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CRISPR系統(tǒng)轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)研究進(jìn)展

2020-12-04 08:07:14葉洲杰王心睿
生物技術(shù)通報(bào) 2020年11期
關(guān)鍵詞:文庫(kù)靶標(biāo)基因組

葉洲杰 王心睿

(1.福建省兒童醫(yī)院,福州 350011;2.福建醫(yī)科大學(xué)附屬福建省婦幼保健院醫(yī)學(xué)研究中心,福州 350001;3.福建省婦幼保健院福建省婦兒重大疾病研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福州 350001;4.國(guó)家衛(wèi)健委非人靈長(zhǎng)類生育調(diào)節(jié)技術(shù)評(píng)價(jià)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,福州 350013)

探究基因在信號(hào)通路中的功能與在人類疾病研究中的作用,仍然是基礎(chǔ)科學(xué)研究的重要內(nèi)容?;蚓庉嫾夹g(shù)作為后基因組學(xué)時(shí)代的重要研究工具,是研究基因功能的重要手段。人類從未停止在基因編輯技術(shù)上的探尋和革新,其研究歷程從鋅指核酸酶(Zinc-finger nucleases,ZFN)、轉(zhuǎn)錄激活因子樣效應(yīng)因子核酸酶(Transcription activator-like effector nucleases,TALEN)到規(guī)律性成簇間隔的短回文重復(fù)序列簇技術(shù)(Clustered regularly interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated protein,CRISPR/Cas)有了飛速的發(fā)展[1]。CRISPR/Cas技術(shù)具有高效、便捷、成本低等優(yōu)點(diǎn),能夠在細(xì)胞或動(dòng)物水平實(shí)現(xiàn)高效率的基因敲除,而受到廣泛的研究運(yùn)用。

CRISPR/Cas系統(tǒng)是以細(xì)菌和古細(xì)菌的長(zhǎng)期演化過程中形成的適應(yīng)性天然防御機(jī)制為基礎(chǔ)發(fā)展成的一項(xiàng)新基因編輯技術(shù)[2],Ⅱ型CRISPR/cas系統(tǒng)在發(fā)揮基因編輯功能時(shí)只需要Cas9一種核酸酶參與作用,避免了其它類型CRISPR需要多蛋白相互作用的過程[3-4]。CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)憑借其簡(jiǎn)單方便、操作性強(qiáng)等優(yōu)勢(shì),2013年被Science雜志列入十大科技研究進(jìn)展之一,同時(shí)Nature雜志子刊方法學(xué)雜志將其列入2013年年度研究方法。運(yùn)用CRISPR/Cas9技術(shù)在斑馬魚、小鼠、恒河猴、果蠅等動(dòng)物的受精卵或胚胎進(jìn)行基因敲除,構(gòu)建基因敲除模型,在生長(zhǎng)機(jī)制調(diào)控、腫瘤免疫治療、藥物靶點(diǎn)研究分析、耐藥機(jī)制研究等研究中起到重要作用。

1 CRISPR/Cas9系統(tǒng)介紹

CRISPR/Cas9系統(tǒng)主要兩部分組成(圖1):一部分由crRNA(CRISPR-derived RNA)含有20 nt序列能夠特異性結(jié)合不同靶標(biāo)基因。crRNA與tracrRNA(trans-activating RNA)形成tracrRNA/crRNA 復(fù)合物作為Cas9蛋白結(jié)合結(jié)構(gòu)域,招募Cas9蛋白到crRNA結(jié)合的基因序列處對(duì)目的基因進(jìn)行切割[6-7];另一部分為具有Ruvc1和HNH核酸內(nèi)切酶活性的Cas9蛋白[8],蛋白兩端攜帶了核定位信號(hào)NLS,確保Cas9蛋白能夠進(jìn)入細(xì)胞核完成對(duì)目的基因序列的特異性切割[9]。為了保證Cas9蛋白的有效切割活性,sgRNA靶標(biāo)目的基因序列的3'端要具有前間區(qū)序列鄰近基序(PAM,-NGG-)位點(diǎn)的存在[10]。

細(xì)胞對(duì)于損傷的DNA序列能夠通過非同源末端連接(Non-homologous end joining,NHEJ)和同源介導(dǎo)雙鏈DNA修復(fù)(Homology directed repair,HDR)對(duì)斷裂的DNA鏈進(jìn)行修復(fù),實(shí)現(xiàn)對(duì)DNA序列的特異性突變[11]。對(duì)于sgRNA有可能存在基因脫靶與非靶標(biāo)基因配對(duì)而引入新的突變,導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)現(xiàn)象不準(zhǔn)確出現(xiàn)誤差等一系列問題,一直存在爭(zhēng)議。2019年,宿兵團(tuán)隊(duì)[12]使用與人類進(jìn)化關(guān)系最為接近的獼猴,利用CRISPR/Cas9技術(shù)構(gòu)建MCPH1基因缺失小頭癥獼猴模型,通過對(duì)多只MCPH1基因缺失獼猴與其野生型父母本獼猴進(jìn)行二代測(cè)序分析,比對(duì)發(fā)現(xiàn)在MCPH1缺失獼猴基因組中并未出現(xiàn)大量新發(fā)突變,擴(kuò)增子測(cè)序結(jié)果顯示在sgRNA對(duì)應(yīng)基因切割區(qū)域也并未發(fā)現(xiàn)長(zhǎng)片段的基因結(jié)構(gòu)變異。研究結(jié)果表明在非人靈長(zhǎng)類獼猴基因組中,CRISPR/Cas9不會(huì)導(dǎo)致較高的基因突變,具有一定的安全性。

2 CRISPR/Cas9生命科學(xué)研究應(yīng)用

2011年,Bhaya等[13]將外源自發(fā)突變抗噬菌體感染嗜熱鏈球菌的CRISPR系統(tǒng)導(dǎo)入大腸桿菌中,大腸桿菌獲得了抗噬菌體感染能力。2013年,張峰團(tuán)隊(duì)[14]將Ⅱ型CRISPR/Cas9系統(tǒng)導(dǎo)入哺乳動(dòng)物細(xì)胞中,實(shí)現(xiàn)對(duì)于哺乳動(dòng)物的基因編輯。這些研究結(jié)果證明CRISPR/Cas9系統(tǒng)能夠在不同物種間發(fā)揮相同的功能。至2013年以來,人們運(yùn)用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)在基礎(chǔ)科學(xué)中的研究成果澎涌而出。2017年,李曉江課題組[15]運(yùn)用腺病毒侵染運(yùn)送的方式敲除亨廷頓模型小鼠腦細(xì)胞中的mHTT基因,發(fā)現(xiàn)缺失mHTT基因表達(dá)后能夠恢復(fù)亨廷頓小鼠的運(yùn)動(dòng)能力。2019年,馮國(guó)平課題組[16]利用CRISPR基因編輯技術(shù)對(duì)恒河猴的SHANK3基因進(jìn)行敲除,探究SHANK3在自閉癥的作用。研究發(fā)現(xiàn),恒河猴在缺失SHANK3后睡眠質(zhì)量降低且重復(fù)性動(dòng)作增多。非人靈長(zhǎng)類自閉癥模型對(duì)于了解人類腦神經(jīng)環(huán)路異常以及自閉癥相關(guān)疾病具有重要的科學(xué)意義。

運(yùn)用CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)不僅能夠運(yùn)用于基礎(chǔ)科學(xué)研究中,其在臨床研究中也具有重要作用。CAR-T作為白血病治療的重要手段,對(duì)于血液癌癥與淋巴細(xì)胞癌具有明顯的治療效果,然而目前在T細(xì)胞中插入嵌合抗體片段主要還是通過慢病毒或轉(zhuǎn)座子隨機(jī)插入T細(xì)胞基因組中,隨機(jī)插入造成T細(xì)胞基因功能的破壞以及出現(xiàn)的風(fēng)險(xiǎn)是不可而預(yù)的[17]。2018年,F(xiàn)raietta等[18]在T細(xì)胞的TET2基因中利用CRISPR/Cas9和同源重組的方式插入CD-19 CAR,電轉(zhuǎn)染方式在外源載體導(dǎo)入T細(xì)胞中,定點(diǎn)敲入外源表達(dá)閱讀框,從而實(shí)現(xiàn)了在T細(xì)胞中定點(diǎn)構(gòu)建CAR-T細(xì)胞。2020年,李大力課題組[19]運(yùn)用CRISPR單堿基突變技術(shù),成功編輯HBG1/2啟動(dòng)子上的BCL11A結(jié)合位點(diǎn),誘導(dǎo)β地中海貧血患者中的γ珠蛋白的表達(dá),明顯改善了患者體內(nèi)紅細(xì)胞的成熟程度,運(yùn)用基因編輯技術(shù)有望成為治愈β地中海貧血的治療手段。

現(xiàn)今對(duì)于CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù)的研究以及運(yùn)用已經(jīng)逐漸成熟,該技術(shù)已經(jīng)成功被運(yùn)用到小鼠、獼猴、擬南芥、線蟲、果蠅等動(dòng)植物基因研究中[20]。CRISPR技術(shù)除了用于基因功能研究之外,CRISPR系統(tǒng)延伸應(yīng)用對(duì)于在后基因組學(xué)時(shí)代高通量篩選人類疾病調(diào)控基因、腫瘤耐藥機(jī)制研究、遺傳性疾病與病原微生物感染疾病診斷同樣具有重要研究意義,有效推動(dòng)了人類臨床醫(yī)學(xué)研究發(fā)展。

3 CRISPR系統(tǒng)轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)應(yīng)用擴(kuò)展

3.1 CRISPR診斷技術(shù)

CRISPR/Cas9基因編輯系統(tǒng)的運(yùn)用風(fēng)靡全球時(shí),張峰、Doudna等多位研究者對(duì)除Cas9蛋白以外的CRISPR相關(guān)蛋白(Cas蛋白)研究逐漸深入,研究發(fā)現(xiàn)自然界中存在著多種功能結(jié)構(gòu)不同的Cas蛋白[22-23]。通過Cas蛋白的切割活性,利用CRISPR系統(tǒng)作為體外分子診斷,將CRISPR技術(shù)應(yīng)有推向了一個(gè)新高度[21]。CRISPR診斷技術(shù)能夠在體外方便快捷地識(shí)別診斷病原體基因序列,在對(duì)靶標(biāo)序列切割時(shí)釋放信號(hào)達(dá)到對(duì)疾病的快速診斷,其在新生兒產(chǎn)前篩查、遺傳病診斷、病毒感染檢測(cè)等方面具有強(qiáng)大的優(yōu)勢(shì),與常規(guī)RT-PCR的基因檢測(cè)鑒定技術(shù)相比具有靈敏度強(qiáng),方便,快速等特點(diǎn),能適用于偏遠(yuǎn)山區(qū)醫(yī)療設(shè)施條件差的地區(qū),甚至能夠做到即時(shí)檢測(cè)。

2015年,張峰等研究發(fā)現(xiàn)另一II型CRISPR系統(tǒng)的核酸內(nèi)切酶Cas12a蛋白,其同樣具有在sgRNA引導(dǎo)下對(duì)雙鏈DNA進(jìn)行特異性切割的活性[22]。隨后Doundna等發(fā)現(xiàn),當(dāng)Cas12a蛋白對(duì)雙鏈DNA進(jìn)行切割后,它能對(duì)周圍的單鏈DNA進(jìn)行極高活性的隨機(jī)切割[23]。利用這個(gè)特性,Doundna團(tuán)隊(duì)研發(fā)了DETECTR(DNA Endonuclease Targeted CRISPR Trans Reporter)診斷系統(tǒng),在DETECTR系統(tǒng)中包含了CRISPR-Cas12a、特異性針對(duì)靶標(biāo)sg-RNA、熒光報(bào)告分子(圖2)。Doundna運(yùn)用RPA(Recom-binase polymerase amplification)等溫?cái)U(kuò)增系統(tǒng),在37℃ RPA能對(duì)靶標(biāo)基因?qū)嵭锌焖贁U(kuò)增。Cas12a對(duì)靶標(biāo)基因進(jìn)行切割后能夠?qū)χ車鷨捂湡晒鈭?bào)告分子進(jìn)行切割,切割暴露后的熒光基團(tuán)信號(hào)能夠被信號(hào)采集器收集,通過評(píng)估熒光強(qiáng)度,判斷樣本中是否存在sgRNA特異性結(jié)合的靶標(biāo)基因序列。Cas12a被開發(fā)成高靈敏度的DNA分子檢測(cè)工具,Doundna博士運(yùn)用該系統(tǒng)能夠準(zhǔn)確檢測(cè)出含人乳頭瘤病毒(HPV)患者樣本中的HPV16和HPV18這兩個(gè)高風(fēng)險(xiǎn)類型[24]。CRISPR-Cas12a對(duì)于腫瘤和傳染性疾病等的DNA分子檢測(cè),這也暗示了運(yùn)用CRISPR系統(tǒng)作為臨床診斷技術(shù)具有巨大的應(yīng)用潛力。

CRISPR診斷技術(shù)同樣能夠適用于RNA分子診斷,2016年,張峰等發(fā)現(xiàn)Cas13a蛋白在切割靶標(biāo)RNA序列后仍能保持切割活性對(duì)周圍RNA進(jìn)行切割[26],人們將這一現(xiàn)象稱為“collateral cleavage”。根據(jù)這一特性Doundna將Cas13a蛋白運(yùn)用于RNA診斷中[27],將Cas13a蛋白的“collateral cleavage”特性運(yùn)用于RNA檢測(cè)(圖3)。然而最初Cas13a用于RNA檢測(cè)技術(shù)的靈敏度有待提高,這使CRISPR RNA診斷技術(shù)的發(fā)展受到了局限。2017年,張峰等對(duì)CRISPR/Cas13a診斷平臺(tái)進(jìn)行了優(yōu)化,SHERLOCK(Specific High-sensitivity Enzymatic Reporter unLOCKing)系統(tǒng)將診斷靈敏度提升百萬(wàn)倍,能夠檢測(cè)出每微升體積中只含1個(gè)拷貝的寨卡病毒或登革熱病毒[28]。2018年,Science雜志中連發(fā)4篇關(guān)于CRISPR/Cas13a 技術(shù)在臨床診斷中的應(yīng)用,張峰等開發(fā)的HUDSON(heating unextracted diagnostic samples to obliterate nucleases)技術(shù)在常溫下結(jié)合SHERLOCK系統(tǒng)能夠在2 h內(nèi)快速完成對(duì)患者體內(nèi)登革熱病毒檢測(cè)[29-30]。CRISPR診斷技術(shù)的簡(jiǎn)便快捷和高靈敏度等特點(diǎn)與傳統(tǒng)臨床醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)技術(shù)相比不需要復(fù)雜的檢測(cè)儀器設(shè)備,張峰等將檢測(cè)信號(hào)以檢測(cè)試紙的方式展現(xiàn)在人們面前[30],在高靈敏度檢出效率的的同時(shí),避免了攜帶儀器設(shè)備不便以及高成本檢測(cè)等問題,其作為臨床轉(zhuǎn)化研究應(yīng)用對(duì)于人類健康安全具有重要作用。

圖2 CRISPR/Cas12a體外診斷圖示[23]

2019年中國(guó)爆發(fā)新型冠狀病毒(SARS-CoV-2)造成全國(guó)數(shù)萬(wàn)人感染,由于能夠在人群中接觸傳播,造成了高傳染性與高致死性,SARS-CoV-2的死亡率為2%[31],已經(jīng)對(duì)生命安全與正常工作活動(dòng)產(chǎn)生嚴(yán)重危害。SARS-CoV-2病毒具有14-20 d不等的潛伏期,常規(guī)的real-time PCR和膠體金病毒檢測(cè)法由于靈敏度不高且對(duì)病毒檢出拷貝數(shù)有要求,導(dǎo)致不能夠及時(shí)檢測(cè)病毒的存在,使得病毒攜帶者能夠在人群中廣泛傳播。2020年2月,張峰等向全球公布了使用基于CRISPR/Cas13的SHERLOCK技術(shù)檢測(cè)新型冠狀病毒的詳細(xì)操作流程文檔,SHERLOCK技術(shù)檢測(cè)新冠病毒高靈敏性,可以檢測(cè)出每微升僅10-100個(gè)拷貝的病毒。由于該方法操作簡(jiǎn)單,只需純化的核酸分子樣本,1 h即可完成檢測(cè),減少了常規(guī)核酸提取等實(shí)驗(yàn)操作過程,能夠快速方便地準(zhǔn)確檢測(cè)患者體內(nèi)是否存在新型冠狀病毒。

圖3 CRISPR/Cas13a分子診斷示意圖[25]

張峰團(tuán)隊(duì)利用Cas13核酸酶的酶切活性研發(fā)出高靈敏度的人類體內(nèi)RNA病毒,細(xì)菌或其他靶標(biāo)存在的RNA分子診斷技術(shù)后,對(duì)核酸分子診斷技術(shù)的發(fā)展具有推進(jìn)性的作用。2019年。張峰等將Cas13蛋白的分子診斷能力與抗病毒活性整合在一起,研發(fā) 出CARVER(Cas13-Assisted Restriction of Viral Expression and Readout,Cas13)系統(tǒng)[32],該系統(tǒng)在識(shí)別診斷靶標(biāo)RNA的同時(shí)能夠治療病毒的感染,研究者通過確定數(shù)百種可能潛在感染人類的ssRNA病毒物種中的數(shù)千個(gè)潛在Cas13 crRNA靶位點(diǎn),首先將Cas13蛋白表達(dá)載體與工程化的crRNA導(dǎo)入細(xì)胞中,24 h后將淋巴細(xì)胞性脈絡(luò)叢腦膜炎病毒(LCMV)、甲型流感病毒(IAV)和水泡性口炎病毒(VSV)3種不同RNA病毒分別侵染宿主細(xì)胞,研究發(fā)現(xiàn)在感染24 h后,宿主細(xì)胞中的病毒RNA水平顯著降低40多倍,而在IAV病毒侵染宿主細(xì)胞8h后,檢測(cè)發(fā)現(xiàn)IAV病毒的侵染能力降低了300多倍。運(yùn)用CARVER系統(tǒng)在檢出靶標(biāo)病毒存在的同時(shí)能夠有效清除人體內(nèi)的RNA病毒,其對(duì)于針對(duì)已知或新發(fā)現(xiàn)的人類病原體感染時(shí),作為快速診斷和抗病毒藥物研發(fā)中具有巨大的潛力。2020年,面對(duì)突發(fā)性新型冠狀病毒感染肺炎爆發(fā),哈佛醫(yī)學(xué)院Nguyen等[33]以腺相關(guān)病毒為載體將CRISPR/Cas13d系統(tǒng)與多個(gè)靶向SARS-CoV-2病毒多肽編碼區(qū)的guide RNA輸入新冠肺炎患者體內(nèi)。Cas13d的核酸酶活性切割SARS-CoV-2病毒RNA序列,從而避免了病毒的復(fù)制增殖導(dǎo)致對(duì)人體的傷害,運(yùn)用“病毒殺傷病毒”的研究治療方法,避免了由于病毒容易突變而導(dǎo)致對(duì)抗病毒藥物耐藥性問題的出現(xiàn),對(duì)于高效、方便、高靈活性的快速治療預(yù)防RNA病毒,以及對(duì)于已經(jīng)產(chǎn)生耐藥性的突變RNA病毒治療提供一種新的臨床治療手段。然而在進(jìn)入臨床研究之前需在非人靈長(zhǎng)類等動(dòng)物模型中對(duì)其診斷SARS-CoV-2或其它RNA病毒的安全性與高效性評(píng)估。

運(yùn)用CRISPR體外診斷檢測(cè)平臺(tái)能夠?qū)π滦凸跔畈《?、寨卡病毒、登革熱病毒等烈性病毒進(jìn)行快速準(zhǔn)確的判定,及時(shí)有效對(duì)患者進(jìn)行準(zhǔn)確診斷治療隔離,減少病毒傳播。CRISPR在醫(yī)療設(shè)施條件薄弱地區(qū)能夠起到強(qiáng)大檢測(cè)作用的同時(shí),還能夠針對(duì)病毒對(duì)治療藥物產(chǎn)生耐藥性,作為一種新的病毒臨床治療手段;不同亞型的病毒檢測(cè)區(qū)分;臨床表型相似的RNA病毒區(qū)分;抗生素耐藥性基因檢測(cè)等方面具有眾多應(yīng)用。CRISPR診斷技術(shù)同時(shí)推動(dòng)了臨床即時(shí)檢驗(yàn)技術(shù)(Point-of-care testing,POCT)的發(fā)展,在不需要專業(yè)臨床檢驗(yàn)醫(yī)生存在的情況下,通過檢驗(yàn)試紙等就能快速準(zhǔn)確對(duì)傳染性疾病進(jìn)行檢測(cè),對(duì)于對(duì)癥及時(shí)救治提升患者生存率,減緩疾病的傳播具有重大意義。

3.2 CRISPR基因敲除文庫(kù)

人類及模式生物基因組計(jì)劃研究的初步完成,人們對(duì)于基因功能有了一定的認(rèn)知,但對(duì)于基因在人類生理功能調(diào)控、基因參與的信號(hào)通路研究、基因與對(duì)于腫瘤治療藥物和抗病毒藥物等的耐藥性機(jī)制以及更多問題仍有待科學(xué)家們的探索。如何利用現(xiàn)有的科學(xué)實(shí)驗(yàn)手段以及對(duì)基因功能的認(rèn)知,解決疾病的發(fā)病過程和發(fā)生機(jī)制、通過尋找與人類疾病相關(guān)的功能性基因,為人類臨床疾病治療研究新的靶點(diǎn)與研究新的治療藥物具有重要意義。

高通量基因篩選技術(shù)的出現(xiàn)在全基因組范圍或部分基因組范圍內(nèi)通過干擾基因表達(dá)篩選候選基因,成為功能性基因篩選的重要手段。CRISPR/Cas9技術(shù)的發(fā)展使得在多基因范圍甚至全基因組規(guī)模上構(gòu)建基因敲除載體文庫(kù)成為了可能。使用CRISPR基因敲除文庫(kù)構(gòu)建細(xì)胞敲除文庫(kù)在哺乳動(dòng)物全基因組范圍內(nèi)進(jìn)行基因敲除并篩選候選基因開創(chuàng)了基因組研究的新時(shí)代[34]。前期使用cDNA文庫(kù)基因外源過表達(dá)系統(tǒng)篩選候選基因,但是由于細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組比較復(fù)雜存在不同剪切體等情況,使得cDNA文庫(kù)不能覆蓋完整基因組[35]。RNAi干擾文庫(kù)也曾被用于基因功能缺失篩選[36],siRNA通過降解同源mRNA序列而降低基因表達(dá),但是siRNA并不能完全抑制基因的表達(dá)[37],使得實(shí)驗(yàn)觀測(cè)表型不明顯且存較高脫靶率[38]。CRISPR/Cas9敲除文庫(kù)由于特異性強(qiáng),覆蓋性廣等特點(diǎn)能夠很好地彌補(bǔ)上述高通量篩選系統(tǒng)的不足而廣受青睞。2014,張峰等靶向人類基因組中18 080個(gè)基因構(gòu)建人類全基因組CRISPR敲除慢病毒文庫(kù),每個(gè)慢病毒載體中攜帶了靶定不同基因的sgRNA,利用該系統(tǒng)在黑色素瘤模型中篩選維羅非尼耐藥性基因,從中研究發(fā)現(xiàn)了NF2、CUL3、TADA1等基因參與了維羅非尼耐藥機(jī)制調(diào)控[39]。對(duì)于在腫瘤治療過程中出現(xiàn)的耐藥性問題,一直成為急需解決的臨床治療問題。利用CRISPR全基因組敲除文庫(kù)進(jìn)行高通量耐藥基因篩選,為腫瘤臨床治療提供新的治療靶點(diǎn)和研究手段。

病毒感染造成的人類疾病往往由于其與宿主作用機(jī)制尚未明確,而造成巨大危害,如2019年底爆發(fā)的新型冠狀病毒造成人類肺炎感染。運(yùn)用CRISPR/Cas9基因敲除文庫(kù)篩選病毒受體或宿主病毒依賴基因,有助于開發(fā)新的傳染性疾病預(yù)防和治療藥物。2018年,Han等[40]在人肺上皮細(xì)胞中利用全基因組敲除文庫(kù)構(gòu)建了一個(gè)含1.9萬(wàn)個(gè)不同基因打靶的肺上皮細(xì)胞敲除文庫(kù),禽流感病毒H5N1侵染文庫(kù)細(xì)胞后,高通量測(cè)序分析發(fā)現(xiàn),SLC35A1基因作為H5N1病毒細(xì)胞受體參與病毒結(jié)合,而CIC基因能夠調(diào)控宿主細(xì)胞的免疫調(diào)控應(yīng)答,缺失CIC時(shí)肺上皮細(xì)胞能夠表現(xiàn)出良好抗病毒效果。

根據(jù)信號(hào)通路以及基因作用靶點(diǎn)合理設(shè)計(jì)敲除文庫(kù)大小,結(jié)合正向篩選系統(tǒng)或負(fù)向篩選系統(tǒng),CRISPR基因敲除文庫(kù)能夠有效的用于藥物作用基因靶點(diǎn)篩選、癌癥驅(qū)動(dòng)基因篩選、抗病毒感染基因與長(zhǎng)鏈非編碼RNA等研究中。

3.3 CRISPR干擾

人們對(duì)Cas9蛋白結(jié)構(gòu)解析發(fā)現(xiàn)Cas9蛋白具有識(shí)別sgRNA指導(dǎo)與靶標(biāo)基因結(jié)合結(jié)構(gòu)域外還存在兩個(gè)核酸酶切結(jié)構(gòu)域,能夠在PAM位點(diǎn)前3個(gè)堿基處對(duì)雙鏈DNA進(jìn)行切割,人們通過突變的方式“鈍化”Cas9蛋白的切割活性,保留在sgRNA引導(dǎo)下以相同精確度與靶基因結(jié)合能力,形成dCas9蛋白[41]。dCas9蛋白通過與轉(zhuǎn)錄激活或抑制因子等效應(yīng)器結(jié)合,在啟動(dòng)子、轉(zhuǎn)錄調(diào)控原件或CDS區(qū)等在不對(duì)DNA進(jìn)行精準(zhǔn)切割下對(duì)基因表達(dá)起到調(diào)控作用,這種調(diào)控作用既可以增強(qiáng)基因的表達(dá)也可以抑制基因表達(dá)。

2013年,F(xiàn)ujita等[42]將化膿性鏈球菌Cas9蛋白核酸酶結(jié)構(gòu)域引入RuvC結(jié)構(gòu)域D10A和HNH結(jié)構(gòu)域H840A突變,突變后的Cas9蛋白稱為dCas9蛋白。dCas9失去對(duì)雙鏈DNA核酸酶切割活性,而保留了在guide RNA引導(dǎo)下與目的基因特異性結(jié)合能力。dCas9蛋白與Kox1蛋白轉(zhuǎn)錄阻遏結(jié)構(gòu)域KARB形成融合蛋白,KARB通過招募多種組蛋白修飾因子通過形成異染色質(zhì)從而抑制了基因表達(dá)[43]。dCas9-KARB系統(tǒng)在不破壞細(xì)胞基因組前提下,有效的抑制了基因的表達(dá)水平。2016年,Liu等[44]對(duì)人類6類轉(zhuǎn)化細(xì)胞和一種誘導(dǎo)多能干細(xì)胞中16 401個(gè)長(zhǎng)鏈非編碼LncRNA作用位點(diǎn)篩選,利用CRISPR干擾技術(shù)抑制了這些非編碼轉(zhuǎn)錄本的轉(zhuǎn)錄,探究其作用位點(diǎn)參與細(xì)胞生長(zhǎng)的調(diào)控。研究篩選發(fā)現(xiàn)了499個(gè)位點(diǎn)對(duì)于細(xì)胞穩(wěn)定生長(zhǎng)是必須的。CRISPRi技術(shù)適用于長(zhǎng)鏈非編碼RNA的研究中,結(jié)合單細(xì)胞測(cè)序技術(shù)能夠很好的用于細(xì)胞生長(zhǎng)分化通路研究。

CRISPR/dCas9系統(tǒng)除了dCas9蛋白與KARB等轉(zhuǎn)錄抑制因子形成融合蛋白,阻滯基因轉(zhuǎn)錄從而敲降基因表達(dá)水平外,還可以運(yùn)用于表觀遺傳修飾參與基因表達(dá)調(diào)控的研究[45],如組蛋白乙?;痙Cas9-P300修飾表觀遺傳激活系統(tǒng);組蛋白去甲基化dCas9 LSD1表觀遺傳抑制系統(tǒng);DNA甲基化dCas9-DNMT3A 修飾系統(tǒng)等研究中。利用sgRNA識(shí)別特異性的靶標(biāo)基因,dCas9蛋白攜帶基因修飾因子準(zhǔn)確定位靶基因,探究基因調(diào)控過程。

3.4 CRISPR/dCas9激活系統(tǒng)

經(jīng)過改良的跨表觀遺傳調(diào)控CRISPR/Cas9系統(tǒng)激活基因表達(dá),對(duì)于恢復(fù)沉默基因表達(dá)、彌補(bǔ)基因缺陷、改變細(xì)胞命運(yùn)等有重大研究意義[46]。許多疾病的發(fā)生并非由于基因突變?cè)斐?,而是由于表觀遺傳學(xué)修飾過度甲基化或乙?;茸璧K了基因表達(dá)[47]。研究表明表觀遺傳學(xué)與疾病發(fā)生具有密切的關(guān)系,在白血病與淋巴癌中過度甲基化導(dǎo)致腫瘤細(xì)胞的浸潤(rùn)能力加強(qiáng),在慢性淋巴白血病中也顯示出更高水平的甲基化異常[48]。CRISPR/dCas9系統(tǒng)揭示了一個(gè)基因跨表觀遺傳修飾表達(dá)技術(shù)平臺(tái),酶切結(jié)構(gòu)域失活的dCas9蛋白不具備核酸酶活性,在sgRNA牽引下dCas9蛋白特異性地與目的基因結(jié)合,dCas9蛋白能夠招募內(nèi)源性轉(zhuǎn)錄復(fù)合物啟動(dòng)基因的翻譯表達(dá)。

2013年,Maeder等[49]對(duì)CRISPR/Cas9系統(tǒng)進(jìn)行了改造,研究者對(duì)Cas9蛋白的核酸酶活性進(jìn)行破壞,而保留了在sgRNA引導(dǎo)下與靶基因特異性活性,稱為dCas9。研究者將dCas9與轉(zhuǎn)錄因子VP64構(gòu)建融合蛋白,VP64是一種RNA結(jié)合蛋白,可以與轉(zhuǎn)錄因子的轉(zhuǎn)錄活化結(jié)構(gòu)域結(jié)合,從而提高基因的表達(dá)水平[50]。在sgRNA的指導(dǎo)下dCas9-VP64融合蛋白特異性地結(jié)合在神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子NTF3的啟動(dòng)子序列上,特異性地激活NTF3基因的表達(dá)[51]。2017年,Liao等[52]在CRISPR/Cas9系統(tǒng)中引入轉(zhuǎn)錄激活復(fù)合物MS2-P65-HSF1(MPH)[53],并縮短了sgRNA的長(zhǎng)度成為14 nt RNA的dgRNA,guide RNA長(zhǎng)度的縮短能夠避免Cas9蛋白切割DNA序列。如圖4所示,研究者在Cas9模型小鼠中通過靶向激活基因成功修復(fù)急性腎損傷、I型糖尿病等疾病表型。運(yùn)用CRISPR/dCas9激活系統(tǒng),能夠提升細(xì)胞靶標(biāo)基因表達(dá),從而達(dá)到劑量補(bǔ)償效應(yīng)。在人體基因中往往很多單基因拷貝的發(fā)生就能導(dǎo)致疾病的發(fā)生,2018年,Matharu等[54]構(gòu)建SIM1單拷貝突變模型小鼠,小鼠缺失一個(gè)拷貝的SIM1基因表達(dá)后,能夠?qū)е路逝职Y的發(fā)生。研究者在小鼠4周齡時(shí)通過AAV腺相關(guān)病毒將dCas9-VP64和靶標(biāo)SIM1基因啟動(dòng)子區(qū)域的sgRNA運(yùn)送進(jìn)小鼠腦部。研究發(fā)現(xiàn)接受CRISPRa(CRISPR activation)治療的老鼠SIM1基因表達(dá)水平能夠恢復(fù)至野生型小鼠水平,而且體重比對(duì)照小鼠減輕40%左右,身體也更加健康。運(yùn)用CRISPRa系統(tǒng)恢復(fù)基因表達(dá)劑量從而治療基因單拷貝變異疾病提供了一個(gè)新的治療思路。

圖4 改進(jìn)的CRISPR/Cas9激活系統(tǒng)圖示

某些疾病的發(fā)生或生理功能紊亂是由于基因沉默或表觀遺傳學(xué)修飾導(dǎo)致基因表達(dá)劑量不足造成。CRISPR/dCas9激活文庫(kù)在恢復(fù)沉默基因表達(dá),對(duì)疾病、病毒感染等研究中顯示出了巨大潛力。2015年,張峰等運(yùn)用CRISPR/dCas9系統(tǒng)針對(duì)人體2萬(wàn)多個(gè)基因設(shè)計(jì)70 290個(gè)sgRNA,構(gòu)成人全基因組CRISPR/dCas9激活文庫(kù)[55]。篩選促進(jìn)黑色素瘤細(xì)胞抵抗BRAF抑制劑PLX-4720耐藥激活基因,研究者將CRISPR激活系統(tǒng)導(dǎo)入大量的黑色素瘤細(xì)胞中,在激活細(xì)胞文庫(kù)中進(jìn)行PLX-4720耐藥激活基因篩選。實(shí)驗(yàn)得到候選基因BCAR3與EGFR作為ERK信號(hào)通路下游和上游調(diào)控點(diǎn)參與耐藥機(jī)制[56-67]。2017年,Heaton 等[58]運(yùn)用CRISPR/dCas9激活系統(tǒng)構(gòu)建靶向人全基因組23 430個(gè)基因轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)上游200 bp左右的sgRNA文庫(kù)[59],將融合蛋白dCas9-VP64與轉(zhuǎn)錄因子MS2-p65-HSF1導(dǎo)入肺腺癌上皮細(xì)胞A549細(xì)胞中,構(gòu)建A549全基因組激活細(xì)胞文庫(kù)。使用甲型流感病毒(IVA)篩選過表達(dá)基因后能夠抵御IVA病毒的侵染,高通量測(cè)序結(jié)果發(fā)現(xiàn)在A549細(xì)胞中過表達(dá)B4GALNT2基因后能夠顯著抑制IVA病毒的侵染能力,其作為一個(gè)新型藥物治療靶點(diǎn)對(duì)于抵御甲型病毒流感具有重要意義。

4 結(jié)語(yǔ)

CRISPR基因編輯系統(tǒng)在后基因組時(shí)代對(duì)于基因功能研究、腫瘤耐藥基因篩選,沉默基因夸表觀遺傳調(diào)控,干擾基因表達(dá)以及病原微生物感染鑒定等用于轉(zhuǎn)化醫(yī)學(xué)研究有著巨大的研究潛力。CRISPR基因敲除文庫(kù),CRISPR激活系統(tǒng)以及CRISPR干擾技術(shù)在藥物作用靶點(diǎn),腫瘤驅(qū)動(dòng)基因研究,長(zhǎng)鏈非編碼RNA等研究中具有明顯的優(yōu)勢(shì)[60]。以CRISPR系統(tǒng)研發(fā)的基因診斷技術(shù)減少儀器設(shè)備投入的同時(shí),高效快速的能夠檢測(cè)出樣本中的目的基因,能夠在病人身邊隨時(shí)進(jìn)行診斷檢測(cè)。CRISPR系統(tǒng)憑借其方便快捷的特點(diǎn),被科學(xué)研究者們廣泛運(yùn)用。然而科研工作者在醫(yī)學(xué)研究中必須謹(jǐn)慎使用CRISPR系統(tǒng),避免“基因編輯嬰兒事件”再次發(fā)生。人們要謹(jǐn)慎使用CRISPR技術(shù)進(jìn)行人體研究,合理運(yùn)用CRISPR技術(shù)于臨床醫(yī)學(xué)轉(zhuǎn)化研究時(shí),應(yīng)遵循以下幾點(diǎn)原則:必須有支持臨床應(yīng)用的證據(jù)基礎(chǔ);通過倫理審查持有倫理辯護(hù);實(shí)驗(yàn)研究須透明公開等。在生命科學(xué)以及臨床醫(yī)學(xué)等研究中合理運(yùn)用CRISPR系統(tǒng),對(duì)于人類科學(xué)研究事業(yè)發(fā)展具有重要的推進(jìn)作用。

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