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楊樹PtBBE9a基因異源過表達功能分析

2020-02-22 07:42施天元程玉祥
江蘇農(nóng)業(yè)科學 2020年23期
關鍵詞:楊樹

施天元 程玉祥

摘要:小檗堿橋酶(berberine bridge enzyme,簡稱BBE)是一類典型的黃素雙共價氧化酶家族,參與植物生長發(fā)育的多個生物過程。PtBBE9a是筆者所在課題組前期從楊樹發(fā)育木質(zhì)部分離、鑒定的糖蛋白。PtBBE9a基因表達在楊樹木質(zhì)部呈現(xiàn)高豐度水平,并且隨著莖木質(zhì)化程度的增強而升高。組織β-葡萄糖苷酸酶(GUS)活性染色結果顯示,PtBBE9a啟動子活性集中在ProPtBBE9a::GUS轉基因擬南芥幼苗的頂端分生組織、成熟果莢皮及根組織。通過構建PtBBE9a-GFP過表達載體發(fā)現(xiàn),PtBBE9a過表達擬南芥比野生型擬南芥早開花。進一步研究發(fā)現(xiàn),轉基因擬南芥的葉片數(shù)少于野生型擬南芥,而其莖木質(zhì)素含量高于野生型擬南芥。推測PtBBE9a可能通過調(diào)控擬南芥生長發(fā)育周期而產(chǎn)生早花表型。

關鍵詞:楊樹;PtBBE9a基因;異源過表達;啟動子;轉基因擬南芥;BBE

中圖分類號: S718.43 ?文獻標志碼: A ?文章編號:1002-1302(2020)23-0066-05

小檗堿橋酶(berberine bridge enzyme,簡稱BBE)是一類典型的黃素雙共價氧化酶家族[1]。BBE家族的所有成員均有黃素腺嘌呤二核苷酸(FAD)結構域和底物結合域(a/b結合域)[2]。BBE最先被報道參與生物堿合成[3-4],隨后人們發(fā)現(xiàn)了BBE的不同功能,如參與免疫反應與脅迫響應[5-6]、受激素調(diào)控[7-9]、參與雌雄配子體發(fā)育和花粉管伸長等[10-12]。Daniel等研究發(fā)現(xiàn),擬南芥中的BBE蛋白具有木質(zhì)素氧化酶特性,可氧化松柏醇、β-糖苷松柏醇等木質(zhì)素單體,參與木質(zhì)素生物合成[13]。

楊樹BBE家族有69個成員,分為A~F 6個亞型[14]。筆者在前期研究并鑒定楊樹發(fā)育過程中的木質(zhì)部糖蛋白組時,識別到11個PtBBEs(未發(fā)表),PtBBE9a是其中之一。經(jīng)過序列比對發(fā)現(xiàn),PtBBE9a與擬南芥單木質(zhì)素氧化酶AtBBE-like 13是對應基因。本研究通過分析PtBBE9a在組織內(nèi)的表達水平和其啟動子活性,旨在著重解析PtBBE9a在模式植物擬南芥中的異源過表達功能。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

在2018年10月取生長于東北林業(yè)大學林木遺傳育種國家重點實驗室溫室內(nèi)的毛果楊(Populus trichocarpa)幼樹(6月齡)的各個組織和莖節(jié),用于轉錄水平的基因表達分析。將溫室栽培45 d的苗期、開花盛期的擬南芥用于農(nóng)桿菌浸花法遺傳轉化。

1.2 主要試劑

pBIOZOL Plant Total RNA Extraction Reagent(Bioflux);cDNA反轉錄試劑盒[PrimeScript RT reagent Kitt with gDNA eraser(購自Takara公司)];pENTR/SD/D-TOPO、Gateway LR酶(購自Invitrogen公司);膠回收試劑盒[Silica Bead DNA Gel Extrction Kit(購自Thermo Scientific公司)];KOD-Plus高保真酶(購自Toyobo公司);X-Gluc、乙酰溴(購自Sigma公司)。GUS染液配方:1 mg/mL X-Gluc,10 mmol/L EDTA(乙二胺四乙酸),100 mmol/L Na3PO4(磷酸鈉),2 mmol/L K3Fe(CN)6(鐵氰化鉀),2 mmol/L K4Fe(CN)6(亞鐵氰化鉀),0.1% Triton X-100(聚乙二醇辛基苯基醚)。

1.3 試驗方法

1.3.1 植物RNA的提取和cDNA的合成 在液氮條件下把毛果楊各個組織、莖節(jié)及擬南芥葉片材料研磨成粉末,加入pBIOZOL植物RNA提取試劑,提取具體操作參照pBIOZOL Plant Total RNA Kit說明書。cDNA的合成參照PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser操作說明書進行。

1.3.2 PCR擴增 20 μL RT-PCR反應體系:13.5 μL 去離子無菌水,2.0 μL dNTP,2.0 μL 10×Buffer,0.5 μL Taq DNA聚合酶,各0.5 μL引物,1.0 μL cDNA模板。RT-PCR反應程序:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,55~60 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,24~35個循環(huán);72 ℃ 7 min。擴增產(chǎn)物經(jīng)2%瓊脂糖電泳檢測。50 μL全長基因和啟動子擴增體系:32.0 μL去離子無菌水,5.0 μL dNTP Mix(2 mmol/L),5.0 μL 10×PCR buffer,2.0 μL MgSO4(25 mmol/L),1.0 μL KOD-plus,各1.5 μL引物,2.0 μL模板。擴增產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖電泳檢測。

1.3.3 ProPtBBE9a::GUS 和35S::PtBBE植物表達載體的構建 用PtBBE9a-Pro-up/down引物擴增PtBBE9a基因啟動子片段;回收后連接至pENTR/SD/D-TOPO載體上,再用該載體轉化TOP10;挑選出陽性菌落,提取質(zhì)粒,經(jīng)LR交換連接到pGWB3上,將后者轉化入GV3101農(nóng)桿菌中。用PtBBE9a-up/down引物擴增PtBBE9a基因片段,再將其連接至pENTR/SD/D-TOPO載體上,提取陽性菌落質(zhì)粒,經(jīng)LR交換構建到pGWB5植物過表達載體上。

1.3.4 擬南芥遺傳轉化及轉基因植株的分子鑒定 擬南芥遺傳轉化采用農(nóng)桿菌浸花法[15]。轉基因擬南芥的分子鑒定包括2個方面:用RT-PCR檢測轉入PtBBE9a基因的轉錄水平;用Western Blot檢測轉入PtBBE9a基因的蛋白質(zhì)水平,一抗為anti-GFP抗體,具體操作方法參考Liu等的報道[16]。

1.3.5 GUS染色檢測 將ProPtBBE9a::GUS各組織材料放入離心管中,加入GUS染液使其沒過植物材料,放入真空干燥器里抽氣,重復數(shù)次至植物材料沉至管底。取出植物材料后于37 ℃過夜反應,再分別用100%、90%、70%乙醇逐級脫去葉綠素。

1.3.6 擬南芥開花時間及葉片數(shù)統(tǒng)計 當擬南芥莖抽出1 cm時,統(tǒng)計時間和蓮座葉數(shù)量。每個轉基因株系統(tǒng)計15個植株,重復3次,并進行數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析。

1.3.7 木質(zhì)素含量的測定 稱取1 mg擬南芥莖組織粉末,木質(zhì)素含量的測定參照Foster等的改良測定方法[17]。

1.3.8 數(shù)據(jù)分析 采用IBM SPSS 19.0軟件進行數(shù)據(jù)分析。對開花時間、開花時葉片數(shù)和莖組織木質(zhì)素含量等數(shù)據(jù)使用單因素方差分析(ANOVA)。

1.3.9 引物序列 本研究所用引物及其序列見表1。

2 結果與分析

2.1 PtBBE9a基因的表達分析

提取毛果楊木質(zhì)部、形成層、韌皮部、頂芽、幼葉、老葉、葉柄和第1~6、9、12莖節(jié)總RNA后,反轉錄合成cDNA。用PtActin2內(nèi)標基因對各組織內(nèi)的cDNA進行定量,RT-PCR分析結果顯示,PtBBE9a能在木質(zhì)部特異性表達且轉錄水平較高,在形成層和老葉中也有少量轉錄(圖1-a)。第1、2莖節(jié)中PtBBE9a的轉錄水平極低,第3、4、5、6、9莖節(jié)中的轉錄水平逐漸增加,第12莖節(jié)中的轉錄水平極高(圖1-b)。這表明隨著毛果楊莖逐步木質(zhì)化,PtBBE9a的轉錄水平逐漸升高。

2.2 ProPtBBE9a::GUS植物表達載體的構建

為了鑒定PtBBE9a基因啟動子的活性,構建其驅動表達GUS報告基因的pGWB3植物表達載體。經(jīng)PCR擴增,得到3 287bp的PtBBE9a啟動子片段(圖2-a),將其連接到pENTR/SD/D-TOPO載體上(圖2-b),通過LR交換反應,將PtBBE9a啟動子片段同源重組到pGWB3載體上,得到ProPtBBE9a::GUS融合質(zhì)粒(圖2-c),將其轉化GV3101農(nóng)桿菌,用于擬南芥的遺傳轉化。

2.3 ProPtBBE9a::GUS轉基因擬南芥組織GUS活性染色

通過對擬南芥進行轉化,獲得12個ProPtBBE9a∷GUS轉基因株系。苗齡為5、10 d的幼苗染色結果顯示,GUS活性出現(xiàn)在頂端分生組織(圖3-a~圖3-c)。在開花的ProPtBBE9a∷GUS轉基因植株中,在果莢基部、成熟果莢皮上均檢測到GUS染色(圖3-d~圖3-e)。另外,在成熟的植株根部也檢測到GUS染色(圖3-f)。這些結果提示,ProPtBBE9a啟動子活性集中在擬南芥幼苗的頂端分生區(qū)和維管系統(tǒng)較發(fā)達的根組織。

2.4 PtBBE9a過表達載體的構建及其在擬南芥中的異源過表達

為了鑒定PtBBE9a的功能,筆者構建了pGWB5-PtBBE9a植物過表達載體。以毛果楊木質(zhì)部組織cDNA為模板,擴增出了PtBBE9a基因的全長片段(圖4-a),將該基因片段連接到pENTR/SD/D-TOPO載體上(圖4-b),采用LR交換反應得到 35S∷PtBBE9a-GFP 融合質(zhì)粒(圖4-c),再用該質(zhì)粒轉化GV3101農(nóng)桿菌,用于擬南芥過表達轉化。

采用農(nóng)桿菌浸花法將35S∷PtBBE9a-GFP轉化入擬南芥中,獲得12個獨立的轉基因株系(編號為1#~12#)。提取野生型和12個轉基因擬南芥株系的總RNA并合成cDNA,用RT-PCR檢測各株系PtBBE9a-GFP的轉錄水平(圖5-a)。與內(nèi)參基因AtActin2相比,2#、5#、10#、12#株系中PtBBE9a的轉錄水平極高,表明這4個株系達到了PtBBE9a的過表達水平。隨后,通過Western檢測分析轉基因株系的PtBBE9a-GFP蛋白質(zhì)水平(圖5-b)。以Actin蛋白量為參照的分析結果顯示,2#、5#、10#、12# 株系中的PtBBE9a-GFP蛋白質(zhì)含量非常高,表明這4個株系的PtBBE9a蛋白質(zhì)量達到了過表達水平。

2.5 過表達PtBBE9a擬南芥早開花

筆者選取PtBBE9a過表達量最高的3個轉基因株系(2#、5#、12#)的鑒定表型,發(fā)現(xiàn)3個過表達株系擬南芥均比野生型擬南芥呈現(xiàn)出早開花表型(圖6-a),野生型擬南芥生長至抽薹的平均時間為23.87 d,3個過表達株系生長至抽薹的平均時間分別是21.53、21.00、19.07 d。進一步觀察過表達株系發(fā)育狀態(tài)發(fā)現(xiàn),抽薹時野生型擬南芥蓮座葉數(shù)量平均為12.87張,3個過表達株系的蓮座葉數(shù)量分別為11.40、10.93、9.73張(圖6-b),表明PtBBE9a過表達導致擬南芥植株的生長發(fā)育周期縮短。為了探究PtBBE9a過表達帶來的早開花功能,筆者測定了3個轉基因株系的莖部木質(zhì)素含量,結果顯示,轉基因植株莖部木質(zhì)素含量均高于野生型植株(圖6-c)。

3 討論

早期被報道的BBE家族功能是參與生物堿合成,最新的研究發(fā)現(xiàn),BBE有木質(zhì)素單體氧化酶活性[13]。PtBBE9a是筆者在前期研究中從楊樹木質(zhì)部糖蛋白組中分離出來的(數(shù)據(jù)未發(fā)表)。本研究發(fā)現(xiàn),PtBBE9a在毛果楊木質(zhì)部呈現(xiàn)出特異性轉錄水平,在ProPtBBE9a∷GUS轉基因擬南芥中,PtBBE9a啟動子的活性主要體現(xiàn)在頂端分生組織和成熟根部,這些組織是植物次生維管系統(tǒng)較發(fā)達的組織,暗示PtBBE9a很可能與細胞壁的木質(zhì)素代謝相關。

過表達PtBBE9a擬南芥出現(xiàn)早花表型,該發(fā)現(xiàn)在植物BBE功能研究中尚未報道。研究還發(fā)現(xiàn),轉基因PtBBE9a擬南芥的連座葉數(shù)量變少,表明轉基因縮短了擬南芥的生長周期,使其比野生型早開花。另外,過表達PtBBE9a的擬南芥莖部木質(zhì)素含量明顯高于野生型。木質(zhì)素水平升高很可能會加速植物維管組織系統(tǒng)成熟,可能增強了葉片成花素(FT)的運輸。過表達糖苷轉移酶基因的煙草會早花,木質(zhì)素含量會升高[18],而過表達細胞壁擴張蛋白也會導致植物早花[19]。推測植物維管系統(tǒng)細胞壁狀態(tài)可能與早開花密切相關,而木質(zhì)素是次生細胞壁的關鍵成分,它影響次生維管系統(tǒng)的發(fā)育成熟。今后,筆者將利用過表達PtBBE9a擬南芥早花材料進行深入探究。

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