張遠莉, 龐延軍
(南京大學 生命科學學院, 南京 210093)
遺傳學是生命科學、醫(yī)學、農學等相關領域的核心課程,是一門理論與實踐相結合的課程,遺傳學實驗是遺傳學課程教學的重要組成部分[1-4]。遺傳學實驗教學不僅要完成傳統(tǒng)的以驗證性和示范性實驗為主的課程,還需要培養(yǎng)學生嚴謹?shù)目蒲兴季S,提高主觀能動性[5-8]。因此我們在遺傳學實驗的教學中緊密結合科學研究,設計一些綜合性實驗,將科研成果引入課堂,培養(yǎng)具有創(chuàng)造力的科研人才。
本次綜合性實驗選擇對植物抗病基因Pib的片段進行人工合成與進化,指導學生從不同的水稻品種中克隆出抗病基因的片段,利用現(xiàn)存的自然變異,采用DNA改組(DNA shuffling)技術進行重組,人工進化得到新的基因片段。DNA 改組是目前最常用的人工合成與進化基因的技術之一,它是由Stemmer于1994年首次提出并在美國Affymax研究所的實驗室取得成功[9-10],也稱為有性PCR(sexual PCR)、分子育種(Molecular Breeding)。DNA改組主要包括以下幾步:1)模板準備。單個基因或一組同源基因為模板。2)酶切:用化學方法(如脫氧核糖核酸酶I:DNaseI酶切)或物理方法(如超聲破碎法)將基因切割成一系列隨機大小的小片段。3)無引物PCR。這些DNA小片段間具有一定同源性,可互為引物,在不加引物的情況下通過PCR法將小片段組裝成大片段。4)有引物PCR。以無引物PCR產物為模板,稀釋后,加入合適的引物將大片段相連,得到一個重組基因文庫。5)篩選和測序。將此基因文庫導入合適質粒,篩選、測序重組子基因。也可將得到的重組子基因,與初始的同源基因混合在一起,作為第二輪DNA改組的模板,重復上述步驟,直至得到所需的突變基因。DNA 改組技術是一項全新的體外人工進化模式,是迄今為止所建立的最有效的分子進化技術。
通過本次綜合實驗,可以讓學生了解分子遺傳學的基本操作,從分子水平揭示遺傳學的基本現(xiàn)象與規(guī)律,并通過綜合性、設計性實驗,培養(yǎng)學生初步獨立進行科學研究的能力和創(chuàng)新能力,為創(chuàng)新型人才培養(yǎng)提供平臺。
每班學生約30人,每組4人左右。實驗儀器有微量移液器、PCR儀、電泳儀、凝膠成像系統(tǒng)、離心機、搖床、培養(yǎng)箱、滅菌鍋等。實驗試劑:Taq酶、連接酶、PCR相關試劑購自大連寶生物公司;DNaseⅠ 購自Sigma公司;質粒提取試劑盒、PCR純化試劑盒、凝膠回收試劑盒購自Axygen公司。
實驗材料:提供30~40個水稻品種。每組同學合作完成本實驗的所有工作。
學生首先以提供的水稻品種為模板,PCR擴增得到基因片段(Pib基因),連入T載體后進行測序,得到親本的基因序列。然后在教師和助教的指導下對測序出的序列進行分析,挑選合適的基因片段作為下一步人工進化的親本。
將各自選取的親本DNA,各取約2 μg混勻,加入DNaseⅠ 15 ℃消化30 min。消化反應結束后,首先80 ℃變性5 min,滅活DNaseⅠ。然后用2%瓊脂糖凝膠進行電泳,在紫外燈下割取50~100 bp的片段,進行DNA片段的回收。
在PCR反應體系中加入DNaseⅠ消化產物,在不加入引物的條件下進行PCR反應,讓斷裂的片段之間互為引物和模板,進行配對和延伸。
無引物PCR反應結束以后,需要特異性的擴增出重組的目的片段,將無引物PCR產物純化后,稀釋1000倍作為模板進行有引物PCR反應(引物序列與產物長度如表1所示)。有引物PCR反應結束后將得到與親本DNA條帶一樣大小的目的條帶。
對PCR產物進行純化,與T載體連接,提取質粒,進行序列的測定和實驗結果分析。
表1 實驗中引物序列與產物長度
要合成某種基因,首先要了解該基因的遺傳資源變異狀況。因此,對用于合成目標基因的材料首先進行品種間的遺傳多態(tài)性分析(MEGA軟件:Molecular evolutionary genetics analysis)。給學生提供30~40個材料,讓學生分別對這些基因進行克隆和測序;匯總后通過對序列的分析,挑選合適的基因作為下一步人工進化的親本。指導學生根據(jù)不同實驗目的來選擇人工進化的親本,選擇的親本數(shù)量和品種都由自己決定,學習自主選擇和設計實驗。表2是其中一組學生選擇的用于基因重組的7個親本,它們的平均核苷酸差異度(Pi,Nucleotide diversity)是0.096。
表2 7個親本基因的核苷酸差異度
DNA 改組是一項操作性很強的技術,這種技術受很多因素的影響,包括DNaseⅠ酶切片段大小,親本DNA序列的差異度和有性PCR,這些因素都將影響DNA改組的結果。其中親本DNA片段的酶切效果影響最大,因為親本DNA酶切的好壞將直接影響改組的效果,酶切后的片段要求均一性比較好,這樣可以避免某一親本片段的過于密集。片段大小的選擇也十分重要,一般情況下它與改組的基因片段大小有密切的關系。改組的片段長度小于1 kb,則適宜選擇100 bp以下的片段,1~2 kb則適合選擇100~200 bp的片段,片段的大小將直接影響重組體的規(guī)模和序列差異的大小。若選擇太小的片段,則重聚比較困難;選擇太大的片段,則重組的效果較差。在實驗中,我們的目的片段是1500 bp左右。綜合以上考慮,學生們最后選擇了100 bp左右的片段。在具體實驗中,學生們體驗了自己設計和優(yōu)化實驗的過程,有些實驗條件需要自己多次摸索才能獲得比較理想的結果(圖1)。雖然實驗過程繁瑣,但是學生們的興趣很大,都希望通過自己的努力獲得實驗的成功。
M:DL2000 Marker
圖1DNA改組步驟
Figure 1 Procedure of DNA shuffling
重組后的基因片段純化后,與Promega T載體進行連接,轉化以后得到了1000多個重組克隆,挑選部分重組克隆進行序列測定。然后指導學生利用生物信息學軟件(MEGA軟件:Molecular evolutionary genetics analysis)對序列進行分析,部分結果如圖2和圖3所示。測定的所有序列之中沒有任何兩個一樣的序列,說明重組后的群體較大,變異十分豐富,也間接地說明了DNA改組后親本序列的交換和重組比較頻繁。核苷酸比較分析發(fā)現(xiàn),變異大多數(shù)來源于親本DNA之間的重組和交換,而且交換的頻率較大,也有小部分變異來源于隨機突變,如圖2中紅色圓圈標注部分。重組后的平均核苷酸差異度達到了9.3%,與親本基因間的核苷酸差異度基本一致。把重組后的序列與7個親本序列進行進化樹構建(鄰接法NJ:Neighbor-Joining),顯示重組后的序列分布在不同的分枝上(圖3),但還是可以看出基本是平均分布在親本序列的周圍,說明這些序列的變異主要還是來自于親本序列片段間的交換,隨機突變的貢獻不是很大。
圖2 重組基因的核苷酸序列比對
圖3 重組基因的系統(tǒng)進化樹Figure 3 Phylogenetic tree of DNA shuffling genes
在高等教育階段,教學和科研是相輔相成的。本實驗中,指導學生利用基因的DNA 改組技術,進行基因的人工進化,學生分組完成測序得到的200個重組體與親本DNA序列完全不同,得到了自然界中不存在的序列,觀察和了解基因的人工進化。傳統(tǒng)的遺傳學實驗中,多以驗證性實驗為主,以掌握實驗方法為出發(fā)點。本實驗的不同之處是一個綜合性實驗,具有一定生物學意義,通過實驗引導學生學習“提出問題、分析問題和解決問題”的方法,較好地激發(fā)了學生的學習興趣。近兩年的遺傳學實驗課程教學評分比以前都有所提高,實驗后學生提交的實驗感想也提出了對此類綜合性實驗比較感興趣。
DNA改組一般是針對某個特定的基因,其主要的優(yōu)勢在于時間短,見效快。1994年,Stemmer用DNA改組技術將細菌對抗生素的抗性提高了32 000倍[10]。通過本實驗的學習,學生在分子水平上了解生物的遺傳和變異機制,掌握了如PCR、DNA提取、細菌的遺傳轉化等分子遺傳學的相關技術。這樣一組綜合實驗,歷時一個月左右,學生不僅掌握了一些分子遺傳學的實驗方法,而且學習了運用生物信息學分析軟件對實驗數(shù)據(jù)進行分析,加強了對理論知識的理解,提高了運用知識的綜合能力,同時也為培養(yǎng)學生的科研思維能力奠定了基礎。
總之,學生科研思維和創(chuàng)新能力的培養(yǎng)是現(xiàn)代高等教育的重要方向,我們將不斷調整實驗教學方案,構建完善的實驗教學體系,培養(yǎng)高素質的科研人才。