徐偉林 孫成
(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蜜蜂研究所,北京 100093)
熊蜂是重要的傳粉昆蟲,在促進(jìn)農(nóng)業(yè)生產(chǎn)及維護(hù)生態(tài)系統(tǒng)平衡等發(fā)面發(fā)揮重要作用[1,2]。熊蜂的地理分布范圍非常廣泛,從格林蘭島到亞馬遜平原;它們的棲息地種類多樣,從高山草甸到熱帶雨林[3]。到目前為止,人們不清楚是什么分子機(jī)制導(dǎo)致了熊蜂具有如此廣泛的分布能力。對(duì)于這一問題的了解有助于更好地利用熊蜂進(jìn)行授粉服務(wù),也有利于采取恰當(dāng)?shù)拇胧?duì)熊蜂進(jìn)行保護(hù)。串聯(lián)重復(fù)序列(tandem repeat)是基因組中高度變異的遺傳元件。我們通過對(duì)兩種基因組已經(jīng)測(cè)序的熊蜂進(jìn)行比較發(fā)現(xiàn),串聯(lián)重復(fù)序列的變異很可能為熊蜂的環(huán)境適應(yīng)提供了良好的遺傳變異素材[4]。我們的研究也鑒定出101個(gè)編碼區(qū)含有串聯(lián)重復(fù)序列的熊蜂基因,基因中串聯(lián)重復(fù)序列的變異引起它們所編碼蛋白質(zhì)序列長度的變化。Smr基因就是這些基因之一。
Smr基因編碼一個(gè)異常大的、由3604個(gè)氨基酸組成的SMRTER(SMRT-related and ecdysone receptor interacting factor)蛋白,是一種在真核細(xì)胞中表達(dá)并且在進(jìn)化上高度保守的轉(zhuǎn)錄因子[5]。SMRTER[6]不僅對(duì)ecdysone通路有抑制作用,而且對(duì)卵泡細(xì)胞和翅膀的Notch通路也有抑制作用。Smr基因的突變會(huì)導(dǎo)致果蠅存在以下缺陷:翅膀和腿變形、產(chǎn)卵形態(tài)缺陷、生殖力下降[5]。
本研究旨在利用基因合成技術(shù)獲得熊蜂Smr基因的編碼區(qū),并把其克隆進(jìn)大腸桿菌表達(dá)載體。在IPTG的誘導(dǎo)下表達(dá)SMRTER重組蛋白,并對(duì)表達(dá)出的可溶性蛋白進(jìn)行純化。制備兔抗SMRTER多克隆抗體,并檢驗(yàn)所制備的多克隆抗體的特異性。該研究為進(jìn)一步研究Smr基因在熊蜂中的生物學(xué)功能奠定基礎(chǔ),也有利于研究該基因中串聯(lián)重復(fù)序列所導(dǎo)致的蛋白質(zhì)長度變化是否會(huì)影響該蛋白的生物學(xué)功能。
Ezfusion同源重組酶購自上海捷瑞生物工程有限公司,DNA回收試劑盒購自天根生化科技有限公司,質(zhì)粒提取試劑盒品牌為Axygen,感受態(tài)細(xì)胞類型為TOP10,親和層析柱料購自武漢匯研生物科技有限公司,酶標(biāo)二抗品牌為Jackson,TMB購自北京索萊寶科技有限公司。
通過基因合成的方式合成Smr基因的編碼區(qū),由多條引物序列合成,擴(kuò)增引物序列信息見表1(由武漢金開瑞生物科技有限公司合成)。
PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系為正反引物各1μl(10pmol),模板1μl(20~50ng),5μl 10* pfu buffer,pfu DNA聚合酶1μl(5U),補(bǔ)去離子水至50μl,PCR擴(kuò)增反應(yīng)條件見表2。
取Pet-b2m載體(該載體為武漢金開瑞生物科技有限公司改造)50ng,目的基因150ng,Ezfusion同源重組酶2μl,T4 DNA Ligase 1μl,補(bǔ)去離子水至20μl,在16℃條件下孵育1h進(jìn)行連接。
表1 引物序列信息
表2 基因擴(kuò)增PCR反應(yīng)條件
將載體與目的基因連接的產(chǎn)物加入到裝有TOP10感受態(tài)細(xì)胞的管中(50μl感受態(tài)細(xì)胞需要25ng DNA),輕輕旋轉(zhuǎn)幾次混勻內(nèi)容物,冰浴30min;將離心管混合物放入加溫至42℃的循環(huán)水中,熱激90s;快速將管轉(zhuǎn)移到冰浴中,使細(xì)胞冷卻1~2min;每管加入200μl SOC液體培養(yǎng)基,用水浴將培養(yǎng)基加溫至37℃,然后將管轉(zhuǎn)移到設(shè)置為37℃的搖床上,220rpm培養(yǎng)45min,使細(xì)胞復(fù)蘇并表達(dá)質(zhì)粒編碼的抗性標(biāo)記基因;將適當(dāng)體積(每個(gè)90mm平板達(dá)200μl)已轉(zhuǎn)化的感受態(tài)細(xì)胞轉(zhuǎn)移到含有相應(yīng)抗生素的LB培養(yǎng)基上;倒置平板,于37℃培養(yǎng),12~16h后可出現(xiàn)菌斑。
待平板上長出菌落,隨機(jī)挑取若干個(gè),進(jìn)行菌落PCR驗(yàn)證,檢測(cè)轉(zhuǎn)化。
陽性克隆由武漢金開瑞生物工程有限公司測(cè)序平臺(tái)測(cè)序驗(yàn)證。
挑選含重組質(zhì)粒的單菌落至3ml LB液體培養(yǎng)基(卡那抗性)中,37℃培養(yǎng)過夜后-20℃保種;分別挑選含重組質(zhì)粒的單菌落至3ml LB液體培養(yǎng)基(卡那抗性)中,37℃震蕩培養(yǎng)至OD600約0.6;取部分菌液作為對(duì)照組,余下菌液加入IPTG誘導(dǎo)劑(終濃度1mM),37℃震蕩培養(yǎng)3h;分別取兩組菌液0.15ml,12000×g離心2min,菌體沉淀以40μl 1×loading buffer重懸裂解,SDS-PAGE檢測(cè)。
取保存于-20℃的菌種100μl接種于100ml LB液體培養(yǎng)基(卡那抗性)中震蕩培養(yǎng)過夜;取100ml菌液接種于2000ml LB液體培養(yǎng)基中,37℃擴(kuò)大培養(yǎng)至OD600約0.6,降低培養(yǎng)溫度到30℃;加入IPTG誘導(dǎo)劑至終濃度0.5mM,30℃繼續(xù)震蕩培養(yǎng)8h;8000rpm離心3min收集菌體,重懸于50ml預(yù)冷NTA-0緩沖液中,冰浴30min;超聲破碎菌體,參數(shù)設(shè)置為功率200W、工作3s、暫停4s、時(shí)間25~30min;16000rpm 4℃離心50min,收集上清以及沉淀;取少量上清及沉淀進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè),剩余上清及沉淀置于4℃?zhèn)溆谩?/p>
沉淀以50ml NTA-0緩沖液重懸,加入DTT至終濃度1mM;超聲促進(jìn)雜蛋白溶解,參數(shù)設(shè)置為功率200W、工作3s、暫停3s、時(shí)間10min;10000rpm 4℃離心10min,去上清;重復(fù)以上三步至上清透明;沉淀以PBS重懸,超聲,參數(shù)設(shè)置為功率200W、工作3s、暫停3s、時(shí)間5min;16000rpm 4℃離心10min,去上清;以3ml 6M鹽酸胍重懸包涵體,加DTT至終濃度5mM;220rpm 37℃震蕩3h至包涵體全部溶解;10000rpm 4℃離心10min,取上清。取蛋白溶液進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)。
以2倍體積的3M鹽酸胍稀釋蛋白溶液,在4℃環(huán)境下以注射器逐滴加入到200ml復(fù)性液(pH 8.0)中,轉(zhuǎn)速調(diào)節(jié)至最大,攪拌24h;降低轉(zhuǎn)速,攪拌24h;取蛋白溶液于透析袋中,以PEG20000濃縮體積至50~100ml;4℃ TE緩沖液透析過夜;取蛋白溶液,以PEG20000濃縮體積至2~4ml;4℃ TE緩沖液透析過夜。
上清蛋白溶液用0.22μm過濾器過濾備用;準(zhǔn)備Ni-NTA柱;以1ml/min的流速上樣上清蛋白溶液;以NTA-0緩沖液(pH 8.0)洗柱至流出液不含蛋白(G250檢測(cè)液不變色);分別以20mM、60mM、200mM和500mM咪唑洗脫,分段收集洗脫液至G250檢測(cè)液不變色;以3倍柱體積去離子水洗滌柱料,以20%乙醇封柱;對(duì)收集的洗脫液進(jìn)行SDS-PAGE電泳檢測(cè)。
將純化的SMRTER蛋白混入弗氏佐劑免疫健康狀態(tài)良好的實(shí)驗(yàn)兔,免疫程序:一免,抗原+完全弗佐+PBS,皮下注射,400ug(抗原)/只,反應(yīng)時(shí)間2周;二免,抗原+完全弗佐+PBS,皮下注射,400ug(抗原)/只,反應(yīng)時(shí)間2周;三免,抗原+完全弗佐+PBS,皮下注射,400ug(抗原)/只,反應(yīng)時(shí)間2周(效價(jià)檢測(cè),見ELISA效價(jià)檢測(cè)操作記錄);四免,抗原+不完全弗佐+PBS,皮下,400ug(抗原)/只,反應(yīng)時(shí)間1周(效價(jià)檢測(cè),見ELISA效價(jià)檢測(cè)操作記錄)。共免疫2只日本大耳白兔子:兔子編號(hào)分別為G872、G873;G872、G873兔子免疫原都為SMRTER重組蛋白,免疫次數(shù)共4次。
純化:層析柱預(yù)處理,10倍柱床體積的去離子水沖洗3~5遍,流速1ml/min,10倍柱體積的0.02M PB+0.3M NaCl 沖洗3~5遍,流速1ml/min;樣品上樣,10ml抗血清/腹水,用0.02M PB稀釋后,0.22um濾器過濾后上柱,調(diào)整流速為5~7s/滴;洗雜,0.02M PB沖洗至檢測(cè)(G250不變藍(lán))無蛋白流出為止,流速2s/滴;抗體洗脫,0.1M PH=3.0甘氨酸以3~5s/滴過柱洗脫,收集洗脫物并用G250檢測(cè)洗脫產(chǎn)物至不變藍(lán)為止;PH值調(diào)節(jié),飽和碳酸鈉調(diào)節(jié)洗脫產(chǎn)物PH至中性;超濾濃縮,10kDa超濾管,超濾濃縮至1~3ml左右;透析,5L,0.01M PH=7.4 PBS透析過夜,第二天換液1次后再透析4~6h左右后跑SDS膠并測(cè)定抗體濃度后裝入標(biāo)記好EP管,可暫存于4℃?zhèn)溆没蛑苯颖4嬗?20℃;層析柱洗滌與貯存,去離子水沖洗層析柱,5倍柱床體積20%乙醇沖洗層析柱后,4℃封存。
間接ELISA法,通過對(duì)抗體的梯度稀釋,直觀反映了抗體的效價(jià)和靈敏度??乖唬河冒灰合♂尶乖?μg/ml,100μl/孔加入96孔酶標(biāo)反應(yīng)板中,4℃過夜包被;洗滌:次日棄掉孔內(nèi)的液體,洗滌液洗3次;封閉:加200μl/孔封閉液,37℃溫育2h;洗滌:用洗滌液洗 3 次;加待測(cè)樣品(一抗):加入抗血清(取血4℃ 4000rmp 離心10min取上清),用稀釋液將血清按1:2000、1:4000、1:8000、1:16000、1:32000、1:64000、1:128000......進(jìn)行倍比稀釋(空白血清同比稀釋做陰性對(duì)照),每孔100μl,37℃孵育1h;洗滌:用洗滌液洗3次;加酶標(biāo)抗抗體:加入HRP標(biāo)記IgG二抗,100μl/孔,37℃孵育40min(羊抗小鼠-HRP 1:10000~1:5000,羊抗兔-HRP 1:10000~1:5000)。洗滌:用洗滌液洗5次后拍干;顯色:加新鮮配制的底物溶液100μl/孔,37℃遮光放置5~20min;終止反應(yīng)、比色:加50μl/孔終止液,顏色變黃;用酶標(biāo)儀測(cè)定450nm處各孔的吸光值。
將Smr基因的編碼序列插入表達(dá)載體、轉(zhuǎn)化細(xì)菌后,挑選具有抗生素抗性的陽性菌株進(jìn)行質(zhì)粒提取,并對(duì)質(zhì)粒上目的基因插入?yún)^(qū)域進(jìn)行了測(cè)序。測(cè)序結(jié)果表明:目的基因已經(jīng)正確地插入到表達(dá)載體之中。測(cè)序結(jié)果如下:
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圖1 目的基因小量表達(dá)后的SDS-PAGE電泳檢測(cè)
我們使用IPTG進(jìn)行誘導(dǎo),對(duì)Smr基因進(jìn)行小量表達(dá)實(shí)驗(yàn),以查看目的基因是否能夠成功表達(dá)。結(jié)果顯示:與沒有加IPTG誘導(dǎo)劑的全細(xì)菌蛋白相比,加誘導(dǎo)劑的全菌蛋白經(jīng)SDS-PAGE檢測(cè)后,在目的大?。?2kDa)處出現(xiàn)明顯的目的蛋白條帶(圖1)。因此,我們所構(gòu)建的表達(dá)載體能夠使Smr基因成功表達(dá)。
對(duì)大腸桿菌進(jìn)行大量培養(yǎng)并加入IPTG誘導(dǎo)劑誘導(dǎo)表達(dá)。超聲破碎菌體并離心后,分別取少量上清及沉淀進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)。結(jié)果顯示,該基因大量表達(dá)后,產(chǎn)生的目的蛋白(即SMRTER)主要以包涵體的形式存在(圖2)。
圖2 目的基因大量表達(dá)后的SDS-PAGE電泳圖
我們對(duì)包涵體蛋白進(jìn)行了復(fù)性,并使用Ni-NTA柱對(duì)復(fù)性的蛋白進(jìn)行了純化。取少量純化后的蛋白洗脫液進(jìn)行SDS-PAGE電泳檢測(cè),結(jié)果顯示:通過對(duì)包涵體進(jìn)行復(fù)性、純化,我們得到了高質(zhì)量的目的蛋白(圖3)。
通過4次免疫家兔,我們獲得了SMRTER蛋白的多克隆抗體;我們對(duì)抗體進(jìn)行了收集與純化,并使用如下兩種方法對(duì)獲得的多克隆抗體進(jìn)行檢測(cè):
圖3 目的蛋白復(fù)性純化后的SDS-PAGE電泳檢測(cè)
檢測(cè)方法1:間接ELISA法。通過對(duì)抗體進(jìn)行梯度稀釋,直觀反映了抗體的效價(jià)和靈敏度。當(dāng)稀釋比例為9.8ng/ml,酶標(biāo)儀測(cè)定450nm處的吸光值檢測(cè)為0.1915,結(jié)果符合預(yù)期(圖4)。
圖4 SMRTER蛋白的多克隆抗體的效價(jià)檢測(cè)結(jié)果
檢測(cè)方法2:Western blotting(WB)雜交印記法。重組抗原的WB檢測(cè)中,在約62kDa處有特異性識(shí)別,條帶相對(duì)單一,這表明我們得到了特異性的抗體(圖5)。
本研究利用基因合成技術(shù)獲得熊蜂Smr基因的編碼序列,并將其克隆進(jìn)細(xì)菌表達(dá)載體;在0.5mmol/l IPTG誘導(dǎo)下表達(dá)了SMRTER重組蛋白,并對(duì)表達(dá)出的蛋白進(jìn)行了純化;成功制備了兔抗SMRTER多克隆抗體,并且制備的SMRTER多克隆抗體具有很好的效價(jià)和特異性。
圖5 SMRTER蛋白的多克隆抗體的WB雜交檢測(cè)結(jié)果
本研究所制備的SMRTER多克隆抗體為研究Smr基因在熊蜂中的生物學(xué)功能奠定了基礎(chǔ)。另外,由于該基因中串聯(lián)重復(fù)序列的變異導(dǎo)致熊蜂種間該基因所編碼蛋白質(zhì)序列的長度發(fā)生變異,因而本研究所制備的抗體也有利于研究串聯(lián)重復(fù)序列所產(chǎn)生的突變對(duì)蛋白質(zhì)功能的影響。