任佳琦，劉昕，雷琳，趙吉春，曾凱芳,2，明建,2*

1(西南大學(xué) 食品科學(xué)學(xué)院，重慶，400715)2(西南大學(xué) 食品貯藏與物流研究中心，重慶，400715)

中國是世界第一大蘋果生產(chǎn)國，種植廣泛，品種豐富。將蘋果進(jìn)行深加工，既能提高蘋果的附加值，也可以滿足當(dāng)代快節(jié)奏生活的需要。蘋果加工制品包括蘋果汁、干、醋、醬、罐頭等，其中蘋果汁是世界上第二大果汁產(chǎn)品，是蘋果加工的主要方向。蘋果汁可分為清汁與濁汁兩大類，近年來，蘋果濁汁因其新鮮天然、營養(yǎng)價值高、風(fēng)味良好、方便安全而備受關(guān)注，市場占有率不斷上升[1]。濁汁體系穩(wěn)定性不佳是限制濁汁加工產(chǎn)業(yè)發(fā)展的關(guān)鍵因素，研究表明，果膠多酚、蛋白質(zhì)是引起濁汁渾濁的主要成分，而引起渾濁的主要影響因素為酸度、離子強(qiáng)度與帶電性質(zhì)、溫度及酶[2]。目前關(guān)于濁汁體系穩(wěn)定性的研究主要集中在加工方式[3]、添加穩(wěn)定劑[4]、探究大分子之間相互作用機(jī)理[5]等方面，鮮少有蘋果自身內(nèi)源因素影響穩(wěn)定性的研究報道。

果膠是一種廣泛存在于植物細(xì)胞壁的復(fù)雜多糖，由D-吡喃半乳糖通過α-1,4-糖苷鍵連接成長鏈，具有良好的增稠性及穩(wěn)定性[6]。在濁汁體系中，果膠為相互作用的顆粒提供了保護(hù)涂層，從而保證了果汁中顆粒的穩(wěn)定性[3]。蘋果中富含有機(jī)酸，在新鮮果蔬直接榨汁過程中，有機(jī)酸作為一種內(nèi)源因子，不可避免的會影響體系微環(huán)境(如pH、離子強(qiáng)度)或與體系內(nèi)物質(zhì)反應(yīng)[7-8]。品種、成熟度、產(chǎn)地不同的蘋果原料之間存在明顯差異，會對蘋果濁汁的酸度有較大影響[1]。而濁汁中有機(jī)酸的存在可能會對果膠結(jié)構(gòu)產(chǎn)生影響，結(jié)構(gòu)變化將進(jìn)而影響?zhàn)ざ鹊淖兓痆9]，最終對體系的穩(wěn)定性產(chǎn)生影響。

因此本研究模擬濁汁體系，選擇蘋果中含量較高的3種有機(jī)酸(蘋果酸、檸檬酸、酒石酸)并根據(jù)在不同品種中的含量確定濃度梯度[10]。旨在探究有機(jī)酸作為內(nèi)源因子對與蘋果果膠組成的復(fù)合體系的結(jié)構(gòu)、理化特性及穩(wěn)定性的影響。研究結(jié)果將為改善蘋果混濁果汁產(chǎn)品原料選取，提高產(chǎn)品穩(wěn)定性提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

蘋果果膠(APA系列103，酯化度65%，分子質(zhì)量為160 kDa)，煙臺安得利果膠股份有限公司；蘋果酸、酒石酸，上海源葉生物科技有限公司；檸檬酸，成都市科龍化工試劑廠；其他試劑均為分析純。

1.2 儀器與設(shè)備

UV-2450紫外分光光度計,日本島津公司；Spectrun100傅里葉紅外光譜儀,美國PerkinElmer公司；ZEN3690馬爾文激光粒度分析儀,英國馬爾文儀器公司；MCR302流變儀,奧地利安東帕公司；SYNERGYH1MG全波長酶標(biāo)儀,美國基因公司；Phenom Pro掃描電鏡,荷蘭Phenom Pro公司；TGA550熱重分析儀,美國TA公司；LC-20A高效液相色譜儀,日本島津公司。

1.3 試驗方法

1.3.1 樣品制備

將蘋果果膠(pectin，PT)、蘋果酸(malic acid，MA)、檸檬酸(citric acid，CA)、酒石酸(tartaric acid，TA)在環(huán)境溫度下分別于超純水中分散2 h后，將PT溶液分別與不同有機(jī)酸溶液混合再分散2 h。得到PT質(zhì)量濃度為5 g/L，有機(jī)酸濃度依次為0.31、3.15、6.29、18.88、37.76 mmol/L的混合體系(混合體系按照濃度增加順序以A～E依次編碼)。5 g/L PT溶液作為對照。樣品制備后部分存放于-40 ℃冰箱中，部分使用真空冷凍干燥為粉末保存，待用。

1.3.2 pH的測定

復(fù)合膜液pH采用85-2A pH計進(jìn)行測量，每個樣品平行測量3次，取平均值。

1.3.3 紫外光譜的測定

移取3 mL待測樣品于石英比色皿中，以超純水作為參比，于室溫(25 ℃)檢測樣品在200～660 nm的紫外吸收光譜。

1.3.4 傅里葉變換紅外光譜測定

精確稱取6 mg凍干樣品與300 mg KBr于瑪瑙研缽中混合研磨，取研磨后樣品3份(每份75 mg)置于45 ℃烘箱中烘干2 h后進(jìn)行壓片測量。以KBr為背景進(jìn)行掃描，400～4 000 cm-1掃描范圍，掃描分辨率4 cm-1，累計掃描32次。

1.3.5 單糖組成測定

最高濃度有機(jī)酸與PT復(fù)合體系在水中透析(8 kDa～14 kDa)8 h后凍干得到樣品，參考王文俊[11]的方法并略有修改。

樣品的酸水解：精確稱取2 mg樣品于安瓿瓶中，加入2 mL 4 mol/L三氟乙酸，酒精噴燈封管，110 ℃烘箱酸解3 h后冷卻至室溫，使用氮吹儀吹干。加少量水溶解，用0.1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH至中性后定容至1 mL。

衍生物的制備：分別精確稱取甘露糖(Man)、鼠李糖(Rha)、半乳糖醛酸(GalA)、半乳糖(Gal)、木糖(Xyl)、阿拉伯糖(Ara)、巖藻糖(Fuc)，等摩爾混合得到濃度為2 mmol/L的7種標(biāo)準(zhǔn)單糖混合溶液。分別精確吸取1 mL上述水解待用樣品及400 μL混標(biāo)，加入50 μL 0.02 mol/L乳糖溶液作為內(nèi)標(biāo)，接著加入450 μL 0.3 mol/L NaOH及450 μL 0.5 mol/L 1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮溶液，漩渦振蕩，充分混勻。70 ℃水浴反應(yīng)30 min，冰水浴冷卻10 min。再加入450 μL 0.3 mol/L HCL，1 mL氯仿進(jìn)行萃取，渦旋5 min，離心(10 000 r/min，5 min)。反復(fù)萃取3次，最后一次水層過0.45 μm水系濾膜。

高效液相色譜分析條件：Thermo BDS-C18柱(250 mm×4.6 mm，5 μm)，柱溫40 ℃；二極管陣列檢測器，檢測波長250 nm。進(jìn)樣體積：20 μL。流動相：A相為15%(體積分?jǐn)?shù))乙腈+0.05 mol/L KH2PO4-NaOH緩沖溶液；B相為40%(體積分?jǐn)?shù))乙腈+0.05 mol/L KH2PO4-NaOH緩沖溶液；進(jìn)行階段連續(xù)梯度洗脫。洗脫時間階段為0 min～10 min～40 min～50 min～57 min；洗脫液中B相對應(yīng)時間梯度的濃度變化為0%～10%～30%～0%～0%；洗脫流速為0.7 mL/min。

1.3.6 掃描電子顯微鏡測定

冷凍干燥后的樣品放置于粘臺后進(jìn)行噴金處理，在加速電壓10 kV下觀察樣品的微觀結(jié)構(gòu)。

1.3.7 流變特性測定

采用藥匙舀取樣品，樣品周圍涂抹硅油以防止水分蒸發(fā)。選定錐板，型號為cp60-1(60 mm，1°)；掃描溫度25 ℃；流動曲線測量模式；剪切速率變化，0.1～100 s-1。測試完畢后對數(shù)據(jù)進(jìn)行數(shù)學(xué)公式擬合，成功應(yīng)用于Power Law方程：

σ=KPLγn

(1)

式中：σ為剪切應(yīng)力，Pa；KPL為稠度系數(shù)，Pa·s；γ為剪切速率，s-1；n為非牛頓指數(shù)。

1.3.8 熱穩(wěn)定性測定

取3 mg凍干樣品平鋪于石英坩堝中，在氮氣環(huán)境中進(jìn)行熱重分析，升溫速率為10 ℃/min，溫度范圍為30～800 ℃。系統(tǒng)自動采集數(shù)據(jù)。

1.3.9 粒徑測定

蒸餾水作為測量背景，取1 mL待測樣品放入激光粒度儀的樣品池中進(jìn)行粒徑及分布的檢測。25 ℃，633 nm下進(jìn)行測量。

1.3.10 濁度測定

將所有樣品置于漩渦振蕩器中混合振蕩均勻，取200 μL于96孔板中，在650 nm處測量吸光值，吸光值即樣品的濁度。

1.3.11 濁度保留率測定

將各樣品分為離心、不離心2部分，離心部分經(jīng)離心機(jī)以3 500 r/min 離心15 min。取離心前后樣品上清液各200 μL加入96孔板中，記錄650 nm處吸光值。離心前后樣品吸光度值分別為A1、A2。按照公式(2)計算濁度保留率：

(2)

1.4 數(shù)據(jù)處理

所有實驗均重復(fù)3次，每次測試均需更換樣品。利用Origin 8.1軟件作圖。使用SPSS 19.0軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行ANOVA差異顯著性分析與t檢驗。

2 結(jié)果與分析

2.1 復(fù)合體系pH值

果膠是一種酸性雜多糖，分子中含有65%以上的GalA，pH值一般在3～4(1%濃度條件下)[12]。本實驗所用5 g/L PT水溶液的pH為3.39。隨著體系內(nèi)有機(jī)酸濃度的增大，有機(jī)酸-果膠復(fù)合體系pH值顯著降低，其中TA-PT E體系下降最多，pH值由3.39下降至2.12。其次是PT-CA E體系下降至2.27，PT-MA E體系pH值為2.33。不同復(fù)合體系之間pH值的差異是由不同有機(jī)酸之間的酸性強(qiáng)弱所致。

圖1 不同濃度MA、CA、TA與PT復(fù)合體系pH值
Fig.1 The pH value of different concentrations of MA, CA, TA with PT composite systems
注：圖中A～E表示有機(jī)酸濃度依次增加；不相同小寫字母 表示差異顯著(P<0.05)

2.2 紫外光譜分析

β-消除反應(yīng)和酸水解是PT的2種非酶降解機(jī)理，其中β-消除反應(yīng)會生成碳碳不飽和雙鍵，在235 nm處出現(xiàn)吸收峰[13]。由圖2可知，PT于203 nm處出現(xiàn)最大吸收峰，符合果膠多糖的特征吸收峰[14]。在270 nm處存在1個微小肩峰，可能是由于選取的商業(yè)PT純度不高，存在微量雜質(zhì)所致。PT特征峰吸收強(qiáng)度隨著有機(jī)酸濃度的增加有規(guī)律地增強(qiáng)，對應(yīng)波長處存在著不同程度的紅移現(xiàn)象。隨著MA濃度的增加，對應(yīng)吸收峰從205 nm紅移至215 nm；PT-CA復(fù)合體系由204 nm紅移至213 nm；PT-TA復(fù)合體系則由204 nm遷移至215 nm處。這可能與體系內(nèi)有機(jī)酸的引入有關(guān)。有機(jī)酸在210 nm附近處有較強(qiáng)吸收，且有機(jī)酸的引入會改變體系的極性，造成吸收峰的偏移[15]。圖譜中并未出現(xiàn)新的吸收峰，表明有機(jī)酸與果膠復(fù)合過程中無不飽和鍵生成，果膠未發(fā)生β-消除反應(yīng)。

a-PT-MA復(fù)合體系；b-PT-CA復(fù)合體系；c-PT-TA復(fù)合體系
圖2 不同濃度MA、CA、TA與PT復(fù)合體系紫外光譜圖
Fig.2 UV-vis spectrum of different concentrations of MA, CA, TA with PT composite systems
注：圖中A～E表示有機(jī)酸濃度依次增加

2.3 紅外光譜分析

a-PT-MA復(fù)合體系；b-PT-CA復(fù)合體系；c-PT-TA復(fù)合體系
圖3 不同濃度MA、CA、TA與PT復(fù)合體系紅外光譜圖
Fig.3 The Fourier transform infrared spectrum of different concentrations of MA, CA, TA with PT composite systems
注：圖中A～E分別表示有機(jī)酸濃度依次增加

2.4 單糖組成分析

果膠主要由GalA的線性鏈組成，偶爾會被L-Rha打斷，同時還含有其他中性糖側(cè)鏈。果膠分子主要由半乳糖醛酸聚糖(HG)，鼠李半乳糖醛酸聚糖I型(RG-I)，鼠李半乳糖醛酸聚糖II型(RG-II)型，木糖半乳糖醛酸聚糖(XGA)4種結(jié)構(gòu)域單元組成[20]。由紅外光譜可知，有機(jī)酸對PT的單糖含量產(chǎn)生一定影響。選取本實驗中各有機(jī)酸最高濃度復(fù)合體系進(jìn)行單糖組成分析，結(jié)果如表1所示。

表1 MA、CA、TA對PT單糖組成的影響Table 1 Effects of MA, CA, TA on the monosaccharide composition of PT

注：K=GalA/(Fuc+Rha+Ara+Gal+Xyl)；表中E代表有機(jī)酸最高濃度；*代表與PT相比有顯著性差異(P<0.05)；**代表極顯著差異(P<0.01)

由表1可知，PT中GalA的含量最高，主要含有Rha、Gal和Xyl。MA作用后，PT中Man含量顯著增加，而Gal含量顯著下降，表明Gal相應(yīng)的支鏈減少。同等濃度CA作用后， PT中Man、GalA含量顯著增加。TA作用后，GalA含量上升，Rha、Gal、Ara含量下降，TA可能破壞了對應(yīng)單糖之間的糖苷鍵。綜合3種有機(jī)酸處理得出，有機(jī)酸會使PT發(fā)生水解，其中Ara、Gal、Rha較易脫去。推測在酸性條件下，Ara、Gal、Rha較不穩(wěn)定，而GalA及Man的比例有所上升，推測二者在酸性條件下穩(wěn)定性較高。此推測與ROUND等[21]的研究結(jié)果相似。

Rha/GalA反映了果膠RG構(gòu)型對整體果膠構(gòu)型的貢獻(xiàn)程度。當(dāng)果膠的比值介于0.05～1時，其分子結(jié)構(gòu)主要為RG-I型。而當(dāng)比值低于0.05時，則主要為HG型和RG-Ⅱ型。樣品檢測均位于0.05～1，為RG-I型果膠。(Ara+Gal)/Rha值可粗略估計RG-I型果膠結(jié)構(gòu)的分支程度，數(shù)值越大，表明中性糖連接到RG-I型主鏈上的側(cè)鏈越長。GalA/(Fuc+Rha+Ara+Gal+Xyl)代表了果膠鏈的線性度，其值越大，果膠鏈的線性度越高。由上表可知，37.76 mmol/L TA處理后的PT線性度增加，支鏈長度降低，同濃度MA及CA處理后也呈現(xiàn)相同趨勢。

2.5 掃描電鏡分析

圖4為不同濃度不同有機(jī)酸與PT復(fù)合體系的掃描電鏡圖，從左至右有機(jī)酸濃度依次增加。由圖4可以看出，凍干PT整體呈現(xiàn)板狀結(jié)構(gòu)，表面粗糙多孔，且有似蜂窩狀的結(jié)構(gòu)穿插其中。3種有機(jī)酸的引入對PT網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)的影響相似。隨著有機(jī)酸的加入，復(fù)合體系均難以保持PT原有的板狀結(jié)構(gòu)，表面由粗糙變?yōu)楣饣?，孔狀結(jié)構(gòu)消失。不同的微觀結(jié)構(gòu)意味著有機(jī)酸的加入打亂了原有體系內(nèi)PT分子之間形成的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)。在PT-MA體系中，低濃度時，PT呈現(xiàn)細(xì)絲狀，排列松散無序。隨著濃度的增加，體系逐漸由絲狀變?yōu)樾悠瑺睿帕兄饾u緊湊致密。這些貌特征與YANG等[22]的研究相似，這可能是由于果膠發(fā)生了降解或是解團(tuán)聚引起的[23]。CA、TA與PT的復(fù)合體系具有相似影響。

圖4 不同濃度MA、CA、TA與PT復(fù)合體系的掃描電子 顯微鏡圖
Fig.4 Scanning electron micrographs of different concentrations of MA, CA, TA with PT composite systems
注：圖中A～E分別表示有機(jī)酸濃度依次增加，放大倍數(shù)250X

2.6 靜態(tài)剪切分析

由圖5可知，不同濃度有機(jī)酸與果膠的復(fù)合體系均表現(xiàn)出明顯的剪切稀化現(xiàn)象，即隨著剪切速率的增大，復(fù)合體系黏度下降。果膠是由鏈狀分子構(gòu)成的大分子聚合物，低剪切速率時，分子間互相纏結(jié)，黏度較大；當(dāng)速率變大時，鏈狀分子受到流層間剪切應(yīng)力作用，分子構(gòu)象破壞，發(fā)生滾動旋轉(zhuǎn)收縮成團(tuán)，黏度降低。在有機(jī)酸的存在下，復(fù)合體系整體黏度值均低于PT溶液，這一結(jié)果與吳劍夫[24]的研究結(jié)果相似。這可能是由于果膠水溶液自身為弱酸性，分子之間通過斥力等作用分散在水中，有機(jī)酸的加入引入H+，抑制果膠中半乳糖醛酸羧基的電離，減弱靜電作用，果膠分子卷曲，黏度降低[25]。

a-PT-MA復(fù)合體系；b-PT-CA復(fù)合體系；c-PT-TA復(fù)合體系
圖5 不同濃度MA、CA、TA與PT復(fù)合體系表觀黏度曲圖
Fig.5 Apparent viscosity curve of different concentrations of MA, CA, TA with PT composite systems
注：圖中A～E分別表示有機(jī)酸濃度依次增加

對各復(fù)合體系數(shù)據(jù)進(jìn)行模型擬合，結(jié)果如表2所示。擬合數(shù)據(jù)的R2值均大于0.999，該模型數(shù)據(jù)擬合情況良好。其中n<1，表明所有復(fù)合體系均為假塑性流體；n值越接近1，體系越接近于牛頓流體。KPL為稠度系數(shù)，數(shù)值越高，表明體系黏度越高[26]。根據(jù)表2，隨著體系內(nèi)MA濃度的增大，PT-MA復(fù)合體系KPL持續(xù)下降，于18.88 mmol/L(PT-MA D)處時到達(dá)最低，n值呈現(xiàn)相反趨勢，表明復(fù)合體系在此條件下黏度值最低，最接近于牛頓流體。隨著MA濃度繼續(xù)增加，其黏度有所回升但仍舊低于PT溶液，假塑性增強(qiáng)。PT-CA復(fù)合體系中，隨著CA濃度的增大，KPL值逐漸降低，n值逐漸增大，當(dāng)達(dá)到37.75 mmol/L(PT-CA E)時，體系黏度顯著降低，更接近于牛頓流體。對于TA-PT復(fù)合體系，TA使得體系黏度顯著降低，n值顯著升高；但體系n值、KPL值與TA濃度不呈現(xiàn)明顯的規(guī)律性?？傮w來說，有機(jī)酸的存在，會使得復(fù)合體系黏度降低，假塑性減弱。果膠中單糖組成的變化可能導(dǎo)致了黏度的下降[27]，復(fù)合體系粒徑下降，果膠卷曲，也會導(dǎo)致體系黏度降低。

2.7 熱重分析

果膠的熱穩(wěn)定性影響著其應(yīng)用范圍，熱重分析可反應(yīng)樣品的熱力學(xué)特性。選取各有機(jī)酸最高濃度進(jìn)行測試，結(jié)果如圖6所示，其中圖6-c～圖6-f實線為樣品的熱重圖像，反應(yīng)物質(zhì)質(zhì)量隨溫度的變化，虛線為微分熱重曲線，表明樣品質(zhì)量損失所經(jīng)過的階段。由圖6可知，PT的質(zhì)量損失可分為3個階段。30～100 ℃為第一階段，主要為自由水的散失，失重率為8.916%。100～200 ℃為第二階段，主要為結(jié)合水、氫鍵、其他揮發(fā)性物質(zhì)的損失，失重率為10.629%；主要質(zhì)量損失為第三階段，失重率為41.583%，主要是PT受熱分解導(dǎo)致的質(zhì)量快速損失，糖苷鍵被打斷，GalA鏈大量熱降解，然后發(fā)生二次降解，羧酸基團(tuán)在糖環(huán)上發(fā)生脫羧反應(yīng)，產(chǎn)生各種氣體成分，形成固態(tài)焦物[28]。PT-MA E復(fù)合體系主要質(zhì)量損失階段失重率為49.888%。失重率較PT增加，最大失重溫度下降。PT-CA E微分熱重曲線表明該復(fù)合體系主要質(zhì)量損失有2個階段，第一階段最大失重溫度為184.91 ℃，失重率為39.158%，主要為CA及結(jié)合水引起[29]，第二階段，主要為PT糖苷鍵斷裂，失重率為22.886%。PT-TA E體系主要質(zhì)量損失階段失重率為59.277%，最大失重溫度為213.508 ℃。添加有機(jī)酸后，復(fù)合體系的失重率增大，熱穩(wěn)定性下降，可能是因有機(jī)酸加入后破壞PT網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)，使得分子間相互作用力降低，體系網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)疏松引起。

表2 不同濃度MA、CA、TA與PT混合體系Power Law 模型擬合參數(shù)表Table 2 Power Law model parameters of different concentrations of MA，CA，TA with PT composite systems

注：表中A～E分別表示有機(jī)酸濃度依次增加；不相同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)

a-熱重分析圖；b-微分熱重曲線；c～f-不同樣品的熱重(實線)及微分熱重曲線(虛線)圖
圖6 MA、CA、TA與PT復(fù)合體系熱重分析圖
Fig.6 Thermogravimetric analysis of MA, CA, TA with PT composite systems
注：圖中E代表有機(jī)酸最高濃度

2.8 粒徑分析

平均粒徑可以用于表示溶液中溶質(zhì)顆粒的粒徑大小情況，一定程度上反映聚合物在溶液中的聚集狀態(tài)。蘋果汁的云狀顆粒穩(wěn)定性通常遵循斯托克斯沉速公式，其中顆粒粒徑與沉降速度成正比[30]。有機(jī)酸的加入能夠明顯降低體系內(nèi)的粒徑，且粒徑隨著有機(jī)酸濃度的增大而降低?？赡苁且驗橛袡C(jī)酸的加入引起了果膠的水解，果膠發(fā)生解團(tuán)聚，或是靜電作用減弱，果膠分子卷曲所致[25]。這一結(jié)果也可以解釋表觀黏度的降低及單糖組成的改變。

圖7 不同濃度MA、CA、TA與PT復(fù)合體系粒徑圖
Fig.7 Particle size of different concentrations of MA， CA，TA with PT composite systems

2.9 濁度及濁度保留率分析

由2.2可知650 nm處果膠與有機(jī)酸均無吸收峰存在，因此選取650 nm為濁度測量波長。不同濃度MA、CA、TA與PT復(fù)合體系濁度及濁度保留率如表3所示。溶液的濁度可以在一定程度上反映溶液中溶質(zhì)的聚集或分散情況。加入有機(jī)酸后，濁度的變化與有機(jī)酸濃度之間并不呈現(xiàn)規(guī)律變化。CA的加入對于體系濁度無顯著影響。6.29 mmol/L MA及3.15 mmol/L TA會使得體系渾濁度增加，此時二者復(fù)合體系pH為2.84、2.86、6.29 mmol/L CA時體系pH為2.81，濁度為PT-CA體系最大值。因此推測體系濁度可能與體系pH有關(guān)，魏立威[3]的研究也得到相似結(jié)論。在pH為2.8左右時，復(fù)合體系濁度達(dá)到最大值。溶液的渾濁穩(wěn)定性可簡單的用溶液經(jīng)離心力作用后其濁度保留率來衡量。保留率越大，表明溶液的渾濁穩(wěn)定性越好。3種有機(jī)酸的加入均使得復(fù)合體系濁度保留率下降，有機(jī)酸的存在會降低PT溶液的濁度保留率，可能與體系黏度的下降有關(guān)。

表3 不同濃度MA、CA、TA與PT混合體系濁度及濁度保留率Table 3 Turbidity and turbidity retention of different concentrations MA、CA、TA with PT composite systems

注：表中A～E分別表示有機(jī)酸濃度依次增加；不相同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)

3 結(jié)論