賀剛剛 程 曾 張曉娟 高新梅 唐 福 高 巍
(石河子大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,新疆石河子832003)
隨著我國(guó)養(yǎng)羊業(yè)的規(guī)?;?、產(chǎn)業(yè)化發(fā)展,傳統(tǒng)的精粗分飼模式逐漸被TMR育肥模式替代。有研究表明,在育肥羊時(shí),相比傳統(tǒng)飼喂方式,TMR能顯著提高羊日增重[1-3],縮短育肥期[4]。育肥羊?qū)MR養(yǎng)分的消化除本身固有的營(yíng)養(yǎng)特性外,也受其物理形態(tài)和飼喂模式的影響,我國(guó)目前對(duì)TMR研究主要集中在其營(yíng)養(yǎng)水平上,對(duì)其適宜飼喂的物理形態(tài)和飼喂模式研究較少。董凌云等[5]和Singh等[6]用兩組羊做對(duì)比,一組飼喂顆粒全混全日糧(PTMR),一組飼喂粉狀全混合日糧(mashed total mixed diet,MTMR),結(jié)果表明,飼喂PTMR可以顯著地提高羊的采食量和日增重。然而也有研究表明,PTMR和MTMR對(duì)羊育肥效果相同[7-8]。pH值和氨態(tài)氮是瘤胃發(fā)酵主要的內(nèi)環(huán)境指標(biāo),可直接反映出瘤胃發(fā)酵狀況和飼料消化程度。譚建華等[9]在綿羊PTMR和MTMR的比較飼喂中發(fā)現(xiàn),TMR物理形態(tài)對(duì)瘤胃pH值的影響不顯著。但Bo Trabi 等[10]研究發(fā)現(xiàn),TMR 制粒會(huì)引起瘤胃pH值的降低。TMR經(jīng)粉碎或制粒會(huì)破壞其纖維結(jié)構(gòu),改變進(jìn)入瘤胃中有效纖維含量,從而引起瘤胃內(nèi)環(huán)境的波動(dòng)。有研究表明,羊瘤胃pH值會(huì)隨粗飼料攝入量的增加而提高[11],特別當(dāng)這種粗飼料是苜蓿干草時(shí)[12]。可見(jiàn),PTMR和MTMR對(duì)育肥羊生長(zhǎng)性能的研究結(jié)果差異較大,其有效纖維含量的減少可能不利于瘤胃發(fā)酵,在其基礎(chǔ)上補(bǔ)飼苜蓿干草可能有提高瘤胃pH值的作用。因此,本試驗(yàn)通過(guò)研究?jī)煞N物理形態(tài)和兩種飼喂模式組合成的4種日糧對(duì)育肥羊瘤胃發(fā)酵和生長(zhǎng)性能的影響,為生產(chǎn)中TMR適宜飼喂策略的使用提供參考數(shù)據(jù)。
根據(jù)NRC(1985)[13]所推薦的育肥羊營(yíng)養(yǎng)需要,配制TMR,其中MTMR 是將精粗原料過(guò)8 mm 篩,顆粒料是在粉料的基礎(chǔ)上,制成直徑7 mm、長(zhǎng)10~20 mm的顆粒,苜蓿干草鍘成30~50 mm 進(jìn)行飼喂,試驗(yàn)TMR組成及營(yíng)養(yǎng)水平見(jiàn)表1。
表1 日糧組成及營(yíng)養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))
選取4只哈薩克育肥公羊作為試驗(yàn)動(dòng)物,體重平均為(30.30±3.40) kg,代謝籠內(nèi)單籠飼養(yǎng),檢疫驅(qū)蟲(chóng)后,手術(shù)安裝永久性的瘤胃瘺管。在試驗(yàn)開(kāi)始前,育肥羊自由采食TMR,自由采食量超過(guò)1 200 g/d(風(fēng)干基礎(chǔ)),防止飼料有剩余,整個(gè)試驗(yàn)期內(nèi)育肥羊飼喂量為1 000 g/d,08:00、20:00各等量飼喂1次,自由飲水。
本試驗(yàn)采用2×2二因子析因試驗(yàn)設(shè)計(jì),4×4拉丁方飼喂方式,飼喂試驗(yàn)動(dòng)物兩種物理形態(tài)(A1顆粒、A2粉狀)和兩種飼喂模式(B1不補(bǔ)飼苜蓿、B2補(bǔ)飼苜蓿)的4種日糧,其中A1B1為1 000 g/d 的PTMR;A1B2為800 g/d的PTMR和200 g/d 的苜蓿干草;A2B1為1 000 g/d 的MTMR;A2B2為800 g/d的MTMR和200 g/d的苜蓿干草。試驗(yàn)分4期,每期19 d,其中預(yù)試期12 d,正式試驗(yàn)期7 d。
預(yù)試期12 d中,每天于晨飼前,采集瘤胃液;在正試期結(jié)束后于08:00 飼喂前分別在食前及食后2、4、6、8、10、12 h 采集瘤胃液,立即測(cè)定pH 值,離心樣品用于測(cè)定瘤胃液的氨氮濃度;預(yù)試期第1 d于晨飼前,稱(chēng)量記錄羊的初始體重,正試期結(jié)束后于08:00飼喂前稱(chēng)量記錄羊的末重;每天早上08:00飼喂之前檢查是否有剩料,如有剩料準(zhǔn)確稱(chēng)量后記錄保存。
采用PHS-3C精密酸度計(jì)(上海雷磁儀器廠)測(cè)定瘤胃液pH值;參照馮宗慈等[14]介紹的苯酚-次氯酸鈉比色法測(cè)定瘤胃液氨氮濃度。
圖1 育肥羊瘤胃pH值對(duì)TMR制粒與補(bǔ)飼干草組合飼喂的適應(yīng)規(guī)律
采用SPSS16.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行兩因子方差分析,用LSD 法進(jìn)行多重比較,以P>0.05 表示差異不顯著,以P<0.05表示差異顯著,以P<0.01表示差異極顯著。
表2 TMR制粒與補(bǔ)飼干草組合處理對(duì)育肥羊生長(zhǎng)性能的影響
由表2可知,育肥羊各日糧間采食量相似,A1B2組較其他組日糧日增重達(dá)到極顯著水平(P<0.01),A1B2組料重比較A1B1和A2B1組達(dá)到顯著降低水平(P<0.05)。
由圖1可知,育肥羊更換日糧后,瘤胃pH值在第4 d 達(dá)到最低值,其中A1B1和A1B2組降低幅度達(dá)到了極顯著水平(P<0.01);A2B1和A2B2組變化幅度較小,差異均不顯著(P>0.05)。更換日糧的第12 d,A1B1和A1B2組的瘤胃pH 值未能恢復(fù)到初始水平,且有所降低(P>0.05),A2B1和A2B2組的瘤胃pH值恢復(fù)到初始水平。
圖2 育肥羊瘤胃液氨氮濃度對(duì)TMR制粒與補(bǔ)飼干草組合飼喂的適應(yīng)規(guī)律
由圖2可知,瘤胃液氨氮濃度在更換日糧后呈先下降后上升趨勢(shì),并在第3 d 達(dá)到最低值,恢復(fù)穩(wěn)定后,A1B1和A1B2組較更換前瘤胃液氨氮濃度有所提高(P>0.05),A2B1和A2B2組的瘤胃液氨氮濃度接近日糧更換前水平。
由表3 可知,各處理組育肥羊瘤胃pH 值在5.31~6.39之間變動(dòng),均在食后4 h達(dá)到最低,在食后2~8 h,A1B1組瘤胃pH值低于5.5,從數(shù)據(jù)可以看出,A2組瘤胃pH 值高于A1組(P>0.05),B2組瘤胃pH 值高于B1組(P>0.05),A因子與B因子間無(wú)交互作用。
由表4可知,各處理組育肥羊的瘤胃液氨氮濃度在6.98~19.74 mg/dl 之間變動(dòng),在食后2~12 h,A1組瘤胃液氨氮濃度顯著高于A2組(P<0.05),并在食后4 h達(dá)到極顯著水平(P<0.01),B因子對(duì)氨氮濃度的變化無(wú)顯著影響(P>0.05),A因子與B因子無(wú)交互作用。
試驗(yàn)結(jié)果表明,飼糧物理形態(tài)和飼喂模式對(duì)育肥羊的采食量無(wú)顯著影響,但可以看出A1較A2組采食量升高,這可能是由于制粒提高了PTMR 的密度,使育肥羊每一口的采食量增加,并且減少日糧在瘤胃中占用的體積,導(dǎo)致育肥羊需采食更多日糧才能達(dá)到飽腹感。A1B2組育肥羊ADG 較其他組達(dá)到了極顯著水平(P<0.01),這可能是由于其采食量較其他組有所提高,以及TMR 在制粒過(guò)程中,由于經(jīng)過(guò)熱處理,增加了飼糧中過(guò)瘤胃蛋白和淀粉的數(shù)量[15-16],因而提高了能量和蛋白質(zhì)用于增重的轉(zhuǎn)化效率,Jahan等[17]研究發(fā)現(xiàn),PTMR 在制粒過(guò)程中增加了10%的成本,但Coufal-Majewski 等[18]和林嘉等[19]認(rèn)為PTMR 較MTMR 對(duì)育肥羊ADG 的提高效益要高于制粒的成本。與A1B1組相比,A1B2組料重比顯著降低(P<0.05),飼料轉(zhuǎn)化率明顯提高,而A1B1組料重比較高的原因,可能是由于瘤胃pH 值較低,育肥羊處于亞急性酸中毒狀態(tài),瘤胃菌群活性降低,導(dǎo)致日糧養(yǎng)分的消化吸收降低造成的。
表3 TMR制粒與補(bǔ)飼干草組合處理對(duì)育肥羊瘤胃pH值的影響
表4 TMR制粒與補(bǔ)飼干草組合處理對(duì)育肥羊瘤胃液氨氮濃度的影響(mg/dl)
pH值是反映瘤胃內(nèi)環(huán)境狀況的直接指標(biāo),pH值的穩(wěn)定是保證瘤胃正常發(fā)酵的前提,引起瘤胃pH 值波動(dòng)的直接原因是飼糧結(jié)構(gòu)和營(yíng)養(yǎng)水平[20-21],瘤胃pH值的正常變化范圍是5.5~7.5[22]。本試驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),瘤胃pH值的適應(yīng)規(guī)律隨日糧的變更有明顯的變化。育肥羊在日糧更換后,瘤胃pH值均呈下降趨勢(shì),并在第4 d達(dá)到最低值,這可能是由于育肥羊瘤胃內(nèi)環(huán)境對(duì)日糧更換產(chǎn)生了應(yīng)激,其中A1組降低幅度達(dá)到了極顯著水平(P<0.01),說(shuō)明瘤胃對(duì)PTMR 的應(yīng)激較大,A2組瘤胃pH值波動(dòng)較小,說(shuō)明育肥羊?qū)TMR的適應(yīng)性較好,各組育肥羊瘤胃pH值均在正常范圍波動(dòng)。在育肥羊?qū)Ω鼡Q的日糧適應(yīng)后,通過(guò)對(duì)瘤胃pH值1 d內(nèi)不同時(shí)間點(diǎn)的測(cè)定發(fā)現(xiàn),A1B1組瘤胃pH值在食后2~8 h降低到5.5 以下,說(shuō)明瘤胃此時(shí)處于不穩(wěn)定的酸性環(huán)境。胡紅蓮[23]基于試驗(yàn)結(jié)果提出,當(dāng)瘤胃pH 值介于5.2~5.5之間波動(dòng)持續(xù)時(shí)間長(zhǎng)達(dá)7 h/d以上時(shí),標(biāo)志著動(dòng)物處于SARA 狀態(tài)。因此,可以判定本試驗(yàn)A1B1組育肥羊處于亞健康狀態(tài)。Bo Trabi等[10]研究發(fā)現(xiàn)TMR制粒會(huì)引起瘤胃pH 值的降低。這可能是由于制粒過(guò)程中,TMR的壓制和熱處理以及淀粉糊化共同作用提高了瘤胃微生物區(qū)系的活性[24],加快瘤胃發(fā)酵速率引起的,但Zhong等[25]和Zhang等[26]在研究中發(fā)現(xiàn),PTMR和MTMR 飼喂的羊瘤胃pH 值均處于正常范圍,并且具有接近的瘤胃pH值,這與本試驗(yàn)結(jié)果不同,可能是由于日糧配方中含有不同水平粗飼料引起的。從pH值均值可以看出,B2組略高于B1組(P>0.05),即補(bǔ)飼苜蓿干草有利于提高瘤胃pH值,這與Blanco等[4]的研究結(jié)果一致,其研究表明,苜蓿干草不僅對(duì)酸堿有調(diào)節(jié)能力[27],其纖維結(jié)構(gòu)還可以通過(guò)促進(jìn)反芻行為,刺激唾液的分泌,從而提高瘤胃pH 值[4]。以上結(jié)果可以看出,本試驗(yàn)中單獨(dú)飼喂PTMR不利于育肥羊的健康,但通過(guò)補(bǔ)飼苜蓿干草可抵消這種負(fù)面影響。
氨氮是瘤胃內(nèi)飼料蛋白質(zhì)、肽、氨基酸、氨化物、尿素和其他非蛋白氮化合物分解的終產(chǎn)物,瘤胃液氨氮濃度受瘤胃壁吸收和食糜排空速度的影響,瘤胃液氨氮含量變化很大,研究表明瘤胃微生物合成自身蛋白質(zhì)所需的氨氮范圍為0.35~29 mg/dl[28]。本試驗(yàn)中氨氮平均濃度均處于正常范圍(6.98~21.34 mg/dl),日糧變更后,瘤胃液氨氮濃度呈先下降后上升趨勢(shì),這與瘤胃pH 值的變化規(guī)律相似。李洪濤等[29]研究表明,杜泊羊在變更日糧后,瘤胃液pH值和氨氮濃度均呈先下降后上升趨勢(shì),與本研究結(jié)果一致。瘤胃內(nèi)環(huán)境達(dá)到穩(wěn)定后,A1組瘤胃液氨氮濃度較初始水平有所提高(P>0.05),而瘤胃pH 值有所降低(P>0.05),胡紅蓮等[23]發(fā)現(xiàn),隨著瘤胃pH值的降低,氨態(tài)氮濃度逐漸升高,與本研究結(jié)果一致;在育肥羊?qū)Ω鼡Q的日糧適應(yīng)后,通過(guò)對(duì)瘤胃液氨氮濃度1 d 內(nèi)不同時(shí)間點(diǎn)的測(cè)定發(fā)現(xiàn),A1組瘤胃液氨氮濃度顯著高于A2組(P<0.05),B2組瘤胃液氨氮濃度高于B1組(P>0.05),這有可能是TMR 粉碎后,食糜流通速度加快,瘤胃微生物對(duì)飼料蛋白質(zhì)的分解時(shí)間減少,引起瘤胃氨氮濃度降低,在補(bǔ)飼苜蓿干草后,育肥羊反芻時(shí)間加長(zhǎng),食糜在瘤胃中的滯留時(shí)間變長(zhǎng),瘤胃微生物與飼料顆粒的作用時(shí)間增多,引起瘤胃液氨氮濃度升高。
本試驗(yàn)日糧飼喂下,MTMR對(duì)育肥羊瘤胃內(nèi)環(huán)境應(yīng)激較小,單獨(dú)飼喂PTMR可引起育肥羊SARA,但通過(guò)補(bǔ)飼苜蓿干草可抵消這種不利影響。各日糧育肥效果A1B2>A2B2>A1B1>A2B1,在不影響動(dòng)物健康狀況下,提高育肥羊ADG,PTMR 與苜蓿干草組合飼喂對(duì)羊育肥效果最佳。