根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品可溶性總糖含量。重復(fù)3 次。

1.3.5 葡萄糖、果糖、蔗糖含量的測(cè)定 樣品處理:參照林玲[12]的方法。稱(chēng)取1 g 速凍的果肉，在微波爐中滅活30 s 后加入5 mL 90%乙醇研磨、勻漿，10 000 r·min-1離心10 min，取上清液倒入刻度試管中，殘?jiān)儆? mL 90%乙醇提取，按上述條件離心后合并上清液。然后于90℃水浴蒸干，加蒸溜水定容至2 mL。之后用一次性注射器抽取樣液，用微孔濾膜針頭過(guò)濾注入樣品瓶中以分析測(cè)定。測(cè)定方法:采用高效液相色譜儀進(jìn)行分析測(cè)定[色譜柱:Waters BEH Amide，2.5 μm，3.0 mm×150 mm(粒徑，柱內(nèi)徑×柱長(zhǎng))]。開(kāi)機(jī)脫氣，洗柱子約20 min(流動(dòng)相為80%乙腈＋20%水＋0.05%氨水)，在柱溫40℃條件下跑基線，基線穩(wěn)定后開(kāi)始進(jìn)樣，進(jìn)樣體積為5 μL，流速為0.4 mL·min-1。記錄標(biāo)樣和樣品的出峰時(shí)間和峰面積。同時(shí)，將分析純葡萄糖、果糖、蔗糖在80℃條件下烘至恒重，精確稱(chēng)取配置成濃度梯度為2.00、 4.00、 6.00 和8.00 mg·mL-1的混標(biāo)準(zhǔn)溶液。用一次性注射器抽取樣液，用微孔濾膜針頭過(guò)濾注入樣品瓶中，按上述進(jìn)樣步驟進(jìn)行分析。

1.3.6 淀粉含量的測(cè)定 淀粉含量的測(cè)定參照曹建康等[11]的酸水解法。每個(gè)樣品重復(fù)測(cè)定3 次。

1.3.7 淀粉酶活性的測(cè)定 酶液提取:取0.5 g 芒果果肉，加7 mL 去離子水研磨勻漿，在20℃條件下放置提取20 min，每隔數(shù)分鐘搖動(dòng)一次。8 000×g離心20 min，收集上清液定容至25 mL 容量瓶中保存?zhèn)溆??；钚詼y(cè)定:淀粉酶活性的測(cè)定參考曹建康等[11]的方法。每個(gè)樣品重復(fù)測(cè)定3 次。

1.3.8 AI 活性的測(cè)定 參照Nielsen 等[13]的方法。酶液提取:稱(chēng)取1 g 樣品于預(yù)冷的研缽中，加入1 mL提取液(含5 mmol·L-1MgCl2，1 mmol·L-1EDTA，0.1%巰基乙醇和0.1% Triton X-100 的0.1 mol·L-1、pH 值7.5 的磷酸鈉緩沖液)，研磨勻漿后轉(zhuǎn)入預(yù)冷的10 mL離心管中，用提取液沖洗研缽4 次，每次使用提取液1 mL。將勻漿液于4℃、10 000 r·min-1條件下離心15 min，收集上清液，將殘?jiān)? mL 提取液再離心提取一次，合并兩次離心上清液，并用提取液定容至10 mL 作為酶提取液，4℃保存?zhèn)溆?。活性測(cè)定:對(duì)照組:取酶提取液0.2 mL 于25 mL 的刻度試管中，在沸水中煮沸5 min，滅酶活，再加入0.9 mL 反應(yīng)液(含1 g 蔗糖的0.1 mol·L-1、 pH 值5.5 的乙酸乙酸鈉緩沖液)以及1.5 mL DNS 試劑，繼續(xù)煮沸5 min，最后用蒸餾水定容至25 mL。試驗(yàn)組:取酶提取液0.2 mL 于25 mL 的刻度試管中，加入0.9 mL 反應(yīng)液，于34℃水浴1 h，取出后煮沸5 min，滅酶活。再加入1.5 mL DNS 試劑，繼續(xù)煮沸5 min，用蒸餾水定容至25 mL。于540 nm 波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度值。

1.3.9 NI 活性的測(cè)定 參照Nielsen 等[13]的方法。酶液提取方法同1.3.8?；钚詼y(cè)定:對(duì)照組:取酶提取液0.2 mL 于25 mL 的刻度試管中，煮沸5 min，滅酶活，再加入0.9 mL 反應(yīng)液(含1 g 蔗糖，10.17 mg MgCl2，29.2 mg EDTA 的0.1 mol·L-1、pH 值7.5 的磷酸鈉緩沖液)以及1.5 mL DNS 試劑，繼續(xù)煮沸5 min，最后用蒸餾水定容至25 mL。試驗(yàn)組:取酶提取液0.2 mL 于25 mL 的刻度試管中，加入0.9 mL 反應(yīng)液，于34℃水浴1 h，取出后煮沸5 min，滅酶活。再加入1.5 mL DNS 試劑，繼續(xù)煮沸5 min，用蒸餾水定容至25 mL。于540 nm 波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度值。以葡萄糖做標(biāo)準(zhǔn)曲線，計(jì)算樣品中NI 活性。

1.3.10 SPS 和SS 活性的測(cè)定 酶液提取:準(zhǔn)確稱(chēng)取1 g 芒果果肉置于預(yù)冷的研缽中，加入9 mL 測(cè)試盒中的植物酶提取液，冰浴研磨成10%的勻漿，4 000 r·min-1離心15 min，取上清。根據(jù)SPS 和SS 測(cè)試盒的說(shuō)明進(jìn)行測(cè)定。

1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

采用Microsoft Office Excel 2010 繪圖，采用SPSS statistics 18.0 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析，采用Duncan 多重比較法進(jìn)行顯著性分析，P＜0.05 為顯著性水平。

2 結(jié)果與分析

2.1 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)軟鼻病發(fā)病率的變化

由表1 可知，隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)，套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)軟鼻病發(fā)病率逐漸增加。套白袋芒果果實(shí)的軟鼻病發(fā)病率在采后貯藏第3 天超過(guò)了50%，貯藏后第10 天高達(dá)70%。套黃袋凱特芒果采后果實(shí)的軟鼻病發(fā)病率顯著低于套白袋果實(shí)。表明不同紙袋套袋會(huì)影響芒果采后果實(shí)的軟鼻病發(fā)病率。

表1 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)軟鼻病發(fā)病率的變化Table 1 Change in the incidence of soft-nose disease in mango fruit cv. Keitt with bagging of yellow or white bags during storage /%

2.2 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)硬度的變化

由圖1 可知，凱特芒果果實(shí)硬度隨著采后貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)不斷下降。套黃袋芒果果實(shí)硬度在貯藏0～3 d 內(nèi)下降不明顯，但在貯藏3 ～10 d 內(nèi)急劇下降；套白袋果實(shí)硬度在貯藏0～3 d 和貯藏3 ～10 d 期間均急劇下降。同時(shí)，在貯藏0 和3 d 時(shí)，套黃袋果實(shí)的硬度顯著高于套白袋果實(shí)，且同一種套袋處理好果的硬度顯著高于軟鼻病病果；但貯藏第10 天，所有果實(shí)的硬度均無(wú)顯著差異。表明套黃袋比套白袋更有利于減緩采后凱特芒果果實(shí)的軟化速率。

圖1 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)硬度的變化Fig.1 Change in firmness in mango fruit cv. Keitt with bagging of yellow or white bags during storage

2.3 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)淀粉含量的變化

由圖2 可知，貯藏0 d 時(shí)，套黃袋和白袋芒果果實(shí)的淀粉含量無(wú)顯著差異；隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)，套黃、白袋凱特芒果好果和軟鼻病病果果實(shí)的淀粉含量均呈下降趨勢(shì)，其中，在貯藏3 d 時(shí)，套黃袋果實(shí)的淀粉含量顯著高于套白袋果實(shí)，但在貯藏10 d 時(shí)顯著低于套白袋果實(shí)。套黃、白袋果實(shí)的淀粉含量在貯藏初期急劇降低，但套白袋果實(shí)降幅大于套黃袋果實(shí)，且套白袋處理病果的降幅大于好果。說(shuō)明套白袋果實(shí)及其發(fā)病果實(shí)加速了采后果實(shí)的淀粉降解。

圖2 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)淀粉含量的變化Fig.2 Change in starch content in mango fruit cv.Keitt with bagging of yellow or white bags during storage

2.4 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)可溶性總糖含量的變化

由圖3 可知，隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)，各組芒果采后果實(shí)可溶性總糖的積累呈遞增趨勢(shì)，且各貯藏時(shí)期套黃袋好果的可溶性總糖含量顯著低于套白袋芒果。兩種套袋果實(shí)病果的可溶性總糖含量高于好果，且在各貯藏時(shí)期套白袋病果的可溶性總糖含量最高。說(shuō)明芒果果實(shí)軟鼻病發(fā)病加速了淀粉向可溶性總糖的轉(zhuǎn)化，導(dǎo)致可溶性總糖積累。

圖3 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)可溶性總糖含量的變化Fig.3 Change in the soluble sugar content in mango fruit cv. Keitt with bagging of yellow or white bags during storage

2.5 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)葡萄糖、果糖和蔗糖含量的變化

由圖4-A 可知，隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)，套黃、白袋凱特芒果好果和病果的蔗糖含量均呈上升趨勢(shì)。在采后貯藏0 d 時(shí)，兩種套袋處理好果的蔗糖含量分別為8.58 和16.55 mg·g-1，至貯藏3 d 時(shí)，套黃、白袋好果的蔗糖含量分別增加了145.3%和181.9%，說(shuō)明芒果果實(shí)經(jīng)白袋套袋處理后，更早地開(kāi)啟了糖代謝系統(tǒng)，使得蔗糖更快地積累；與套白袋處理相比，套黃袋處理則顯著降低了果實(shí)的蔗糖積累量。

由圖4-B 可知，隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)，套黃、白袋凱特芒果好果和病果的果糖含量均先上升后略下降。套黃、白袋芒果好果果糖含量在貯藏第3 天時(shí)分別為19.21 和23.41 mg·g-1，套黃袋好果果糖含量?jī)H為套白袋好果的82.1%，顯著低于套白袋果實(shí)(P＜0.05)。說(shuō)明套黃袋處理緩解了芒果采后果實(shí)果糖積累的速率，尤其在貯藏前期這種效果更明顯。

由圖4-C 可知，整個(gè)貯藏期間套黃、白袋凱特芒果好果和病果葡萄糖含量的變化趨勢(shì)與果糖基本一致。芒果葡萄糖含量在貯藏初期迅速增加，在貯藏末期降低；其中套白袋好果的葡萄糖含量在貯藏10 d 時(shí)顯著低于其他果實(shí)。

2.6 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)淀粉酶活性的變化

圖4 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)蔗糖含量(A)、果糖含量(B)和葡萄糖含量(C)的變化Fig.4 Change in the sucrose content (A)，fructose content (B)，and glucose content (C) in mango fruit cv.Keitt with bagging of yellow or white bags during storage

由圖5 可知，在貯藏0 和3 d 時(shí)套黃、白袋芒果好果的淀粉酶活性顯著低于發(fā)病果，在貯藏10 d 時(shí)，套黃袋好果和病果的淀粉酶活性降低。而套白袋好果和病果的淀粉酶活性升高，但兩種套袋處理好果的淀粉酶活性均顯著高于其對(duì)應(yīng)的病果(P＜0.05)。

圖6 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)AI(A)和NI(B)活性的變化Fig.6 Change in AI(A)and NI(B)activity in mango fruit cv. Keitt with bagging of yellow or white bags during storages

圖7 套黃、白袋凱特芒果采后果實(shí)SS (A) 和SPS (B) 活性的變化Fig.7 Change in SS(A)and SPS(B)activity in mango fruit cv. Keitt with bagging of yellow or white bags during storages

3 討論

芒果是典型的淀粉轉(zhuǎn)化型果實(shí)，即生長(zhǎng)發(fā)育階段以積累淀粉為主，成熟階段以積累蔗糖為主，采后果實(shí)在后熟過(guò)程中淀粉降解，蔗糖迅快速積累，在完熟時(shí)達(dá)到最高值[14]。研究表明，蘋(píng)果[15]、香蕉[16]、獼猴桃[17]、桃[18]等采后果實(shí)的軟化與淀粉降解密切相關(guān)，果實(shí)細(xì)胞內(nèi)淀粉向可溶性糖的轉(zhuǎn)化速率間接影響果實(shí)的軟化進(jìn)程。同時(shí)，芒果的后熟軟化與胞壁擴(kuò)展蛋白質(zhì)(expansin，ExpA)表達(dá)增加，多聚半乳糖醛酸酶( polygalacturonase，PG)、 果膠甲酯酶 ( pectin pectylhydrolase，PME)、α-半乳糖苷酶，β-半乳糖苷酶、纖維素酶(cellulase，Cx)等細(xì)胞壁降解酶活性增加，進(jìn)而導(dǎo)致細(xì)胞壁降解密切相關(guān)[19]。同時(shí)，芒果在采后貯藏過(guò)程中，由于淀粉酶的催化作用使淀粉水解轉(zhuǎn)化為可溶性糖，引起細(xì)胞膨脹力下降，從而導(dǎo)致果實(shí)軟化[20]。本試驗(yàn)結(jié)果表明，盡管采收期套黃、白袋芒果果實(shí)的淀粉含量無(wú)顯著差異，但套白袋好果和病果的可溶性總糖、果糖和蔗糖含量均顯著高于套黃袋好果和病果，而且兩種套袋處理病果在貯藏0 和3 d 時(shí)可溶性總糖含量、蔗糖含量以及淀粉酶活性總體顯著高于對(duì)應(yīng)的好果。說(shuō)明與套黃袋相比，套白袋促進(jìn)了采后芒果果實(shí)淀粉的降解，而且軟鼻病發(fā)病果也提前加快了淀粉的降解，進(jìn)而促進(jìn)了果實(shí)的軟化成熟。當(dāng)芒果開(kāi)始變軟后熟(3 d 時(shí))，套白袋芒果果實(shí)淀粉酶活性低于套黃袋果實(shí)，這可能是由于果實(shí)中的果糖和葡萄糖是淀粉酶的反饋抑制因子，在轉(zhuǎn)熟期套白袋芒果果實(shí)的果糖和葡萄糖含量保持較高水平，因而抑制了淀粉酶活性。

果實(shí)可溶性總糖的積累是形成果實(shí)風(fēng)味物質(zhì)的基礎(chǔ)，也直接決定果實(shí)的商品價(jià)值[21]。據(jù)前人研究報(bào)道，不同紙袋套袋處理使果實(shí)的含糖量產(chǎn)生差異，其原因主要是套不同紙袋導(dǎo)致果實(shí)外圍微環(huán)境的光照、溫度、濕度產(chǎn)生差異，這些環(huán)境因子的改變勢(shì)必直接影響果實(shí)生長(zhǎng)發(fā)育階段的生理代謝，進(jìn)而影響采后果實(shí)的生理代謝，導(dǎo)致果實(shí)糖、酸等營(yíng)養(yǎng)品質(zhì)及貯藏性發(fā)生變化[22-26]。然而套白袋和黃袋對(duì)芒果果實(shí)微環(huán)境因子的影響及其對(duì)果實(shí)生長(zhǎng)品質(zhì)及貯藏性的影響還需進(jìn)一步研究。

果實(shí)SPS、SS、AI 和NI 是參與蔗糖代謝的主要酶[27-28]，其中，SS 既能合成蔗糖又能水解蔗糖，具有雙功能酶的特性；AI 和NI 催化蔗糖不可逆地分解為果糖和葡萄糖；SPS 是蔗糖合成中的關(guān)鍵酶，催化合成蔗糖的不可逆反應(yīng)[5]。本試驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn)，套黃袋、白袋芒果果實(shí)貯藏過(guò)程中蔗糖的合成占主導(dǎo)地位，但果實(shí)蔗糖含量在貯藏期間變化趨勢(shì)與SPS 活性變化不一致，而葡萄糖和果糖含量與AI 活性變化趨勢(shì)基本一致，隨著貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)，蔗糖快速大量積累，而葡萄糖和果糖含量在貯藏末期與貯藏初期相比變化不大。然而，與套白袋相比，套黃袋有效抑制果實(shí)貯藏初期蔗糖代謝AI、NI、SS 等相關(guān)酶活性，使套黃袋果實(shí)采后蔗糖積累的速率低于套白袋果實(shí)，果實(shí)采后軟鼻病發(fā)病率也顯著低于套白袋果實(shí)，且套黃袋和白袋好果的蔗糖積累量分別在貯藏3～10 d 和0 ～3 d 顯著低于其相應(yīng)的病果。另外，本研究結(jié)果表明，套黃、白袋芒果采后果實(shí)軟鼻病癥即果肉軟化潰敗隨果實(shí)的成熟衰老進(jìn)程而加劇，這與不套袋芒果采后軟鼻病癥狀通常隨果實(shí)成熟加重相類(lèi)似[10]。上述結(jié)果表明，芒果采后果肉糖代謝變化可能與果實(shí)軟鼻病的病情發(fā)展相關(guān)；與套白袋相比，套黃袋更有利于降低采后果實(shí)的糖代謝，延緩果實(shí)的衰老進(jìn)程，降低果實(shí)軟鼻病發(fā)病率，提高果實(shí)的耐貯性。然而，有關(guān)芒果套黃、白袋引起果實(shí)外圍微環(huán)境光、溫和濕度的差異，進(jìn)而影響果實(shí)糖代謝等活動(dòng)，以及果實(shí)采后糖代謝調(diào)控與軟鼻病病害控制之間的關(guān)系尚需進(jìn)一步研究。

4 結(jié)論

本研究結(jié)果表明，套袋芒果果實(shí)采后軟鼻病發(fā)病率均伴隨果實(shí)的成熟衰老而增加，但套黃袋芒果采后果實(shí)軟鼻病發(fā)病率顯著低于套白袋果實(shí)。套黃袋芒果采后果實(shí)淀粉轉(zhuǎn)化為蔗糖的代謝活性低于套白袋芒果，從而有助于延緩采后果實(shí)后熟衰老，提高果實(shí)的耐貯性，降低果實(shí)軟鼻病發(fā)病率。與芒果好果相比，病果的糖代謝相關(guān)酶活性總體較高，淀粉降解快速，蔗糖快速增加累積。采后芒果果肉蔗糖代謝可能與軟鼻病的病情發(fā)展相關(guān)，但套袋對(duì)芒果采后果實(shí)糖代謝的影響及與軟鼻病病情發(fā)展的內(nèi)在關(guān)聯(lián)仍需進(jìn)一步研究。