孫振彬,趙廷寶
1. 菏澤市牡丹人民醫(yī)院骨科,菏澤 274000
2.山東省腫瘤醫(yī)院骨科,濟(jì)南 250117
1969 年,Olney[1]提出谷氨酸可使幼鼠視網(wǎng)膜和下丘腦神經(jīng)元變性,并認(rèn)為谷氨酸具有神經(jīng)興奮性毒性。中樞神經(jīng)系統(tǒng)中谷氨酸水平增高不但可導(dǎo)致神經(jīng)細(xì)胞死亡,同時也可介導(dǎo)神經(jīng)細(xì)胞凋亡[2-3]。促神經(jīng)再生因子復(fù)合劑N6 是趙廷寶教授結(jié)合實(shí)驗(yàn)研究和臨床工作經(jīng)驗(yàn)研發(fā)的一種促神經(jīng)再生的藥物復(fù)合制劑,主要包括神經(jīng)節(jié)苷脂(單唾液酸四己糖神經(jīng)節(jié)苷脂鈉)、甲潑尼龍(甲潑尼龍琥珀酸鈉)和神經(jīng)營養(yǎng)因子等[4]。動物實(shí)驗(yàn)證明促神經(jīng)再生因子復(fù)合劑N6 對脊髓損傷后神經(jīng)細(xì)胞的凋亡具有明顯的抑制作用[5-6],但其能否在谷氨酸誘導(dǎo)的脊髓神經(jīng)元損傷中發(fā)揮保護(hù)作用目前尚不清楚。本研究采用體外純化培養(yǎng)的大鼠脊髓神經(jīng)元建立谷氨酸損傷模型,觀察促神經(jīng)再生因子復(fù)合劑N6 對谷氨酸所致神經(jīng)元凋亡的作用。
妊娠13 d 的Wistar 大鼠,由軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院動物實(shí)驗(yàn)中心提供(動物生產(chǎn)許可證號:SCXK-軍2007-004);促神經(jīng)再生因子復(fù)合劑N6 由山東省腫瘤醫(yī)院骨科趙廷寶教授提供;Neurobasal 培養(yǎng)基、高糖DMEM 培養(yǎng)基、胰蛋白酶、胎牛血清、馬血清、N2、B27 購自美國Gibco 公司;多聚賴氨酸、谷氨酰胺、谷氨酸、Hoechst33342 購自美國Sigma 公司;特異性兔抗大鼠MAP-2 購自德國Milipore 公司;FITC 標(biāo)記山羊抗兔IgG 購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;TUNEL 試劑盒購自美國Promega 公司;CCK-8 試劑盒購自日本Dojindo 公司。CO2培養(yǎng)箱為日本SANYO 公司產(chǎn)品;Olympus BX50 熒光倒置顯微鏡為日本Olympus公司產(chǎn)品。
1.2.1 細(xì)胞分離及培養(yǎng)
參照文獻(xiàn)[7]的操作方法,斷頸處死孕鼠,用75%乙醇消毒腹部皮膚,剖腹取出胎鼠。將胎鼠置于超凈臺中,在解剖鏡下快速取出脊髓,除去硬膜,置于解剖液中(葡萄糖3.0 g/L,蔗糖7.5 g/L,HEPES 2.35 g/L,NaCl 8.0 g/L,KCl 0.4 g/L,Na2HPO40.095 g,KH2PO40.03 g/L,pH 調(diào)至7.25,過濾后4℃儲存)。將脊髓剪成約1 mm3的小塊,加適量0.125%胰蛋白酶,置于培養(yǎng)箱中,37℃消化25 min,加入含血清的接種液(79% DMEM,10%馬血清,10%胎牛血清,1%谷氨酰胺)終止消化,洗滌2 次。再次加入接種液,用Pasteur吸管輕輕吹打4 ~ 6次,靜置片刻,取細(xì)胞懸液,重復(fù)上述步驟3次?;旌霞?xì)胞懸液,計數(shù),調(diào)整細(xì)胞密度為5×105/mL,一部分以每皿接種2 mL接種于涂有多聚賴氨酸的35 mm培養(yǎng)皿中,一部分以每孔100 μL接種于涂有多聚賴氨酸的96 孔板中,置37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),6 h后全換液為無血清培養(yǎng)基(96% Neurobasal,1% N2,2% B27,1%谷氨酰胺),以后每3 d半量換液1次。
1.2.2 神經(jīng)元細(xì)胞的鑒定
細(xì)胞培養(yǎng)至第5 天時進(jìn)行鑒定。神經(jīng)元細(xì)胞具有標(biāo)志性的微管相關(guān)蛋白2(MAP-2),培養(yǎng)的神經(jīng)元細(xì)胞可通過兔抗鼠MAP-2 多克隆抗體間接免疫熒光染色鑒定。染色方法:分別加入一抗(兔抗鼠MAP-2 抗體)和二抗(FITC 標(biāo)記的山羊抗兔IgG)孵育神經(jīng)元細(xì)胞,用Hoechst33342復(fù)染細(xì)胞核。陰性對照用PBS代替一抗。熒光顯微鏡下觀察并拍照,隨機(jī)選取5個視野,計數(shù)陽性細(xì)胞占所有細(xì)胞的比例。
將脊髓神經(jīng)元分為3 組:對照組、谷氨酸損傷組和谷氨酸損傷+N6 處理組。谷氨酸損傷模型的建立參照文獻(xiàn)[8],細(xì)胞培養(yǎng)至第5 天時取出培養(yǎng)皿,吸出培養(yǎng)基并保留,加入50 μmol/L 的谷氨酸溶液(將谷氨酸溶解于1×PBS 中配制成谷氨酸母液,濃度為10 mmol/L,過濾后使用。用時取適量母液加入DMEM 培養(yǎng)基中,終濃度為50 μmol/L,DMEM 提前4 h 置于培養(yǎng)箱中孵育,以平衡溫度及pH 值,避免其對細(xì)胞的影響),在37℃下作用10 min;吸去谷氨酸溶液,用DMEM 洗滌1 次,加入原來的培養(yǎng)基,置于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。對照組以DMEM 代替谷氨酸溶液,其他同谷氨酸組。谷氨酸損傷+N6 處理組于谷氨酸暴露2 h 前在培養(yǎng)基中加入N6,終濃度為10 μL/mL,谷氨酸暴露后繼續(xù)用原來含有N6 的培養(yǎng)基培養(yǎng),18 h 后進(jìn)行各項(xiàng)指標(biāo)的檢測。每組設(shè)4個平行皿,結(jié)果取平均值。
細(xì)胞處理完成后取出培養(yǎng)皿,棄去培養(yǎng)基,加入4%多聚甲醛(溶解于1×PBS 中,pH 7.4),4℃放置25 min,用PBS 浸洗2 次、每次5 min;加入0.2% TritonX-100 室溫通透5 min,用PBS 浸洗2 次、每次5 min;加入適量平衡液,室溫放置10 min,棄去平衡液;加入適量rTdT酶緩沖液(平衡緩沖液45 μL+核苷混合物5 μL + rTdT 酶1 μL),37℃避光孵育60 min,2×SSC 緩沖液浸泡15 min,PBS 浸洗3 次、每次5 min;最后用Hoechst 復(fù)染細(xì)胞核,Moviol 封片劑封片。陰性對照用PBS代替rTdT酶,其他相同。在熒光顯微鏡下觀察并拍照,隨機(jī)取10 個高倍視野,由未參與實(shí)驗(yàn)并熟悉本實(shí)驗(yàn)原理的人員進(jìn)行計數(shù)和統(tǒng)計。
于谷氨酸暴露18 h 后,取出96 孔板,各實(shí)驗(yàn)孔內(nèi)均換成新鮮的無血清培養(yǎng)基,每組設(shè)4個平行孔,并設(shè)4個未種植細(xì)胞的孔作為本底,每孔加入10 μL CCK-8 溶液,將96 孔板放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)2 h,用酶標(biāo)儀測定450 nm處的光密度值,用各組光密度值減去相應(yīng)的本底作為細(xì)胞活力結(jié)果。
采用SPSS 16.0 軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,計量資料以表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t 檢驗(yàn);以P < 0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
相差顯微鏡下觀察可見,細(xì)胞接種15 ~ 30 min開始貼壁,4 h 時活細(xì)胞幾乎全部貼壁,細(xì)胞呈圓形或橢圓形,可見到明顯的光暈,部分細(xì)胞開始有突起生長(圖1a);48 h 時,細(xì)胞胞體明顯增大,突起數(shù)增多、伸長(圖1b);第4 天時,神經(jīng)元突起明顯增多并交織成網(wǎng),細(xì)胞以雙極、三極多見,偶見單極型,光暈更加明顯,有明顯的立體感,高倍視野下可見細(xì)胞胞核(圖1c);第5 天時,采用MAP-2 免疫熒光標(biāo)記神經(jīng)元,結(jié)果95%的細(xì)胞呈陽性,證明神經(jīng)元的純度較高,實(shí)驗(yàn)結(jié)果穩(wěn)定可靠(圖1d、e)。
圖1 原代純化培養(yǎng)脊髓神經(jīng)元的生長情況及純度鑒定Fig. 1 Growth and purity identification of primary purified cultured spinal cord neurons
對照組神經(jīng)元細(xì)胞形態(tài)無明顯變化(圖2a)。谷氨酸損傷組大部分神經(jīng)元細(xì)胞胞體變圓、腫脹、失去原有形態(tài),部分細(xì)胞崩解,突起淡化、減少、甚至消失,細(xì)胞內(nèi)出現(xiàn)顆粒樣改變,胞核固縮并偏離于細(xì)胞邊緣(圖2b)。谷氨酸損傷+N6 處理組發(fā)生上述改變的細(xì)胞明顯減少(圖2c)。
TUNEL 檢測結(jié)果顯示,對照組凋亡細(xì)胞較少見(圖3a),凋亡細(xì)胞比例為(6.80±2.70)%;谷氨酸損傷組凋亡細(xì)胞明顯增多(圖3b),凋亡細(xì)胞比例為(44.20±5.39)%,與對照組相比差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P < 0.05);谷氨酸損傷+N6 處理組凋亡細(xì)胞較谷氨酸損傷組明顯減少(圖3c),凋亡細(xì)胞比例為(22.30±2.90)%,與谷氨酸損傷組相比差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P < 0.05)。
CCK-8 檢測結(jié)果顯示,谷氨酸損傷組細(xì)胞活力(光密度值 0.29±0.07)明顯低于對照組(光密度值0.61±0.01),差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P < 0.05);谷氨酸損傷+N6 處理組細(xì)胞活力(光密度值0.47±0.04)較谷氨酸損傷組明顯增高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P < 0.05)。
圖2 各組神經(jīng)元細(xì)胞形態(tài)的變化Fig. 2 Morphological changes of neurons in each group
圖3 TUNEL 法標(biāo)記凋亡細(xì)胞(凋亡細(xì)胞呈綠色熒光)Fig. 3 TUNEL method indicated apoptotic cells(apoptotic cells show green fluorescence)
生理水平的谷氨酸是中樞神經(jīng)系統(tǒng)重要的興奮性神經(jīng)遞質(zhì),它主要存在于神經(jīng)末梢谷氨酸囊泡中,在細(xì)胞去極化時釋放到突觸間隙,作用于突觸后膜的谷氨酸受體,完成興奮性的傳遞及其他生理作用。病理狀態(tài)下,過量的谷氨酸在腦和脊髓缺血缺氧性損傷、阿爾茨海默病、亨廷頓病、脊髓側(cè)索硬化癥等多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病中表現(xiàn)出神經(jīng)毒性作用[9-10]。谷氨酸離子型NMDA受體在興奮性損傷過程中起重要作用,NMDA受體在腦和脊髓組織中均廣泛存在[11-12],病理情況下突觸間隙谷氨酸大量增加,過度激活NMDA 受體,Ca2+大量內(nèi)流并在細(xì)胞內(nèi)蓄積,激活蛋白酶、磷脂酶及一氧化氮合酶等,通過這些酶的直接作用或其毒性產(chǎn)物(自由基、一氧化氮等)導(dǎo)致線粒體損傷、神經(jīng)纖維蛋白分解、膜磷脂破壞,最終引起細(xì)胞死亡或凋亡[2]。谷氨酸還可通過AMPA受體亞基GluR2引起脊髓神經(jīng)元細(xì)胞的凋亡[3]。本研究應(yīng)用體外純化培養(yǎng)的脊髓神經(jīng)元細(xì)胞發(fā)現(xiàn),在培養(yǎng)過程中加入外源性谷氨酸,不僅可引起脊髓神經(jīng)元細(xì)胞的腫脹、代謝障礙,還可誘導(dǎo)細(xì)胞的遲發(fā)性凋亡,與既往報道[2,13]結(jié)果一致。
有研究證明,促神經(jīng)再生因子復(fù)合劑N6對脊髓損傷后神經(jīng)細(xì)胞的凋亡具有明顯的抑制作用[5-6],并能夠明顯降低脊髓損傷后脂質(zhì)過氧化物的表達(dá)[14-15]。此外,促神經(jīng)再生因子復(fù)合劑N6 還能增加損傷脊髓GRP78 的表達(dá),減少CHOP 的表達(dá),降低內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激水平,從而保護(hù)受損脊髓[16]。動物實(shí)驗(yàn)已證明促神經(jīng)再生因子復(fù)合劑N6 具有生物安全性,初步顯示了臨床應(yīng)用的可能[17]。
本研究采用TUNEL法檢測了脊髓神經(jīng)元細(xì)胞凋亡情況,并采用CCK-8法檢測細(xì)胞活力的變化,發(fā)現(xiàn)谷氨酸可介導(dǎo)體外培養(yǎng)的脊髓神經(jīng)元細(xì)胞凋亡,而促神經(jīng)再生因子復(fù)合劑N6具有抑制谷氨酸介導(dǎo)的神經(jīng)元凋亡的作用。本研究進(jìn)一步為促神經(jīng)再生因子復(fù)合劑N6用于治療脊髓損傷提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù)。急性脊髓損傷后血清蛋白質(zhì)組學(xué)研究發(fā)現(xiàn)多種蛋白組織發(fā)生了變化[18],N6 在體內(nèi)作用時影響了哪些蛋白質(zhì)的表達(dá)、具體機(jī)制如何,仍有待進(jìn)一步研究。
致謝:本實(shí)驗(yàn)得到了軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院三所一室劉少君教授的大力支持,在此表示感謝!
(注:本文所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)、圖片及結(jié)果分析均來自于作者的碩士畢業(yè)論文[19]。)