葉山亮,周偉杰,郭科航,卓澤偉,盧銓,張宸,駱昱均,陳浩,沙衛(wèi)紅
急性輻射小腸損傷(radiation-induced intestinal injury,RIII)是放射性治療常見的并發(fā)癥,尤其是盆腔、腹腔惡性腫瘤病人接受放射治療后,發(fā)生率高達75%[1]。常見臨床表表現為腹痛、腹瀉、便血等,嚴重損傷患者出現血樣腹瀉、消化不良、脂肪瀉、貧血、全身感染等,嚴重影響著患者的生活質量[2-3]。然而,目前的臨床治療療效有限。因此,臨床上需要更好的治療方法。
骨髓間充質干細胞(bone marrow mesenchymal stem cells, BM-MSCs)是一類能夠自我更新并且有多向分化能力的干細胞。當前多項研究顯示BM-MSCs移植對修復腸道黏膜損傷有良好的治療作用[4],如炎癥性腸病[5]、壞死性小腸結腸炎[6]和腸缺血再灌注損傷[7]均有明顯的修復療效。除此之外,間充質干細胞還具有抑制炎癥和直接促進再生的作用[8]。然而,在BM-MSCs移植中,存在醫(yī)源性腫瘤形成的可能、細胞排斥反應和輸注毒性的風險,而且BM-MSCs靜脈注射后,大部分細胞以微小的栓子形式滯留在肺臟、肝臟內,減少了它們在病灶中的含量以及作用[9-10]。以上的不足嚴重限制了BM-MSC移植的臨床應用。
骨髓間充質干細胞條件培養(yǎng)基(conditioned medium derived from bone marrow-mesenchymal stem cells, MSC-CM)含有間充質干細胞的旁分泌因子以及營養(yǎng)因子,可以下調炎癥,起到保護腸黏膜的作用,還可避免BM-MSCs移植的不足,被認為是BM-MSCs的理想替代。課題組前期發(fā)現TNF-α、IL-1β預刺激BM-MSCs后,可以增加其旁分泌的作用,但目前關于TNF-α、IL1β誘導的骨髓MSC-CM修復RIII的研究尚少。本研究旨在探討炎癥因子TNF-α、IL-1β預刺激骨髓MSC-CM與正常狀態(tài)下MSC-CM修復受損腸黏膜的差異以及作用機制,為BM-MSCs來源的條件培養(yǎng)基治療RIII提供實驗依據以及理論基礎。
無特定病原體(specific pathogen free,SPF)雌Sprague-Dawley(SD)大鼠80只,平均體重約153.47 g,4~5周齡,用于構建RIII模型。雌性SD大鼠10只,3~4周齡,體重在60~100 g,用于獲取BM-MSCs。SD大鼠均由北京維通利華實驗動物技術有限公司提供,飼養(yǎng)于華南理工大學SPF級別動物中心。所有動物經檢疫符合實驗動物標準,實驗方法符合醫(yī)學倫理學要求。
骨髓間充質干細胞培養(yǎng)基(Cyagen公司),胎牛血清(美國Hycolne公司),抗大鼠CD29-FITC、CD34-FITC、CD44-FITC、CD45-FITC單克隆抗體(美國Biolegend公司),成骨分化培養(yǎng)基(Cyagen公司)、成脂分化培養(yǎng)基(Cyagen公司)。TNF-α細胞因子(Cyagen公司)、IL1β細胞因子(Cyagen公司)DMEM-F12培養(yǎng)基(美國Hycolne公司)、TrypLEExpress胰酶替代物(美國Invitrogen 公司)。ELISA試劑盒(美國R&D公司)
1.2.1 骨髓間充質干細胞分離、培養(yǎng)與鑒定 SD大鼠頸椎脫臼法處死后,摘除雙側股骨和脛骨,DMEM-F12培養(yǎng)基沖出骨髓,于離心機1 000 r/min,離心5 min,分離紅細胞及細胞碎片,再用體積分數為10%胎牛血清的BM-MSCs專用培養(yǎng)基重懸浮細胞,細胞懸液培養(yǎng)于T25瓶,置于37 ℃、體積分數為5% CO2、濕度90%的細胞培養(yǎng)箱內培養(yǎng),每隔3 d換液。通過換液、傳代純化細胞,細胞培養(yǎng)至P3-P5,用作后續(xù)實驗。流式細胞儀對MSC細胞表型CD29、CD34、CD44、CD45進行鑒定。行成骨、成脂分化進行分化鑒定。
1.2.2 骨髓間充質干細胞條件培養(yǎng)基配置 條件培養(yǎng)基參照課題組方法配置。BM-MSCs融合度達到70%~80%時,放置低氧條件下培養(yǎng),氧體積分數為0.5%,6h后加入外源TNF-α(6 ng/mL, Cyagen公司)與IL-1β(3 ng/mL,Cyagen公司)聯(lián)合培養(yǎng),模擬炎癥刺激環(huán)境, 24 h后棄去原有培養(yǎng)基,PBS洗滌2次,更換新鮮無血清DMEM-F12培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)48 h后,收集該細胞培養(yǎng)液,此為TNF-α、IL-1β炎癥預激骨髓充質干細胞條件培養(yǎng)基(MSC-CMTNF-α+IL1β)。采用相似的方法,無血清DMEM-F12培養(yǎng)基培養(yǎng)BM-MSCs 48 h后收集培養(yǎng)液體,此為正常狀態(tài)的無間充質干細胞條件培養(yǎng)基(MSC-CMNOR),儲存于-20 ℃冰箱備用。
1.2.3 RIII大鼠模型構建及實驗分組 SD大鼠進行吸入性麻醉,麻醉成功后,用鉛磚遮蔽除腹部以外的身體部位,利用PRIMUS? H直線加速器(X射線)以300 cGy/min的速率一次性照射,總劑量14.0 Gy進行腹部局部照射。造模成功后,SD大鼠出現腹脹、便血等表現,把SD大鼠按照以下分組:①無干預,正常對照組(n=20只);②RIII+200 μL DMEM-F12(n=20只);③RIII+200 μL MSC-CMNOR(n=20只);④RIII+200 μL MSC-CMTNF-α+IL-1β(n=20只)。每組SD大鼠在接下來的4 h內,尾靜脈分別一次性注射200 μL的DMEM-F12培養(yǎng)基、MSC-CMNOR和MSC-CMTNF-α+IL-1β。連續(xù)注射3 d,2 mL濃縮條件培養(yǎng)基裝于膠囊內,植入腹腔后以10 μL/h的速率勻速釋放。
1.2.4 腸道標本H&E染色 在放射損傷后第1、3、5、7天,每組在各個時間點隨機取5只大鼠,行頸椎脫臼法處死,距回盲部10~15 cm取出回腸約2 cm,縱行切開腸組織,冰磷酸鹽緩沖液(PBS)反復洗滌,10%中性福爾馬林中固定,石蠟包埋,切片厚度為 4 μm,蘇木素-伊紅(HE)染色,進行組織病理分析。取腸道黏膜50 mg,用于后續(xù)ELISA炎癥因子檢測。
1.2.5 小腸組織中促炎因子和抗炎因子水平檢測 取上述腸組織,用冰PBS漂洗腸組織,取10 mg腸組織加入1 mL PBS研磨,制備成組織勻漿,4 ℃ 12 000 rpm/min 離心30 min,取上清液,參照說明書,利用ELISA試劑盒檢測TNF-α、IL-6、IL-10細胞因子水平。
1.2.6 血清中促炎因子和抗炎因子水平檢測 每個節(jié)點處死大鼠后,心臟采血1.5 mL,3 000 rpm/min離心10 min,上清為血清血漿,利用ELISA試劑盒檢測血清血漿TNF-α、IL-6、IL-33、IL-10細胞因子水平。
對照組SD大鼠呼吸、活動度良好,進食可;RIII組在放射后第4、5、7天分別出現3、3、4只大鼠死亡;MSC-CMNOR處理組在第4、5、6天分別出2、3、3只大鼠死亡;MSC-CMTNF-α+IL1β處理組未見死亡。RIII組和RIII+MSC-CMNOR組大鼠出現明顯的活動度減少、腹脹、血便等,癥狀逐漸加重;而與上述兩組比較,MSC-CMTNF-α+IL1β組大鼠則未見明顯的的活動度減少、腹脹,偶有血便。四組大鼠輻射前體重分布滿足正態(tài)分布,各組之間無統(tǒng)計學差異(表1)。輻射后第3天,MSC-CMTNF-α+IL1β組大鼠的體重,比單純RIII及RIII+MSC-CMNOR組大鼠體重明顯更重,見表2。
表1各組大鼠的初始體重比較
注:RIII:放射性腸損傷;MSC-CMNOR:正常狀態(tài)下的骨髓間充質干細胞條件培養(yǎng)基;MSC-CMTNF-α+IL1β:TNF-α、IL1β預激活骨髓間充質干細胞條件培養(yǎng)基
表2各組大鼠在放射后第3天體重
注:RIII:放射性腸損傷;MSC-CMNOR:正常狀態(tài)下的骨髓間充質干細胞條件培養(yǎng)基;MSC-CMTNF-α+IL1β:TNF-α、IL1β預激活骨髓間充質干細胞條件培養(yǎng)基。*與MSC-CMTNF-α+IL1β干預組比較,P<0.05
放射損傷后第3天,各組病理改變明顯。RIII組及RIII+MSC-CMNOR組大鼠腸上皮細胞出現不同程度變性、壞死,絨毛縮短、脫落明顯,腺管排列紊亂,隱窩變淺或消失,炎癥細胞浸潤至黏膜下層。而MSC-CMTNF-α+IL1β治療組大鼠未見顯著的小腸上皮細胞壞死及絨毛縮短,隱窩結構未見明顯的病理改變(圖1)。
放射后第3天,損傷組及治療組的炎癥因子平衡改變,出現明顯的差異。MSC-CMTNF-α+IL1β干預組與RIII組、MSC-CMNOR干預組比較,在小腸黏膜處促炎因子TNF-α、IL-6顯著降低(P<0.05),抗炎因子IL-10顯著升高(P<0.05);MSC-CMNOR干預組與RIII組比較,TNF-α的升高有統(tǒng)計學差異,而IL-6及IL-10的改變無明顯統(tǒng)計學差異,見表3。
在放射后第3天,炎癥因子出現顯著差異。與RIII組、MSC-CMNOR干預組比較,MSC-CMTNF-α+IL1β干預組幼鼠血清中TNF-α、IL-6、IL-33明顯降低(P<0.05),抗炎因子IL-10顯著升高(P<0.05);MSC-CMNOR干預組與RIII組比較,促炎因子及抗炎因子未見明顯改變,見表4。
圖1圖為放射后第3天小腸組織學改變(蘇木素-伊紅染色,10×10)
表3各組大鼠腸組織中促炎因子和抗炎因子的水平
注:a與正常組比較,P<0.05;b與RIII組比較,P<0.05;c與MSC-CMNOR處理組比較,P<0.05
表4各組大鼠血清中促炎因子和抗炎因子的水平
注:a與正常組比較,P<0.05;b與RIII組比較,P<0.05;c與MSC-CMNOR處理組比較,P<0.05
RIII是放射性療法常見的并發(fā)癥,特別是接受了放射性治療的腹腔、盆腔惡性腫瘤患者,臨床表現多樣,輕者表現為腹痛、腹脹、腹瀉、血便,病情嚴重者會出現劇烈的腹痛、血樣腹瀉、貧血、全身感染等。雖然目前臨床治療有較多的方法,但療效欠佳,嚴重地影響著患者的生活質量甚至有生命威脅[11]。隨著放射療法在腫瘤治療上的應用增多,患病人數也隨之增加[12-13],急需更為有效的治療方法。
RIII的發(fā)病機制尚未完全明確,但主要認為是分裂活躍的腸上皮,尤其是腸隱窩干細胞暴露在放射性細胞毒性下的結果[14]。在動物模型與患者的流行病學研究發(fā)現,疾病與放射線的劑量、放射性區(qū)域內小腸的體積、患者的營養(yǎng)狀況有關等因素有關[15-16]。本實驗通過對SD大鼠進行準確的射線損傷干預后,成功構建了RIII大鼠模型。大鼠腹脹、便血、活動量減少、體重不增等臨床表現明顯;病理學檢測示小腸絨毛縮短脫落、隱窩消失或變淺、炎癥細胞大量浸潤等,符合RIII的病理改變。該模型的構建模擬了RIII主要的致病因素,臨床表現及病理表現符合RIII,使后續(xù)的治療更有信服力。
隨著對疾病的了解,炎癥反應被認為在RIII發(fā)病機制中起著主要的作用[17-18]。我們利用TNF-α、IL-1β促炎因子,模擬腸道炎癥環(huán)境,刺激MSCs旁分泌。與RIII損傷組、MSC-CMNOR干預組比較,MSC-CMTNF-α+IL1β干預組能明顯地減輕腸道黏膜受損程度,腸組織中觀察到促炎因子TNF-α、IL 6顯著降低、抗炎因子IL 10明顯升高;同時,在血清中也觀察到TNF-α、IL 6、IL 10有著相同的改變。MSC-CMTNF-α+IL1β干預組大鼠腹脹、便血等表現均有改善; 而MSC-CMNOR干預后,RIII模型的臨床表現及炎癥因子無明顯改變。本研究表明炎癥預刺激MSCs條件培養(yǎng)基能夠抑制炎癥,修復腸上皮細胞。根據目前國內外的研究,我們推測MSC-CMTNF-α+IL1β抑制炎癥反應主要是通過培養(yǎng)基內的外泌體。外泌體是細胞分泌的囊泡樣結構,直徑在30~100 nm之間,其攜帶著各種蛋白質及RNA,參與細胞的增殖、分化、炎癥調節(jié)等多種生命活動[19]。研究表明,在多種疾病模型中,外泌體均表現出抑制炎癥的作用。在腸缺血再灌注引起的肺損傷疾病模型中,MSCs來源外泌體可以調節(jié)TLR4/NF-κB信號通路,改變促炎因子與抗炎因子的平衡,減輕炎癥損傷[20];在結腸炎中,MSCs來源的外泌體通過免疫抑制來減輕炎癥,緩解腸黏膜損傷[21];在多發(fā)性硬化中,MSCs來源的外泌體通過調節(jié)小膠質細胞的極化,緩解中樞神經系統(tǒng)的炎癥與脫髓鞘程度[22]。對于RIII,目前研究發(fā)現TLR4通路在疾病的修復當中有著重要的作用,TLR4通路的激活可以上調多種細胞因子,如前列腺素E2、粒細胞-巨噬細胞集落刺激因子,修復腸上皮細胞[23-24],從而調節(jié)細胞活動,修復損傷。所以,MSCs來源的外泌體可能是調節(jié)TLR4信號通路,減少細胞凋亡,促進細胞增殖,平衡促炎因子與抗炎因子水平,減輕炎癥程度,從而修復腸黏膜上皮細胞。但目前尚未有證據證明這一假設,需要進一步探討證實。另外,腸道微菌群的平衡在RIII發(fā)病中也起著一定的作用,研究發(fā)現,放射性腸損傷的腸道菌群失衡,腸內菌群免疫環(huán)境遭破壞,致使腸上皮細胞凋亡[25]。因此,MSCs來源的外泌體也可能通過調節(jié)腸道微生物種群的比例及腸道免疫,修復腸道受損黏膜。
總的來說,炎癥因子TNF-α、IL1β模擬炎癥環(huán)境,預激活骨髓間充質干細胞后,可以促進骨髓間充質干細胞的旁分泌,產生更多細胞因子及營養(yǎng)因子。炎癥預刺激骨髓間充質干細胞條件培養(yǎng)基通過調節(jié)促炎因子與抗炎因子的平衡,抑制炎癥,修復輻射性腸損傷受損腸道。這項研究顯示炎癥預刺激骨髓間充質干細胞條件培養(yǎng)基作為新的治療方式展示了美好的前景,為日后臨床應用打下了實驗及理論基礎。