郭亞格, 田 偉, 楊桂軍, 張宏亮, 湯祥明
1.中國科學(xué)院南京地理與湖泊研究所,湖泊與環(huán)境國家重點實驗室, 江蘇 南京 210008 2.安陽師范學(xué)院資源環(huán)境與旅游學(xué)院, 河南 安陽 455000 3.安徽師范大學(xué)環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院, 安徽 蕪湖 241003 4.江南大學(xué)環(huán)境與土木工程學(xué)院, 江蘇 無錫 214122
隨著我國經(jīng)濟(jì)的快速發(fā)展,大量污染物排入河流和湖泊,導(dǎo)致水體富營養(yǎng)化現(xiàn)象日趨嚴(yán)重. 藍(lán)藻水華是富營養(yǎng)化湖泊的重要表征之一,藍(lán)藻水華頻發(fā),已成為我國面臨的重大環(huán)境問題之一[1-3]. 研究[4]表明,部分藍(lán)藻在生長過程中或外部環(huán)境脅迫條件下會分泌大量的EPS (extracellular polysaccharide,胞外多糖),包括黏附在細(xì)胞外的bEPS (bound extracellular polysaccharide,固著性胞外多糖)和釋放到周圍環(huán)境中的sEPS (soluble extracellular polysaccharide,溶解性胞外多糖). 藍(lán)藻EPS在維持生物量龐大的藍(lán)藻生長和增殖中起著重要作用,EPS的釋放有利于藻細(xì)胞的聚集,聚集成團(tuán)的藻細(xì)胞可以幫助藍(lán)藻抵御外界的不良環(huán)境[5]. 研究證明,藍(lán)藻胞外結(jié)合的多糖層能幫助其對抗脫水、吞噬作用、抗體識別和病毒的溶菌作用[6-7],還能使細(xì)胞附著在固體基質(zhì)上以防止被流水沖走[8]. QIN等[9]發(fā)現(xiàn)由于EPS的存在,中度或小的風(fēng)浪擾動會導(dǎo)致藻細(xì)胞聚集成更大的群體,從而增加藻團(tuán)的浮力,加速藍(lán)藻水華的形成.
在自然水體中,當(dāng)生存狀況惡劣時,藍(lán)藻會分泌sEPS和bEPS,細(xì)胞表面的EPS層變厚[10]. Yim等[11]研究表明,氮和磷缺乏能夠刺激EPS的合成. Staats等[12]研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)藻細(xì)胞被接種到低濃度氮或磷培養(yǎng)基時,EPS的分泌會受到激發(fā). 研究[13-14]表明,氮、磷限制在一定程度上可以促進(jìn)EPS的分泌. 風(fēng)浪擾動對藍(lán)藻EPS的形成也具有重要作用,水動力擾動會在很大程度上改變水體的理化性質(zhì)[15-17],從而影響藻類EPS的分泌. 關(guān)于擾動對藻類EPS的影響,國內(nèi)外學(xué)者進(jìn)行了部分研究[18-19],但關(guān)于不同擾動方式對藻類EPS影響的研究還較少. 芮政等[20]研究表明,間歇擾動組的水華微囊藻EPS含量顯著高于不擾動組,其原因可能是擾動作用對微囊藻細(xì)胞產(chǎn)生了刺激作用,引起藻細(xì)胞生理特征的改變,從而促進(jìn)了EPS的分泌.
太湖是一個典型的大型淺水湖泊[21],面積為 2 338 km2,平均水深為1.9 m,最大水深不足3 m[22-23]. 受亞熱帶季風(fēng)和臺風(fēng)的影響,尤其是在夏秋季節(jié),風(fēng)浪擾動使湖水始終處于一個動態(tài)環(huán)境. 研究[24-25]表明,藍(lán)藻水華的暴發(fā)與風(fēng)浪擾動密切相關(guān). 太湖由風(fēng)浪引起的擾動屬于間歇擾動. 該研究通過模擬試驗,對比了間歇擾動、持續(xù)擾動和不擾動(對照組)3種方式下太湖藻類ρ(EPS)的差異,并探討了擾動方式以及相關(guān)環(huán)境因子對藍(lán)藻EPS的影響,為藍(lán)藻水華暴發(fā)機理提供科學(xué)依據(jù).
1.1.1試驗設(shè)置
試驗在中國科學(xué)院太湖湖泊生態(tài)系統(tǒng)研究站生態(tài)室水池內(nèi)進(jìn)行. 以9只洗凈晾干的100 L塑料水桶為試驗容器. 在太湖邊打撈發(fā)生水華時的藻類和湖水,藍(lán)藻藻漿用64 μm尼龍網(wǎng)濃縮(經(jīng)鑒定,藍(lán)藻的比例占85%以上,且微囊藻占藍(lán)藻的絕大部分),隨后添加適量藍(lán)藻藻漿于上述水桶內(nèi),混勻后測定水桶中的ρ(Chla),保持各水桶內(nèi)ρ(Chla)初始值在110 mg/L左右. 再向桶中加入氮、磷營養(yǎng)鹽,使所有水桶中ρ(TN)為10 mg/L,ρ(TP)為0.5 mg/L〔模擬了近10年太湖藍(lán)藻水華暴發(fā)最嚴(yán)重的梅梁灣N/P(氮磷比)的平均值,是梅梁灣2000—2008年ρ(TN)、ρ(TP)平均值的4倍,其中TN和TP分別用NaNO3和K2HPO4·3H2O配制〕. 在擾動組6只水桶的水面下10 cm處固定變頻造浪泵(中山市捷寶電子電器有限公司,型號為WP-60,功率為60 W),使用W1經(jīng)典造浪模式,擾動時獲得水平方向的波浪,浪高約5 cm,流量約為330 L/min. 水體靜置1 d后開始試驗. 試驗時,3只水桶不擾動(對照組);3只水桶每天擾動6 h,時間為10:00—13:00及16:00—19:00(間歇擾動組);其余3只水桶每天擾動24 h(持續(xù)擾動組). 水桶懸掛放在有機玻璃房內(nèi)的大型水池內(nèi),試驗持續(xù)19 d(2018年7月11—29日).
1.1.2樣品采集
試驗開始第1、4、7、10、13、16、19天,每天08:00左右采集約1 L水樣,用于測定水體中的相關(guān)理化參數(shù)、ρ(EPS)及藻類相關(guān)參數(shù)等.
試驗期間,每天08:30使用多參數(shù)水質(zhì)檢測儀(YSI, 6600V2, 美國)測量水溫及ρ(DO).ρ(TDN) (TDN為溶解性總氮)、ρ(TDP)(TDP為溶解性總磷)、ρ(Chla)、ρ(SS)(SS為總懸浮物)等水體中理化因子的測定參考《湖泊富營養(yǎng)化調(diào)查規(guī)范》[26]. 藻細(xì)胞密度(algae cell density, ACD)的測定參照李勝男等[27]的方法,利用流式細(xì)胞儀(FACSJazz,美國Becton Dickinson公司)進(jìn)行檢測.
ρ(EPS)的測定參照YANG等[10]的方法,將EPS分為bEPS和sEPS進(jìn)行分別測定. 用移液管取混勻藻液10 mL,冷凍24 h后取出溶解,用超聲破碎機高頻下破碎15 min,質(zhì)量配平,然后在4 ℃、11 000 r/min 下離心15 min,分離上清液和藻細(xì)胞,然后用移液槍吸取上清液用孔徑為0.45 μm的濾膜過濾,濾液加入透析袋(截留分子量為 3 500 u)置于去離子水中透析,用于測定ρ(sEPS). 上述離心后的藻團(tuán)加去離子水至10 mL搖勻,再加入0.5 mg/L NaOH溶液調(diào)節(jié)pH為10,搖勻后置于45 ℃溫水水浴提取4 h,然后在4 ℃、11 000 r/min下離心15 min,取上清液用孔徑為0.45 μm濾膜過濾后,濾液加入透析袋(截留分子量為 3 500 u)置于去離子水中透析,然后用于測定ρ(bEPS). 把所獲得的兩種濾液各取出1 mL,加入4 mL蒽酮溶液,沸水水浴10 min,冷卻后用分光光度計測量620 nm波長處的吸光值,參照文獻(xiàn)[28]中的方法,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算ρ(bEPS)和ρ(sEPS).ρ(EPS)為ρ(bEPS)與ρ(sEPS)之和.
圖1 試驗過程中各處理組ρ(EPS)及單位藻細(xì)胞EPS含量的變化趨勢Fig.1 Changes of extracellular polysaccharide concentration and extracellular polysaccharides content of unit algal cells in each group during the experiment
該研究所有數(shù)據(jù)通過Microsoft Excel 2016軟件錄入,采用R 3.5.2和Origin 2018軟件進(jìn)行分析和制圖. 因為數(shù)據(jù)不全是正態(tài)分布數(shù)據(jù),故使用非參數(shù)Kruskal-Wallis秩和檢驗分析各參數(shù)在不同處理下是否存在顯著性差異(P<0.05為具有顯著性差異).
試驗過程中對照組、間歇擾動組和持續(xù)擾動組的ρ(EPS)總體上均呈上升趨勢〔見圖1(a)〕. 試驗第1~7天,3個處理組的ρ(EPS)沒有明顯變化;第7~10天,3個處理組的ρ(sEPS)和ρ(bEPS)均明顯上升;第10~19天,持續(xù)擾動組的ρ(sEPS)和ρ(bEPS)變化趨勢與對照組相似,均呈先降后升的趨勢. 總體而言,對照組、間歇擾動組和持續(xù)擾動組的ρ(EPS)分別由第1天的1.24、1.04和1.24 μg/mL增至第19天的22.01、17.63和25.12 μg/mL,分別增加了約18、17和20倍. 非參數(shù)Kruskal-Wallis秩和檢驗結(jié)果表明,試驗第1~13天,3個處理組之間的ρ(EPS)差異不顯著(P>0.05);第16~19天,對照組和持續(xù)擾動組的ρ(sEPS)均顯著高于間歇擾動組(P<0.05),而3個處理組之間的ρ(bEPS)仍無顯著性差異(P>0.05).
擾動會對生物量造成影響,進(jìn)而影響單位藻細(xì)胞EPS含量,因此根據(jù)試驗不同階段每mL水體中藻類的細(xì)胞數(shù),筆者計算了以μg/(105cells)為單位的EPS含量變化趨勢〔見圖1(b)〕. 試驗期間,3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量在第1~7天無明顯變化,第7~19天呈現(xiàn)先升后降的趨勢,至第19天對照組、間歇擾動組和持續(xù)擾動組的單位藻細(xì)胞EPS含量分別為4.63、12.03和22.10 μg/(105cells). 非參數(shù)Kruskal-Wallis秩和檢驗結(jié)果表明:第1~7天,3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量差異不顯著(P>0.05);第10~19天,對照組的單位藻細(xì)胞EPS、sEPS和bEPS含量均顯著低于間歇擾動組和持續(xù)擾動組(P<0.05);至試驗結(jié)束之時(第19天),持續(xù)擾動組的單位藻細(xì)胞sEPS和bEPS含量顯著高于間歇擾動組(P<0.05). 該結(jié)果表明,擾動尤其是持續(xù)擾動能促進(jìn)藍(lán)藻EPS的分泌.
對照組、間歇擾動組和持續(xù)擾動組中ρ(sEPS)和ρ(bEPS)在ρ(EPS)中占比及單位藻細(xì)胞EPS含量的變化趨勢見圖2. 非參數(shù)Kruskal-Wallis秩和檢驗結(jié)果表明,3個處理組ρ(sEPS)和ρ(bEPS)占比之間無顯著差異(P>0.05). 3個處理組的ρ(EPS)在1~7 d均處于較低水平,隨后對照組和間歇擾動組的ρ(EPS)在7~13 d呈上升趨勢,在13~19 d呈下降趨勢,持續(xù)擾動組的ρ(EPS)在7~16 d呈上升趨勢,在16~19 d有所下降.
圖2 對照組、間歇擾動組及持續(xù)擾動組的單位藻細(xì)胞EPS含量以及ρ(sEPS)和ρ(bEPS)占比隨時間的變化Fig.2 Changes in extracellular polysaccharide content of unit algal cells, and the proportions of sEPS and bEPS with time in control group, intermittent disturbance group and continuous disturbance group
試驗第1~7天,3個處理組ρ(sEPS)占比較高,而在第10~19天有所下降,但仍高于ρ(bEPS)占比. 其中,對照組ρ(sEPS)占比出現(xiàn)了兩次波動,第一次波動(1~10 d)的頂峰為94.9%(第4天),隨后呈現(xiàn)下降趨勢,在第10天降至70.4%,第二次波動(10~19 d)的最大值為83.1%(第16天),之后有所下降,到第19天降至73.0%. 間歇擾動組中,ρ(sEPS)占比在第1~7天較高(87.3%~93.8%),隨后呈現(xiàn)持續(xù)下降趨勢,到第19天降至76.3%. 持續(xù)擾動組中,ρ(sEPS)占比在1~7 d出現(xiàn)了一次小波動,由第1天的86.0%降至第4天的79.0%,隨后在第7天增至92.7%,而在第7~19天基本呈下降趨勢,到第19天降至67.0%.
3個處理組ρ(DO)、ρ(TDN)、ρ(TDP)、ρ(Chla)、ρ(SS)和藻細(xì)胞密度的變化趨勢見圖3. 由圖3可見:試驗期間,對照組、間歇擾動組和持續(xù)擾動組的ρ(DO)均有所下降,分別由9.06、9.36和9.78 mg/L降至7.86、3.17和7.49 mg/L,對照組的ρ(DO)在1~4 d呈上升趨勢,而間歇擾動組和持續(xù)擾動組的ρ(DO)在1~4 d呈下降趨勢,隨后處于較平穩(wěn)的狀態(tài)(4~19 d),且間歇擾動組的ρ(DO)始終低于其余兩組;3個處理組的ρ(TDN)和ρ(TDP)在試驗期間均呈下降趨勢;3個處理組的ρ(Chla)在試驗期間出現(xiàn)了一定幅度的波動,但總體上均呈上升趨勢,其中持續(xù)擾動組的ρ(Chla)始終高于其余兩組;3個處理組的藻細(xì)胞密度在試驗過程中均出現(xiàn)了較明顯的波動,其中第10~19天間歇擾動組和持續(xù)擾動組的藻細(xì)胞密度均低于對照組;對照組和間歇擾動組的ρ(SS)在1~7 d均呈下降趨勢,在7~19 d呈上升趨勢,而持續(xù)擾動組的ρ(SS)在試驗過程中幾乎呈持續(xù)上升趨勢.
圖3 試驗過程中各組主要理化因子的變化趨勢Fig.3 Trends in the main physical and chemical factors in different groups during the experiment
Spearman 相關(guān)性分析結(jié)果(見表1)表明,ρ(DO)、ρ(TDN)、ρ(TDP)、ρ(Chla)、ρ(SS)和藻細(xì)胞密度與3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量均具有一定的相關(guān)關(guān)系.ρ(DO)與3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量均呈負(fù)相關(guān),與對照組相關(guān)性最為顯著(R=-0.90,P<0.001),表明在ρ(DO)較低時,藍(lán)藻會分泌較多的EPS.ρ(TDN)、ρ(TDP)與3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量均呈顯著負(fù)相關(guān),其中,ρ(TDN)與持續(xù)擾動組單位藻細(xì)胞EPS含量之間的負(fù)相關(guān)性最強(R=-0.81,P<0.001),ρ(TDP)與間歇擾動組單位藻細(xì)胞sEPS含量之間的負(fù)相關(guān)性最強(R=-0.80,P<0.001),表明ρ(TDN)、ρ(TDP)較低時有利于藍(lán)藻EPS的形成.ρ(Chla)、ρ(SS)與3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量均呈正相關(guān),其中,ρ(SS)與持續(xù)擾動組的單位藻細(xì)胞bEPS含量之間的相關(guān)性最強(R=0.71,P<0.001),表明ρ(Chla)、ρ(SS)較高時能促進(jìn)藍(lán)藻分泌EPS. 藻細(xì)胞密度與3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量均呈負(fù)相關(guān),其中,與間歇擾動組的單位藻細(xì)胞sEPS含量呈顯著負(fù)相關(guān)(R=-0.88,P<0.001). 綜上,理化因子對藍(lán)藻EPS的形成起著非常重要的作用.
表1 理化因子與各處理組水體ρ(EPS)及單位藻細(xì)胞EPS含量的相關(guān)性
該研究結(jié)果顯示,在1~7 d,對照組和擾動組之間的ρ(EPS)無顯著差異. 而劉玉等[29]研究發(fā)現(xiàn),連續(xù)擾動24 h后,100和200 r/min試驗組ρ(EPS)顯著高于對照組,50和400 r/min試驗組與對照組無顯著差異,適度的擾動可以促使藻細(xì)胞ρ(sEPS)顯著提高. 試驗設(shè)置的擾動強度大小可能是導(dǎo)致該試驗中1~7 d內(nèi)ρ(EPS)差異不顯著的原因之一. 此外,試驗過程中收集的太湖藻類在試驗大桶中可能都有為期一周的適應(yīng)期. 在10~19 d,對照組的ρ(EPS)、ρ(sEPS)和ρ(bEPS)均顯著低于間歇擾動組和持續(xù)擾動組,這可能是經(jīng)過一段適應(yīng)期后擾動使藻細(xì)胞生理特征逐步改變,促進(jìn)了EPS的分泌[20],從而使得兩個擾動組單位藻細(xì)胞EPS含量較高. 而持續(xù)擾動對藻細(xì)胞產(chǎn)生的刺激作用更強烈,導(dǎo)致試驗結(jié)束之時,該組的ρ(EPS)和ρ(bEPS)還顯著高于間歇擾動組.
單位藻細(xì)胞EPS含量與生長周期密切相關(guān),通常認(rèn)為,藻類在其生長期內(nèi)會不斷地釋放EPS,并且進(jìn)入靜止期后釋放量增大. 如圖2所示,在1~7 d,3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量沒有明顯變化,可能是因為在培養(yǎng)初期,藻細(xì)胞處于適應(yīng)期,且此時水體中的氮、磷質(zhì)量濃度較高,而高濃度的氮、磷營養(yǎng)鹽又會抑制藻細(xì)胞EPS的分泌[5],致使單位藻細(xì)胞EPS含量較低. 隨后3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量均出現(xiàn)大幅上升,可能是因為在試驗前期,隨著藻類的生長3個處理組的ρ(TDN)、ρ(TDP)均呈下降趨勢,使得氮、磷質(zhì)量濃度在7 d后處于較低狀態(tài),而氮、磷質(zhì)量濃度較低會促使藻類產(chǎn)生EPS[12]. 試驗后期3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量呈下降趨勢,可能是因為藻在新環(huán)境中適應(yīng)了一段時間后多糖分泌量會減小[30]. 至試驗結(jié)束之時,3個處理組的單位藻細(xì)胞EPS含量均保持在較高水平,浦寅芳等[31]認(rèn)為,培養(yǎng)時間對EPS產(chǎn)量有顯著影響,藻細(xì)胞在生長中后期開始積累多糖,所以生長后期的單位藻細(xì)胞EPS含量明顯高于生長前期.
從EPS形成的角度看,ρ(sEPS)和ρ(bEPS)的占比值得關(guān)注. 該試驗結(jié)果顯示,對照組的ρ(sEPS)占比呈現(xiàn)出先升后降的趨勢,但第19天和第1天的ρ(sEPS)占比差別不大;而間歇擾動組和持續(xù)擾動組的ρ(sEPS)占比在試驗過程中分別下降了27%和20%. 這可能是由于擾動刺激改變了藻類EPS在溶解態(tài)和固著態(tài)之間的分配,其具體機制有待進(jìn)一步研究.
研究[32]表明,藻類在生長堆積或者衰亡腐爛時會消耗大量DO,使水體產(chǎn)生缺氧甚至厭氧條件,而不利的生長條件是藍(lán)藻大量分泌EPS的主要原因之一[33],即當(dāng)水體處于缺氧或厭氧條件時會促使藍(lán)藻分泌較多的EPS,這可能是該研究中ρ(DO)與ρ(EPS)呈負(fù)相關(guān)的原因之一. 該研究發(fā)現(xiàn),ρ(TDN)、ρ(TDP)與3個處理組的ρ(EPS)均呈負(fù)相關(guān),氮、磷濃度較低會導(dǎo)致培養(yǎng)環(huán)境中C/N和C/P升高,進(jìn)而促進(jìn)藍(lán)藻將多余的碳營養(yǎng)元素合成為EPS分泌到細(xì)胞外[34-36],使得ρ(EPS)上升. 氮、磷限制能顯著提高藍(lán)藻碳水化合物的合成,尤其是在氮限制條件下能夠激發(fā)sEPS和bEPS等碳水化合物組分的提高[37]. Granum等[38]也發(fā)現(xiàn),當(dāng)?shù)谋M時,藻胞外多聚糖的分泌量增加,而極端的氮限制和磷限制會導(dǎo)致藻產(chǎn)生更多的胞外多聚糖. 代曉炫等[39]發(fā)現(xiàn),氮、磷的增加造成了多糖含量的降低,這是因為氮、磷充足時光合作用的產(chǎn)物優(yōu)先以蛋白質(zhì)、RNA的形式出現(xiàn),從而導(dǎo)致多糖含量相對減少,該試驗從另一方面證實了氮、磷質(zhì)量濃度與ρ(EPS)均呈負(fù)相關(guān)的觀點. 這種情況在其他藻類中也有發(fā)現(xiàn),尤珊等[40]發(fā)現(xiàn),低氮條件有利于微藻EPS的積累,氮缺乏導(dǎo)致光合效率降低,微藻對氮饑餓的反應(yīng)是自身含氮大分子的降解,從而導(dǎo)致細(xì)胞氮含量的顯著降低和多糖的積累. 該研究表明,水體中DO、氮、磷質(zhì)量濃度較低時能夠促進(jìn)藻類EPS的分泌.
ρ(Chla)與ρ(EPS)呈正相關(guān),藍(lán)藻細(xì)胞通過光合作用合成碳水化合物,然后根據(jù)生理活動的需要合成核酸、蛋白質(zhì)等,單個細(xì)胞中多糖的多少實際上取決于多糖與微囊藻細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)、核酸等物質(zhì)的比例關(guān)系[39],Chla是各門藻類中都含有的光合作用色素,其濃度的升高表明藻類光合作用強烈,合成的蛋白質(zhì)、核酸等物質(zhì)增多,從而促使細(xì)胞產(chǎn)生更多的EPS. 藻細(xì)胞密度與單位藻細(xì)胞EPS含量呈顯著負(fù)相關(guān),有研究[10]表明,單位藻細(xì)胞sEPS和bEPS含量受藻生長的影響,藻在生長不利的情況下單位藻細(xì)胞sEPS和bEPS含量較大,反之,單位藻細(xì)胞sEPS和bEPS含量較小,這是因為當(dāng)生存狀況惡劣時,藍(lán)藻會分泌較多的多糖,以作為脅迫環(huán)境下的保護(hù)機制,而與此同時藻細(xì)胞密度會有所下降,因而導(dǎo)致二者呈負(fù)相關(guān).
藍(lán)藻EPS的分泌本質(zhì)上是生物應(yīng)對外界不利環(huán)境因素的一種反應(yīng),這種聚集可能是一種防止被捕食的策略[41]. 此外,當(dāng)?shù)?、磷營養(yǎng)鹽等環(huán)境因素呈現(xiàn)不利狀態(tài)時,會誘使藍(lán)藻EPS分泌增加,供給藻際微生物以碳源,并通過藻際細(xì)菌或真菌等的礦化作用獲得氮、磷營養(yǎng)鹽[42-43],這種藻菌互利合作對藻類EPS的分泌需要進(jìn)一步研究.
a) 第1~7天,擾動對ρ(EPS)、ρ(sEPS)和ρ(bEPS)的影響不顯著(P>0.05);但是第10~19天,對照組的ρ(EPS)、ρ(sEPS)和ρ(bEPS)均顯著低于間歇擾動組和持續(xù)擾動組(P<0.05);第19天,持續(xù)擾動組的ρ(sEPS)和ρ(bEPS)顯著高于間歇擾動組(P<0.05),表明擾動尤其是持續(xù)擾動能在一定程度上促進(jìn)EPS的分泌.
b) 水體中氮、磷和DO質(zhì)量濃度及藻細(xì)胞密度較低時能夠促進(jìn)藍(lán)藻EPS的分泌,反之,則會抑制藍(lán)藻EPS的分泌.
c) 水體中ρ(Chla)和ρ(SS)較高時能夠促進(jìn)EPS的分泌,且理化因子對藍(lán)藻EPS的形成起著非常重要的作用.