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菌株和培養(yǎng)基質對蟲草菌質主要營養(yǎng)成分和活性成分的影響

2020-02-21 05:18楊宗渠李長看雷志華曲金柱李坤陶孔慶寒羅青
食品研究與開發(fā) 2020年2期
關鍵詞:冬蟲夏草菌絲體蟲草

楊宗渠,李長看,雷志華,曲金柱,李坤陶,孔慶寒,羅青

(1.鄭州師范學院生命科學學院,河南鄭州450044;2.河南省涉鳥故障工程技術研究中心,河南鄭州450044;3.鄭州師范學院生物物種資源研究中心,河南鄭州450044)

冬蟲夏草是我國特有的名貴中藥資源,是由冬蟲夏草菌(Cordyceps sinensis)侵染鱗翅目蝙蝠蛾幼蟲后發(fā)育而成的由子座和菌核組成的菌體,具有補肺益腎、止血、化痰等功效。冬蟲夏草含有腺苷、蟲草素、蟲草多糖、蟲草酸、甾醇類物質,及多種氨基酸、維生素和礦物質元素[1]?,F代醫(yī)學研究表明,冬蟲夏草有抗腫瘤、抗菌、抗氧化、抗衰老、降血壓、調節(jié)內分泌、提高免疫力、鎮(zhèn)靜、抗心肌缺血以及調節(jié)心率等功效[2]。冬蟲夏草的生長對寄主和環(huán)境條件的要求非常嚴苛,主要生長在高海拔雪域地區(qū),產量很低。市場對冬蟲夏草的需求量日益增加,價格飆升,造成對冬蟲夏草的肆意采挖,使這一珍貴的野生物種資源瀕臨滅絕。在冬蟲夏草人工培育技術尚未成熟的情況下,通過發(fā)酵法生產冬蟲夏草菌絲體,以菌絲體活性成分替代天然冬蟲夏草的藥用價值受到人們的關注[3]。王尊生等[4]分析了冬蟲夏草菌絲體固體發(fā)酵粉的化學成份,指出蟲草發(fā)酵粉中3′-脫氧腺苷,甘露醇的含量明顯高于冬蟲夏草,其它化學成份和冬蟲夏草相應成份基本一致。陳建國等[5]對冬蟲夏草菌絲體進行了安全性毒理學評價,證實冬蟲夏草菌絲體屬無毒級。韋會平等[6]用蛹蟲草為發(fā)酵菌株、大米為基質生產蟲草素,經過約13 d的培養(yǎng),培養(yǎng)基中蟲草素達到0.60%,比傳統(tǒng)液體發(fā)酵方法的最高產量高出近2 倍。吳彩琴等[7]以豆粕和米糠為培養(yǎng)基質,采用固體發(fā)酵生產冬蟲夏草多糖,在適宜的工藝條件下,菌質中多糖含量達到16.991 mg/g。由于試驗菌株和發(fā)酵基質的不同,文獻報道的固體發(fā)酵工藝條件和活性成分產率差別較大。本文以小麥為發(fā)酵基質,通過固體發(fā)酵培養(yǎng)蟲草菌絲體,分析菌質中活性成分和主要營養(yǎng)成分的含量,從而找出活性成分含量高的蟲草菌株和固體培養(yǎng)基質,為蟲草固體發(fā)酵提供依據。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 試驗菌株

試驗的蟲草菌株分別由廣東省微生物研究所和河南農業(yè)大學提供,編號分別為ZNB2.1 和ZNB2.2。

1.1.2 試劑

葡萄糖:天津市天力化學試劑有限公司;苯酚:天津市北聯(lián)精細化學品開發(fā)有限公司;濃硫酸:廣州萬從化工有限公司;氯化鈣:無錫市亞泰聯(lián)合化工有限公司;碘:天津市津北精細化工有限公司;二甲基亞砜(分析純):天津市申泰化學試劑有限公司。

1.1.3 儀器與設備

LDZX-50FB 型高壓蒸汽滅菌鍋:上海申安醫(yī)療器械廠;DH-420 型電熱恒溫培養(yǎng)箱:北京科偉永興儀器有限公司;TU-1901 紫外可見分光光度計:北京普析通用儀器有限責任公司;Resesrch plus 移液器:德國Eppendorf 公司。

1.2 方法

1.2.1 培養(yǎng)基質的制備

用清水將麥粒清洗2 遍,浸泡12 h 后撈出,放入鍋中加熱直至鍋內水沸騰,煮沸20 min,待麥粒充分吸水膨脹但不開裂時撈出,瀝去多余的水分。然后將麥粒攤晾至麥粒表面無水分,配制成5 種培養(yǎng)基質。A:小麥100%;B:小麥50%、燕麥30%、玉米20%;C:小麥50 %、燕麥30 %、糙米 10 %、谷子10 %;D:小麥50%、燕麥30%、蕎麥5%、高粱 5%、玉米10%;E:小麥50%、燕麥30%、糙米5%;玉米8%、高粱7%。將不同配方的培養(yǎng)基質分裝于500 mL 菌種瓶中,每瓶裝干料150 g,121 ℃下殺菌2 h。每個配方4 次重復。

1.2.2 接種和培養(yǎng)

在無菌條件下,將蟲草母種接種到經過高壓殺菌的培養(yǎng)基質上,接種后的菌種瓶置于25 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中進行避光培養(yǎng)。

1.2.3 蟲草多糖含量測定

1.2.3.1 葡萄糖標準曲線的制作

取105 ℃烘干至恒重的葡萄糖20 mg 放入小燒杯中,加蒸餾水溶解,然后轉至500 mL 容量瓶中,加水定容,即為40 μg/mL 的葡萄糖標準液。分別取40 μg/mL的葡萄糖溶液 0、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4、1.6、1.8 mL至編號為0~8 的9 支20 mL 具塞試管中,各加蒸餾水1.8 mL,6%的苯酚溶液1.6 mL 以及濃硫酸7.5 mL,搖勻,靜置 10 min,再搖勻,(23±2)℃放置 20 min 后,每組設3 個平行樣品,用紫外分光光度計在490 nm 波長測定樣品吸光度。橫坐標為葡萄糖微克數,縱坐標為吸光度,用excel 軟件制作葡萄糖標準曲線。

1.2.3.2 樣品提取液的制備

精確稱取烘干粉碎的菌質樣品放入100 mL 燒杯中,分別加入50 mL 的蒸餾水,85 ℃水浴加熱浸提2 h,連續(xù)提取3 次。合并濾液用蒸餾水定容至100 mL。

1.2.3.3 去淀粉處理

將固體菌質用粉碎機打成細末狀,然后稱取樣品粉末放入50 mL 燒杯中。向燒杯中分別添加4 mL 3 mol/L 的CaCl2溶液,然后將燒杯放入85 ℃的水浴鍋中加熱,用玻璃棒攪拌10 min 促進溶解,使淀粉糊化。取出燒杯,再分別向燒杯中添加15 mL 6 mmol/L 的I2-DMSO 溶液,溶解淀粉,放入85 ℃的恒溫水浴鍋中,加熱30 min。將燒杯里的樣品倒入離心管中,放入離心機中,轉速3 000 r/min,離心5 min。取出離心管,倒掉上清液,取出離心管底部的沉淀放入燒杯中,向燒杯中分別添加4 mL 的CaCl2溶液,置85 ℃的恒溫水浴鍋里,進行第2 次去淀粉,再制備樣品提取液,提取,定容,稀釋2 倍,裝于50 mL 容量瓶中。

1.2.3.4 樣品多糖含量的測定

分別從50 mL 的容量瓶中用移液槍取0.2 mL 提取液至10 支20 mL 具塞試管中,另準備一支20 mL 具塞試管作為對照,向11 支具塞試管中加蒸餾水補至1.8 mL。分別加1.6 mL 的6%的苯酚溶液和7.5 mL 的濃硫酸至20 mL 具塞試管中,搖勻,靜置10 min;再次搖勻,(23±2)℃放置 20 min 后,于 490 nm 測定吸光度。

樣品多糖含量/(mg/g)=[提取液的多糖含量(μg)×稀釋倍數×100]/[樣品干重(g)×1 000]

1.2.4 蟲草素含量測定

稱取2.00 g 粉碎的樣品于離心管中,加入15 mL的蒸餾水,在50 ℃水浴中超聲60 min,離心取上清液;再向離心管中加入5 mL 的蒸餾水,混合均勻,水浴超聲30 min,離心取上清液;然后再加入5 mL 蒸餾水,混勻水浴超聲30 min,離心取上清液,將3 次離心的上清液合并,用蒸餾水定容25 mL,過濾膜進樣測定,若渾濁再次離心后過濾膜。色譜柱為C18(4.6 mm×250 mm,5 μm),柱溫 35 ℃,流動相為水與乙腈體積比為 90 ∶10,流速 1.0 mL/min,進樣量 20 μL,波長 260 nm。

1.2.5 蟲草酸含量測定

提取過程與蟲草素測定相同。色譜柱C18(4.6 mm×250mm,5μm),柱溫35℃,流動相為水,流速0.6 mL/min,進樣量20 μL,檢測器為示差檢測器。

1.2.6 營養(yǎng)成分含量測定

1)還原糖:GB/T 5009.7-2016《食品中還原糖的測定》直接滴定法。

2)蛋白質:GB/T 5009.5-2016《食品中蛋白質的測定》凱氏定氮法。

3)脂肪:GB/T 5009.6-2016《食品中脂肪的測定》酸水解法。

4)淀粉:GB/T 5009.9-2016《食品中淀粉的測定》酸水解法。

2 結果與分析

2.1 葡萄糖標準曲線

測定葡萄糖含量,標準曲線如圖1 所示。以葡萄糖質量為橫坐標,吸光度值為縱坐標,得到回歸方程y=0.004 9x+0.021 9,R2=0.986 6。

圖1 葡萄糖含量標準曲線Fig.1 Standard curve of glucose content

2.2 不同菌質中蟲草多糖含量

培養(yǎng)基質是蟲草菌絲體生長的基礎,基質的成分和原料配比直接影響菌絲的生長,進而影響次生代謝產物的形成。不同菌質的蟲草多糖含量見表1。

表1 不同菌質的蟲草多糖含量Table 1 Cordyceps polysaccharide content of different fungal substance

由表1 可以看出,2 個菌株在5 種不同配方的培養(yǎng)基質上的多糖產率不同,菌株ZNB2.1 在B 和C 培養(yǎng)基質中的多糖產率較高,分別為5.119%、5.037%,A培養(yǎng)基質中的多糖含量最低,僅為3.578 %。菌株ZNB2.2 在E 培養(yǎng)基質中的多糖含量最高,達到4.853%,在C 培養(yǎng)基質中的多糖含量最低,為2.799%。由表1還可知,菌株ZNB2.1 在5 種培養(yǎng)基質中多糖含量的平均值大于菌株ZNB2.2,說明ZNB2.1 產生多糖的能力大于ZNB2.2。

2.3 去淀粉處理的多糖含量的影響

據文獻報道,測定菌質的多糖含量時,菌質中的剩余淀粉,特別是被蟲草菌絲降解而產生的小分子淀粉,會使多糖的測定值提高,增大試驗誤差[8]。為減小菌質中淀粉對蟲草多糖測定的干擾,采用二甲基亞砜去除殘留淀粉后,再測定蟲草多糖含量。樣品經去淀粉處理后,蟲草多糖含量測定結果見表2。

表2 去淀粉后的菌質中蟲草多糖含量Table 2 Cordyceps polysaccharide content of fungal substance after starch removal

由表2 可知,去淀粉后10 個菌質樣品的多糖含量都比去淀粉前降低,ZNB2.1 菌株5 種培養(yǎng)基質的菌質多糖含量由3.578 %~5.119 %降至2.588 %~4.188%,ZNB2.2 菌株5 種培養(yǎng)基質的菌質多糖含量則由2.799%~4.853%降至2.094%~3.924%。

5 種培養(yǎng)基質中,ZNB2.1 在B 培養(yǎng)基質中產生的多糖最多,菌質多糖含量最高,為4.188%,在A 培養(yǎng)基質中形成的多糖最少,菌質多糖含量最低,為2.588%。ZNB2.2 在E 培養(yǎng)基質中的多糖產率最高,菌質多糖含量達到3.924 %,C 培養(yǎng)基質中的多糖含量最低,為2.094%。由表 2 還可知,去淀粉后,ZNB2.1 在 5 種培養(yǎng)基質菌質的多糖含量平均值依然大于ZNB2.2。無論是去淀粉前還是去淀粉后,ZNB2.1 在5 種培養(yǎng)基質中多糖含量的平均值都大于菌株ZNB2.2。

2.4 不同菌株的菌質中主要營養(yǎng)成分及活性成分的影響

發(fā)酵前后基質的營養(yǎng)成分變化和活性成分含量見表3。

表3 發(fā)酵前后基質的營養(yǎng)成分變化和活性成分含量Table 3 Changes of nutritional components and contents of active components in substrates before and after fermentation

蟲草菌絲體在生長過程中,從培養(yǎng)基質中吸取營養(yǎng),完成生長代謝過程,產生活性成分,同時使基質的營養(yǎng)成分發(fā)生變化。將2 個菌株分別接種到基質E上,發(fā)酵結束后測定菌質的主要營養(yǎng)成分及活性成分含量,可以發(fā)現基質經過2 個蟲草菌株發(fā)酵后,其營養(yǎng)成分發(fā)生了變化,均表現為還原糖含量增高,淀粉和蛋白質含量降低。ZNB2.2 菌株在發(fā)酵過程中,產生蟲草素和蟲草酸,菌質中生活性成分蟲草素和蟲草酸的含量分別達到207.4 mg/kg 和22.1 g/kg,而ZNB2.1 菌質中未檢測到蟲草素和蟲草酸。說明蟲草菌絲體固發(fā)酵可產生蟲草素和蟲草酸,產生活性成分的能力因菌株而異。

3 結論與討論

菌株ZNB2.1 和ZNB2.2 分別在基質B 中和基質E中的多糖產率最高,ZNB2.1 產生蟲草多糖的能力大于ZNB2.2。對菌質樣品進行去淀粉處理,可減小殘留淀粉對蟲草多糖測定的干擾。基質經過蟲草固體發(fā)酵后,還原糖含量增高,淀粉和蛋白質含量降低。ZNB2.2 菌株的菌質中蟲草素和蟲草酸的含量分別達到207.4 mg/kg和22.1 g/kg,而ZNB2.1 菌質中未檢測到蟲草素和蟲草酸。蟲草菌絲體固發(fā)酵產生活性成分的能力因菌株而異,綜合考慮蟲草多糖、蟲草素和蟲草酸的產率,蟲草固體發(fā)酵宜選用ZNB2.2 菌株和基質E。

莊毅等以槐耳菌為發(fā)酵菌種、中藥材黃芪為發(fā)酵基質進行雙向固體發(fā)酵,即基質為槐耳菌生長提供所需營養(yǎng),槐耳菌產生新的活性成分,而基質的原有成分因真菌分泌的酶的作用發(fā)生變化,槐耳菌絲體、活性成分和黃芪基質共同構成藥性菌質,從而產生新的性味功能,具有比該真菌或藥性基質本身或兩者簡單相加更好的藥效[9]。本研究選用蟲草為發(fā)酵菌種、小麥為發(fā)酵基質進行雙向固體發(fā)酵,雖然基質中的淀粉和蛋白質等營養(yǎng)成分被菌絲分解而減少,但菌質中生成了蟲草的活性成分——蟲草多糖、蟲草素和蟲草酸,菌質可用于開發(fā)營養(yǎng)保健食品。該雙向固體發(fā)酵研究為小麥的精深加工提供了一條新途徑。薛俊杰等報道,蟲草素的分泌與菌株特性有密切關系,并不與菌株的長勢直接相關[10]。孫軍德等通過5 個蟲草菌株的菌絲生長速率和培養(yǎng)基中活性物質含量的對比研究,發(fā)現不同蟲草菌株的菌絲生長速率、蟲草多糖和蟲草素地含量不同[11]。劉艷芳等對19 個蟲草屬菌株的菌絲體中活性成分進行了分析,結果表明不同菌株菌絲體蟲草素含量差異顯著[12]。本試驗中不同蟲草菌株產生活性成分的能力不同,與文獻[10-12]的研究結果一致。另據報道,蟲草菌絲的培養(yǎng)條件直接影響菌質中活性成分的含量,為提高蟲草多糖、蟲草素和蟲草酸等活性物質的產率,需要對蟲草雙向固體發(fā)酵的培養(yǎng)條件進行更深入的研究。

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