胡燕 尹明智 冶飛碟
摘 要:油菜細(xì)胞質(zhì)雄性不育雜種是當(dāng)前油菜雜種優(yōu)勢(shì)利用的主要途徑,而恢復(fù)基因的連鎖標(biāo)記研究對(duì)于恢復(fù)系的選育和改良至關(guān)重要。本研究基于前期研究結(jié)果設(shè)計(jì)引物對(duì)與油菜細(xì)胞質(zhì)雄性不育系1193A恢復(fù)基因連鎖的2個(gè)SNP位點(diǎn)進(jìn)行TSP標(biāo)記分析,以期建立一種簡(jiǎn)單高效易行的油菜雄性不育系1193A恢復(fù)基因的SNP分析方法。結(jié)果表明,設(shè)計(jì)的2對(duì)TSP標(biāo)記引物擴(kuò)增效果較好,可用來進(jìn)行后續(xù)的研究分析。
關(guān)鍵詞:油菜;不育系;恢復(fù)基因;SNP;TSP
中圖分類號(hào):S-3 ? ? ? 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A
DOI:10.19754/j.nyyjs.20200530007
油菜是我國(guó)主要的油料作物之一,具有明顯的雜種優(yōu)勢(shì),油菜細(xì)胞質(zhì)雄性不育系統(tǒng)(Cytoplasmic Male Sterility,CMS)是當(dāng)前油菜雜種優(yōu)勢(shì)利用的主要途徑,也是最重要的傳粉控制系統(tǒng)之一。油菜CMS系統(tǒng)一般包含不育系、保持系和恢復(fù)系,而不育系的應(yīng)用需選育強(qiáng)優(yōu)勢(shì)恢復(fù)系用來配制強(qiáng)優(yōu)勢(shì)雜交種,這對(duì)油菜雜種優(yōu)勢(shì)的利用是至關(guān)重要的[1]。常規(guī)的育種方式需大量雜交,育種周期長(zhǎng),工作量大。隨著測(cè)序技術(shù)以及生物技術(shù)的發(fā)展,分子育種手段也隨之發(fā)展,其中分子標(biāo)記技術(shù)在分子育種中應(yīng)用最為廣泛。分子標(biāo)記方法不受外界環(huán)境因素的影響,對(duì)基因定位及分子育種有重要作用。SNP(Single Nucleotide Polymorphism,單核苷酸多態(tài)性)作為第3代分子標(biāo)記,目前已廣泛應(yīng)用于遺傳分析,是一種便于分析,遺傳穩(wěn)定性強(qiáng)的分子標(biāo)記[2]。SNP的檢測(cè)方法眾多,但有些技術(shù)方法較難掌握,且應(yīng)用成本較大。TSP(Temperature Switch PCR)方法,是由Tabone等[3]提出,優(yōu)點(diǎn)是只需經(jīng)過一輪PCR,就可以直接通過瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)SNP位點(diǎn),方法簡(jiǎn)便易行。目前TSP方法在大麥[4]、小麥[5]、葡萄[6]等物種的SNP位點(diǎn)檢測(cè)分析中都有了成功的應(yīng)用。
前期研究中通過屬間雜交獲得了油菜新型胞質(zhì)雄性不育系1193A[7],并通過大量的測(cè)交發(fā)現(xiàn)了其恢復(fù)系。通過油菜60K SNP芯片,結(jié)合BSA法將恢復(fù)基因初步定位在C09染色體上,并發(fā)現(xiàn)了2個(gè)連鎖的SNP位點(diǎn)[8],本研究將對(duì)這2個(gè)SNP位點(diǎn)進(jìn)行TSP標(biāo)記分析,以期建立一種簡(jiǎn)單高效易行的油菜雄性不育系1193A恢復(fù)基因的SNP分析方法。
1 材料與方法
1.1 實(shí)驗(yàn)材料
不育系1193A與恢復(fù)系1193R2的種子均由國(guó)家油料改良中心湖南分中心提供。
1.2 油菜基因組DNA的提取
利用CTAB法提取基因組總DNA。
1.3 TSP標(biāo)記檢測(cè)SNP位點(diǎn)
根據(jù)前期油菜60K SNP芯片分析的研究結(jié)果[8],本研究對(duì)Bn-scaff_ 17487_ 1-p1890044和Bn-scaff_ 22835_ 1-p525830 2個(gè)SNP位點(diǎn)進(jìn)行TSP標(biāo)記的引物設(shè)計(jì),其引物設(shè)計(jì)原則參照Tabone等提出的原則進(jìn)行設(shè)計(jì)[3]。設(shè)計(jì)2個(gè)位點(diǎn)特異性引物和1個(gè)等位基因特異性引物,其中,位點(diǎn)特異性引物是在SNP位點(diǎn)的兩側(cè),引物退火溫度為63℃,等位基因特異性引物在SNP位點(diǎn)上游,退火溫度為45℃,然后在5′端人工添加2~3bp的核苷酸序列[6]。
PCR反應(yīng)體系為20μL,其中包括:ddH2O 10.6μL,10×緩沖液2μL,每個(gè)引物0.2μmol/L,dNTPs 0.2μmol/L,Taq酶1U,DNA 50ng。PCR擴(kuò)增程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性5min;先94℃40s,60℃40s,72℃40s,15個(gè)循環(huán);然后94℃10s,45℃30s,5個(gè)循環(huán);最后94℃40s,54℃40s,72℃10s,15個(gè)循環(huán)。采用1.5%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)擴(kuò)增結(jié)果。
2 結(jié)果與分析
2.1 SNP位點(diǎn)及引物設(shè)計(jì)
針對(duì)SNP標(biāo)記分析時(shí)TSP方法設(shè)計(jì)引物的要求,對(duì)前期研究開發(fā)的位于C09染色體上的,與恢復(fù)基因連鎖的SNP位點(diǎn)Bn-scaff_ 17487_ 1-p1890044和Bn-scaff_ 22835_ 1-p525830進(jìn)行了分析,并設(shè)計(jì)TSP標(biāo)記引物用于后續(xù)的檢測(cè)分析。
2.2 SNP位點(diǎn)TSP標(biāo)記分析結(jié)果
用3對(duì)TSP標(biāo)記引物對(duì)2個(gè)SNP位點(diǎn)進(jìn)行PCR擴(kuò)增檢測(cè),結(jié)果顯示:有2對(duì)TSP標(biāo)記引物能擴(kuò)增出與預(yù)期長(zhǎng)度相吻合的PCR產(chǎn)物,電泳條帶較清晰。如圖1所示,利用引物TSP1和TSP2對(duì)候選SNP位點(diǎn)A/G進(jìn)行TSP標(biāo)記分型,從電泳條帶可得出,引物TSP1檢測(cè)不育系1193A在720bp和380bp左右各有1條帶,引物TSP2檢測(cè)不育系1193A在720bp和200bp左右各有1條帶,而恢復(fù)系1193R2均是在720bp左右的1條帶,說明通過TSP1和TSP2標(biāo)記能夠檢測(cè)Bn-scaff_ 17487_ 1-p1890044所在的SNP位點(diǎn)差異。而設(shè)計(jì)的TSP3標(biāo)記引物對(duì)Bn-scaff_ 22835_ 1-p525830處的SNP位點(diǎn)進(jìn)行檢測(cè)沒有獲得預(yù)期的結(jié)果,可能是引物設(shè)計(jì)不合理,或PCR條件不佳造成的。
3 討論
油菜CMS系統(tǒng)有同源胞質(zhì)不育系和異源胞質(zhì)不育系。不育系1193A為屬間雜交后代選育而來的異源胞質(zhì)不育系,而這種不育系往往存在恢復(fù)源較窄的問題。為了有利于發(fā)現(xiàn)更多的恢復(fù)源材料,選育出恢復(fù)系,人們常常會(huì)將不育系與大量的材料進(jìn)行廣泛雜交,再觀察雜交后代的育性表現(xiàn),但這樣工作量大,時(shí)間較長(zhǎng)。分子標(biāo)記輔助育種技術(shù)能縮短育種周期,近幾年在作物品種育種中發(fā)揮了重要作用,日漸受到育種家的喜愛。對(duì)恢復(fù)系進(jìn)行分子標(biāo)記研究,找到與恢復(fù)基因緊密連鎖的標(biāo)記,可為恢復(fù)系的選育提供技術(shù)支撐,提高選擇效率和準(zhǔn)確性。TSP標(biāo)記引物檢測(cè)方便,成本較低,結(jié)果的可靠度也較高,只需進(jìn)行一輪PCR即可直接從電泳結(jié)果分析SNP位點(diǎn),是AS-PCR的升級(jí)版[9],適用于一般實(shí)驗(yàn)室開展SNP檢測(cè)。本研究設(shè)計(jì)了TSP標(biāo)記引物3對(duì),用于檢測(cè)不育系1193A恢復(fù)基因的SNP位點(diǎn)差異,結(jié)果表明,其中2對(duì)擴(kuò)增效果較好,可用來進(jìn)行后續(xù)的研究分析。這為通過簡(jiǎn)單易行的方式選育恢復(fù)源材料提供了技術(shù)支撐。
參考文獻(xiàn)
[1] 程計(jì)華,李云昌,梅德圣,等.幾種農(nóng)作物細(xì)胞質(zhì)雄性不育恢復(fù)基因的定位和分子標(biāo)記研究進(jìn)展[J].植物學(xué)通報(bào),2006,23(6):613-624.
[2]Kim S,Misra A. SNP genotyping:Technologies and biomedical applications[J]. Annual Review of Biomedical Engineering,2007(9):289-320.
[3] Tabone T,Mather D,Hayden M. Temperature Switch PCR(TSP):Robust assay design for reliable amplification and genotyping of SNPs[J]. BMC Genomics,2009,10 (1):580.
[4] Hayden M J,Tabone T,Mather D E.Development and assessment of simple PCR markers for SNP genotyping in barley[J]. Theoretical and Applied Genetics,2009,119 (5):939-951.
[5] Huang X Q,Brlé-Babel A. Sequence diversity,haplotype analysis,association mapping and functional marker development in the waxy and starch synthase IIa genes for grain-yield-related traits in hexaploid wheat(Triticum aestivum L.)[J]. Mol Breeding,2012(30):627-645.
[6]郭大龍,李猛,張國(guó)海,等.葡萄SNP標(biāo)記的CAPS和TSP分析[J].園藝學(xué)報(bào),2013,40(11):2307-2315.
[7]尹明智,官春云.甘藍(lán)型油菜細(xì)胞質(zhì)雄性不育系1193A的選育及分析[J].西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2017,30(9):1947-1953.
[8]尹明智.野油胞質(zhì)雄性不育系1193A的研究[D].長(zhǎng)沙:湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),2014.
[9]雷天剛,何永睿,彭愛紅,等.柑橘CAPS標(biāo)記和AS-PCR引物的開發(fā)[J].園藝學(xué)報(bào),2012,39(6):1027-1034.
(責(zé)任編輯 賈燦)